CC BY
306
ВЗАИМОДЕЙСТВИЕ КЛИНИКИ И ЛАБОРАТОРИИ ПРИ ЦЕНТРАЛИЗАЦИИ ЛАБОРАТОРНЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ
Т. И. Долгих. Проблемы организации работы клинико-диагностических лабораторий на современном этапе. Омская государственная медицинская академия
Организация работы по обеспечению высокого качества исследований и биологической безопасности, направленной на безопасность пациента, медицинского персонала и защиту окружающей среды, требует доработки и уточнения. В свете выполнения требований ГОСТа Р ИСО 15189-2009, Федерального закона «Об основах охраны здоровья граждан в Российской Федерации» в условиях централизации лабораторной службы этому разделу отводится решающая роль. До настоящего времени проблемой остается обеспечение качества биоматериала на преаналитическом долабораторном этапе с использованием вакуумных систем и расходных материалов однократного применения. Прослеживается необходимость создания на территориях референс-лабораторий (или придача референс-функций по отдельным видам исследований отдельным хорошо оснащенным лабораториям или лабораторным центрам), удовлетворяющим требованиям ГОСТа Р ИСО 15195-2006. В условиях изменения системы обязательного медицинского страхования, где основным является финансовый рычаг и финансирование будет проводиться по факту, нужен единый подход к тарификации (цена исследования должна складываться также с учетом затрат на преаналитическом долабораторном этапе). Необходимость таких расчетов, которые должны проводиться экономистами с привлечением специалистов клинической лабораторной диагностики, давно назрела. В медицинских учреждениях (лабораториях) следует разработать регламент проведения мероприятий по обеспечению качества лабораторных исследований с учетом специфики учреждения. Управление качеством предусматривает установление системы общих требований и правил их применения ко всем составляющим качества и на всех этапах (долабораторном и лабораторном): используемым технологиям; ресурсам (реагентам, калибровочным материалам, оборудованию); критериям и способам оценки аналитической надежности, клинической эффективности и соответствия результатов потребностям ведения пациентов.
А. А. Кишкун. Стандартизация преаналитического этапа при централизации лабораторных исследований. ФГУ
Учебно-научный медицинский центр Управления делами Президента Российской Федерации
В настоящее время во многих регионах нашей страны основным направлением реформирования лабораторной службы стала централизация лабораторных исследований. Централизация вызвана объективной необходимостью: в стране большое количество клинико-диагностических лабораторий (КДЛ), для которых характерна низкая клиническая и экономическая эффективность; основная часть лабораторных анализов приходится на низкоинформативные виды исследований. Централизация экономически выгодна; сокращает сроки выполнения лабораторных тестов (особенно высокотехнологичных анализов); позволяет оптимизировать обеспечение лаборатории расходными материалами и реактивами; централизованная лаборатория более гибко реагирует на запросы потребителей лабораторной информации.
Лабораторная диагностика играет важную роль в оказании качественной медицинской помощи пациентам. В 60-70% клинических случаев правильный диагноз пациенту врачи устанавливают на основании данных результатов лабораторных исследований, более 70% врачебных решений принимается на основании данных лабораторных тестов, соответственно и вклад неправильных и/или ошибочных дан-
ных анализов в конечную врачебную ошибку очень высок. В Великобритании в результате медицинских ошибок умирают 33 000 человек в год (третья по частоте причина смертности после онкологии и сердечно-сосудистых заболеваний). При высоком значении результатов лабораторных исследований для клинической практики лабораторные ошибки вносят и существенный вклад в медицинские ошибки. Риск нежелательных последствий и неадекватного лечения для пациентов вследствие лабораторных ошибок составляет от 2,7 до 12%. В 24,4-30% случаев лабораторные ошибки приводят к серьезным проблемам для пациентов при оказании медицинской помощи.
Среди всех лабораторных ошибок от 46 до 68% приходится на преаналитический этап. Поэтому значение преаналитического этапа при осуществлении централизации лабораторных исследований будет возрастать. Основные проблемы преаналитического этапа связаны с низким качеством проб биоматериала и как следствие низким качеством результатов лабораторных анализов.
