Таким образом, гельмицид и феналидон в смеси с концентрированными кормами и солевой смесью, являются высокоэффективными антгельминтиками при стронгилятозах и цестодозах желудочно-кишечного тракта овец и коз.
Литература: 1.Магомедов О.А., Шамхалов В.М. Состояние проблемы и перспективы развития ветеринарной науки в России, РАСХН. 1999.- Т.2.-С. 32-36. 2. Шамхалов В.М., Адзиева Х.М., Азаев Г.Х., Абдулмагомедов С.Ш. и др. //Вестник ветеринарии - 2010. - №53.- С. 50-53. 3. Мирзоев Т.А., Магомедов О.М., Шамхалов В.М., Цолоев А.Х., Дзугиев Б. //Материалы международной конференции, посвященной 35-ти летию Прикасп.ЗНИВИ. М. 2003.-С. 103-106. 4. Шамхалов В.М., Адзиева Х.М., Абдулмагомедов С.Ш., Магомедов О.А., Шамхалов В.М. //Российский паразитологический журнал. М.- 2009.- №3.- С. 25-30.
Experience of control of Strongylata infection of sheep and goats in the Republic of Dagestan. Abdulmagomedov S.Sh., Magamedov O.A., Aliev A.Yu., Gulachmedova N.H., Maksudova A.S., Magomedshipiev G.M. Prikaspiisk Zonal Scientific Veterinary Institute.
Summary. One evaluated efficacy of the complex agent based on helmicide (0,2 g) and fenalidone (4 g) in salt mixture given to sheep and goats infected by gastrointestinal Strongylata in field conditions. The agent appeared to be highly effective (96-98%).
ЗАРАЖЕНИЕ МАЛОЙ БУРОЗУБКИ ЛИЧИНКАМИ TRICHINELLA SPIRALIS ПОСРЕДСТВОМ ЛИЧИНОК МЯСНЫХ МУХ
Андреянов О.Н.
ГНУ ВНИИ гельминтологии им. К.И. Скрябина
Введение. Природный очаг инвазии - это те биотопы или ландшафтные зоны, где экологические и, особенно, биоценотические связи обуславливают передачу возбудителя от его источника к восприимчивому животному без участия сельскохозяйственных животных и человека. Членистоногие, моллюски, рыбы и некоторые беспозвоночные могут локализовать в себе трихинеллезную инвазия в околоводной среде [2]. Цель нашей работы -подтвердить передачу возбудителя трихинеллеза Trichinella spiralis в природном биоценозе посредством личинок мясных мух.
Материалы и методы. Выделенную взвесь личинок трихинелл T. spiralis из мышечной ткани обыкновенной лисицы после переваривания в искусственном желудочном соке пассировали per os на белых беспородных крысах в дозе 5 личинок на 1 г массы животного через инсулиновый шприц и
7
молочный катетер с оливой на конце [3]. Инвазированных лабораторных животных содержали и кормили в условиях вивария в течение 45 суток. Далее, лабораторных животных усыпляли эфиром, тушки закладывали на хранение в сетчатом контейнере в природный биоценоз охотхозяйства. Через 21 день после закладки с мышечной ткани тушек проводили сбор личинок серой мясной мухи (Sarcophaga carnaifa).
Отловленным двум малым бурозубкам (Sorex minutus) после 7 часовой голодной диеты скормили собранных личинок мясных мух в количестве 6 и 12 экземпляров. Далее землероек содержали согласно общепринятым правилам по содержания лабораторных животных. Через 45 суток животных усыпили. Мышечную ткань на трихинеллез исследовали методом компрессорной трихинеллоскопии по E.Reissmann (1908) и методом искусственного ферментирования по П.А. Владимировой (1965).
Результаты исследования. Экспериментально заразили малых бурозубок возбудителем трихинеллеза T. spiralis посредством транзитных хозяев (личинки серой мясной мухи).
Методом переваривания в искусственном желудочном соке мышечной ткани тушек землероек массой 6 г и 5 г были выделены личинки T. spiralis в количестве 139 и 94 экземпляра. Интенсивность инвазии составила - 23,2 и 18,8 личинок в 1 г мышц, соответственно.
