CC BY
76
УДК 574.24:57.084.1
ВЫРАЩИВАНИЕ ДОМИНИРУЮЩИХ ВИДОВ МИКРОВОДОРОСЛЕЙ В СЕВЕРО-ВОСТОЧНОЙ ЧАСТИ ЧЁРНОГО МОРЯ
Лифанчук Анна Викторовна
Южное отделение Института океанологии имени П.П. Ширшова РАН, Геленджик, Россия Н(апс1тк. аппа&таП. ги
Приводятся данные по изучению влияния добавок элементов минерального питания на структуру фитопланктонного сообщества в северо-восточной части Чёрного моря в различные сезоны. Экспериментальные исследования показали, что увеличение биомассы микроводорослей при культивировании в накопительном режиме происходит при совместной добавке азота и фосфора. В весеннем сезоне можно получить биомассы ЕтШата /тх/еуч, РзешЗо-пИгзсЫа р$еис1ос1еисаИ881та, Скае1осего$ сшг/ле/гм и Бкек^пета соя1а1ит, в летнем —Е. 1тх1еуч, С. сшгиейм, Р.р$еис1ос1еисаИ881та, 8.соя1а1ит, Тка\а$$10пета пИг8сЫо1с1е8, Ьер1осуНпсЬш /Латси8,Оас1л’ио8о1еп^'а^Няятия, РгоЪозЫа а!а1а, Р$еис{о$о\ета са1саг-ау\$, в осеннем - С. сшгиейм, 8.соя1а1ит, Тк. пИг8сЫо1с1е8, Ь. /Латсш, £>. fragilissimus
Ключевые слова: ФИТОПЛАНКТОН, БИОМАССА, ЭЛЕМЕНТЫ МИНЕРАЛЬНОГО ПИТАНИЯ, ДИАТОМОВЫЕ ВОДОРОСЛИ, КОККОЛИТОФОРИДЫ
UDC 574.24:57.084.1
GROWING DOMINANT SPECIES OF MICRO ALGAE IN NORTH EASTERN BLACK SEA
Lifanchuk Anna Viktorovna Southern Branch of P.P. Shirshov Institute of Oceanology, Gelendjik, Russia lifanchuk. annaUhmail. ru
In this article we present data on the effect of addition of mineral nutrition elements in the structure of the phytoplankton community in the north-eastern part of the Black Sea in the different seasons. Experimental studies have shown that the increase in biomass of microalgae occurs at the simultaneous addition of nitrogen and phosphorus in the accumulative cultures. In the spring can get biomass Emiliania huxleyi, P.pseudodelicatissima, Chaetoceros curvisetus and Skeletonema costatum, in the summer — E. huxleyi, C. curvisetus, P.pseudodelicatissima, S.costatum, Thalassionema nitzschioides, Leptocylindrus danicus, Dactyliosolen fragilissimus, Proboscia alata, Pseudosolenia calcar-avis, in the autumn - C. curvisetus, S.costatum, Th. nitzschioides, L. danicus, D. fragilissimus
Keywords: PHYTOPLANKTON, BIOMASS, MINERAL NUTRITION, DIATOMS,
COC С OLITHOPHORE S
Введение
Важным аспектом аквакультуры одноклеточных водорослей является использование биомассы последних в качестве корма в аквакультуре беспозвоночных. На примере развития работ по культивированию микроводорослей - источников корма в аквакультуре проследим, как изменялась технология выращивания и вместе с ней конкретизировались целевые установки [1].
В настоящее время культивирование беспозвоночных включает в себя два этапа: получение молоди в регулируемых условиях и дальнейшее её выращивание на плантациях в море [2]. Необходимость добавления морских микроводорослей в корм молоди беспозвоночным была обоснована, когда Ватанабе и Экман [3] обнаружили, что пресноводные водоросли бедны полиненасыщенными жирными
кислотами, которые являются эссенциальными для потребителей. Практика, экспериментального культивирования моллюсков накопила значительный опыт использования морских одноклеточных водорослей [4,5,6]. Разные виды водорослей давали неодинаковый эффект при кормлении ими моллюсков [2,7]. Было показано, что химический состав монокультур водорослей существенно влияет на метаболизм моллюсков [8,9]. Обнаружен синергический эффект при переходе от монокультур к смешанным культурам [6]. Как при проведении небольших экспериментальных работ, так и при освоении крупномасштабных проектов марикультуры беспозвоночных применялись массовые монокультуры одноклеточных водорослей [10,11]. Часто монокультуры заражались другими видами, что требовало разработки профилактических мер.
