CC BY
23
УДК 636.5.033
ИНТЕРЬЕРНЫЕ И ПРОДУКТИВНЫЕ ПОКАЗАТЕЛИ ЦЫПЛЯТ-БРОЙЛЕРОВ ПРИ ПРИМЕНЕНИИ БИОРЕГУЛЯТОРА
САМБУРОВ Н.В.,
доктор биологических наук, доцент, профессор кафедры разведения сельскохозяйственных животных и зоогигиена ФГБОУ ВО Курская ГСХА, e-mail: samburov_nv@rambler.ru.
ЕВГЛЕВСКИЙ Ал. А.,
доктор ветеринарных наук, профессор, зав. лабораторией «Ветеринарная медицина» Федерального государственного бюджетного научного учреждения Курский научно-исследовательский институт агропромышленного производства, e-mail: evgl46@yandex.ru.
ПОПОВ В. С.,
доктор ветеринарных наук, старший научный сотрудник лаборатории «Ветеринарная медицина» Федерального государственного бюджетного научного учреждения Курский научно-исследовательский институт агропромышленного производства, e-mail: viktor.stugen@yandex.ru.
Реферат. Современное промышленное птицеводство характеризуется значительным усилением техногенной и стрессовой нагрузки на организм цыплят-бройлеров. Цель работы заключалась в изучении влияния биорегулятора содержащего янтарную кислоту, левамизол и растворимые соли микроэлементов железа, меди, цинка, кобальта на обменные процессы, неспецифическую резистентность, продуктивность бройлеров выращиваемых клеточным способом. Научно-производственный опыт проведен в условиях птицефабрики на цыплятах кросса «Cobb-500», из которых сформировали контрольную и опытную группы по 50 голов в каждой. Опытные цыплята получали основной рацион, и дополнительно им выпаивался биорегулятор в разведении 1:3 при достижении 5 и 6-; 12-14-; 16-18-; 20-22-; 24-26-; 27-35-суточного возраста. В течение опыта контролировали сохранность поголовья, динамику живой массы, затраты комбикорма. Общепринятыми методами определяли гематологические показатели, общий белок и его фракции, глюкозу, общий холестерол, активность ферментов переаминирования АсАТ и АлАт, щелочной резерв и основные метаболиты минерального обмена. При оценке неспецифической резистентности организма цыплят использовали показатели фагоцитарной, бактерицидной, лизоцимной активности крови, концентрации иммуноглобулинов. По результатам опыта рассчитывали среднесуточные приросты живой массы, затраты корма на 1 кг прироста, индекс продуктивности. Используя данные контрольного убоя бройлеров, определяли массу потрошеной тушки, убойный выход, общую массу всех мышц, в том числе и грудных. Введение в рацион цыплят биорегулятора активировало систему кроветворения и метаболические процессы в их организме, что проявилось увеличением количества эритроцитов, гемоглобина, лейкоцитов соответственно на 14,8 %, 6,0 % и 1,0 %. В сыворотке крови опытных цыплят концентрация общего белка превышала значения контроля на 8,1 %, у-глобулинов - на 19,9 %, глюкозы на - 22,7 %, активность АсАТ на - 13,1 %, АлАТ на - 11,2 %. Уровень минеральных элементов кальция, фосфора неорганического, железа, меди, цинка и кобальта в опытной группе был выше на 8,5 % - 18,7 %. По сравнению с контролем наблюдается увеличение фагоцитарной активности на 4,5 %, БАСК на - 31,5 %, ЛАСК на -33,9 %, IgG на - 35,4 %, IgM на - 5,9 %., возрастает в крови и количество иммунокомпетентных клеток. Сохранность опытных цыплят выше на 3 %, среднесуточный прирост живой массы на - 8,18 г, индекс продуктивности на - 22,3 %, а на получение 1 кг прироста затрачивалось на 0,04 кг комбикорма меньше. Применение биорегулятора позволило увеличить массу потрошеной тушки на 16,9 %, массу съедобных частей тушки на - 18,4 %, массу мышц на - 24,2 %, в т.ч. грудных на - 33,9 %.
Ключевые слова: цыплята-бройлеры, биорегулятор, янтарная кислота, левамизол, метаболические процессы, общий белок, фракции белка, неспецифическая резистентность, среднесуточный прирост, затраты корма на 1 кг прироста, индекс продуктивности, масса потрошеной тушки.
