CC BY
16
DOI: http://dx.doi.org/10.18821/0016-9900-2019-98-9-943-948
Original article
© КОЛЛЕКТИВ АВТОРОВ, 2019
КузнецоваМ.В.1,2, МаммаеваМ.Г.1, Баранников В.Г.1, Кириченко Л.В.1
ВЫЖИВАЕМОСТЬ БАКТЕРИЙ ПРИ МОДЕЛИРОВАНИИ ОГРАЖДАЮЩИХ ПОВЕРХНОСТЕЙ СООРУЖЕНИЙ ДЛЯ СОЛЕТЕРАПИИ
'Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования «Пермский государственный медицинский университет имени академика Е.А. Вагнера» Министерства здравоохранения Российской Федерации, 614000, Пермь;
2«Институт экологии и генетики микроорганизмов Уральского отделения Российской академии наук» - филиал Федерального государственного бюджетного учреждения науки «Пермский федеральный исследовательский центр» Уральского отделения Российской академии наук, 614081, Пермь
Введение. Наземные сооружения для солетерапии, отличающиеся по составу минералов и модификации лечебных поверхностей, активно используются в России и за рубежом. Абиотические поверхности данных устройств подвержены микробному загрязнению, источниками которого являются верхние дыхательные пути, кожные покровы пациентов и медицинского персонала.
Цель работы - оценить жизнеспособность микроорганизмов на абиотических поверхностях, идентичных материалу для изготовления соляных физиотерапевтических сооружений.
Материалы и методы. Выживаемость референтных и изолированных из соляных помещений грамположи-тельных и грамотрицательных культур микроорганизмов оценивали через 6 и 24 ч после нанесения на абиотические поверхности с различным рельефом. Жизнеспособные клетки определяли методом децимальных разведений по числу колониеобразующих единиц.
Результаты. Выявлено, что клетки бактерий могут сохраняться на галите и различных поверхностях сильвинита не менее суток. Показатель жизнеспособности микроорганизмов не зависел от соотношения минералов (галит/сильвин) в образцах. Значимым фактором для выживаемости бактерий была структура поверхности сильвинита: наибольшее количество микроорганизмов сохранялось на дроблёном сильвините (7,98E+02 ± 1,62E+03 КОЕ/мл). Несмотря на большую выживаемость стафилококков по сравнению с грамо-трицательными условно патогеннъти бактериями на всех исследованных поверхностях, достоверных различий между группами не выявлено. При этом бактерии, изолированные из соляных сооружений, быгли более устойчивы к солевой нагрузке, что обусловлено адаптивной модификацией микроорганизмов, в том числе за счёт увеличения гидрофобности клеточной стенки, повышающей их способность к выживанию. Бактерии, выращенные на агаризованной среде, оказались более толерантными к условиям осмотического стресса. Полученные данные подтверждают зависимость адаптивных механизмов от условий окружающей среды и исходного физиологического состояния клеток. Результаты исследований по выживаемости бактерий на соляных поверхностях различных типов свидетельствуют об их устойчивости к высоким концентрациям солей, что ставит вопрос о специальных методах обработки ограждений сооружений для солетерапии.
Ключевые слова: сильвинит; галит; рельеф поверхности; жизнеспособность микроорганизмов; гидрофоб-ность клеточной стенки бактерий.
Для цитирования: Кузнецова М.В., Маммаева М.Г., Баранников В.Г., Кириченко Л.В. Выживаемость бактерий при моделировании ограждающих поверхностей сооружений для солетерапии. Гигиена и санитария. 2019; 98(9): 943-948. DOI: http://dx.doi. org/10.18821/0016-9900-2019-98-9-943-948
Для корреспонденции: Кузнецова Марина Валентиновна, доктор мед. наук, профессор кафедры микробиологии и вирусологии ФГБОУ ВО «ПГМУ им. академика Е.А. Вагнера» МЗ РФ, 614000, Пермь; ведущий научный сотрудник лаборатории молекулярной микробиологии и биотехнологии «ИЭГМ УрО РАН» - филиала ФГБУН «ПФИЦ» УрО РАН, 614081, Пермь. E-mail: [email protected]
Финансирование. Работа выполнена в рамках государственного задания ГР № 01201353249. Конфликт интересов. Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.
Участие авторов: Концепция и дизайн исследования - Кириченко Л.В., Кузнецова М.В.; сбор и обработка материала - Маммаева М.Г.; статистическая обработка - Маммаева М.Г.; написание текста - Кузнецова М.В.; редактирование - Кириченко Л.В., Баранников В.Г.; утверждение окончательного варианта статьи, ответственность за целостность всех частей статьи - все соавторы.
