CC BY
55
ОРИГИНАЛЬНАЯ СТАТЬЯ
-Э-
Выделение дерматофитов с инструментов для ухода за шерстью в ветеринарных клиниках и парикмахерских салонах для животных
Цели: известно, что такие предметы, как щетки и машинки для стрижки шерсти, могут служить потенциальными источниками распространения дерматофитных инфекций между домашними животными. Данное исследование проведено с целью оценки такого риска и заключалось в исследовании инструментов для ухода за шерстью на наличие жизнеспособных дерматофитов.
Методы: для указанной цели было исследовано 235 предметов ухода за шерстью и смывов с поверхностей 14 столов для стрижки из 41 ветеринарной клиники и 3 парикмахерских салонов для животных.
Результаты: с двух лезвий машинок для стрижки, полученных из одной ветеринарной клиники, был выделен Trichophyton tonsurans, а с трех лезвий машинок для стрижки и одной зубной щетки, взятых из другой клиники - Microsporum canis.
Клиническое значение: результаты данного исследования показывают, что принятые в настоящее время протоколы дезинфекции и процедуры обработки шерсти животных в ветеринарных клиниках и салонах отвечают требованиям.
A.F. Bagcigil, S. Ikiz, N.Y Özgür and A. Ilgaz
Journal of Small Animal Practice (2010) 51, 39-42 DOI: 10.1111/j.1748-5827.2009.00856.x
ВВЕДЕНИЕ
Дерматофиты - грибковые возбудители поверхностной инфекции кожи, волос и ногтей (когтей), растущие на богатых коллагеном тканях животных и человека. Виды Microsporum и Trichophyton встречаются как у животных, так и у людей, в то время как вид Epidermophyton патогенен только для человека. От собак и кошек чаще всего выделяют M. саnis, за которыми следуют M. gypseum, и T. mentagrophytes (Mandant:^ др. 2003, Out-erbridge 2006).
Инфекционные артроспоры, присутствующие в шерсти и соскобах кожи, способны длительное время сохраняться в окружающей среде, например, M. canis остается жизнеспособным 13-18 мес в шерсти зараженной кошки, при комнатной температуре (Sparkes и др. 1994). Передача инфекции восприимчивым животным происходит при прямом контакте с зараженным животным, у которого болезнь может протекать симптоматически или бессимптомно, а также при попадании жизнеспособных артроспор из окружающей среды. К известным потенци-
альным факторам риска также относятся предметы, могущие служить источником инфекции, например, щетки, или ножницы (Mancianti and others 2003, Hnilica и др. 2006, Out-erbridge 2006).
Данное исследование проведено для определения возможных факторов риска передачи дерматофитов через предметы для ухода за шерстью; с этой целью машинки для стрижки, щетки и другое оборудование, использующееся в ветеринарных клиниках и парикмахерских салонах для животных, исследовали на присутствие каких-либо дерматофитов.
МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ
Для исследования было взято 235 предметов для ухода за шерстью из 41 ветеринарной клиники и трех парикмахерских салонов для животных, включая 134 лезвия машинок для стрижки, 67 гребней/щеток, 18 ножниц, 11 машинок для стрижки и 5 зубных щеток (использовавшихся для чистки машинок для стрижки). Также исследовали мазки с поверхности 14 столов, на которых обрабатывали животных. Участвующие в исследовании ветеринарные клиники и салоны для животных расположены в районах Стамбула с городской застройкой, где популяция домашних животных особенно высока.
Для взятия проб использовали щетки (Woodgyer 1977). Посев на грибы с лезвий, гребенок, щеток и ножниц производили, прижимая лезвия или щетину к поверхности декстроз-ного агара Сабуро (Hi-Media М063) и среды для дерматофитов (ОТМ)
о
A.F. Bagcigil и др.