INTERIOR AND PRODUCTIVE INDICES OF BROILER-CHICKENS WHEN USING BIO-REGULATOR
SAMBUROV N. V.,
Doctor of Biology, professor, the department of breeding farm animals and zoo-hygiene, Kursk state agricultural I.Ivanov Academy, e-mail: samburov nv@rambler.ru.
YEVGLEVSKIY Al. A.,
Doctor of Veterinary Medicine, professor, head of veterinary laboratory. Federal state budgetary scientific establishment. Kursk scientific research Institute of agro-industrial production, e-mail: evg146@yandex.ru.
POPOV V. S.,
Doctor of Veterinary Medicine, senior scientific worker of veterinary laboratory, Federal state budgetary scientific establishment. Kursk scientific research Institute of agro-industrial production, e-mail: victor.stugen@Yandex.ru.
Essay. Modern industrial poultry-farming is characterized by a great anthropogenic and stress influence on a broilerchicken organism. The aim of the research is to study the influence of a bio-regulator containing succinic acid, Levamisol and soluble salts of such micro-elements as iron, zinc, copper and cobalt on metabolism process, non-specific resistance, productivity of broilers grown by a cell method. A scientific production experiment was conducted on poultry farm chick-
ens of the cross-breed "Cobb-500". Controlled and experimental groups were formed, 50 chickens in each group. Chickens under experiment got the main ration and, in addition, they had a bio-regulator in a solution of 1:3, when they were 5-6-; 12-14-; 16-18-; 20-22-; 24-26-; 27-35- days of age. During the experiment the number of the chickens, live weight dynamics, combined-feed expenditure were controlled. Generally accepted methods determined haematological indices, general protein and its fractions, glucose, general cholesterol, the activity of ferments AsAT and AlAT, alkali reserve and the main metabolites of mineral metabolism. In estimation of non-specific resistance of a chicken organism indices of phagocytic, bactericidal, lysocymnic activity of blood and concentration of immune-globulins were used. The results of the experiment helped to determine average daily increase of live-weight, fodder expenditure for 1 kilogram of gain and index of productivity. The data of a controlled slaughter of broilers helped to determine the mass of a drawn carcass, the drawn yield, total mass of all the muscles, including pectoral muscles. The use of a bio-regulator in the broilers' ration activated blood formation system and metabolic processes in their organism that resulted in an increase of erythrocytes, hemoglobin, leukocytes, correspondingly by 14, 8%, 6,0% and 1,0 %. The concentration of general protein in the blood of controlled chickens increased by 8,1%, y-globulin -by 19,9%, glucose -by 22,7%, the activity of AsAT - by 13,1%, AlAT - by 11,2%. The level of mineral elements, such as calcium, phosphorus, non-organic iron, copper, zinc and cobalt in the experimental group was higher by 8,5% - 18,7%. Phagocytic activity was higher by 4,5%, EABS (bactericidal activity of blood serum) by 31,5%, LABS (lysocymnic activity of blood serum) - by 33,9%, IgG - by 35,5, IgM - by 5,9%, the number of immune-competent cells is increased in blood. The vitality of chickens under control was higher by 3 %, the average daily increase of live weight increases by 8,18%, productivity index increases by 22,3%. To get 1 kilogram of weight gain it was necessary to have combined fodder by 0,04 kilogram less. The use of the bio-regulator made it possible to increase the mass of a drawn carcass by 16,9%, the mass of eatable parts of the carcass -by 18,4%, the mass of the muscles - by 24,2%, including pectoral muscles - by 33,9%.
Key words: broiler-chickens, bio-regulator, succinic acid, levamisol, metabolic processes, general protein, protein fractions, non-specific resistance,, average daily gain, fodder expenditure for 1 kilogram of gain, productivity index, the mass of a drawn carcass.
Введение. Ключевой проблемой при выращивании цыплят-бройлеров является полная реализация генетического потенциала и биологических возможностей организма птицы современных высокопродуктивных кроссов и получения максимальной прибыли. Интенсификация бройлерного производства позволяет предприятиям достигать довольно высоких продуктивных показателей и конверсии корма. Однако на экономику птицефабрик заметное влияние оказывают показателя сохранности поголовья в связи с низким уровнем естественной резистентности организма цыплят в начальный период выращивания [1].