Поступила 03.07.2018 Принята к печати 23.07.19 Опубликована: октябрь 2019
Kuznetsova M.V.12, Mammaeva M.G.1, Barannikov V.G.1, Kirichenko L.V.1
SURVIVAL OF BACTERIA IN A SIMULATION OF SURROUNDING SURFACES OF CONSTRUCTIONS FOR SALT THERAPY
1E.A. Vagner Perm State Medical University, Perm, 614000, Russian Federation;
2Institute of Ecology and Genetics of Microorganisms of the Ural Branch of RAS, Perm, 614081, Russian Federation
Introduction. Ground constructions for salt therapy, which differ in the composition of minerals and in the modification of therapeutic surfaces, are actively used in Russia and abroad. The abiotic surfaces of these devices are susceptible to microbial contamination, the sources of which are the upper respiratory tract, the skin of patients and medical staff. The aim of the work is to assess the viability of microorganisms on abiotic surfaces identical to the material for the manufacture of salt physiotherapy constructions.
Material and methods. 6 and 24 hours after application to abiotic surfaces with different relief there was evaluated the survival rate of reference gram-positive and gram-negative cultures of microorganisms and isolated ones from salt rooms. Viable cells were determined by the method of decimal dilutions in terms of the number of colonies-forming units (CFU).
Results. It was found that bacterial cells can preserve at the halite and various surfaces of sylvinite for at least 24 hours. The viability of microorganisms was independent of the ratio of minerals (halite/sylvin) in the samples. The structure of the surface of sylvinite: the largest number of microorganisms was retained on crushed sylvinite
DOI: http://dx.doi.org/10.18821/0016-9900-2019-98-9-943-948 Оригинальная статья
(7.98E+02 ± 1.62E+03 CFU/ml was a significant factor for the survival of bacteria. Despite a great survival of staphylococci in comparison with gram-negative opportunistic pathogenic bacteria on all the surfaces studied, no significant differences between the groups were detected. In this case, bacteria isolatedfrom salt structures were more resistant to salt load due to adaptive modification of microorganisms, including increasing the hydrophobicity of the cell wall, increasing their ability to survive. Bacteria grown on a solid agar medium proved to be more tolerant of the conditions of osmotic stress.
Conclusion. The obtained data confirm the dependence of the adaptive mechanisms on the environmental conditions and the initial physiological state of cells. The results of studies on the survival of bacteria on salt surfaces of various types indicate their resistance to high concentrations of salts, which raises the question of special methods for treating fences of salt therapy structures.
Keywords: sylvinite; halite; surface relief; viability of microorganisms; hydrophobicity of the bacterial cell wall.
For citation: Kuznetsova M.V., Mammaeva M.G., Barannikov V.G., Kirichenko L.V. Survival of bacteria in a simulation of surrounding surfaces of constructions for salt therapy. Gigiena i Sanitaria (Hygiene and Sanitation, Russian journal) 2019; 98(9): 943-948. (In Russian). DOI: http://dx.doi.org/ 10.18821/0016-9900-2019-98-9-943-948
For correspondence:Marina V. Kuznetsova, MD, Ph.D., DSci., professor of the Department of microbiology and virology of the E.A. Vagner Perm State Medical University the Russian Federation, Perm, 614000, Russian Federation; leading researcher of the laboratory of molecular microbiology and biotechnology of the Institute of Ecology and Genetics of Microorganisms of the Ural Branch of RAS, Perm, 614081, Russian Federation. E-mail: [email protected] Information about authors:
Kuznetsova M.V., https://orcid.org/0000-0003-2448-4823. Scopus ID: 53264013300 Mammaeva M.G., https://orcid.org/0000-0003-4985-101X Barannikov V.G., https://orcid.org/0000-0002-4840-7788. Scopus ID: 6603830403 Kirichenko L.V., https://orcid.org/0000-0001-6306-1757. Scopus ID: 7003964418
Conflict of interest. The authors declare no conflict of interest.
Acknowledgment. The work was carried out within the framework of state objective № 01201353249.