Низкое качество проб биоматериала в первую очередь связано со способом взятия проб крови на исследования, приспособлениями, используемыми для взятия проб крови и временем доставки проб в лабораторию:
• при сроке доставки проб крови, взятых в обычные стеклянные пробирки одноразовым шприцем на биохимические исследования, превышающем 1 ч, у 4-10% пациентов в лабораторных анализах ложно повышены активность ACT, АЛТ, уровень билирубина и/или калия (вследствие гемолиза) и ложно снижена концентрация глюкозы;
• при доставке проб крови, взятых в вакуумсодержащие пробирки на биохимические исследования в течение 1 ч ложно повышенные значения ACT, АЛТ, билирубина или калия выявляются у 0,5-1% пациентов (в 10 раз ниже);
• доля повторных исследований вследствие «некачественных» проб крови при взятии ее одноразовым шприцем в стеклянные пробирки в КДЛ составляет до 7,4%.
Клиническими последствиями лабораторных ошибок, связанных с неправильным взятием крови на анализы, является назначение ненужных дополнительных исследований (15-19% пациентов) и неправильное лечение (5-7% пациентов).
В связи с этим при осуществлении централизации лабораторных исследований необходимо максимально стандартизировать преаналитический этап путем составления инструкций, выбрать правильные приспособления для взятия проб крови и контейнеры для транспортировки проб, установить четкие временные параметры их доставки в лабораторию.
А. Ж. Гильманов. О преаналитических требованиях к исследованию гемостаза при централизации лабораторных исследований. ГБОУ ВПО Башкирский государственный медицинский университет Минздравсоцразвития РФ, Уфа
Лабораторные исследования системы гемостаза, как никакие другие, нуждаются в стандартизации как аналитического, так и преаналитического этапа, поскольку результаты тестов во многом зависят от подготовки пациента, условий взятия крови, транспортировки пробы в лабораторию и про-боподготовки. Особое значение имеет соблюдение преанали-тических условий при централизации лабораторных исследований, поскольку условия взятия, обработки и особенно транспортировки биоматериала из разных пунктов неизбежно будут отличаться.
Целесообразно определить ряд преаналитических требований, которых следует строго придерживаться в условиях
ВЗАИМОДЕЙСТВИЕ КЛИНИКИ И ЛАБОРАТОРИИ ПРИ ЦЕНТРАЛИЗАЦИИ ЛАБОРАТОРНЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ
централизации лабораторных исследований системы гемостаза. Общими среди них можно считать обязательный учет принимаемых лекарств, влияющих на гемостаз, и времени взятия крови (требуется указание на направлении); взятие крови натощак; из вены (возможное исключение - тест ПВ/ MHO); с минимальным венозным стазом (наложение жгута
- не более 1 мин); при минимальной травматизации стенок сосуда и минимальном контакте крови с металлическими/ стеклянными поверхностями (острая силиконированная игла достаточного диаметра, пластиковые пробирки, достаточный практический опыт у сотрудника, проводящего венепункцию). Важно также предотвратить стресс и сильную боль у пациента, поскольку они могут вести к сдвигам гемодинамики и ускорению агрегации тромбоцитов из-за выброса адреналина.
1. Глобальные тесты гемостаза - время свертывания цельной крови, в том числе активированного (ВСК, ВСКа); тромбоэластометрия - выполняются в кратчайшие сроки «на месте» и централизации не подлежат.
2. Тесты тромбоцитарного звена. Количество тромбоцитов подсчитывается в крови, взятой с ЭДТА (допустимо с цитратом, с учетом разведения) и адекватно перемешанной сразу после взятия. Централизация требует соблюдения временных и температурных условий: хранение крови до подсчета не более 6 ч при комнатной температуре и до 2-4 сут при охлаждении до 4-8oC; доведение до комнатной температуры и тщательное перемешивание непосредственно перед анализом.