Состояние здоровья птицы, как известно, поддерживается иммунной системой. Врожденный иммунитет определяют неспецифические факторы защиты организма: физические барьеры (кожа, слизь в желудочно-кишечном тракте); специфические молекулы (агглютинины, перфорины, преципитины, белки острой фазы, система комплемента, лизоцим, пропердин, интерферон, Ь-лизины) [2, 3, 4].
В неспецифической защите организма птицы от патогенных и непатогенных чужеродных агентов велика роль клеток способных к фагоцитозу и лизирующей активности класса лимфоцитов, называемых естественными киллерами (МК-клетки) [5, 6].
При становлении иммунной защиты организма птицы на лимфоидную ткань желудочно-кишечного тракта ложится основная нагрузка антигенного материала кормовой и микробной природы. Миграция и рециркуляция иммунокомпетентных клеток через кишечник обеспечивает контакт с большинством антигенов, с которыми организм сталкивается в окружающей среде. В дальнейшем эти клетки - лимфоциты памяти расселяются по всему организму, обеспечивая местную и системную защиту [7].
У цыплят выделяют три возрастных иммунных дефицита. Первый регистрируется на 3-5 сутки жизни, который характеризуется лейкопенией, снижением в крови количества лимфоцитов главным образом за счет Т-клеток. В сыворотке крови уменьшается содержание общего белка, иммуноглобулинов всех классов и осо-
бенно IgG, падает литическая активность лизоцима. Второй - на 12-28 сутки его развитие начинается с резкого снижения уровня иммуноглобулинов в сыворотке крови, особенно IgM, и в меньшей степени IgG и ^А [8, 9].
В последние годы активно ведется разработка и поиск новых биологически активных препаратов, оказывающих комплексное действие на обмен веществ и иммунобиологическую реактивность организма птицы через периферическое звено иммунной системы, связанное с органами пищеварения [10, 11].
С учетом вышеизложенного, нами для активизации метаболических процессов, неспецифической резистентности, профилактики иммунных дефицитов и повышения продуктивных показателей у цыплят-бройлеров разработан биорегулятор на основе янтарной кислоты и левамизола с комплексом микроэлементов (Бе, Си, 2п, Со).
Выбор янтарной кислоты обусловлен тем, что она является биологически активным веществом с широким диапазоном действия. Янтарная кислота один из ключевых компонентов универсального внутриклеточного механизма цикла Кребса, в котором происходит окисление активированной уксусной кислоты образующейся при расходе углеводов, жиров и некоторых аминокислот. Поступившая в организм экзогенно янтарная кислота может включаться в цикл Кребса путем ее конденсации с оксалоацетатом или на уровне сукцинил СоА. Включение в рацион янтарной кислоты в качестве кормовой добавки является дополнительным источником энергии или же субстратом при синтезе липидов в глиоксилатном цикле [12]. Кроме того выявлена способность янтарной кислоты проникать в ткани и снижать внутриклеточный показатель рН в сторону губительную для контаминан-тов и нормализовать кишечный микробиоценоз [13].
Цель нашей работы заключалась в изучении влияния испытуемого биорегулятора на обменные процессы, иммунологические и продуктивные показатели цыплят-бройлеров.
Материал и методы. В условиях ООО «ПФ» «Красная поляна» Железногорского района Курской области проведен научно-производственный на цыпля-
тах-бройлерах кросса «Cobb-500». Из цыплят суточного возраста живой массой 42-43 г сформировали две группы (контрольная и опытная) по 50 особей в каждой. Птицу содержали в клетках клеточной батареи 2Б-3. Опытные цыплята получали испытуемый биорегулятор с питьевой водой в разведении 1:3 (1 часть препарата на 3 части воды) в следующие возрастные периоды (сут.): 5-6; 12-14; 16-18; 20-22; 24-26; 27-35 дополнительно к основным лечебно-профилактическим мероприятиям. Бройлерам скармливался комбикорм, питательная и энергетическая ценность которого соответствовала возрастному периоду и нормам для этого кросса рекомендованным ВНИТИП (2010).
