CC BY
29
известия оренбургского государственного аграрного университета
2020 ■ № 5 (85)
Using the Streptococcus thermophilus culture to determine the residual content of inhibitory substances in milk
Popova Evgeniya Viktorovna, postgraduate Orenburg State Agrarian University 18 Chelyuskintsev St., Orenburg, 460014, Russia E-mail: popova_zhenechka@mail.ru
Davydova Olga Konstantinovna, Candidate of Biology, Associate Professor
Orenburg state University
13, Victory Ave, Orenburg, 460018, Russia
E-mail: okdavydova@yahoo.com
The use of milk containing inhibitors in its composition, due to the suppression of the growth of lactic acid microflora, leads to a strong proliferation of gram-negative bacteria and, ultimately, the development of nonstandard fermented dairy products. Of the inhibitors present in the harvested milk, special importance is attached to antibiotics. Along with the noted production difficulties associated with the ingestion of antibiotics in milk, there may also be undesirable consequences for the health of consumers: the possibility of allergies, the appearance of antibiotic-resistant opportunistic or pathogenic microorganisms, the development of dysbacteriosis. This article is devoted to the problem of determining the residual amounts of inhibitory substances in milk and using the microbiological method of reductase testing based on the discoloration of the methylene blue dye in the presence of Streptococcus thermophilus bacterial products to assess the quality of milk from various producers purchased in the retail network of the city of Orenburg. The study revealed that out of 30 milk samples, 53.3 % did not contain antibiotics, 33.3 % probably contained small amounts of inhibitory substances in the milk, and 13.3 % contained inhibitory substances. This method, due to its cheapness and speed, can be recommended for practical use on dairy farms and dairy processing plants.
Key words: milk, Streptococcus thermophilus, antibacterial drugs, inhibiting substances, microbiological rapid
tests, reductase test method, methylene blue.
-♦-
УДК 578.834.11:636.09
Выявление пуллороза эмбрионов птиц путём биологического контроля инкубационного яйца
Е.Р. Нуралиев, канд. биол. наук
НПУЦ ИТУ, Республика Казахстан
В статье представлены результаты производственных опытов по выявлению пуллороза-сальмонеллёза эмбрионов кур. При патологоанатомическом вскрытии невыведенных инкубационных яиц кур выявили, что у 15 - 18 % погибших эмбрионов содержимое желточного мешка имело плотную консистенцию, травянисто-зелёный цвет и инъецированную сеть кровеносных сосудов. Желчный пузырь у больных эмбрионов был увеличен в несколько раз и заполнен густой тягучей тёмно-зелёного цвета желчью. На теле эмбрионов и оболочках аллантоиса зафиксировано отложение мочекислых солей. У погибших эмбрионов наблюдалось ампулообразное расширение прямой кишки заполненной газами и мочекислыми солями. Показано, что борьба с сальмонеллёзом птиц включает проведение организационных, санитарно-гигиенических и терапевтических мероприятий, серологическое выявление подозреваемых в заражении или бактерионосительстве птиц. В этих случаях единственным выходом является рациональное использование надёжных и безопасных противобактериальных средств и в первую очередь антибиотиков.
Ключевые слова: пуллороз, эмбрионы кур, биологический контроль, инкубационные яйца.
Сальмонеллёзная инфекция, которая загрязняет скорлупу, имеет большую значимость и в то же время наносит значительный ущерб птицеводческой отрасли [1].
Молодняк всех птиц (цыплята, индюшата, фазанята, цесарята и т.д.) особенно восприимчив к сальмонеллёзу в начальные дни жизни. Главным началом возбудителя заболевания является, как всегда, нездоровая птица, которая с помётом выделяет огромное количество возбудителя [1,
2]. Анализ исследовательских работ по данной инфекции показал, что возбудителя инфекции сальмонеллёза выявляют не только во внутренних органах птиц, а также в мышцах, яйце и, конечно, в желтке [3, 4].
По данным статистических исследований, домашние птицы, собственно куры, нередко болеют сальмонеллёзом. В большинстве случаев птицы были инфицированы Enteritidis, и потому клинические признаки болезни и падежа у них
не были выражены [4]. По мнению экспертов ВОЗ, бессимптомное прохождение инфекции у сельскохозяйственных птиц с диагностированием этих бактерионосителей делает их неизменными источниками заражения [5].
Ни для кого не секрет, что к популяризации болезни приспособлены и дикие птицы. Например, заражённость сальмонеллами зафиксирована у 140 видов различных диких птиц [6, 7].
Существенное место в распространении саль-монеллёзных бактерий занимает несоблюдение ветеринарно-санитарных и гигиенических стандартизированных требований во время транспортировки, хранения и реализации продуктов. Поэтому стоит обращать огромное внимание на товары, которые были получены от здоровых на вид птиц [8 - 11].