(Hi-Media M188) в чашках Петри диаметром 90 мм. Для взятия мазков тампоны смачивали дистиллированной водой и проводили по поверхности машинок и столов, а затем делали посев таким же способом, как описано выше. Чашки переносили в лабораторию в течение 2-3 ч и инкубировали при 25 °С две (среда для дерматофитов) или три (агар Сабуро) недели. Чашки осматривали ежедневно на признаки роста грибов. Выделенные культуры рассматривали невооруженным глазом и под микроскопом после окраски лактофенолом синим для выявления характерных макро- и микроконидий дер-матофитов. Выделенные культуры идентифицировали на основании морфологии колоний (скорости роста, пигментации с обеих сторон) и микроскопического исследования, исследований на способность проникновения в волос и гидролизу мочевины (Quinn и др. 1999).
Одновременно с отбором проб собирали информацию о числе животных, проходящих ежемесячно через салон, методах дезинфекции и частоте случаев подозрения на грибковую инфекцию после посещения салона.
Результаты
Из 41 ветеринарной клиники в пяти ежемесячный поток животных для парикмахерских процедур был менее 10, в 19 - от 10 до 30, а в 13 -более 30 животных. В одной клинике машинки для стрижки использовались только для подготовки операционного поля. В трех клиниках парикмахерских услуг не оказывали, поэтому были собраны только образцы с гребней. В 17 клиниках для дезинфекции инструментов использовали бензалкония хлорид (Зефиран®, Сандоз), в двух - 70 % этанол, а в 9 - оба эти раствора попеременно. В 9 клиниках использовали готовые дезинфицирующие растворы для машинок в форме аэрозоля (профессиональный дезинфицирующий аэрозоль Остер®); ортофенилфенол, инертные компоненты (антивирусный и антибактериальный очиститель для машинок, Н-42, Hampton Manufacturing Company, Inc]; трикло-
зан [раствор для мытья лезвий машинок для стрижки, Kim Laube Blade Worx]), и только в двух клиниках использовался формальдегид. Из трех парикмахерских салонов, принимавших ежемесячно 20-30 животных, в двух использовался бензалкония хлорид (Зефиран®, Сандос), а в оставшемся - аэрозольные дезинфектанты [Lube N Cool, Kim Laube & Co. Inc]; этанол, 2-бутокси [Dr slick, Kim Laube & Co. Inc]).
При опросе ветеринарных врачей из 41 ветеринарной клиники и трех салонов для животных только трое сообщили о нескольких случаях подозрения на грибковые инфекции после парикмахерских процедур.
Общепринятые протоколы обработки шерсти можно кратко представить следующим образом: не допускается одновременная обработка больных и здоровых животных (в то же время или тот же день).
В одной ветеринарной клинике при посеве с трех лезвий машинок для стрижки была получена чистая культура Trichophyton tonsurans. В этой ветеринарной клинике ежемесячно принимали более 30 животных для парикмахерских услуг, а для дезинфекции использовали только 70 % этанол.
M. canis в форме чистой культуры был выделен с трех из шести лезвий машинок для стрижки и одной зубной щетки (которую использовали для чистки лезвий) из одной ветеринарной клиники. Эта клиника также ежемесячно принимала более 30 животных для парикмахерских услуг, а для стерилизации инструментов использовали формальдегид.
Обсуждение
Описаны случаи передачи дерма-тофитов через загрязненные щетки или лезвия (Adou-Bryn и др. 2004, ViguiO-Vallanet and others 2005) или другие источники, например, тряпичные игрушки (ViguiO-Vallanet и др. 2005) или загрязненную игрушечную машинку (Thomas и др. 1994). Несмотря на имеющиеся сообщения о роли предметов в передаче дерматофитоза между животными, число исследований, посвя-
щенных непосредственно данному фактору риска, ограничено. Кроме этого, для передачи имеет значение загрязнение среды, например, пола в клиниках (Mancianti and Pap-ini 1996) или помещений, где содержались животные-носители с бессимптомным течением (Mancianti и др. 2003, Iorio и др. 2007). В ходе данного исследования было отобрано 249 образцов для посева, и только из шести были выделены жизнеспособные дерматофиты. Дерматофиты выделены только из образцов, полученных из двух (из 41) ветеринарных клиник; образцы из парикмахерских салонов не содержали возбудителей дерматофитозов. Эти результаты показывают, что, несмотря на невысокую частоту выделения, при несоответствующем протоколе дезинфекции существует риск передачи дерматофитов через инструменты, например, машинки для стрижки.