Агрегация тромбоцитов в цельной цитратной крови исследуется в течение 1 ч после взятия (на приборе PFA), в богатой тромбоцитами цитратной плазме (на агрегометрах)
- не позднее 4 ч после взятия крови. После венепункции первые 1-2 мл крови, содержащие фрагменты стенки вены, желательно взять в отдельную пробирку и использовать для других нужд (например, для получения сыворотки). Охлаждение плазмы/крови ниже +12oC недопустимо во избежание холодовой активации клеток. Вследствие легкой травматизации тромбоцитов и искажения результатов тестов рекомендуется проводить анализ в ближайшей лаборатории, избегая длительной транспортировки. Для определения биохимических маркеров активации тромбоцитов (тромбоцитарный фактор 4, p-тромбоглобулин, тромбоксан) взятие крови производится в цитратную пробирку с дополнительными добавками (CTAD), плазма быстро переносится во вторичную пробирку и замораживается.
3. Тесты плазменного звена (АЧТВ, отдельные факторы), как правило, проводятся на свежей бедной тромбоцитами плазме не позднее 3-6 ч (ТВ - не позднее 1-4 ч, при гепари-нотерапии - в течение 1 ч) после взятия крови; центрифугирование и хранение - при комнатной температуре. При необходимости более длительной транспортировки и хранения плазму после переноса пластиковой пипеткой во вторичную пластиковую пробирку следует быстро заморозить.
Стабильность цельной цитратной крови по тесту ПВ/ МНО до 24 ч при хранении в закрытой пробирке при комнатной температуре. Уровень фибриногена, антитромбина и протеина С в цитратной плазме, фактора Виллебранда в ЭДТА-плазме, а также гомоцистеина в ЭДТА-флюоридной плазме и антикардиолипиновых антител в сыворотке при комнатной температуре остается стабильным не менее суток. Исследование D-димера допустимо как в цитратной, так и в гепаринизированной плазме, стабильность аналита до 8 ч при комнатной температуре и до 4 сут при охлаждении до 4-8oC.
В подавляющем большинстве случаев для взятия крови наиболее пригодны вакуумные пробирки (вакутейнеры и др.), содержащие цитрат натрия в концентрации 3,2 или 3,8%. Их применение позволяет легче добиться требуемого соотношения крови с цитратом 9:1 и существенно снижает процент проб с неудовлетворительным качеством.
В центральной лаборатории абсолютно необходим визуальный контроль всех поступающих пробирок с плазмой или кровью (маркировка, наличие гемолиза и липемии); пробы, содержащие сгустки, должны отбраковываться. Следует обязательно контролировать соответствие типа пробирки (по цвету крышки) видам назначенных исследований, а также время после взятия образца и условия его транспортировки/хранения. Все выявленные случаи отклонения от преаналитических требований в соответствии с требованиями ГОСТа Р ISO 151892009 нужно фиксировать в специальном журнале и в последующем разбирать с участием ответственного персонала.
При строгом выполнении всех преаналитических требований в условиях централизации лабораторий удается добиться стабильного качества тестов гемостаза и сократить время их выполнения.
Т. Г. Скороходова, С. В. Матушкина. Особенности пре-аналитического этапа в педиатрии. Централизованная клинико-диагностическая лаборатория Красноярска
На точность и правильность лабораторных исследований огромное влияние оказывает преаналитический этап. Учитывая особенности детского возраста, особое внимание необходимо обратить на стандартизацию условий взятия крови.
Выбор процедуры взятия крови. Для получения крови для большинства лабораторных исследований используется венепункция или взятие капиллярной крови. Лучшим местом взятия венозной крови является локтевая вена. Выпускаемые фирмами вакуумные системы для забора венозной крови позволяют максимально стандартизовать данную процедуру, значительно упрощают проведение процедуры и повышают качество исследований. И как следствие позволяют исключить необходимость повторных исследований и влияние забора материала на точность и правильность результатов. Взятие капиллярной крови в педиатрии возможно в следующих случаях: у новорожденных, когда у пациента тонкие и труднодоступные вены, настойчивое желание родителей.