Для того чтобы выявить основные факторы инфекционного процесса, необходимо изучить эпизоотическую ситуацию, совершенствовать и разрабатывать лечебные и специфические меры профилактики.
Не корпоративные предприниматели в Республике Казахстан, т.е. частные, нередко игнорируют осуществление ветеринарных мероприятий, что способствует заносу инфекции в промышленное птицеводство [12].
В эпоху рыночной экономики, как показывает практика, прежде чем заниматься птицеводством, в приусадебных хозяйствах необходимо провести лечебно-профилактические меры против многих инфекционных болезней, в том числе пуллороза - заболевания домашней птицы из группы сальмонеллёза. Эти меры направлены на создание препятствий для заноса бактерий, на недопустимость размножения и распространения данной инфекции в промышленном птицеводстве [13, 14].
Целью данной работы являлось изучение отклонений от нормы показателей биологического контроля инкубации яиц кур кросса Родонит 3 и Хайсекс-Браун на птицефабрике в Республике Казахстан.
Задачи исследования:
- анализ результатов ветеринарно-санитарных мероприятий и проверка правильности проведённой профилактики при скрытых формах сальмонеллёза кур-несушек родительского стада;
- топография проявления нарушений эмбрионального развития в инкубационных яйцах;
- определение степени правильности и эффективности применения ветеринарно-санитарных методов с использованием традиционных препаратов для профилактики пуллороза на птицефабрике;
- обеспечение надёжной защиты поголовья птиц от пуллороза.
Материал и методы исследования. В период с 2009 по 2013 г. нами проведены производствен-
ные опыты по изучению отклонения от нормы показателей биологического контроля инкубации яиц кросса Родонит 3 и Хайсекс-Браун на одной из птицефабрик Республики Казахстан.
При выполнении равного количества массы яиц, сроков снесения и хранения выбирали яйцо от одного и того же родительского стада в опытные и контрольные группы. Возраст родительского стада достигал 230 - 270 сут. Средняя масса яиц составляла 54,8 - 59,5 г, плотность - 1,092 - 1,095 г/см3, толщина скорлупы - 380 - 400 мкм, кислотность желтка - 4,2 - 4,4 мг КОН, содержание каротина в желтке - 15,5 - 15,7 мкг/г, вит. А - 7,2 - 8,6 мкг. Срок хранения яиц составлял 2 - 5 сут. В производственных условиях инкубацию яиц полностью проводили в инкубаторах универсальных предварительных (ИУП-Ф-45).
Порядок кормления, параметры микроклимата, режимы инкубации, плотность посадки были аналогичными для кур всех опытных и контрольных групп.
При проведении экспериментов учитывали следующие показатели: температурно-влажностный режим при инкубации яиц в камере инкубатора ИУП-Ф-45 и ИУВ-Ф-15 посредством вмонтированных в него приёмников влажности и температуры. Результаты инкубации (плодотворность, выводимость яиц и вывод цыплят) обрабатывали методами математической статистики.
Отходы инкубации были разделены на несколько категорий: неоплодотворённые яйца, кровоточивые кольца, застылые от холода задохлики, бессильные молодые цыплята, некондиция и прочее. (Орлов М.В., 1987; Отрыганьев Г.К., Отрыганьев А.Ф., 1989; Бессарабов Б.Ф., 2006). Для осуществления биологического контроля инкубации вскрывали яйца с погибшими зародышами, устанавливая таким образом их возраст.
Исследование проводили в отделении РГП «Республиканская ветеринарная лаборатория» Западно-Казахстанской области, а также в центре санитарно-эпидемиологической экспертизы Западного-Казахстана (КГСЭН МЗ РК). Микробиологический анализ смывов осуществляли в научно-исследовательском институте биотехнологии при Аграрно-техническом университете им. Жангир-хана, Западно-Казахстанская область.
Единовременно принимали во внимание требования к инкубации со сведением эпи-зоотологических данных, где комплексно по результатам патологоанатомического вскрытия и лабораторных исследований ставился диагноз на пуллороз эмбрионов кур, индюков, фазанов и цесарок.
Результаты исследования. Как видно по рисункам 1 - 4, у погибших эмбрионов, по-
известия оренбургского государственного аграрного университета
2020 ■ № 5 (85)
ражённых пуллорозом, желточный мешок был травянисто-зеленоватого цвета, плотной консистенции, инъецированный сетью кровеносных сосудов. Отмечалось ампулообразное расширение прямой кишки, заполненной газами, некроз в сердце, селезёнке, а также в почках. Желчный пузырь был увеличен в объёме, заполнен желчью густой, тягучей, тёмно-зелёного цвета. На теле эмбрионов чётко просматривалось отложение мочекислых солей.