За цыплятами вели наблюдения с суточного возраста и до конца выращивания (40 сут.). В течение опыта учитывали: сохранность поголовья путём ежедневного выявления павшей птицы с установлением причин падежа; живую массу цыплят индивидуальным взвешиванием всех цыплят каждой группы по периодам их выращивания, среднесуточный прирост живой массы. Затраты комбикорма на 1 кг прироста живой массы цыплят рассчитывали по результатам учета расходования корма и взвешиваний бройлеров. Данные средней живой массы, сохранности, затрат корма на 1 кг прироста и продолжительности использовали при расчете европейского фактора эффективности по формуле:
ЕФЭ = х 100
К х Т
где М - средняя живая масса, кг; С- сохранность, %; К - затраты корма на 1 кг прироста, кг; Т- срок выращивания цыплят, суток. Оценку мясной продуктивности проводили после убоя птицы.
Для проведения биохимических исследований, оценки неспецифической резистентности и иммунного статуса из каждой группы выделяли по шесть голов птицы. Кровь у цыплят отбирали из подкрыльцовой вены или после декапитации. Морфологический состав крови, иммунологические показатели организма бройлеров определяли в 14-, 28- и 40-суточном возрасте. В конце срока их выращивания определяли общий белок и его фракции, некоторые показатели характеризующие углеводный, липидный и минеральный обмены.
Количество лейкоцитов, эритроцитов и гемоглобин определяли на автоматическом гематологическом анализаторе Mindray ВС-2800 с программным обеспечением Vet 2.3 для животных. Концентрацию в сыворотке крови общего белка, активность аспартат- и аланина-минотрансфераз, глюкозу, общий холестерол, общий кальций, неорганический фосфор, железо, медь, цинк -
на биохимическом анализаторе Stat Fax 1904 (Avareness Technology, СЩА) используя стандартные реагенты фирмы «BioSystems»). Фракции белка нефелометриче-ским методом, кобальт по методу С.И. Гусевой в модификации А.А. Титовой (И.П. Кондрахин и соавт., 2004). Щелочной резерв плазмы крови диффузионным методом по И.П. Кондрахину (В.М. Холод, Г.Ф. Ермолаев, 1988). Бактерицидную активность сыворотки крови (БАСК) с культурой клеток E. соЬ по методике О.В. Смирновой и Т.А. Кузьминой (1966); лизоцимную активность сыворотки крови (ЛАСК) контролировали нефелометрическим методом с культурой M. lysodecticus (В. Г. Дорофейчук, 1968); фагоцитарную активность лейкоцитов по В.С. Гостеву (С.И. Плящен-ко, В.Т. Сидоров, 1979). Содержание в сыворотке крови иммуноглобулинов IgG и IgM определяли методом простой радиальной иммунодиффузии по G. Manchini et al. (1965), количество и функциональную активность Т-лимфоцитов - в реакции спонтанного розеткообразо-вания с эритроцитами барана (Е-РОК), В-лимфоцитов -методом комплементарного розеткообразования (ЕАС-РОК) с эритроцитами мыши (И.М. Карпуть, 1993).
Убойные качества бройлеров оценивали по результатам контрольного убоя: индивидуальным взвешиванием 6 потрошеных тушек из каждой группы устанавливали их массу; убойный выход мяса - отношением массы потрошеной тушки к предубойной массе, выраженной в процентах; взвешиванием массу съедобных и несъедобных частей тушки; взвешиванием массу всех мышц в т. ч. грудных.
Результаты и обсуждение. Основным показателем, характеризующим окислительно-восстановительные процессы в организме цыплят, уровень обменных процессов, является кровь. Количество форменных элементов в крови обусловлено многими паратипическими факторами и по ним можно судить о течении многих физиологических функций организма. Результаты исследований показали, что выпаивание биологически активного состава способствовало повышению окислительных свойств крови и соответственно обменных процессов, на что указывает количество эритроцитов и содержание в них гемоглобина у цыплят опытной группы (табл. 1). Количество лейкоцитов у 14-суточных цыплят опытной группы по сравнению с контрольной было выше на 4,3 %, на 28 сутки наблюдали снижение численности клеток до 24,74±0,79 109/л (контроль) и 24,89±0,64 109/л (опыт). К концу выращивания количество лейкоцитов возросло в крови птицы обеих групп, но у цыплят получавших биорегулятор оно было выше, чем в контроле на 1,0 %.