При создании биотехнологии производства биомассы одноклеточных водорослей в качестве корма существует два метода:
1) В производстве используют культуру известных одноклеточных водорослей, поддержание чистоты которых всегда проблематично;
2) Получение биомассы водорослей на основе естественного фитопланктона путем добавления элементов минерального питания.
Второй метод наиболее простой с технической точки зрения и менее затратный. Для реализации этого метода нужно соблюдать следующие условия:
а) нужно знать исходное состояние фитопланктона на время проведения работ;
б) необходимо изучить влияние добавки элементов минерального питания на структуру фитопланктонного сообщества.
Но не все морские микроводоросли могут служить кормом в аквакультуре. Диатомея Pseudo-nitzschici pseudodelicatissima входит в список токсичных водорослей Азовского и Черного морей. Её цветение причиняет ущерб популяциям морских млекопитающих и птиц, и служит существенной причиной экономических потерь из-за его воздействия на производительность моллюсков и планктонноядньтх рыб [12,13,14,15,16]. Поэтому необходимо знать условия, способствующие
развитию данного вида.
Кокколитофориды используют в нанотехнологии. Так например, способность кокколитофорид образовывать дополнительный естественный защитный слой (кокколиты) вдохновила ученых на разработку новой стратегии доставки лекарственных препаратов. Примененная ими «стелс»-технология делает микроскопические полимерные пузырьки, содержащие жидкие лекарственные вещества, невидимыми для защитных систем организма [17].
В настоящей работе выявляются сезонные комплексы фитопланктона и приводятся данные по влиянию добавок азота и фосфора на структуру фитопланктонного сообщества в северо-восточной части Чёрного моря в различные сезоны.
Материалы и методы
С весны 2009 до ноября 2012 года проводили эксперименты с накопительной культурой природной популяции фитопланктона в береговой лаборатории ЮО ПО РАН (г. Геленджик). Объектом исследования служила смешанная культура водорослей, полученная на основе природного сообщества фитопланктона. Пробы были собраны с борта малого научно-исследовательского судна «Ашамба». Отбор проб производился с горизонта 0 м на станции стандартного разреза от Голубой бухты к центру моря. Станция располагалась над глубиной 50 м (район срединного шельфа). Выращивание проводили в колбах Эрленмейера емкостью 500 мл (объем среды 200 мл) в термолюминостате, где температура среды соответствовала температуре морской воды в месте отбора проб. Интенсивность падающего света составляла 58-61 мкмоль/м2 ФАР, свето-темновой режим - 16:8.
Идентификацию видов и подсчет числа клеток проводили ежедневно на световом микроскопе в счетной камере Ножотта объемом 0,05 мл. Биомассу рассчитывали методом «истинного объема» [18], при этом использовались данные собственных измерений. На основе найденных объемов клеток водорослей и учитывая их удельный вес, нами были определены средние веса всех встречаемых
клеток фитопланктона. Далее, умножая средние веса на численность клеток, получали их биомассу. Опыты ставили с применением метода планирования экспериментов, которые позволяют получать уравнения регрессии, отражающие действие выбранных факторов на изучаемый параметр [19]. В экспериментах применяли периодический (накопительный) режим культивирования. Добавку элементов минерального питания (нитратов в форме КЖ)з и фосфатов в форме ЫагНРО^) производили в начале эксперимента по единой схеме, представленной в таблице №1.
Таблица 1. План экспериментов по изучению влияния добавок элементов минерального питания на продукционные свойства.___________________
Колба № Нитраты К Ы03 12,1-14,3 мкМ Фосфаты №2НР04 0,81-1 мкМ
1 - -
2 + -
3 - +
4 + +
В результате экспериментов получали кривую накопления клеток (или биомассы), для расчета уравнений регрессии использовалась значение этих параметров в стационарной фазе роста [1].