Для планирования предварительной схемы ветеринарной профилактики пуллороза и для обеспечения надёжной защиты птицепоголовья были проанализированы показатели биологического контроля инкубации яиц кроссов Родонит 3 и Хайсекс-Браун (табл. 1 - 3).
По результатам анализа установили, что при профилактике сальмонеллёза птиц эффективны следующие меры, которые применялись на птицефабрике:
- тщательное проведение дезинфекции с обеззараживающими растворами 0,5%-ным раствором
Рис. 1 - Эмбрионы, заражённые пуллорозом
Экоцид-С в присутствии птиц на заражённых или подозреваемых участках, где размещались куры-несушки, и заключительная дезинфекция 1%-ным раствором Дексида-200;
- выявление и лечение бактерионосительных птиц эффективными действующими препаратами Макролан и Ципровет;
- проведение санитарно-гигиенических мероприятий для профилактики каждую неделю в обязательном порядке.
Соблюдение режима профилактики, тщательная ветеринарно-санитарная обработка мест размещения кур-несушек и инкубации яиц в 2009 - 2013 гг. способствовали снижению количества выхода грязного яйца на птицефабриках Республики Казахстан на 6,4 - 8,7 %.
Вывод. На основании полученных результатов исследования можно утверждать, что сражение с сальмонеллёзом птиц включает своевременное выявление подозреваемых в заражении или бактерионосительстве птиц, применение стандартных санитарно-гигиенических и терапевтических мер.
Рис. 3 - Выявление % эмбриона при пуллорозе
Рис. 2 -
Желточный мешок ярко-зелёного цвета при пуллорозе
Рис. 4
- Мочекаменные отложения у эмбриона при пуллорозе
1. Показатели биологического контроля инкубации кросса Родонит 3 и их результаты после применения эффективных методов ветеринарно-санитарных мероприятий, 2009 г.
Контрольная группа (14 партий) октябрь, ноябрь Опытная группа (14 партий) октябрь, ноябрь
шт. % (X ± Sx) шт. % (X ± Sx)
Заложено на инкубацию яиц 182360 182350
Выводимость яиц 143440 79,9 ± 0,09 150211 82,1 ± 0,08**
Отходы инкубации 28831 20,1 ± 0,09 26887 17,9 ± 0,08**
Вскрытие 10 - 11% отхода инкубации яиц 3171 2957
Неоплодотворённые яйца 1620 51,1 ± 0,78 1571 53,1 ± 0,91
Кровяное кольцо 368 11,6 ± 0,56 369 12,5 ± 0,60
Замершие 523 16,5 ± 0,66 506 17,1 ± 0,69
Задохлики 371 11,7 ± 0,57 367 12,4 ± 0,60
Эмбрионы с признаками пуллороза 289 9,1 ± 0,51 144 4,9 ± 0,39*
Примечание: здесь и далее достоверно по сравнению с контролем. * Р < 0,05; ** Р < 0,01; ***Р < 0,001.
2. Показатели биологического контроля инкубации кросса Родонит 3 в результате применения эффективных методов ветеринарно-санитарных мероприятий, 2011 г.
Контрольная группа (14 партий) октябрь, ноябрь Опытная группа (14 партий) октябрь, ноябрь
шт. % (X ± Sx) шт. % (X ± Sx)
Заложено на инкубацию яиц 181800 180760
Выводимость яиц 143440 80,9 ± 0,09 150211 83,1 ± 0,08*
Отходы инкубации 38360 19,1 ± 0,09 30549 16,9 ± 0,08*
Вскрытие 10 - 11% отхода инкубации яиц 3850 3015
Неоплодотворенные яйца 1982 51,5 ± 0,75 1619 53,7 ± 0,83
Кровяное кольцо 446 11,6 ± 0,48 377 12,5 ± 0,53
Замершие 674 17,5 ± 0,57 546 18,1 ± 0,63
Задохлики 489 12,7 ± 0,5 404 13,4 ± 0,55
Эмбрионы с признаками пуллороза 259 6,7 ± 0,40 69 2,3 ± 0,27***
3. Показатели биологического контроля инкубации кросса Хайсекс-Браун и их результаты после применения эффективных методов ветеринарно-санитарных мероприятий, 2013 г.
Контрольная группа (14 партий) октябрь, ноябрь Опытная группа (14 партий) октябрь, ноябрь
шт. % (X ± Sx) шт. % (X ± Sx)
Заложено на инкубацию яиц 180840 180480
Выводимость яиц 151182 83,6 ± 0,08 153588 85,1 ± 0,08***
Отходы инкубации 29658 16,4 ± 0,08 26892 14,9 ± 0,08***
Вскрытие 10 - 11% отхода инкубации яиц 2995 2690
Неоплодотворённые яйца 1593 53,2 ± 0,91 1455 54,1 ± 0,96
Кровяное кольцо 353 11,8 ± 0,58 330 12,3 ± 0,63
Замершие 530 17,7 ± 0,69 481 17,9 ± 073
Задохлики 386 12,9 ± 0,61 371 13,8 ± 0,66
Эмбрионы с признаками пуллороза 133 4,4 ± 0,37 53 1,9 ± 0,26***
5. Рахманин П.П., Куликовский А.В. Эпизоотическое состояние и меры борьбы с сальмонеллёзом // Ветеринария. 1989. № 7. С. 40 - 44.
