CC BY
20
Зимин, Ф.В. Кочетков, С.И. Кононенко, Д.В. Осепчук, Н.Э. Скобликов // Политематический сетевой электронный научный журнал Кубанского государственного аграрного университета. 2016. № 123. С. 421-432. - http://ej.kubagro.ru/2016/09/pdf/29.pdf
3. Скобликов, Н.Э. Оптимальная схема применения не-трансдуцирующих бактериофагов E. coli для профилактики пост-отъемной диареи поросят / Н.Э. Скобликов, С.И. Кононенко, А.А. Зимин // Труды Кубанского государственного аграрного университета. - 2012. - № 37. - С. 169-173.
4. Vinod, MG, Shivu, MM, Umesha, KR, Rajeeva, BC, Krohne, G, Karunasagar, I, Karunasagar, I. Isolation of Vibrio har-veyi bacteriophage with a potential for control of luminous vibriosis in hatchery environments. Aquaculture 2006; 255:117-24;
5. Karunasagar, I, Shivu, MM, Girisha, SK, Krohne, G, Karu-nasagar, I. Biocontrol of pathogens in shrimp hatcheries using bacte-riophages. Aquaculture 2007; 268:288-92;
6. Richards, GP. Bacteriophage remediation of bacterial pathogens in aquaculture: a review of the technology. Bacteriophage. 2014 Dec 20;4(4):e975540.
УДК 576.858.9:639.512
ЗАБОЛЕВАНИЯ КРЕВЕТОК, ВЫЗВАННЫЕ ПАТОГЕНАМИ РОДА VIBRIO DISEASES OF SHRIMPS CAUSED BY PATHOGENS OF THE
VIBRIO GENUS
Зимин Андрей Антонович, канд. биол. наук, ФГБНУ Институт биохимии и физиологии микроорганизмов им. Г. К. Скрябина РАН, Российская Федерация, г. Пущино Кононенко Сергей Иванович, д-р с.-х. наук, ФГБНУ "Краснодарский научный центр по зоотехнии и ветеринарии", Российская Федерация, г. Краснодар Zimin Andrei Antonovich, Cand. Biol. Sci.,
Skryabin's Institute of Biochemistry and Physiology of Microorganisms, Russia, Pushchino (Moscow region) Kononenko Sergey Ivanovich, Dr. Agr. Sci.,
Krasnodar Research Centre for Animal Husbandry and Veterinary Medicine, Krasnodar, Russia
Аннотация: Обсуждается роль флуоресцирующих вибрионов в развитии эпизоотий. Предложена гипотеза об активации профага, содержащего гены патогенеза, с помощью индукторов - продуктов жизнедеятельности креветок. Предложены простые технические мероприятия в резервуарах для выращивания молоди креветок для снижения вероятности данного процесса фаговой индукции. Исследование частично выполнено при финансовой поддержке РФФИ в рамках научного проекта № 16-44-230855-р_а.
Ключевые слова: Vibrio; аквакультура креветок; бактериофаги; черная тигровая креветка; Penaeidae, P. monodon; P. aponicus; P. vannamei; Crassostrea virginica.
Abstract: the paper discusses the role of fluorescing vibrios in the development of epizootics. A hypothesis is proposed to activate the prophage, containing the pathogenesis genes, with the help of inducers - the products of the life activity of shrimps. Simple technical measures are proposed in tanks for cultivation of juvenile shrimps to reduce the likelihood of this phage induction process. The reported study was partially supported by RFBR, research project No. 16-44-230855-r_a.
Key words: Vibrio; shrimp aquaculture; bacteriophages; black tiger shrimp; Penaeidae, P. monodon; P. aponicus; P. vannamei; Crassostrea virginica.
В настоящее время большой проблемой, с которой сталкивается индустрия аквакультуры являются болезни, вызванные различными биологическими агентами. Среди групп микроорганизмов, которые вызывают серьезные потери в культуре креветок, наиболее известны бактерии рода Vibrio. От 14 до 20 видов этих бактерий были зарегистрированы в системах культивирования креветок пенеид (Penaeidae, Dendrobranchiata, Decapoda, Malacostraca, Crustacea). Вибриоз является также одной из основных проблем в аквакультуре моллюсков и рыб.