Результаты
Основными доминирующими видами диатомовых водорослей в
экспериментах за период исследования были 1)ас1уИо,чо1еп fragilissimus, (ЪсШосегон
сигл>18еЫ8, 8ке1е1опета со.ч/аШт, ТИа1алхюпета п'игнсЫоШен, Рнеис1о-пИгьсИш
рне ш1ос1е 11 с а! /л, V 1 т а, I,ер1()су1т(1гт (1атст, РгоЪоъыа акйа, Р ъеи^ъоЫта
са1саг-ау1я. Из кокколитофорид преобладала ПтШата Ьихку! (Табл.2).
Таблица 2 - Предельные биомассы доминирующих видов микроводорослей в различные сезоны 2009-2012 гг при одновременной добавке азота и фосфора.
Виды Сезон Биомасса, мг/м3
Кокколитофориды
Етіїіапіа Иихіеуі Весна 1800,00±84,47
Лето 16920,00±1297,73
Диатомовые водоросли
1)ас1уН(т>!еп fragilissimus Лето 55661,79±4283,25
Осень 4010,45±240,79
СИае№сего$ curvi.se/us Весна 36741,00±3559,14
Лето 32643,30±2435,79
Осень 3800,47±236,63
ЗкеШопета costatum Весна 10990,73±2634,87
Лето 16996,88±2102,08
Осень 5324,33±335,62
ТИа1а88юпета пЫгзсИШёез Лето 3727,04±185,21
Осень 1438,60±98,11
ЬерЮсуИпёгт сЬтст Лето 29117,55±2871,57
Осень 8219,47±468,46
РгоЪо$&а аШа Лето 4491,08±383,22
1).\еис1о.\()1егпа са1саг-а\ч.\ Лето 7226,60±81,41
Рзеиёо-пЫгзсЫа рзеиёоёеИсайззта Весна 48707,20±2571,26
Лето 10063,04±682,02
Кокколитофорида ЕтШата Иих1еу1 присутствовала в лидирующем комплексе фитопланктонного сообщества северо-восточной части Черного моря весной и летом. Максимальная биомасса была в летнем сезоне (16920±1297,73 мг/м3) при повышении концентраций элементов минерального питания в накопительной культуре. В весеннем сезоне при совместной добавке азота и фосфора биомасса составила 1800,00±84,47 мг/м3. На рисунке 1 показан рост биомассы Е. Иих1еу1 в накопительной культуре водорослей при различных добавках элементов минерального питания. Влияние совместной добавки азота и фосфора ведет к интенсивному росту биомассы Е. Них1еу1. Добавки азота и фосфора по отдельности не влияли на рост биомассы. Эти показатели были ниже контрольного опыта без добавления элементов.
Рисунок 1. Рост биомассы ЕтШата Иих1су1 в разных вариантах эксперимента.
Опыт проведен 1 июня 2012 г.
Диатомовая водоросль РасЫюноЫп Р'ащШъипин доминировала в экспериментах в летние и осенние сезоны. Предельная биомасса вида была зафиксирована летом (55661,79±4283,25 мг/м3) в эксперименте с добавкой азота и фосфора в накопительную культуру водорослей. В осеннем сезоне в накопительной культуре с одновременной добавкой азота и фосфора биомасса составила 4010,45±240,79 мг/м3. В качестве иллюстрации приведена динамика роста биомассы I). в различных вариантах эксперимента с природной
популяцией фитопланктона северо-восточной части Черного моря (рис. 2). Из графика следует, что интенсивный рост биомассы водорослей происходит при совместной добавке азота и фосфора в накопительную культуру. Рост биомассы в колбах, в которых добавляли только один элемент минерального питания, был ниже роста биомассы в колбе без добавок биогенных элементов.
эксперимента. Опыт проведен 1 июня 2012 г.