Contributions: The concept and design of the study - Kirichenko L.V., Kuznetsova M.V.; Collection and processing of material - Mammaeva M.G.; Statistical processing - Mammaeva M.G.; Writing a text - Kuznetsova M.V.; Editing - Kirichenko L.V., Barannikov V.G.; Approval of the final version of the article, responsibility for the integrity of all parts of the article - all co-authors. Received: July 03, 2019 Accepted: July 23, 2019 Published: October 2019
Введение
Сильвинитовые и галитовые сооружения для минералотерапии активно используются в комплексном лечении различных заболеваний [1-4]. Их интенсивная эксплуатация и отсутствие должного контроля способствуют изменению лечебных факторов внутренней среды и микробного пейзажа [5]. В процессе проведения сеансов солетерапии воздух соляных устройств подвержен микробному загрязнению, источниками которого являются медицинский персонал и пациенты. Соли обладают угнетающим действием на микроорганизмы, однако выявлена высокая обсеменённость воздуха и абиотических поверхностей соляных помещений, зависящая от интенсивности и срока их эксплуатации [6, 7], что может свидетельствовать о сохранении бактерий в условиях солёности.
Процессы приспособления микроорганизмов к неблагоприятным факторам окружающей среды направлены на минимизацию негативных последствий и обусловлены морфологическими, физиологическими и биохимическими реакциями клетки [8-10]. Адаптация бактерий к условиям окружающей среды, в том числе при осмотическом стрессе, является сегодня одним из широко изучаемых разделов микробиологии [11, 12].
Цель данной работы - оценка жизнеспособности микроорганизмов на абиотических поверхностях, идентичных материалу для изготовления соляных физиотерапевтических сооружений.
Материал и методы
В качестве объектов исследования были взяты референтные штаммы Staphylococcus aureus АТСС®25923, Staphylococcus epidermidis ATCC®29887, Escherichia coli АТСС®25922, Klebsiella pneumoniae АТСС®700603, Pseudomonas aeruginosa АТСС®27853, полученные из Государственной коллекции патогенных микроорганизмов ГИСК им. Л.А. Тарасевича (сейчас ФГБУ «НЦЭСМП» Минздрава России, г. Москва). Использо-
вали также природные почвенные штаммы Pseudomonas veronii, Pseudomonas fluorescens из коллекции лаборатории «ИЭГМ УрО РАН» и штаммы, изолированные с поверхности соляных сооружений: S. aureus, S. epidermidis, Staphylococcus cohnii subsp . urealyticum, Pseudomonas spp .
Выживаемость бактерий оценивали на галите, сильвините без обработки и после зачистки, сильвинитовом сколе, дроблёном сильвините.
Процентное содержание минералов оценивали путём обработки изображений поверхностей сильвинита и га-лита с помощью программы, написанной на языке C# в среде Microsoft Visual Studio 2010 [13].
Эксперименты по выживаемости бактерий на соляных поверхностях проводили двумя способами. В первом случае суспензии клеток ночных культур бактерий, стандартизованных до 2,0 по стандарту McFarland, наносили по 100 мкл на соляные поверхности по трафарету (1 см2). Во втором случае использовали биомассу бактерий, выращенных на твёрдых питательных средах, для чего нагружали полную бактериальную петлю и наносили на поверхность. Исследуемые материалы помещали в термостат и выдерживали 6 и 24 ч. Жизнеспособность клеток оценивали после высева «сухих смывов» на агаризован-ные питательные среды методом децимальных разведений по числу колониеобразующих единиц (КОЕ/мл).
Гидрофобность поверхности бактериальных клеток оценивали по их относительному распределению между водной фазой и фазой органического растворителя гекса-декана (BATH-тест) [14].
Статистический анализ проводили с использованием программ Microsoft Office Excel и Statistica 10. Показатели представлены в виде среднего арифметического и его ошибки (M ± m). Достоверность различий средних величин определяли с помощью /-критерия. При p < 0,05 делали вывод о наличии статистически значимой разницы между сравниваемыми выборками. Связь между количественными значениями проводили с помощью линейного коэффициента корреляции Пирсона (r)
DOI: http://dx.doi.org/10.18821/0016-9900-2019-98-9-943-948
Original article
Результаты
В ходе экспериментальных исследований было установлено, что референтные штаммы стафилококков сохранялись на всех изучаемых поверхностях в течение 24 ч при посеве культур петлёй из колонии (см. таблицу). Достоверных отличий по числу жизнеспособных бактерий в течение суток на галите и сильвините без обработки не выявлено (9,63E+01 vs 1,25E+02 КОЕ/мл для S. aureus и 2,15E+01 vs 3,10E+01 КОЕ/мл для S. epidermidis). На поверхности сильвинита после зачистки и сильвини-тового скола бактерии выживали также в течение 24 ч при посеве культур из колонии (7,45E+02 и 2,49E+03 КОЕ/мл для S. aureus, 1,50E+00 и 6,27E+01 КОЕ/мл для S. epidermidis). Штаммы стафилококков, выделенные из соляных сооружений, оказались более устойчивы к солевой нагрузке, чем референтные, которые сохранялись на поверхности галита и сильвинита даже при технике нанесения в жидкой культуре. Кроме того, выявлены достоверные различия по выживаемости клеток на сильвинито-вом сколе при 6-часовой экспозиции (p < 0,05). Значимым фактором для выживаемости бактерий была структура поверхности сильвинита: наибольшее количество микроорганизмов сохранялось через 24 ч на дроблёном сильвините (1,19E+02 - 4,73E+03 КОЕ/мл для референтных штаммов и 4,00E+01 - 3,75E+03 КОЕ/мл для бактерий, выделенных с соляных помещений).