Вибриоз - бактериальное заболевание, вызывающее высокую смертность у культивируемых креветок [2]. Различные виды
вибрионов (род Vibrio семейства Vibrionaceae) широко распространены в культуре креветок во всем мире. Эпизоотии часто встречаются в инкубаторах, но также обычны и у видов, выращиваемых в прудах. Вспышки часто возникают, когда факторы окружающей среды активируют быстрое размножение бактерий, которые уже находились в организме креветок, а также при преодолении бактериями защитных барьеров. Наружный хитиновый экзоскелет креветки обеспечивает эффективный физический барьер для патогенов. Однако, вибрионы входят в число хити-нокластических бактерий, способных разрушать оболочки, и проникать через повреждения экзоскелета. Жабры также могут казаться восприимчивыми к проникновению бактерий. Средняя кишка, состоящая из пищеварительной железы и ствола, кажется наиболее вероятными воротами алиментарного проникновения патогена из воды, пищи или осадочных пород.
Различные виды вибрионов являются частью естественной микрофлоры диких и культурных креветок [6]. Они становятся оппортунистическими патогенами, когда механизмы естественной защиты организма креветок подавлены. Данные заболевания обычно связаны с несколькими этиологическими агентами. Некоторые виды Vibrio или штаммы некоторых видов, были идентифицированы как первичные патогены (табл. 1.).
Таблица 1. Основные виды бактерий рода Vibrio, связанные с развитием вибриозов у креветок.
Вид Vibrio Пато-генность Тип заболевания Виды креветок
V. harveyi, *** TN, SD, RD, LSS, WGD P.monodon, P. aponi-cus, P. vannamei
V. splendidus, ** TN, SD, RD, LSS, WGD P.monodon
V. parahaemolyti-cus, *** TN, SD, RD, LSS, WGD P.monodon
V. alginolyticus, *** TN, SD, RD, LSS, WGD P.monodon
V. anguillarum, ** TN, SD, RD, LSS, WGD Crassostrea virginica, P.monodon
V. vulnificus, *** TN, SD, RD, LSS, WGD Crassostrea virginica, P.monodon
Условные обозначения в таблице: *** - степень патоген-ности, TN - tail necrosis - некроз брюшка креветки, SD - shell disease - пятнистая болезнь, RD - red disease - красные пятна, LSS - loose shell syndrome - синдром потери экзоскелета, WGD - white gut disease - синдром белой кишки.
Патогенные штаммы V. harveyi, V. vulnificus и V. parahae-molyticus вызывали массовые эпизоотии в Таиланде [2] и Филиппинах [1]. Люминисцентная бактерия - V. harveyi, видимо, может экскретировать экзотоксины и приводить к смертности от 80 до 100 % креветки P. monodon в инкубаторах [1-2]. V. anguillarum, V. campbelli, V. nereis, V. cholerae (non 01) и V. splendidus также связывали с вспышками заболеваний у креветок [1-6]. Была найдена связь между люминесценцией и токсичностью вибрионов в креветках.
Для исследования механизма развития вибриоза у ракообразных была использована модель рачка артемии, зараженной вибрионом V. proteolyticus CW8T2 [3]. Заражение проводили путем инокуляции возбудителя в воду для выращивания науплий. Было показано, что в течение суток бактерии проникали в кишечный эпителий с последующим повреждением этой ткани, которое распространялось и далее в полость тела личинки. Авторы работы предположили, что вибриоз в системах для выращивания личинок креветок будет еще более разрушительным вследствие большей хрупкости последних. Массовые потери личинок происходили в 1992-1994 гг. на Филиппинах из-за присутствия флуоресцирующих вибрионов в воде инкубаторов. Вероятно, можно рекомендовать не начинать выращивание личинок креветок при наличии флуоресценции в воде [1]. С другой стороны, флуоресцирующие вибрионы: V. logei, V. fischeri являются постоянными спутниками креветок и их обнаруживали в кишечнике Penaeus mergulensis и в воде для выращивания в титре 104-105 КОЕ/г [6]. При благоприятных для вибрионов условиях, например, высоких нагрузках питательных веществ на воду или высокой плотности креветок в системах выращивания может происходить экспансия вирулентного клона бактерий, доминирующего в бактериальном сообществе. Этот подход подразумевает, что только меньшинство штаммов Vibrio являются
строгими патогенами, а большинство видов Vibrio являются оппортунистическими патогенами. Зависимость патогенности у V.parahaemolyticus и V. harvey от наличия в них профага [2] говорит об обратной ситуации. Как высокая концентрация определенных веществ индукторов, так и высокая плотность креветок в бассейне могли бы приводить не к селекции определенного клона, а к массовой индукции профага, изменению экспрессии генов данного профага или появлению токсинов, кодированных в геноме лизогенизирующего данный штамм вибриона бактериофага. Каскадная регуляция экспрессии генов в данном процессе может приводить к развитию заражения в резервуаре инкубатора и массовой гибели личинок креветок.