Диатомовая водоросль СНае№сего8 сигу\ье1иь входила в лидирующий комплекс фитопланктона шельфовой зоны северо-восточной части Чёрного моря во все сезоны. Максимальная биомасса вида была зафиксирована весной -36741,00±3559,14 мг/м3. Увеличение биомассы диатомовой водоросли С. сигте/ш* независимо от сезона происходило в опытах с добавлением азота и фосфора. Предельная биомасса для осеннего сезона составила 3800,47±236,63 мг/м3, а для летнего - 32643,30±2435,79 мг/м3.
Диатомовая водоросль БкеШопета costatum присутствовала в фитопланктоне в течение всего года. Максимальное накопление биомассы происходило летом (16996,88±2102,08 мг/м3) в экспериментах с совместной добавкой элементов минерального питания. В весенний период максимальный рост биомассы составил 10990,73±2634,87 мг/м3, а осенью - 5324,33±335,62 мг/м3.
Диатомея ТИа1а**юпета присутствовала в экспериментах с
накопительной культурой водорослей в летне-осеннем сезоне. Как показали эксперименты, интенсивный рост биомассы происходит при совместной добавке азота и фосфора в накопительную культуру микроводорослей. Максимальные значения биомассы диатомея Т. ni.tzschioi.des достигала в летнем сезоне -
3727,04±185,21 мг/м3. Осенью предельная биомасса составляла 1438,60±98,11мг/м3.
Диатомовая водоросль Leptocvlindrus danicus доминировала в фитопланктонном сообществе в летний и осенний периоды года. К интенсивному росту биомассы вида приводила совместная добавка азота и фосфора в накопительную культуру. Летом биомасса L. danicus была максимальной -29117,55±2871,57 мг/м3. Осенью биомасса составила 8219,47±468,46 мг/м3.
Для получения продукции крупноклеточной диатомеи Proboscia alata необходима совместная добавка элементов минерального питание в летнем сезоне. В экспериментальных исследованиях максимальная биомасса P. alata составила 4491,08±383,22 мг/м3.
Другая крупноклеточная диатомовая водоросль - Pseudosolenia calcar-avis показала прирост биомассы в летнем сезоне в колбе с добавкой фосфора (7226,60±81,41 мг/м3).
Диатомея Pseudo-nitzschia pseudodelicatissima доминировала весной и летом. Максимальная биомасса вида была зафиксирована весной (28.05.2010) в эксперименте с добавкой азота и фосфора в накопительную культуру и составила 48707,20±2571,26 мг/м3. В летнем сезоне рост биомассы диатомеи Р. pseudodelicatissima происходил при совместной добавке элементов минерального питания в природную популяцию фитопланктона (10063,04±682,02 мг/м3).
Обсуждение
Диатомовые водоросли являются перспективным кормовым объектом как для личинок и молоди беспозвоночных. Высокое содержание белка и полиненасыщенных жирных кислот делают диатомей ценным пищевым объектом [20, 21]. Повышение содержания белка возможно только после снятия
лимитирования по азоту.
Экспериментальные исследования с накопительной культурой фитопланктона позволяют выявить лимитирующие факторы продукционного процесса в целом. Однако выявление лимитирующих факторов для каждого вида в многокомпонентном сообществе не представляется тривиальной задачей. Так было
выяснено, что для массового развития диатомеи Skeletonema costatum в устричном питомнике необходима питательная среда F/2, содержащая 30 мг/л кремния, круглосуточный режим 10 клк, температура 20-22°С [22].
Наши эксперименты показывают, что для повышения биомассы всех диатомовых водорослей в фитопланктонном сообществе необходимо одновременное повышение концентраций азота и фосфора в среде. Это указывает на то, что существующие концентрации этих веществ в море недостаточны для интенсивного роста этих водорослей. Одновременная добавка азота и фосфора, в которой отношение этих веществ близко к соотношению Редфилда, снимает лимитацию ростовых процессов. На это указывалось раннее в работах с фитопланктоном Черного моря [23]. Концентрация кремния не лимитирует ростовые процессы у диатомовых, поскольку в северо-восточной части Черного моря практически весь вегетационный период она достаточно высока [24]. Таким образом, только повышение концентрации двух элементов (азота и фосфора) приводит к существенному увеличению продукционного процесса.