Таблица 1 - Морфологический состав крови цыплят-бройлеров
Группа Возраст, сут. Показатель
эритроциты, 1012/л гемоглобин, г/л лейкоциты, 109/л
контрольная 14 2,03±0,04 75,00±0,70 26,04±0,42
28 2,11±0,06 80,00±0,69 24,74±0,79
40 2,30±0,07 82,44±0,90 25,64±0,82
опытная 14 2,07±0,06 78,00±0,71 27,16±0,51
28 2,26±0,09 83,76±0,37 24,89±0,64
40 2,64±0,10* 87,40±0,28* 25,90±0,60
Иммунофенотипирование клеток периферической крови позволило выявить иммунологический спад у подопытных цыплят в возрасте 28 суток. При этом следует отметить, что количество лимфоцитов, Т- и В-лимфоцитов в меньшей степени снижалось в опытной группе, чем в контрольной (рисунок 1). На 40 сутки исследований регистрировали повышение численности иммунокомпетентных клеток в крови цыплят обеих групп. Однако в опытной группе в сравнении с контролем количество лимфоцитов было выше на 18,0 %, Т-лимфоцитов - на 36,3 %, В-лимфоцитов - на 31,6 %.
20 15
.5
<Ъ 10
0
лимфоциты
Т-
В-
лимфоциты лимфоциты
□ контроль □ 14 сут □ 28 сут □ 40 сут
□ опыт □ 14 сут □ 28 сут □ 40 сут
В отношении иммуноглобулинов классов и установлена следующая динамика: наименьшая их концентрация в сыворотке крови отмечена на 14 сутки опыта, при достижении птицей 28-суточного возраста уровень IgG в опытной группе был в пределах 3,90±0,14 г/л или на 0,6 г/л больше чем в контрольной (Р<0,05). Такая тенденция сохранилась до конца опыта. Через 12 суток цыплята, которые получали биорегулятор, имели показатель уже в 4,90±0,25 против 3,62±0,22 г/л контроля, что на 1,28 г/л больше (Р<0,05). Что касается IgМ, то на 28 и 40 сутки исследований концентрация у бройлеров опытной группы также была выше хотя разница была менее существенна.
Оценка биохимических показателей крови, характеризующих уровень обменных процессов и адаптационно-метаболический гомеостаз у бройлеров после применения биорегулятора, позволила выявить характерные изменения. Так, в двухнедельном возрасте у цыплят опытной группы по сравнению с контрольной отмечали увеличение общего белка на 3,82 г/л, в четырехнедельном - на 2,94 г/л, а к концу выращивания - на 1,71 г/л (рисунок 2). В отношении фракций белка выявлена возрастная закономерность повышения их уровня. Содержание альбуминов на 40 сутки у опытных цыплят превышало показатель контроля на 7,5 %, а-глобулинов, р-глобулинов и у глобулинов соответственно на 2,4 %, 2,7 % и 25,0 %(Р < 0,05). По фракции у-глобулинов, можно судить о морфологической зрелости и функциональной полноценности иммуно-реактивной ткани.
Рисунок 1 - Количество иммунокомпетентных клеток в крови цыплят-бройлеров
В 14-суточном возрасте фагоцитарная активность крови у контрольных и опытных цыплят составляла в среднем 50,54±0,82 % и 50,64±0,57 %, при достижении бройлерами возраста 28 суток этот показатель в опытной группе снизился на 0,26 %, а в контрольной - на 5,62 % (таблица 2). Поэтому разница между показателями в 5,46 % стала достоверной (Р<0,05). К концу выращивания фагоцитарная активность крови в опытной группе возросла до 51,40±1,22 %, контрольной - до 49,18±1,25.
Бактерицидная активность сыворотки крови, как и ли-зоцимная у опытных цыплят во все периоды исследований была выше. Причем в возрасте 28 и 40 суток разница между показателями опыта и контроля достигла достоверных различий (Р<0,05).
35 30 25 ц 20 " 15 10 5 0
/ ' Л
/
/
/
/
/—71
контроль
опыт
□ общий белок □ □ альбумины □ □ глобулины
Рисунок 2 - Показатели белкового обмена у цыплят 40-суточного возраста
Группа Возраст, сутки
14 28 40
Фагоцитарная активность крови, %
Контрольная 50,54±0,82 44,92±1,12 49,18±1,25
Опытная 50,64±0,57 50,38±1,26* 51,40±1,22
Бактерицидная активность сыворотки крови, %о
Контрольная 24,08±0,38 28,90±0,25 30,46±0,58
Опытная 30,18±2,27 36,12±0,42* 40,04±0,43*
Лизоцимная активность сыворотки крови, %
Контрольная 16,10±0,42 17,76±0,39 20,10±0,30
Опытная 16,86±0,39 20,98±0,38* 26,92±0,44*
Иммуноглобулины (1яО, г/л)
Контрольная 3,04±0,19 3,30±0,16 3,62±0,22
Опытная 3,06±0,12 3,90±0,14* 4,90±0,25*
Иммуноглобулины (1%М, г/л)
Контрольная 0,96±0,11 1,04±0,14 1,34±0,16
Опытная 1,02±0,10 1,36±0,18 1,42±0,20
5
Другие биохимические показатели крови или ее сыворотки цыплят-бройлеров представлены в таблице 3.