Клетки референтных штаммов Е. coli, K. pneumoniae и P. aeruginosa выживали в течение 6 ч только на дроблёном сильвините (8,00E+02 ± 4,62E+02, 3,75E+03 ± 5,22E+03 и 8,96E+03 ± 5,17E+03 КОЕ/мл соответственно), тогда как выделенные из соляных сооружений гра-мотрицательные бактерии сохранялись на поверхности галита (2,40E+02 ± 1,70Е+02 КОЕ/мл для Pseudomonas sp. К4) и сильвинита без обработки (8,00E+01 ± 5,66Е+01 КОЕ/мл для Pseudomonas sр. К14). Максимальное число жизнеспособных клеток детектировано также на дроблёном сильвините (7,68E+03 ± 5,43Е+03 КОЕ/мл для Pseudomonas sр. К4).
В целом с учётом всех изученных микроорганизмов наибольшее количество клеток сохранялось на дроблёном сильвините на протяжении 6 ч (3,44E+03 ± 4,64E+04 КОЕ/мл) и 24 ч (7,98E+02 ± 1,62E+03 КОЕ/мл), при этом выживаемость бактерий достоверно снижалась с течением времени (рис. 1). Минимальное число клеток микроорганизмов зафиксировано на поверхности сильвинита без обработки (5,38E+01 ± 1,29E+02 КОЕ/мл на 6 ч и 7,46Е+01 ± 2,69E+02 на 24 ч) и после зачистки (4,21E+01 ± 1,58E+01 КОЕ/мл на 24 ч). Через 6 ч с позиции снижения жизнеспособности бактерий поверхности распределились следующим образом: дробленый сильвинит > сильвинитовый скол > галит > сильвинит после зачистки > сильвинит без обработки. При этом достоверные различия по количеству клеток выявлены между дроблёным сильвинитом и сильвинитовым сколом (p < 0,05), а также дроблёным сильвинитом и остальными поверхностями (p < 0,005). Через 24 ч выживаемость бактерий на дроблёном сильвините была ниже, чем при 6-часовой экспозиции. Тенденция к снижению этого показателя выявлена для остальных поверхностей, за исключением сильвинита без обработки.
Изучено соотношение галита и сильвина на различных поверхностях, идентичных материалу соляных сооружений: галит - 88,67/11,33%, сильвинит без обработки -5,68/94,32%, сильвинит после зачистки - 1,04/98,96%, сильвинитовый скол - 4,56/95,44%, дроблёный сильвинит - 8,99/91,01%. Корреляционный анализ показал слабую отрицательную связь между жизнеспособностью
* &
«
о Ü
8
•S
£
я
s
а :=
* S
I
M
О
И
a
: -
н s s s ш
M S
О
&
& m
^ s
к ю
К о
« s
r<a и
H rt
I
-H
§
g О 8 §
43 о
^ £
bQ <
та
та
DOI: http://dx.doi.org/mi8821/0016-9900-2019-98-9-943-948 Оригинальная статья
КОЕ/мл 14 000 12 000 10 000 8000 6000 4000 2000 0
-2000 -4000 -6000 -8000
II II IL
1 1 т т _ □ ^ 1 1 1 т 1=Вз Ца] ^ j ^
1 2 3 4 5 а 1 2 3 4 5 б
□ Mean Q Mean + SD I Mean ± 1,96 • SD
Рис. 1. Количество жизнеспособных бактерий с учётом вида соляных поверхностей и экспозиции 6 ч (а) и 24 ч (б). 1 - галит; 2 - сильвинит без обработки; 3 - сильвинит после зачистки; 4 - сильвинитовый скол; 5 - дроблёный сильвинит.