W. Bockeler (1977), E. Kullman, S. Nawabi (1975) при экспериментальной работе с транзитными хозяевами, в лабораторных условиях смогли инвазировать трихинеллами обыкновенного ежа и лабораторных мышей при скармливании последним зараженных личинками T. spiralis жуков и их личинок.
Заключение. Таким образом, можно заключить, что насекомоядные животные - бурозубки, куторы, ежи и другие, могут стать резервуарами трихинеллезной инвазии в природном биоценозе. Посредством установленных трофических связей эта группа млекопитающих может депонировать гельминтозную инвазию извне посредством беспозвоночных и их личинок, собранных с трупов инвазированных плотоядных.
Литература: 1. Владимирова П.А. Влияние различных факторов на ускорение процесса переваривания мышц в искусственном желудочном соке для выявления личинок трихинелл в свинине Дисс. на соискание ученой степени канд. вет. наук. М. 1965. 2. Одоевская И.М. //Медицинская паразитология и паразитарные болезни.- 2011.- № 1.- С. 12 - 16. 3. Скворцова Ф.К. // Труды ВИГИС.-2003.- Т. 42.- С. 600 - 608. 4. Bockeler W. // Zool. Ans. Sena. -1977. - № 1 - 2. - P. 24-76. 5. Kullman E., Nawabi S. Z. Parasitenk. // Zool. Anz., 1975.- V. 36. - P. 234- 240. 6. Reissmann E. //Fleisch-u Milchhyg.- 1908.-V.19(l).- P.1-9.
8
Infection of Sorex minutus by Trichinella larvae mediated by blow-fly larvae (Sarcophaga carnaifa). Andreyanov O.N. All-Russian K.I. Skryabin Scientific Research Institute of Helminthology.
Summary. One showed at the example of S. minutus that insectivorous animals could be the reservoirs of Trichinella infection in natural biocenosis. As a result of the established trophic chains that group of mammals could accumulate helminth infection.
ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНОЕ ЗАРАЖЕНИЕ ТРАНЗИТНЫХ ХОЗЯЕВ ЛИЧИНКАМИ TRICHINELLA SPIRALIS
Андреянов О.Н.
ГНУ ВНИИ гельминтологии им. К.И. Скрябина
Введение. Возбудители трихинеллезов, занимая свою экологическую нишу в природе, характеризуются эволюционно закрепленным признаком -полигостальностью. Весь биологический цикл гельминтозооноза происходит в одном теплокровном организме без выхода во внешнюю среду. На фоне пищевых связей реализуются механизмы передачи возбудителя как внутри популяций хозяев, так и вне популяций. Классические пути передачи (хищничество, каннибализм, некрофагия) выявлены многими авторами [1]. А такие пути инвазирования как лактогенный путь передачи, каудофагия, копрофагия, пищевой путь посредством нетрадиционных хозяев (механические переносчики) до сих пор находятся под сомнением. Поэтому целью настоящей работы явилось изучение перечня беспозвоночных -возможных механических переносчиков возбудителя трихинеллеза Trichinella spiralis.
Материалы и методы. Наработку инвазионного материала
(инвазированная мышечная ткань лабораторных животных с личинками T. spiralis) от инвазированной трихинеллами лисицы, отстреленной в Рязанской области, проводили согласно методике Ф.К. Скворцовой (2003).
Инвазированных лабораторных животных содержали, кормили и обращались в условиях вивария согласно общепринятыми ветеринарно-санитарными правилами.
Во время наступления теплого сезона года 2010 - 2011 гг. инвазионный материал от лабораторных животных закладывали на хранение в природный биоценоз в условиях охотохозяйства Рязанской области в пластиковые контейнеры с металлической сеткой, защищающей от крупных некрофагов, птиц и грызунов. Каждые 2 недели проводили сбор беспозвоночных питающихся мышечной тканью и трупным соком тушек животных. Перечень видов беспозвоночных определяли по зоологическим определителям [3]. Привезенных в лабораторию беспозвоночных помещали под вытяжку в
9