Из экспериментальных исследований с природной популяцией фитопланктона следует, что доминирующие виды диатомовых водорослей, Skeletonema costatum и Chaetoceros curvisetus присутствовали в опытах в течение всего периода исследований, Pseudo-nitzschia pseudodelicatissima - летом и осенью. Диатомеи Dactyliosolen fragilissimus, Thalassionema nitzschioides и Leptocylindrus danicus встречались летом и осенью. Крупноклеточные диатомеи Proboscia alata и Рseudosolenia calcar-avis наблюдались только в летнем сезоне. Интенсивное развитие диатомей происходило при совместном добавлении азота и фосфора в накопительную культуру микроводорослей. У водорослей D. fragilissimus, Т. nitzschioides, L. danicus, P. alata, P. calcar-avis и S. costatum максимальный прирост биомассы был летом. Для P. pseudodelicatissima максимальное накопление биомассы происходило весной, а для С. curvisetus - осенью. Эти виды почти всегда входят в доминирующий комплекс фитопланктона в соответствующий период [25].
Кокколитофорида Emiliania huxleyi доминировали в фитопланктонном
сообществе северо-восточной части Черного моря весной и летом. Для получения её максимальной биомассы необходимо совместное добавление элементов минерального питания в начале июня. Именно в этот период этот вид доминирует в фитопланктонном сообществе, доля его превышает 90% по биомассе [23]. В другие сезоны рост кокколитофорид стимулирует добавка только фосфора [25].
Выводы
С помощью экспериментальных исследований удалось выявить доминирующие виды фитопланктона северо-восточной части Чёрного моря в разные сезоны года и определить условия их оптимального выращивания:
1. Весной доминирующими видами диатомей являются Chaetoceros curvisetus, Pseudo-nitzschia pseudodelicatissima и Skeletonemci cos latum; летом - С. curvisetus, S.costatum, P. pseudodelicatissima, Thalassionema nitzschioides, Leptocylindrus danicus, Dactyliosolen fragilissimus, Proboscia alata, Pseudosolenia calcar-avis; осенью - С. curvisetus, S. costatum, T. nitzschioides, L. danicus, D. fragilissimus. Весной и летом в фитопланктонном сообществе наиболее вероятно получение интенсивной культуры кокколитофориды Emiliania huxleyi.
2. Прирост биомассы диатомовых водорослей происходит при совместной добавке азота и фосфора в накопительную культуру фитопланктона. Для разных сезонов степень увеличения биомассы одних и тех же видов неодинакова. Весной биомасса Skeletonema costatum увеличивается в 3 раза, для Chaetoceros curvisetus - в 55 раз, для Pseudo-nitzschia pseudodelicatissima - более чем в 38 раз. В летнем сезоне биомасса Dactyliosolen fragilissimus повышается в 9 раз, P. pseudodelicatissima - в 2 раза, С. curvisetus - в 11 раз, S. costatum - в 70 раз, Thalassionema nitzschioides - в 38 раз, Leptocylindrus danicus - более чем в 440 раз. Для крупноклеточных диатомей Proboscia alata и Pseudosolenia calcar-avis подъема биомассы не происходило. В осеннем сезоне при добавке элементов минерального биомасса С. curvisetus увеличивается в 4 раза, S. costatum - более чем в 190 раз, Т. nitzschioides - в 11 раз, L. danicus - более чем в 60 раз, D. fragilissimus - более чем в 20 раз.
Биомасса кокколитофорид увеличивается в 9 раз при одновременной добавке азота и фосфора только весной и в 3 раза в начале летнего периода.
Эти данные могут быть использованы при разработках нанотехнологий и выращивании корма для беспозвоночных в аквакультуре.
Список литературы
1. Силкин В.А., Хайлов К.М. Биоэкологические механизмы в аквакультуре. Л.: Наука,
1988. 230 с.
2. Persoone G. Mass culture of algae: a bottleneck in the nursery culturing of molluscs / Persoone G., Claus C. //J. Z. W. O. 1980. Vol. 11. P. 265-285.