Поскольку инфекционные артро-споры способны выживать в окружающей среде до 18 месяцев (Sparkes and others 1994, Marchetti и др. 2006), очень важно использовать эффективные методики дезинфекции. В одном исследовании 12 средств или компонентов для дезинфекции: гипохоло-рита, бензалкония хлорида и компонентов на основе глутарового альдегида, наиболее эффективными оказались фенольные соединения, а спирт и анионные поверхностно-активные вещества были недостаточно эффективны (Rycroft and McLay 1991). По данным Moriello и др. (2004), бытовой отбеливатель, известково-серная смесь и энилконазол были неизменно эффективны при использовании в рекомендованном разведении (1 : 10, 1 : 33 и 20 ед/л соответственно). С другой стороны, хлоргексидин (1 : 25) и Виркон® S (тройная соль калия моноперсульфата в концентрации 1 %); Antec International Ltd, Саффолк, Великобритания) были неэффективны даже в рекомендованном производителем разведении (1 : 100 и 0,85 г/94 мл соответственно). Marchetti и др. (2006) показали, что Стерамина G u.v. (10 % раствор алкилбензидаммония хлорида; Formenti Grünenthal) был
-Q~
32
Journal of Small Animal Practice • Российское издание
О
Выделение дерматофитов с инструментов для ухода за шерстью
эффективен в 97,14 % случаев, а Вир-кон-С (универсальная система; Antec International) - в 87,14 %. Согласно данному исследованию, Зефиран®, включающий бензалкония хлорид в качестве активного компонента, является наиболее распространенным дезинфектантом в ветеринарных клиниках и салонах для животных. По частоте выделения возбудителей в данном исследовании можно заключить, что принятые в настоящее время протоколы дезинфекции в клиниках эффективны и риск передачи заболевания через инструменты низок.
Многие дезинфектанты обладают фунгицидными свойствами, но в некоторых случаях не проявляют этот эффект, так как неспособны проникать в стержень волоса или инактивируются в присутствии органических веществ. Таким образом, при высокой вероятности обсеменения рекомендуется очищать оборудование механически для снижения концентрации спор. Это повышает эффективность любых дезинфектантов. В клиниках, на базе которых проводилось настоящее исследование, для очистки использовали зубные щетки. В большинстве клиник использовалась одна машинка для стрижки и набор лезвий разного размера. Очень важно хранить все лезвия в отдельных закрытых коробках во избежание перекрестного обсеменения. Животных с подозрением на дермато-фитоз следует стричь или обрабатывать в отдельном помещении, лучше в конце рабочего дня. Каждый дезинфектант используется в своем соответствующем разведении, установленном лабораторными исследованиями; важно использовать каждое средство в рекомендованном разведении, соблюдая способ применения и длительность обработки. И, наконец, авторы предлагают плановое микологическое ис-
следование оборудования для ухода за шерстью в качестве лучшего способа выявления каких-либо возможных недостатков в протоколах дезинфекции.
В заключение, авторы считают, что в клиниках и салонах для животных необходимо регулярно проводить исследование на наличие дерматофитов и принимать соответствующие меры предосторожности прежде, чем проблема вырастет до значительных размеров.