Особенности получения капиллярной крови. Анатомическое строение кровеносной системы детей обусловливает необходимость правильно сделать выбор места пункции медицинского инструментария. Для этих целей производители предлагают микропробирки с разными наполнителями. В педиатрической практике возможно взятие капиллярной крови из пальца, пятки и в редких случаях мочки уха. Взятие капиллярной крови допускается из III-IV пальца на середине между серединой подушечки и латеральной поверхностью пальца. Пункция пальца не должна производиться у младенцев, т. к. это может привести к повреждению костной ткани. В таком случае подходящим местом для получения образца является пятка у дистальной части пяточной кости. Между объемом получаемой крови и глубиной прокола существует прямая зависимость. В связи с этим тип скарификатора должен подбираться в соответствии с местом прокола и объемом пробы. Фирма «BECTON DICKINSON» предлагает одноразовые автоматические скарификаторы с разным типом прокалывающего устройства (лезвие, игла) и глубиной прокола. Учитывая возрастные особенности поведения детей во время процедуры забора крови (подвижность, эмоциональный стресс и т. д.), следует обратить внимание на последовательность заполнения пробирок. Для корректного заполнения вакуумных систем начать забор крови следует с пробирок с антикоагулянтами (где особенно важен объем образца), а затем с активатором свертывания.
Исследование гематологических показателей, глюкозы и некоторых других биохимических показателей возможно из капиллярной крови. Исследования системы гемостаза, гормоны необходимо проводить только из венозной крови.
Таким образом, для стандартизации преаналитического этапа в педиатрической практике необходимо выработать четкие инструкции:
1. по выбору процедуры взятия крови (венозная или капиллярная);
2. по выбору медицинского инструментария для взятия крови (игла с определенным диаметром, ланцет с разным типом и глубиной прокалывающего устройства);
3. по выбору пробирок с необходимым наполнителем и последовательности их заполнения.
Н. Ю. Черныш, Т. В. Найденова, В. В. Слепышева, А. В. Козлов. Значимость правильного получения пробы для клинического анализа крови у пациентов с криоглобули-немией. ГБОУ ВПО СЗГМУ им. И. И. Мечникова Минздрав-соцразвития РФ, Санкт-Петербург
Под криоглобулинемией понимают наличие в сыворотке иммуноглобулинов, выпадающих в осадок при низкой температуре и вновь растворяющихся при 37oC. Присутствие кри-оглобулинов при оценке на гематологических анализаторах может вызвать увеличение количества лейкоцитов - WBC.
Больная К., 60 лет, поступила на лечение в апреле 2011 г. с основным диагнозом СКВ, сопутствующий диагноз - кри-оглобулинемия. При поступлении выполнен клинический анализ крови по «CITO» в экспресс-лаборатории на анализаторе ADVIA 60 (Bayer), исследование мазка не проводилось. WBC 47,4 ■ 109/л. Повторно назначенный клинический анализ крови, стандартно полученный, поступил в ЦКДЛ в 8.45, исследован на анализаторе в 10.03. WBC 48,1 ■ 109/л. Морфолог отмечает несоответствие количества лейкоцитов в мазке с результатами анализатора. В связи с несовпадением результатов проведен пересчет лейкоцитов в камере Горяева. Количество лейкоцитов 4,5 ■ 109/л. Для исключения ошибки исследована проба, полученная с соблюдением требований для криоглобулинемии, когда характерны подобные расхождения. Образец крови прогревали до 37oC и немедленно исследовали (Методические рекомендации. Гематологические анализаторы (утверждены Минздравсоцразвития РФ 21.03.2007 № 2050-РХ)). WBC 4,37 ■ 109/л. По результату экспресс-лаборатории, учитывая высокий лейкоцитоз, проведена стернальная пункция. Данных по заболеванию системы крови не выявлено. В дальнейшем получение проб проводили с учетом диагноза криоглобулинемии, подобные расхождения отсутствовали.