3. Watanabe T. Lipids and fatty acids of the American (Crassostrea virginica) and European flat (Ostrea edulis) oysters from a common habitat, and after one feeding with Dicrateria inomata or Isochrysis galbana / Watanabe Т., AckmanR.G. // J. Fish. Res. Bd. Can. 1974. Vol. 31. P. 403-409.
4. Walne P. R. Growth rates and nitrogen and carbon hydrate contents of juvenile clams, Saxidomus giganteus, for three species of algae / J. Fish. Res. Bd. Can. 1974. Vol. 30. P. 1825-1830.
5. Mann R. Growth of six species of bivalve mollusscs in a waste recycling aquaculture system /MannR., Ryther J. // Aquaculture. 1977. Vol. 11. P. 231-245.
6. Epifanio С. E. Growth in bivalve mollusscs: nutritional effect of two or more species of algae in diet fed to the American oyster Crassostrea virginica and the hard clam Mercenaria mercenaria // Aquaculture. 1979. Vol. 18. P. 1-12.
7. Tenore K. R. Comparison of rate of feeding and biodeposition on the american oyster, Crassosterea virginica Gmelin, fed different species of phytoplankton / Tenore K. R., Dunstan W. M. // J. Exper. Mar. boil. Ecol. 1973. Vol. 12. P. 19-26.
8. Flaak A. R. Dietary protein levels and growth of the oyster Crassostrea Virginia / Flaak A. R., Epifanio С. E.// Mar. Boil. 1978. Vol. 45. P. 157-163.
9. Gallager S.M. The effect of varying carbon nitrogen ratio in the phytoplankter Thallassiosira pseudonana (3H) on its food value to the bivalve Tapes japonica / Gallager S.М., Mann R. // Aquaculture. 1981. Vol. 26. P. 95-105.
10. Ansell A. D. Studies on the culture of Phaeodactylum. II. The growth of Phaeodactylum and other species in outdoor Tanks / Ansell A. D., Raymont J. E. G., Lander K. F. et al. // Limnol. Oceanogr. 1963. N8. P. 184-206.
11. Witt U. Production of Nannochloris spec. (Chlorophyceae) in Jargescale outdoor tanks and its use as a food organism in marine aquaculture / Witt U., Koske P. H., Kuhlmann D. et al. // Aquaculture. 1981. Vol. 23. P. 171-181.
12. Fritz L. An outbreak of domoic acid poisoning attributed to the pennate diatom Pseudonitzschia australis / Fritz L., Quilliam M. A., Wright J.L.C., Beale A. М., Work T.M. // J Phycol.1992. N 28. P. 439-442.
13. Horner R.A. Retention of domoic acid by Pacific Razor Clams, Siliqua-patula (Dixon, 1789) -preliminary study / Horner R.A., Kusske M.B., Moynihan B.P., Skinner R.N., Wekell J.C. // J Shellfish Res. 1993. N12. P. 451-456.
14. Beltran A. S. Sea bird mortality at Cabo San Lucas, Mexico: Evidence that toxic diatom blooms are spreading / Beltran A.S., Palafox-Uribe М., Grajales-Montiel J., Cruz-Villacorta A., Ochoa J.L. // Toxicon. 1997. N 35. P. 447-453.
15. Scholin C.A. Mortality of sea lions along the central California coast linked to a toxic diatom bloom / Scholin CA, Gulland F, Doucette GJ, Benson S and 22 others //Nature. 2000. N 403. P. 80-84.
16. Wekell J.C. A study of spatial variability of domoic acid in razor clams: recommendations for resource management on the Washington coast / Wekell J.C., Trainer V.L., Ayres D., Simons D. //
Harmful Algae. 2002. N 1. P. 35-43.
17. Rong Chen. Polymer vesicles with a colloidal armor of nanoparticles / Rong Chen, Daniel J. G. Pearce, Sara Fortuna, David L. Cheung, Stefan A.F. Bon. // American Chemical Society. 2011. Vol. 133. №7. P. 2151-2153.