Литература
ADOU-BRYN K.D., ASSOUMOU A., HADDAD R.N., AKA B.R. & OUHON J. (2004) Epidemiology of tinea capitis in Abidjan, Cote d’Ivoire. MOdecine tropicale: revue du Corps de santO colonial 64, 171-175
BRILHANTE R.S.N., CORDERIO R.A., GOMES J.M., SIDRIM J.J.C. & ROCHA M.FG. (2006) Canine dermato-phytosis caused by an anthropophilic species: molecular and phenotypical characterization of Trichophyton tonsurans. Journal of Medical Microbiology 55, 1583-1586 CHERMETTE R., FERREIRO L. & GUILLOT J. (2008) Dermatophytoses in animals. Mycopathologia 166, 385-405
HNILICA K.A., MAY E.R., SARGENT S. & FRANK L.A. (2006) Dermatophytosis: decontaminating multianimal facilities. Compendium 28, 564-579
HULLINGER G.A., COLE J.R., ELVINGER F. & STEWART R.L. (1999) Dermatophytosis in show lambs in the United States. Veterinary Dermatology 10, 73-76 IORIO R., CAFARCHIA C., CAPELLI G., FASCIOCOCCO D., OTRANTO D. & GIANGASPERO A. (2007) Dermatophytoses in cats and humans in central Italy: epidemiological aspects. Mycoses 50, 491-495 JACKSON R.B. & PEEL B.G. (1991) Endemic Microsporum canis infection in a sheep flock. Australian Veterinary Journal 68, 122
KANO R., HIRAI A., YOSHIKE M., NAGATA M., NAKAMURA Y, WATANABE S. & HASEGAWA A. (2002) Molecular identifi cation of Trichophyton rubrum isolate from a dog by chitin synthase I (CHSI) gene analysis. Medical Mycology 40, 439-442
KOTNIK T. (2007) Dermatophytoses in domestic animals and their zoonotic potential. Slovenian Veterinary Research 44, 63-73
LUBBE A.M., HENTON M.M. (1997) Sterilisation of surgical instruments with formaldehyde gas. The Veterinary Record 140, 450-453
MANCIANTI F., NARDONI S., CORAZZA M., ACHILLE PD. & PONTICELLI C. (2003) Environmental detection of Microsporum canis arthrospores in the households of infected cats and dogs. Journal of Feline Medicine and Surgery 5, 323-328
MANCIANTI F & PAPINI R. (1996) Isolation of ker-atinophilic fungi from the fl oors of private veterinary clinics in Italy. Veterinary Research Communications 20,161-166
Bagcigil A.F. and others 42 Journal of Small Animal Practice Vol 51 January 2010 © 2010 British Small Animal Veterinary Association
MARCHETTI V, MANCIANTI F., CARDINI G. & LUCHETTI E. (2006) Evaluation of fungicidal effi cacy of benzalkonium chloride (Steramina G u.v.) and Virkon-S against Microsporum canis for environmental disinfection. Veterinary Research Communications 30, 255-261
MORIELLO K.A., DEBOER D.J., VOLK L M., SPARKES A. & ROBINSON A. (2004) Development of an in vitro, isolated, infected spore testing model for disinfectant testing of Microsporum canis isolates. Veterinary Dermatology 15, 175-180
OUTERBRIDGE C.A. (2006) Mycologic disorders of the skin. Clinical Techniques in Small Animal Practice 21,128-134
QUINN P.J., CARTER M.E., MARKEY B.K. & CARTER G.R. (1999) The dermatophytes. In: Clinical Veterinary Microbiology. Mosby, London. pp 381-390 RUTALA W.A., WEBER D.J. (2008) Guideline for Disinfection and Sterilization in Healthcare Facilities. HICPAC. http://www.cdc.gov/ncidod/dhqp/sterile.html RYCROFT A.N. & MCLAY C. (1991) Disinfectants in the control of small animal ringworm due to Microsporum canis. The Veterinary Record 129, 239-241 SPARKES A.H., WERRETT G. , STOKES C.R. & GRUFFYDDJONES T.J. (1994) Microsporum canis: inapparent carriage by cats and the viability of arthrospores. Journal of Small Animal Practice 35, 397-401
THOMAS P, KORTING H.C., STRASSL W. & RUZICKA T. (1994) Microsporum canis infection in a 5-year-old boy: transmission from the interior of a secondhand car. Mycoses 37, 141-142
VIGUIr-VALLANET C., SERRE M., MASLIAH L. & TOURTESCHAEFER C. (2005) Epidemic of Trichophyton tonsurans tinea capitis in a nursery school in the Southern suburbs of Paris. Annales de dermatologie et de venereologie 132, 432-438
WOODGYER A.J. (1977) Asymptomatic carriage of dermatophytes by cats. New Zealand Veterinary Journal 25, 67-69
апрель 2010 • Том 1• № 1
зз
О
Эффективная фармакотерапия при заболеваниях опорно-двигательного аппарата
Заболевания опорно-двигательного аппарата - распространенная и очень серьезная проблема, с которой сталкиваются владельцы собак, особенно крупных пород. Несбалансированное питание, авитаминоз, стрессы, плохая генетика, недостаток движения - все это в короткие сроки может привести к патологии костей и суставов. К сожалению, в большинстве случаев симптомы болезни замечают слишком поздно, когда обычно активная собака внезапно начинает хромать. При визите к ветеринару оказывается, что заболевание уже приобрело хронический характер. Эта патология - одна из самых коварных, с трудом поддается медикаментозной коррекции, несмотря на широкий выбор современных лекарственных средств и методов лечения.