Информирование лаборатории о наличии у пациента криоглобулинемии, более тщательная оценка сопутствующих диагнозов при первичном осмотре, а также соблюдение правил получения проб могли предотвратить назначение серьезной дискомфортной для пациента процедуры, а также в условиях страховой медицины избежать неэффективных экономических затрат на трудоемкое исследование, которое может быть не одобрено страховой компанией.
Н. В. Афонина, Л. Л. Рыжкина, Е. Р. Кулюцина. Организация системы целевой диспансеризации женского населения по выявлению заболеваний шейки матки в Пензенской области. ГБУЗ Областной онкологический диспансер, Пенза, ГБОУ ДПО Пензенский институт усовершенствования врачей Минздравсоцразвития РФ
С 2008 г. в Пензенской области действует программа «Комплексные меры по реализации демографической политики на территории Пензенской области (2008-2010 гг.), в рамках которой Минздравсоцразвития Пензенской области были разработаны «Методические рекомендации о проведении целевой диспансеризации женского населения» (от 24 июля 2008 г.), приобретено оборудование для централизованной цитологической лаборатории ГБУЗ «Областного онкологического диспансера» (ЦЦЛ ГБУЗ ООД) (бинокулярные микроскопы, в том числе с системой фотовидеофикса-ции изображений). Лечебно-профилактические учреждения (ЛПУ) области обеспечивались расходным материалом: специальным инструментом для взятия мазка со всей поверхности шейки матки (ШМ) и из цервикального канала (ЦК) и цитологическими стеклами.
Цель исследования - анализ эффективности диагностики опухолевых, предопухолевых и фоновых поражений ШМ у
94 086 женщин, дообследованных в ЦЦЛ ГБУЗ ООД, в возрасте 20-65 лет, без визуальных изменений ШМ за период 2009-2911 гг.
При анализе качества препаратов, доставленных для цитологического скрининга в ЦЦЛ ГБУЗ ООД за период 2009-2011 г., количество препаратов с неадекватным диагностическим материалом заметно снизился с 5,11 до 0,55%, недостаточно адекватным незначительно увеличился с 78,87 до 82,6%, доля адекватных практически не изменилась и составила 16,02-16,85%.
Показатели выявляемости по Пензенской области соответствуют средним показателям по Российской Федерации и составили: признаны здоровыми 99,3-94,9% женщин, выявлены дисплазии II степени у 0,12-0,15% женщин, дисплазии III у 0,05-0,08%, рак у 0,02-0,04%.
Таким образом, остается проблемой тот факт, что, несмотря на значительное уменьшение количества неадекватных цитологических препаратов, основной материал, который исследуется цитологом, является недостаточно адекватным, для оценки состояния эпителия ШМ и ЦК, что приводит к задержке выдачи заключений и повторным исследованиям.
Причиной недостаточной адекватности является неправильное взятие и направление материала в ЦЦЛ для онко-скрининга. Для правильной организации системы целевой диспансеризации женского населения по выявлению заболеваний ШМ необходимо наладить работу медперсонала смотровых кабинетов, ФАП по правильному забору материала с ШМ и ЦК, организовать направление диагностического материала, полученного у женщин с визуальной патологией ШМ, отдельно от скрининговых исследований.
В целях повышения эффективности цитологического скрининга и выработки единого диагностического подхода необходимо организовать обучение всех специалистов, участвующих на разных этапах его проведения, в том числе организовать циклы послевузовского повышения квалификации врачей, биологов и среднего медперсонала клинико-диагностических лабораторий по современным методам цитологической диагностики совместно с обучением гинекологов и акушерок смотровых кабинетов. Для внедрения современных образовательных технологий (дистанционное обучение, видеоконсультации), имеющихся на кафедре клинической лабораторной диагностики ГБОУ ДПО Пензенского ИУВ Минздравсоцразвития России, необходимо усовершенствовать интернет-ресурсы, техническую базу лечебно-профилактических учреждений как принимающей стороны.