18. Киселев И.А. Планктон морей и континентальных водоемов. Том 1. Л.: Наука, 1969.
657с.
19. Максимов В.Н., В.Д. Федоров. Применение методов математического планирования эксперимента при отыскании оптимальных условий культивирования организмов. М.: Изд-во МГУ, 1969. 128 с.
20. Viso A. Fatty acids from 28 marine microalgae / Viso A., Marty J.C. // Phytochemistry. 1993. Vol. 34. №6. P. 1521-1523.
21. Whyte J.C. Biochemical composition and energy content of six species of phytoplankton used in mariculture of bivalve // Aquaculture. Vol. 60. №3. P. 231-241.
22. Ладыгина Л.В. Оптимизация условий культивирования диатомовой микроводоросли Sceletonema costatum Cleve - корма для двустворчатых моллюсков // Морська гідробіологія. 2010. №3. С.137-140.
23. Силкин В.А. Рост кокколитофориды Emiliania huxleyi (Lohmann) of Hay et Mohler в северо-восточной части Черного моря, лимитированный концентрацией фосфора / Силкин В.А., Паутова Л. А., Микаэлян А.С. // Альгология. 2009. Т. 19. №2. С. 135-144.
24. Yakushev E.V. Seasonal and interannual variability of hydrology and nutrients in the Northeastern Black Sea / Yakushev E.V., Arhipkin, V.S., Antipova, E.A., Kovaleva, I.N., Chasovnikov, V.K., Podymov, O.I. // Chemistry and Ecology. 2007. № 23. P. 29-41.
25. Силкин В. А. Физиологические механизмы регуляции структуры морских фитопланктонных сообществ / Силкин В. А., Паутова Л.А., Лифанчук А.В. // Физиология растений. 2013. Т. 60. №4. С. 574-581.
References
1. Silkin V.A., Hajlov K.M. Biojekologicheskie mehanizmy v akvakul'ture. L.: Nauka, 1988. 230
s.
2. Persoone G. Mass culture of algae: a bottleneck in the nursery culturing of molluscs / Persoone G., Claus C. //J. Z. W. O. 1980. Vol. 11. P. 265-285.
3. Watanabe T. Lipids and fatty acids of the American (Crassostrea virginica) and European flat (Ostrea edulis) oysters from a common habitat, and after one feeding with Dicrateria inomata or Isochrysis galbana / Watanabe T., AckmanR.G. // J. Fish. Res. Bd. Can. 1974. Vol. 31. P. 403-409.
4. Walne P. R. Growth rates and nitrogen and carbon hydrate contents of juvenile clams, Saxidomus giganteus, for three species of algae / J. Fish. Res. Bd. Can. 1974. Vol. 30. P. 1825-1830.
5. Mann R. Growth of six species of bivalve mollusscs in a waste recycling aquaculture system /MannR., Ryther J. // Aquaculture. 1977. Vol. 11. P. 231-245.
6. Epifanio C. E. Growth in bivalve mollusscs: nutritional effect of two or more species of algae in diet fed to the American oyster Crassostrea virginica and the hard clam Mercenaria mercenaria // Aquaculture. 1979. Vol. 18. P. 1-12.
7. Tenore K. R. Comparison of rate of feeding and biodeposition on the american oyster, Crassosterea virginica Gmelin, fed different species of phytoplankton / Tenore K. R., Dunstan W. M. // J. Exper. Mar. boil. Ecol. 1973. Vol. 12. P. 19-26.
8. Flaak A. R. Dietary protein levels and growth of the oyster Crassostrea Virginia / Flaak A. R., Epifanio C. E.// Mar. Boil. 1978. Vol. 45. P. 157-163.
9. Gallager S.M. The effect of varying carbon nitrogen ratio in the phytoplankter Thallassiosira
pseudonana (ЗН) on its food value to the bivalve Tapes japonica / Gallager S.М., Mann R. // Aquaculture. 1981. Vol. 26. P. 95-105.