Анализируя их следует отметить, что к моменту убоя у цыплят контрольной группы уровень глюкозы был ниже на 1,16 ммоль/л чем в опытной (Р<0,05). Концентрация общего холестерола у бройлеров, получавших биорегулятор, составляла в среднем 2,75±0,11 ммоль/л тогда как в контроле 3,21±0,06 (Р<0,05).
Изучение активности трансаминаз у контрольных и опытных цыплят показало, что как АсАТ так и АлАТ находились в пределах физиологических норм. Активность АсАТ и АлАТ в крови цыплят опытной группы превосходила контроль соответственно на 24,98 ИЕ/л и на 0,74 ИЕ/л (Р<0,05).
Выпаивание биологически активного состава оказало положительное действие и на концентрацию в сыворотке крови бройлеров ряда макро- и микроэлементов. Причем по таким минеральным компонентам как фосфор неорганический, железо, медь, цинк получена достоверная разница против контрольной группы.
При изучении живой массы растущих бройлеров было установлено, что, уже начиная с 14-суточного возраста этот показатель, у опытных цыплят в контролируемые возрастные периоды был выше (таблица 4).
В 40-суточном возрасте живая масса бройлеров, получавших биорегулятор, составила 2381,7±11,2 г, а контрольных - 2058,4±22,1 г или на 322,6 г меньше (Р<0,05). Среднесуточный прирост живой массы опытных цыплят за весь период выращивания превысил показатель контроля на 15,7 %, при затратах комбикорма на 1 кг. прироста соответственно 1,61 и 1,65 кг. Сохранность бройлеров в опытной группе на протяжении всего опыта оставалась высокой и к концу исследований составила 97,0 %, а в контрольной - 94,0 %.
Индекс продуктивности, свидетельствующий об эффективности производства мяса, в опытной группе был в пределах 358,7, что на 65,5 выше, чем в контроле.
Сравнительная оценка мясных качеств тушек бройлеров приведена в таблице 5. Средняя масса потрошеной тушки в опытной группе оказалась выше показателя контрольной на 254,1 г (Р<0,05).
Таблица 3 - Биохимические показатели крови цыплят 40-суточного возраста
Показатели Группа
контрольная опытная
Глюкоза, ммоль/л 5,10±0,09 6,26±0,17*
Общий холестерол, ммоль/л 3,21±0,06 2,75±0,11*
Щелочной резерв, об% СО2 49,17±1,06 51,11±1,03
АсАТ, ИЕ/л 190,02±2,57 215,00±3,00*
АлАТ, ИЕ/л 6,60±0,12 7,34±0,10*
Кальций общий, ммоль/л 3,00±0,08 3,34±0,10
Фосфор неорганический, ммоль/л 1,86±0,04 2,15±0,03*
Железо, мкмоль/л 18,50±0,18 20,48±0,24*
Медь, мкмоль/л 7,95±0,26 9,44±0,35*
Цинк, мкмоль/л 26,57±0,36 28,24±0,39*
Кобальт, мкмоль/л 0,47±0,04 0,51±0,03
Примечание :* - разница с контролем Р<0,05 Таблица 4 - Динамика живой массы и продуктивность цыплят-бройлеров
Показатели Группа
контрольная опытная
Средняя живая масса суточного цыпленка, г 42,20±0,13 42,10±0,14
Живая масса в возрасте (сут), г: 7 147,8±4,0 146,8±1,5
14 379,6±12,4 391,0±3,3
21 777,0±6,1 806,2±6,9
28 1197,3±5,4 1334,4±9,8
35 1701,2±17,4 1890,1±30,5
40 2058,4±22,1 2381,7±11,2*
Среднесуточный прирост, г 51,46 59,54
Затраты корма на 1 кг прироста живой массы, кг 1,65 1,61
Сохранность, % 94,0 97,0
Индекс продуктивности, ед. 293,2 358,7
Примечание :* -разница с контролем Р<0,05
Примечание :* -разница с контролем Р<0,05 Таблица 5 - Результаты контрольного убоя цыплят-бройлеров
Показатели Группа
контрольная опытная
Живая масса перед убоем, г 2058,4±22,1 2381,7±11,2*