В. Е. Дементьев, Е. П. Кузнецова, B. C. Берестовская, А. В. Козлов. Реализация политики критических значений в условиях межрайонной централизованной клинико-диагностической лаборатории (МЦКДЛ). ГУЗ Городская поликлиника № 34, ГБОУ СЗГМУ им. И. И. Мечникова, Санкт-Петербург
В соответствии с ГОСТ Р ИСО 15189-2009 «Лаборатории медицинские. Частные требования к качеству и компетентности» КДЛ должна иметь процедуры немедленного извещения персонала, ответственного за лечение больного в случаях, когда результаты исследования попадают в интервал «тревога» или «критическое состояние». «Положение о МЦКДЛ», введенное в действие при реализации программы централизации лабораторных исследований в Санкт-Петербурге, обязывает МЦКДЛ своевременно передавать телефонограммой в соответствующие ЛПУ результаты патологических анализов, угрожающие жизни и здоровью пациента, требующие срочного принятия клинического решения.
МЦКДЛ ГП № 34 проводит исследования для 23 ЛПУ, оказывающих помощь взрослым пациентам (в том числе для 6 женских консультаций), и 7 детских поликлиник. За 2011 г. было выполнено 1 292 160 исследований, оплаченных территориальным фондом ОМС (гематологический анализ и анализ мочи соответствуют количеству образцов пациентов; биохимические, гормональные и иммунологические
ЖИДКОСТНАЯ ЦИТОЛОГИЯ КАК СТАНДАРТИЗОВАННАЯ ТЕХНОЛОГИЯ ПРИГОТОВЛЕНИЯ ПРЕПАРАТОВ
исследования - количеству тестов), из которых 1093 анализа (0,084% от всех исследований) попали под определение критических значений. Чаще всего требовали неотложных действий результаты анализов мочи пациенток женских консультаций, которые составили 36,3% от общего количества переданных телефонограмм. На биохимические показатели пришлось 30,3%, иммунохимические тесты - 22,9%, общий анализ крови - 7,6%, тесты системы гемостаза - 2,9% от
тревожных значений. Информирование ЛПУ происходило в течение 10-20 мин после получения критического значения аналита.
Политика критических значений, реализованная в МЦКДЛ Санкт-Петербурга, позволяет сохранить взаимодействие лаборатории с клиницистами в условиях выполнения исследований в КДЛ, расположенной вне лечебного учреждения.
ЖИДКОСТНАЯ ЦИТОЛОГИЯ КАК СТАНДАРТИЗОВАННАЯ ТЕХНОЛОГИЯ ПРИГОТОВЛЕНИЯ ПРЕПАРАТОВ
Л. В. Никитина, И. П. Шабалова, К. Т. Касоян, Т. В. Джангирова. Иммуноцитохимическое исследование на основе жидкостной цитологии. ГБОУ ДПО РМАПО Минз-дравсоцразвития РФ, Москва
Цель исследования - изучение возможностей использования жидкостной цитологии и иммуноцитохимических методов на материале гастробиопсий в диагностике патологии желудка.
Материал для исследования был получен у 75 пациентов с помощью щипцовой биопсии. С биоптатов делали мазки-отпечатки на стекло для традиционного цитологического исследования. У 40 больных, помимо биоптата, брали соскобы щеткой. У 35 пациентов брали второй биоптат из того же патологического очага и помещали его в стабилизирующий раствор.
Для иммуноцитохимического исследования использовали готовые антитела с-егЪВ-2 (Иег-2/пеи), СЕАСАМ6 (рако-воэмбриональный антиген).
В 37 из 40 наблюдений материал, полученный с помощью щетки, был неинформативным. У всех 35 пациентов, биоптат которых помещали в стабилизирующий раствор и гомогенизировали его путем растирания для проведения жидкостной цитологии, получен полноценный материал. Мазки-отпечатки с биоптата оказались информативными во всех наблюдениях. Иммуноцитохимическое исследование было проведено у 35 пациентов по соответствующему протоколу. Исходя из полученных нами данных, порогом чувствительности экспрессии с-егЪВ-2 (Иег-2/пеи) в диагностике дисплазии и рака желудка можно считать наличие умеренной экспрессии, порогом чувствительности СЕАСАМ6 - выраженной экспрессии.