6. Борьба с сальмонеллёзом: роль ветеринарии и пищевой гигиены // Доклад Комитета экспертов ВОЗ. Женева: ВОЗ, 1991. 83 с.
7. Попова П.П., Ременцова М.М., Ким А.А. Экология сальмонелл и эпидемиология сальмонеллёзов. Алма-Ата: Изд. Наука, 1987. 126 с.
8. Эпизоотология, вопросы природной очаговости и профилактики сальмонеллёзов: методич. рекоменд. / Н.Ж. Жанузаков, Н.П. Гончаров, П.П. Попова [и др.]. Караганда, 1981. 22 с.
Литература
1. Инфекционные болезни животных. Учебник / под ред. А.А. Сидорчука. М.: «Колос», 2007. С. 482 - 485.
2. Бакулин В.А. Болезни птиц. СПб., 2006 С. 285 - 295.
3. Болезни птиц: учебное пособие. 2-е изд. стер. / Б.Ф. Бессарабов, И.И. Мельникова, Н.К. Сушкова [и др.]. СПб.: Издательство «Лань», 2009. С. 220 - 229.
4. Старосельский А. Проблемы и пути решения сальмонеллёзной инфекции в современном птицеводстве //Ветеринария. 2010. № 2. С. 13 - 15.
известия оренбургского государственного аграрного университета
2020 ■ № 5 (85)
9. Мезенцев С.В. Обеспечение безопасности продукции птицеводства по сальмонеллёзу // Ветеринария. 2002. № 7. С. 12 - 14.
10. Куликовский А.В. Профилактика пищевых токсикоинфекций человека и концепция ХАССП // Ветеринария. 2011. N° 1. С. 19 - 23.
11. Онищенко И.С. Фенотипические свойства и эпизоотологи-ческая значимость Е.соН 0157:Н7: дис. ... канд. ветеринар. наук. Новосибирск, 2008. 128 с.
12. Нуралиев Е.Р., Кочиш И.И. Пуллороз - сальмонеллёз птиц в приусадебных хозяйствах как природный резервуар возбудителя болезни для промышленного птицеводства // Аграрный научный журнал. 2017. № 11. С. 24 - 29.
13. Аганичева А.А., Алексеева С.А. Предынкубационная обработка куриных яиц отечественными стимуляторами // Нива Поволжья. 2013. № 4 (29). С. 68 - 72.
14. Нуралиев Е.Р. Разработка эффективной ветеринарно-санитарной профилактики для промышленной птицефабрики: дис. ... канд. биол. наук. М., 2015. 173 с.
Нуралиев Ерис Рахимгалиевич, кандидат биологических наук, главный ветврач Западно-Казахстанский инновационно-технологический университет; научно-производственный учебный центр
Республика Казахстан, 090000, Западно-Казахстанская область, г. Уральск, п. Деркул, ул. Молодёжная, 5а Е-mail: Nuraliev-71@mail.ru.
The revealing of pullorum disease in poultry embryos by biological control of incubatory eggs
Nuraliev Yeris Rakhimgalievich, Candidate of Biologу, chief veterinarian
West Kazakhstan Innovation and Technological University; research and production training center 5a, Molodezhnaya St., Derkul village, Uralsk, West Kazakhstan region, 090000, Republic of Kazakhstan E-mail: Nuraliev-71@mail.ru.
The article presents the results of industrial experiments to identify pullorosis-salmonellosis in chicken embryos. Autopsy of unhatched incubation eggs of chickens revealed that in 15 - 18% of dead embryos, the contents of the yolk sac had a dense consistency, a grassy green color, and an injected network of blood vessels. The gallbladder in diseased embryos was enlarged several times and filled with a thick, viscous, dark green bile. On the body of embryos and allantois membranes, the deposition of uric acid salts is recorded. In the dead embryos, ampoulelike expansion of the rectum filled with gases and uric acid salts was observed. It is shown that the fight against salmonellosis of birds includes the implementation of organizational, sanitary-hygienic and therapeutic measures, serological identification of suspected birds of infection or bacterial carrying. In these cases, the only way out is the rational use of reliable and safe antibacterial agents, primarily antibiotics.
Key words: pullorosis, chicken embryos, biological control, hatching eggs.
-♦-