Весьма привлекательным выглядит использование простых систем фильтрации воды путем пропускания через грунтовые фильтры, содержащие микробные сообщества денитрифицирующих и сульфатредуцирующих организмов. Такая очистка может понизить концентрацию веществ-индукторов экспрессии генов профага в лизогенном вибрионе в воде для выращивания креветок. При низкой концентрации этих веществ индукции экспрессии генов, кодирующих факторы патогенности, не будет, и вибрион не будет проявлять свойств патогена. Возможно и другое развитие событий. Накопление веществ-индукторов в воде креветочного резервуара может вызвать индукцию вегетативного пути развития лизогенезирующих фагов. Следствием этого явится выход фага в воду и заражение нелизогенных штаммов данного вида и родственных видов. Результатом такого заражения может быть, вегетативное развитие бактериофагов или лизогенизация с лизогенной конверсией по патогенному типу. Можно предположить, что оценка того или иного пути развития эпизоотии может быть произведена на основе времени развития вспышки в аквакультуре ракообразных.
Список литературы
1. Lavilla-Pitogo, C. R., and L. D. de la Pena. 1998. Mortalities of pond-cultured juvenile shrimp, Penaeus monodon, associated with dominance of luminescent vibrios in the rearing environment. Aquaculture 164:337-349.
2. Nasu, H., T. Iida, T. Sugahara, Y. Yamaichi, K. S. Park, K. Yokoyama, K. Makino, H. Shinagawa, and T. Honda. 2000. A filamentous phage associated with recent pandemic Vibrio parahaemolyticus O3:K6 strains. J. Clin. Microbiol. 38:2156-2161.
3. Lavilla-Pitogo, C.R., Baticados, C.L., Cruz-Lacierda, E.R. and de la Pena, L. 1990. Occurrence of luminous bacteria disease of Penaeus monodon larvae in the Philippines. Aquaculture 91: 1-13.
4. Lee, K. K., S. R. Yu, F. R. Chen, T. I. Yang, and P. C. Liu. 1996. Virulence of Vibrio alginolyticus isolated from diseased tiger prawn, Penaeus monodon. Curr. Microbiol. 32:229-231.
5. Verschuere, L., H. Heang, G. Criel, P. Sorgeloos, and W. Ver-straete. 2000. Selected bacterial strains protect Artemia spp. from the pathogenic effects of Vibrio proteolyticus CW8T2. Appl. Environ. Microbiol. 66:1139-1146.
6. Oxley, A. P., W. Shipton, L. Owens, and D. McKay. 2002. Bacterial flora from the gut of the wild and cultured banana prawn, Pe-naeus merguiensis. J. Appl. Microbiol. 93:214-223.
УДК 636.7:57.022.
НОВЫЕ АСПЕКТЫ ПРИМЕНЕНИЯ УБИХИНОНА У СОБАК
NEW ASPECTS OF THE USE OF UBIQUINONE IN DOGS
Зыкова Светлана Сергеевна, д-р биол. наук, ФКОУ ВО Пермский институт ФСИН России, Российская Федерация, г.Пермь
Родин Игорь Алексеевич, д-р ветеринар. наук, профессор ФГБОУ ВО Кубанский государственный аграрный университет имени И. Т. Трубилина, Российская Федерация, г.Краснодар Гугушвили Нино Нодариевна, д-р биол. наук, профессор ФГБОУ ВО «Кубанский государственный аграрный университет имени И. Т. Трубилина», Российская Федерация, г. Краснодар Zykova Svetlana S., Dr. Biol.Sci., Associate Professor Perm Penal Service Institute, Perm,Russian Federation Rodin Igor Alekseevich
Kuban State Agrarian University, Krasnodar, Russian Federation Gugushvili Nino N.