бактерий и содержанием галита через 6 ч (г = -0,234) и 24 ч (гр = -0,163). Р
Микрорельеф поверхности оказался наиболее значительным параметром для колонизации и выживаемости бактерий, поскольку наибольшее количество клеток зафиксировано на сильвините с неровным рельефом поверхности (рис. 2).
Гидрофобность клеточной стенки исследованных микроорганизмов существенно варьировала от 0 до 24,2%, составив в среднем 8,12 ± 9,6%. Выявлена сильная положительная связь между гидрофобностью и числом жизнеспособных клеток, адгезированных на поверхности дроблёного сильвинита: г = 0,829. Корреляция между суммарным показателем выживаемости (с учётом всех поверхностей и обеих техник нанесения) и гидрофобно-стью клеточной стенки бактерий составила г = 0,346. При учёте показателей жизнеспособности только при технике посева из колонии связь была очень сильной (г = 0,955).
Обсуждение
Для строительства наземных соляных сооружений используют калийно-натриевые соли различных месторождений. Сильвинит - осадочная горная соляная порода, представляющая собой совокупность минералов сильвина (KCl), галита (NaCl) и карналлита (KCl х MgCl3 х 6H2O). Галит - кристаллическая форма хлорида натрия и различных примесей. Галокамеры могут быть выполнены блоками из рудных прессованных соляных материалов и блоками, сформированными из осадочных природных пород, а также методом напыления соли на ограждения с подсыпкой минералов на пол [7]. Сильвинитовые сооружения представляют собой помещения, стены и пол которых облицованы блоками природных калийных солей, а потолок - соляными блоками или плитками с соляным напылением [5]. Учитывая, что соляные сооружения в России и за рубежом представлены в различных модификациях лечебных поверхностей, в настоящем исследовании были использованы материалы, идентичные применяемым для соле-терапии ограждениям, отличающиеся по элементному составу и рельефу поверхности.
Состав и структура соляной поверхности наряду с другими факторами могут играть важную роль в формировании микробиологического пейзажа. По минералогическим характеристикам калийная соль состоит из следующих фракций: прозрачная фракция галита, прозрачная фракция галита с поверхностным голубым окрасом, красная фракция сильвина, молочно-белая фракция сильвина, прозрачные кристаллы галита, тёмно-серые кристаллы галита, мясо-красная и янтарно-перламутровая фракция сильвина [15]. Цветовые различия фракций легли в основу программы по оценке соотношения минералов в используемых материалах [13]. Отсутствие достоверной разницы между показателями жизнеспособности клеток на сильвините и галите, а также слабая отрицательная связь между содержанием галита и показателем выживаемости бактерий свидетельствуют, что жизнеспособность клеток практически не зависела от состава соли, что согласуется с данными Rath K.M. и соавт. (2016), которые не выявили достоверных различий в токсичности солей, содержащих ионы Na+ и K+, для микробных клеток [16], хотя ранее было обнаружено, что соли K+ менее токсичны для прокариотов, чем соли Na+ [17]. Из всех сильвинито-вых поверхностей максимальное количество выживших
\3
x1.00k Mix L 02/26/2018
wrm
nr г л ,',s , i^F
ЮОцт
Рис. 2. Изображения структуры поверхности дроблёного сильвинита, полученные с помощью электронной микроскопии (Hitachi TM4000Plus, Япония). Масштабная линейка соответствует 1 мм (а) и 100 мкм (б).
DOI: http://dx.doi.org/10.18821/0016-9900-2019-98-9-943-948
Original article
микроорганизмов обнаружено на дроблёном сильвините с наибольшим содержанием хлорида натрия. Следовательно, более значимым фактором для сохранения бактерий, даже в условиях повышенной солёности, является уровень адгезии клеток к материалу. Предыдущими исследованиями было выявлено, что шероховатость и рельеф колонизируемой поверхности имеют существенное значение для формирования микробных биоплёнок [18-21].