Масса потрошеной тушки, г 1496,5±10,1 1750,6±9,9*
Убойный выход, % 72,7 73,5
Масса съедобных частей тушки, г 1201,7±8,4 1423,2±8,7*
Мышцы всего, г в т. ч. грудные 875,4±7,1 302,9±3,3 1087,1±6,8* 405,5±3,4*
Масса несъедобных частей тушки, г 294,8±3,4 327,4±2,7
Отношение съедобных частей тушки к несъедобным 4,08 4,13
Высокие значения предубойной массы и потрошеных тушек опытных цыплят предопределили и больший убойный выход, который составил 73,5 %. Выявлены достоверные превышения в опытной группе массы съедобных частей тушки и мышц соответственно на 221,5 г и 211,7 г (Р<0,05). В отношении массы грудных мышц отмечалась аналогичная тенденция, показатель у цыплят получавших биорегулятор составил 405,5±3,4 г, что выше контроля на 33,9 % (Р<0,05).
Таким образом, проведенные исследования показали, что продуктивные и убойные качества цыплят-бройлеров выращенных с использованием испытуемого биорегулятора превосходили показатели аналогов из контрольной группы.
Выводы. 1. Биорегулятор на основе янтарной кислоты, левамизола и микроэлементов активирует систему кроветворения и метаболические процессы в организме бройлеров, проявляющиеся увеличением в крови количества эритроцитов, гемоглобина, лейкоцитов соответственно на 14,8 %, 6,0 % и 1,0 %. Концентрация общего белка в сыворотке крови опытных цыплят превышала значения контроля на 8,1 %, у-глобулинов - на 19,9 %, глюкозы на -22,7 %, активность ферментов переаминирования АсАТ
на - 13,1 %, АлАТ на - 11,2 %. Уровень минеральных элементов кальция, фосфора неорганического, железа, меди, цинка и кобальта в опытной группе был выше на 8,5 % - 18,7 %.
2. Использование биорегулятора при выращивании бройлеров позволило улучшить неспецифическую резистентность их организма. В сравнении с контролем наблюдается увеличение фагоцитарной активности на 4,5 %, БАСК на - 31,5 %, ЛАСК на - 33,9 %, ДО на - 35,4 %, IgM на - 5,9 %., возрастает в крови и количество иммуно-компетентных клеток.
3. Активизация обменных процессов, неспецифической резистентности у цыплят положительно сказалась на результатах выращивания: сохранность в опытной группе была на 3 % выше, среднесуточный прирост живой массы на - 8,18 г, индекс продуктивности на - 22,3 %, а на получение 1 кг прироста затрачивалось на 0,04 кг комбикорма меньше.
4. Выращивание цыплят-бройлеров с введением в рацион комплексного биорегулятора достоверно увеличивало массу потрошеной тушки на 16,9 %, массу съедобных частей тушки на - 18,4 %, массу мышц на - 24,2 %, в т.ч. грудных на - 33,9 %.
Список использованных источников
1. Фисинин В.И. Стратегия развития яичного и мясного птицеводства России // Агрорынок.- 2008. -№ 5.- С. 47.
2. Митюшников В.М. Естесственная резистентность сельскохозяйственной птицы. - М.: Россельхозиздат, 1985.- 160 с.
3. Reddy A.R.M., Reddy P.R. Factors contributing to immunosuppession in chicken //Poultry Adviser.- 1988.- № 9.-P. 53-56.
4. Marina S., Vior C., Pop M., Vasin C., Slavcovici N., Seche Z. Definirea profilului immunologic la puii de gaina //Lucrarile -Inst. agron. Ciuj-Napoca. Fac. de agronomie. Catedra de medicina veterinara, 1988.- P.231-240.
5. Костина Е.Е. Строение центральных органов иммунной системы кур // Ветеринарная патология.- 2012.- № 1.- С. 110-112.