Умеренная и выраженная экспрессия с-егЪВ-2 (Нег-2/пеи) и выраженная экспрессия СЕАСАМ6 может рассматриваться как маркер возможной тяжелой дисплазии, рака или начальный этап неопластического процесса.
Н. Н. Волченко, Е. Н. Славнова, А. А. Тугулукова. Методы жидкостной цитологии в диагностике негинекологического материала. ФГБУ МНИ онкологический институт им. П. А. Герцена Минздравсоцравития РФ
В последние годы методы жидкостной цитологии активно внедряются в клиническую цитологию. Первоначально методы жидкостной цитологии использовали для приготовления гинекологических мазков. В настоящее время жидкостная цитология применяется и для получения цитологических препаратов негинекологического материала. В нашей стране эта область цитологии только начинает развиваться. В настоящее время на рынке существует большое число приборов, позволяющих готовить препараты методом жидкостной цитологии, работа которых основана на разных физических принципах. Они позволяют получить распределение патологического материала на небольшом участке стекла, что значительно сокращает время просмотра препарата, а оставшийся в фиксирующей жидкости клеточный материал может быть использован для применения современных методов в
онкоцитологии. Дальнейшее развитие цитологии и применение современных методов, таких как иммуноцитохимия и молекулярная генетика, морфометрия, компьютерный анализ изображений, бесспорно требуют получения высококачественных тонкослойных цитологических препаратов.
Цель исследования - сравнение диагностической точности, особенностей морфологических изменений, качества иммуноцитохимических исследований при использовании тонкослойных препаратов, полученных с помощью E-prep Processor и центрифуги Cytospin с рутинным приготовлением цитологических препаратов.
Материал для цитологического исследования был получен от 68 больных с различными злокачественными новообразованиями: молочной железы - 9, жидкости серозных полостей -19, слюнной железы - 7, щитовидной железы - 3, легких - 4, мягких тканей - 10, печени - 1, почек - 2, надпочечников - 1, мочи - 1, кишечника - 1, лимфатических узлов - 10. В полученных двумя методами жидкостных препаратах оценивались фон, клеточность, особенности морфологии. Обязательно проводились цитогистологические сопоставления. В 18 случаях проведено иммуноцитохимическое исследование.
Проведение цитогистологических сопоставлений показало, что эффективность цитологического метода составила 90,8%, достоверность - 97,7%, расхождения составили 2,3%, неудачно взятый материал - 6,9%. Применение метода жидкостной цитологии совместно с рутинным цитологическим исследованием позволяет повысить эффективность цитологической диагностики за счет уменьшения количества неудачно взятого материала. Обеспечивается сохранность цитологического материала, даже единичные патологические клетки попадают в исследуемый материал. Использование Е-ргер-препаратов позволяет уменьшить фон, что позволяет повысить чувствительность цитологического метода. Жидкостные технологии приготовления препаратов позволяют избежать загрязнения их детритом, эритроцитами, элементами воспаления, что значительно облегчает их просмотр и более выражено при применении Е-Prep, чем в цитоспино-вых препаратах. Получение монослоя позволяет сократить количество ложноотрицательных результатов и облегчает просмотр цитологических мазков. Препараты, приготовленные с помощью Е-Prep, отличались более равномерным распределением клеток на стекле. Однако частичная фрагментация клеток, нарушение эпителиально-стромального соотношения, разрозненное расположение клеток, сморщивание или легкое лизирование, более округлая или вытянутая форма, изменение размера клетки в большинстве случаев не позволяют по одним жидкостным мазкам без рутинных цитологических препаратов установить цитологический диагноз. В мазках, приготовленных с помощью Cytospin, изменения в клетках менее выражены за счет применения питательной среды, позволяющей максимально сохранить клетки. Однако клетки меняли свою форму, становились более округлыми, изменялись размеры клеток, чаще укрупнялись, реже уменьшались и даже сморщивались, что без совместного