Показана высокая выживаемость как грамположитель-ных, так и грамотрицательных бактерий в естественной среде (природные пещеры) и в местах промышленной солеразработки (солерудники/солеотвалы) [22-24]. Выживание микроорганизмов в гиперосмотических условиях в целом происходит за счёт транспорта ионов через цитоплазматическую мембрану, синтеза и накопления осмопротекторов, а также формирования биоплёнок [25]. Адаптивные механизмы бактерий позволяют модифицировать поверхность клетки в отношении её гидрофоб-ности, чтобы обеспечить оптимальное взаимодействие с субстратами. Известно, что увеличение гидрофобности клеточной стенки бактерий является ключевым фактором для адгезии и формирования биоплёнки. Гидрофобные клетки адгезируются в большей степени, чем гидрофильные (коэффициент линейной регрессии 0,8) [26]. Показано, что в присутствии №С1 увеличиваются гидрофобность поверхности и степень насыщения мембраны жирными кислотами в большей степени для клеток, выращенных на агаре, чем в жидкой среде [27, 28]. Это обусловлено тесной связью бактерий в колонии за счёт увеличения гидрофобности их клеточной поверхности [29]. В нашем исследовании большая выживаемость выявлена у бактерий, выделенных из сооружений для солелечения, с более высокими значениями гидрофобности клеточной стенки. Отсутствие сильной корреляции между суммарным показателем выживаемости (с учётом всех поверхностей) и гидрофобностью клеток микроорганизмов может свидетельствовать также о влиянии гидрофобности колонизируемых поверхностей. Как известно, этот параметр может «маскировать» зависимость адгезии от свойств клеточной стенки бактерий [30].
Заключение
Наземные сооружения для солетерапии, отличающиеся по составу минералов и модификации лечебных поверхностей, активно используются в России и за рубежом. В период проведения сеансов воздух, а впоследствии и абиотические поверхности данных устройств подвержены микробному загрязнению, источниками которого являются верхние дыхательные пути, кожные покровы пациентов и медицинского персонала. Способность бактерий колонизировать и сохраняться на различных типах ограждающих поверхностях сооружений для солетерапии никогда не изучалась.
Наши исследования свидетельствуют о том, что клетки референтных штаммов и бактерий, выделенных с ограждений соляных сооружений, могут сохраняться на галите и различных поверхностях сильвинита не менее суток. Показатель жизнеспособности микроорганизмов не зависел от соотношения минералов в образцах. Несмотря на большую выживаемость стафилококков по сравнению с грамотрицательными условно патогенными бактериями на всех исследованных поверхностях, достоверных различий между группами не выявлено. При этом бактерии, изолированные из соляных сооружений, были более устойчивы к солевой нагрузке, что обусловлено адаптивной модификацией микроорганизмов, в том числе за счёт увеличения гидрофобности клеточной стенки, повышаю-
щей их способность к выживанию. Культуры, выращенные на агаризованной среде, были более толерантными к условиям осмотического стресса. Всё это подтверждает зависимость приспособительных механизмов прокариотов от условий окружающей среды и исходного физиологического состояния клеток.
Таким образом, результаты исследований по выживаемости бактерий на соляных поверхностях различных типов свидетельствуют об их устойчивости к высоким концентрациям солей, что ставит вопрос о разработке специальных методов обеззараживания ограждений сооружений для солетерапии.
Литер атур а
(пп. 3, 4, 9-12, 14, 16, 17, 19-21, 23, 24, 26-30 см. References)
1. Жарин В.А., Метельский С.М., Решетникова Н.В., Федорович С.В. Спелеотерапия: прошлое и настоящее. Военная медицина. 2013; 1: 48-3.
2. Хан М.А., Червинская А.В., Микитченко Н.А., Вахова Е.Л., Подгорная О.В., Куянцева Л.В. Галотерапия: современные технологии медицинской реабилитации часто болеющих детей. Педиатрия. 2013; 3 (81): 34-7.
5. Черешнев В.А., Баранников В.Г., Кириченко Л.В., Дементьев С.В. Физиолого-гигиеническая концепция спелео-солелечения. Екатеринбург: РИО УрО РАН; 2013; 183.
6. Кириченко Л.В., Баранников В.Г., Варанкина С.А., Хохрякова В.П., Маслов Ю.Н., Дементьев С.В. Гигиеническое обоснование профилактических санитарно-технических мероприятий при эксплуатации сильвинитовых сооружений. Пермский медицинский журнал. 2014; 31 (6): 105-9.
7. Николаева Е.А., Тишкевич Г.И., Косяченко Г.Е. Анализ гигиенических характеристик спелеосреды наземных гало- и спелеоклимати-ческих камер. Здоровье и окружающая среда. 2016; 26: 185-7.
8. Соловьян В.Т. Приспособление клеток к неблагоприятным факторам. Характеристика адаптивных ответов. Биополимеры и клетка. 1990; 6 (4): 32-42.