6. Фисинин В., Сурай П. Иммунитет в современном животноводстве и птицеводстве: от теории к практике им-муномодуляции // Птицеводство. - 2013. - № 05.- С. 4-10.
7. Хаитов Р.М., Пинегин Б.В. Иммунная система желудочно-кишечного тракта: особенности строения и функционирования в норме и при патологии // Иммунология. - 1997.- № 5. - С.4-7.
8. Придыбайло Н.Д. Иммунодефициты у сельскохозяйственных животных и птиц, профилактика и лечение их иммуномодуляторами. - М.: ВНИИТЭИ агропром, 1991. - 44 с.
9. Бабина М.П. Иммунология цыплят-бройлеров в онтогенезе и профилактика иммунной недостаточности, желудочно-кишечных болезней бактериальными препаратами. - Витебск 2001, 114 с.
10. Влияние биостимуляторов на основе янтарной кислоты на морфологические и биохимические показатели крови цыплят-бройлеров / Г.Ф. Рыжкова, Е.В. Александрова, А.А. Евглевский, Е.П. Евглевская // Вестник Курской государственной сельскохозяйственной академии.- 2011. - № 5.- С. 71-74.
11. Топурия Г.М., Топурия Л.Ю., Бакаева Л.Н. Производство экологически безопасной продукции птицеводства // Известия Оренбургского государственного аграрного университета. -2014.- № 1.- С. 123-124.
12. Гулый М.Ф. Основные метаболические циклы.- Киев: Наукова думка. -1968.- 417 с.
13. Van Immersial F., Bussell J.B., Flythe M.D. et al. The use of organic acids to combar Salmonella in poultry: a mechanistic explanation of the efficacy // Avian Pathology. - 2006.- Vol. 35, № 3. -P. 187-188.
List of sources used
1. Fisinin V.I. Strategy of the development of egg and meat poultry-breeding in Russia// Agrorynok.-2008. № 5. - P.4-7.
2. Mityushnikov V.M. Natural resistance of farm poultry.-M.:Rosselhozizdat, -1985.-160 p.
3. Reddy A.R.M., Reddy P.R. Factors contributing to immune suppression in chicken // Poultry Adviser.-1988.- № 9. -P. 53-56.
4. Marina S., Vior C., M.Pop M, Vasin C., Slavcovici N., Z. Seche Z. Definirea profilului immunologic la puii de gaina// Lucraril -Inst. agron. Ciuj-Napoca. Fac. de agronomie. Cafedra de medicina veterinara, 1988.-P.231-240.
5. Kostina E.E. The constitution of central organs of chicken immune system// Veterinary pathology.-2012.-№1.-P. 110-112.
6. V.Fisinin V.,Suray P. Immunity in modern cattle-breeding and poultry-farming: from theory to practice in immune-modulation //Ptitsedevodstvo (Poultry-farming).-2013.-№05.-P 4-10.
7. Khaitov R.M., Pinegin B.V. Immune system of the gastrointestinal tract: characteristics of normal and pathological structure and functioning // Immunology. -1997.-№5. P. 4-7.
8. Preybailo N.D. Immune deficit in farm animals and poultry, prophylaxis and treatment by immune-modulators.-M.: BNIITEI agroprom, 1991. - P. 44.
9. Babina M.P. Immunology of broiler-chickens in ontogenesis and prophylaxis of immune deficiency, gastrointestinal diseases by bacterial preparations. Bitebsk 2001, 114 p.
10. Ryzhkova G.F., Aleksandrova E.V., Yevglevskiy A.A., Yevglevskaya E.P. The affect of bio-stimulators made out of succinic acid on morphological and bio-chemical indices of blood of broiler-chickens // Vestnik of Kursk state agricultural Academy.- 2011.- №5.- P. 71-74.
11. Topuria G.M., Topuria L.Yu.,Bakaeva L.N. The production of ecologically safe poultry products // Izvestia of Orenburg agricultural University.-2014.-№1.-P. 123-124.
12. Guliy M.F. The main metabolic cycles. Kiev: Naukova dumka.-1968.-417 p.
13. Van Immersial F., Bussell J.B., Flythe M.D. et al. The use of organic acids to combat Salmonella in poultry: a mechanistic explanation of the efficacy//Avian Pathology.- 2006.- Vol. 35, № 3. - P. 187-188.