10. Ansell A. D. Studies on the culture of Phaeodactylum. II. The growth of Phaeodactylum and other species in outdoor Tanks / Ansell A. D., Raymont J. E. G., Lander K. F. et al. // Limnol. Oceanogr. 1963. N8. P. 184-206.
11. Witt U. Production of Nannochloris spec. (Chlorophyceae) in Jargescale outdoor tanks and its use as a food organism in marine aquaculture / Witt U., Koske P. H., Kuhlmann D. et al. // Aquaculture. 1981. Vol. 23. P. 171-181.
12. Fritz L. An outbreak of domoic acid poisoning attributed to the pennate diatom Pseudonitzschia australis / Fritz L., Quilliam M. A., Wright J.L.C., Beale A. М., Work T.M. // J Phycol.1992. N 28. P. 439-442.
13. Horner R.A. Retention of domoic acid by Pacific Razor Clams, Siliqua-patula (Dixon, 1789) -preliminary study / Horner R.A., Kusske M.B., Moynihan B.P., Skinner R.N., Wekell J.C. // J Shellfish Res. 1993. N12. P. 451-456.
14. Beltran A.S. Sea bird mortality at Cabo San Lucas, Mexico: Evidence that toxic diatom blooms are spreading / Beltran A.S., Palafox-Uribe М., Grajales-Montiel J., Cruz-Villacorta A., Ochoa J.L. // Toxicon. 1997. N 35. P. 447-453.
15. Scholin C.A. Mortality of sea lions along the central California coast linked to a toxic diatom bloom / Scholin CA, Gulland F, Doucette GJ, Benson S and 22 others //Nature. 2000. N 403. P. 80-84.
16. Wekell J.C. A study of spatial variability of domoic acid in razor clams: recommendations for resource management on the Washington coast / Wekell J.C., Trainer V.L., Ayres D., Simons D. // Harmful Algae. 2002. N 1. P. 35-43.
17. Rong Chen. Polymer vesicles with a colloidal armor of nanoparticles / Rong Chen, Daniel J. G. Pearce, Sara Fortuna, David L. Cheung, Stefan A.F. Bon. // American Chemical Society. 2011. Vol. 133. №7. P. 2151-2153.
18. Kiselev I.A. Plankton morej i kontinental'nyh vodoemov. Tom 1. L.: Nauka, 1969. 657s.
19. Maksimov V.N., V.D. Fedorov. Primenenie metodov matematicheskogo planirovanija jeksperimenta pri otyskanii optimal'nyh uslovij kul'tivirovanija organizmov. М.: Izd-vo MGU, 1969. 128 s.
20. Viso A. Fatty acids from 28 marine microalgae / Viso A., Marty J.C. // Phytochemistry. 1993. Vol. 34. №6. P. 1521-1523.
21. Whyte J.C. Biochemical composition and energy content of six species of phytoplankton used in mari culture of bivalve// Aquaculture. Vol. 60. №3. P. 231-241.
22. Ladygina L.V. Optimizacija uslovij kul'tivirovanija diatomovoj mikrovodorosli Sceletonema costatum Cleve - korma dlja dvustvorchatyh molljuskov // Mors'ka gidrobiologija. 2010. №3. S. 137-140.
23. Silkin V.A. Rost kokkolitoforidy Emiliania huxleyi (Lohmann) of Hay et Mohler v severo-vostochnoj chasti Chemogo morja, limitirovannyj koncentraciej fosfora / Silkin V.A., Pautova L.A., Mikajeljan A.S. //Al'gologija. 2009. T. 19. №2. S. 135-144.
24. Yakushev E.V. Seasonal and interannual variability of hydrology and nutrients in the Northeastern Black Sea / Yakushev E.V., Arhipkin, V.S., Antipova, E.A., Kovaleva, I.N., Chasovnikov, V.K., Podymov, O.I. // Chemistry and Ecology. 2007. № 23. P. 29-41.
25. Silkin V.A. Fiziologicheskie mehanizmy reguljacii struktury morskih fitoplanktonnyh soobshhestv / Silkin V.A., Pautova L.A., Lifanchuk A.V. // Fiziologija rastenij. 2013. T. 60. №4. S. 574-581.