13. Баранников В.Г., Русаков С.В., Русакова О.Л., Сафонова Д.Н., Кириченко Л.В., Варанкина С.А. и др. Методика определения площади природного минерала сильвина в сооружениях из калийных солей. Патент РФ № 2016612200; 2015. 15. Аптуков В.Н., Скачков А.П. Оценка микромеханических характеристик каменной соли, сильвинита и карналлита на установке NAN0TEST-600. Вестник Нижегородского университета им. Н.И. Лобачевского. 2011; 4 (2): 372-4. 18. Арутюнов С.Д., Ипполитов Е.В., Пивоваров А.А., Царёв В.Н. Взаимосвязь шероховатости и рельефа поверхности базисного стоматологического полиметилметакрилатного полимера и формирования микробной биоплёнки при разных способах полировки образцов. Казанский медицинский журнал. 2014; 95 (2): 224-31. 22. Ястребова О.В., Ананьина Л.Н., Пастухова Е.С., Плотникова Е.Г. Разнообразие бактерий, выделенных из района разработок месторождения калийных солей Верхнекамья. Вестник Пермского университета. 2009; 10 (36): 124-9. 25. Селиванова Е.А. Механизмы выживания микроорганизмов в гиперосмотических условиях. Бюл. Оренбурского научного центра УрО РАН. 2012; 3: 1-10.
References
1. Zharin V.A., Metelskiy S.M., Reshetnikova N.V., Fedorovich S.V. Speleotherapy: past and present. Voennaya meditsina. 2013; 1: 48-3. (in Russian)
2. Khan M.A., Chervinskaya A.V., Mikitchenko N.A., Vakhova E.L., Pod-gornaya O.V., Kujanceva L.V. Halotherapy: Up-To-Date Medical rehabilitation techniques for frequently ill children . Pediatriya [Pediatrcs]. 2013; 3 (81): 34-7. (in Russian)
3. Hedman J., Hugg T., Sandell J., Haahtela T. The effect of salt chamber treatment on bronchial hyperresponsiveness in asthmatics . Allergy. 2006; 61 (5): 605-10.
4. Rashleigh R., Smith S.M., Roberts N.J. A review of halotherapy for chronic obstructive pulmonary disease . Int J Chron ObstructPulmon Dis. 2014; 9: 239-46.
5. Chereshnev V.A., Barannikov V.G., Kirichenko L.V., Dementev S.V. Physiological and hygienic concept of speleo-salt therapy. Yekaterinburg: RIO UrO RAN; 2013; 183. (in Russian)
6. Kirichenko L.V., Barannikov V.G., Varankina S.A., Khokhryakova V.P., Maslov U.N., Dementev S.V. Hygienic grounding for preventive
DOI: http://dx.doi.org/10.18821/0016-9900-2019-98-9-943-948 Оригинальная статья
sanitary-technical measures with sylvinite units exploitation. Permskiy meditsinskiy zhurnal. 2014; 31 (6): 105-9. (in Russian)
7. Nikolaeva E.A., Tishkevich G.I., Kosyachenko G.E. Analysis of hygienic features of speleo environment of above ground halo and speleo chambers . Zdorov'e i okruzhayushchaya sreda. 2016; 26: 185-7. (in Russian)
8. Solovyan V.T. Adaptation of cells to environmental factors. Characteristic of adaptive responses. Biopolimery i kletka. 1990; 6 (4): 32-2. (in Russian)
9. Prins R.A., de Vrij W., Gottschal J.C., Hansen Th.A. Adaptation of microorganisms to extreme environments . FEMSMicrobiol Lett. 1990; 75: 103-4.
10. Smirnova G.V., Muzyka N.G., Oktyabrsky O.N. The role of antioxidant enzymes in response of Escherichia coli to osmotic upshift. FEMS Microbiol Lett. 2000; 186 (2): 209-13.
11. Empadinhas N., da Costa M.S. Osmoadaptation mechanisms in pro-karyotes: distribution of compatible solutes. IntMicrobiol. 2008; 11 (3): 151-61.
12. Wood J.M. Bacterial osmoregulation: a paradigm for the study of cellular homeostasis . Annu Rev Microbiol. 2011; 65: 215-38.
13. Barannikov V.G., Rusakov S.V., Rusakova O.L., Safonova D.N., Kirichenko L.V., Varankina S.A. et al. Method for determination the area of natural mineral sylvinite content in potassium salt constructions . Patent RF N 2016612200; 2015. (in Russian)
14. Rosenberg М., Gutnick D., Rosenberg E. Adherence of bacteria to hydrocarbons: A simple method for measuring cell surface hydrophobicity. FEMSMicrobiol Lett. 1980; 9: 29-3.
15. Aptukov V.N., Skachkov A.P. Estimation of micromechanical characteristics of rock salt, sylvinite and carnallite by nanotest-600. Vestnik Nizhegorodskogo universiteta im. N.I. Lobachevskogo. 2011; 4 (2): 3724. (in Russian)
16. Rath K.M., Maheshwari A., Bengtson P., Rousk J. Comparative toxicity of salts to microbial processes in soil. Appl Environ Microbiol. 2016; 82(7): 2012-20.
17. Sindhu M.A., Cornfield A.H. Comparative effects of varying levels of chlorides and sulphates of sodium, potassium, calcium and magnesium on ammonification and nitrification during incubation of Soil. Plant Soil. 1967; 27(3): 468-72.
18. Arutyunov S.D., Ippolitov E.V., Pivovarov A.A., Tsarev V.N. Relationship between basic dental polymethyl methacrylate polymer roughness and surface topography and microbial biofilm formation using different polishing techniques . Kazanskiy meditsinskiy zhurnal. 2014; 95 (2): 224-31. (in Russian)
19. Dantas L.C., da Silva-Neto J.P., Dantas T.S., Naves L.Z., das Neves F.D., da Mota A. S. Bacterial adhesion and surface roughness for different clinical techniques for acrylic polymethyl methacrylate. International Int J Dent. 2016; 2: 1-6.
20. Yoda I., Koseki H., Tomita M., Shida T., Horiuchi H., Sakoda H. et al. Effect of surface roughness of biomaterials on Staphylococcus epidermidis adhesion . BMC Microbiol. 2014; 14: 234.
21. Hocevar M., Jenko M., Godec M., Drobne D. An overview of the influence of stainless-steel surface properties on bacterial adhesion. Materials and Technology. 2014; 48 (5): 609-17.
22. Yastrebova O.V., Pastukhova E.S., Plotnikova E.G. The study of bacteria, isolated from the salt mining of Upper-Kama potassium-magnesium salt deposit. VestnikPermskogo universiteta. 2009; 10 (36): 124-9. (in Russian)
23. Diaz-Cardenas С., Cantillo A., Rojas L.Y., Sandoval T., Fiorentino S., Robles J. et al. Microbial diversity of saline environments: searching for cytotoxic activities . AMB Expr. 2017; 7(1): 223.
24. Gebarowska E., Pusz W., Kucinska J., Kita W. Comparative analysis of airborne bacteria and fungi in two salt mines in Poland. Aerobiologia. 2018; 34 (2): 127-38.
25. Selivanova Е.А. Mechanisms of microorganisms survival in conditions of high osmotic pressure . Byull. Orenburskogo nauchnogo tsentra UrO RAN. 2012; 3: 1-10. (in Russian)
26. Van Loosdrecht M.C.M., Lyklema J., Norge W., Schraa G., Zehnder A.J. Electrophoretic mobility and hydrophobicity as a measure to predict the initial steps of bacterial adhesion. Appl Environ Microbiol. 1987; 53 (8): 1898-901.
27. De Carvalho C.C., Wick L.Y., Heipieper H.J. Cell wall adaptations of planktonic and biofilm Rhodococcus erythropolis cells to growth on C5 to C16 n-alkane hydrocarbons. Appl Microbiol Biotechnol. 2009; 82: 311-20.
28. Hachicho N., Birnbaum A., Heipieper H.J. Osmotic stress in colony and planktonic cells of Pseudomonas putida mt-2 revealed significant differences in adaptive response mechanisms . AMB Expr. 2017; 7 (1): 62.
29. Baumgarten T., Sperling S., Seifert J., von Bergen M., Steiniger F., Wick L.Y. et al. Membrane vesicle formation as a multiple-stress response mechanism enhances Pseudomonas putida DOT-T1E cell surface hydrophobicity and biofilm formation. Appl Environ Microbiol. 2012; 78 (17): 6217-24.
30. Cerca N., Pier G., Vilanova M., Oliveira R., Azeredo J. Quantitative analysis of adhesion and biofilm formation on hydrophilic and hydrophobic surfaces of clinical isolates of Staphylococcus epidermidis . Res Microbiol. 2005; 156: 506-14. doi:10.1016/j.resmic.2005.01.007