На сегодняшний день симптоматическая фармакотерапия является практически единственным способом борьбы с последствиями заболевания. Обычно в курсах лечения используют нестероидные противовоспалительные средства, в тяжелых, запущенных случаях - стероидные препараты, характеризующиеся неблагоприятным профилем безопасности, применение которых требует осторожности и часто приводит к осложнениям. Именно поэтому врачи ведущих ветеринарных клиник все чаще применяют базисные хонд-ропротекторы - вещества, оказывающие влияние не только на симптомы заболевания, такие как хромота, слабость, боли, но и на сам ход патологического процесса. Хондропротекторы стимулируют восстановление соединительной ткани, укрепляя кости, суставы и связки.
В ряду таких средств необходимо выделить чешский препарат Гелакан, основным действующим веществом которого является гидролизат коллагена. Это вещество оказывает стимулирующее действие при синтезе коллагена II типа, необходимого для образования хрящей. Кроме этого, Гелакан содержит комплекс минеральных веществ, витамин Е и селен, благоприятно влияющих на восстановление костной и хрящевой ткани и общий обмен веществ.
Гелакан не имеет побочных эффектов, тогда как эффективность его действия неоднократно подтверждалась при клинических испытаниях. Гелакан успешно применяется при дисплазии и остеоартрозе, а также для профилактики этих нарушений. Продолжительность применения препарата не ограничена, он обладает длительным и устойчивым действием. Гелакан водорастворим, имеет вкус мяса и дается собаке вместе с привычным кормом.
Гелакан выпускается в нескольких видах, позволяющих учесть различные физиологические состояния собаки и степень заболевания опорно-двигательного аппарата.
Гелакан Бэйби предназначен для профилактики заболеваний опорно-двигательного аппарата у щенков, беременных и кормящих сук, а также для обеспечения правильного формирования и роста костяка у щенков.
Гелакан Дарлинг подходит для собак всех возрастов (от щенка до глубокой старости) как для профилактики, так и для лечения заболеваний и ускорения реабилитации в послеоперационный период. Незаменим для щенков крупных пород. Продлевает активное долголетие собаки при введении в постоянный рацион со 2-ой половины жизни.
Гелакан Профи используется для собак охотничьих, спортивных и рабочих пород, у которых риск заболеваний опорно-двигательного аппарата возрастает многократно. Восстанавливает водно- солевой баланс при стрессах и показан кобелям перед и после вязок.
Гелакан Чемпион особенно полезен выставочным собакам, которым важна красота и качество шерсти. Помимо коллагена он содержит богатый витаминно-минеральный комплекс: лецитин, хелат цинка, хелат кальция, морские водоросли Spirulina Algae, хелат железа, витамин Е, окись магния, хелат меди, биотин, витамин Bi2, однозамещенный фосфат натрия, витамин В5, йодид кальция, витамин В6, фолиевая кислота, бета-каротин (только в препарате Гелакан Чемпион для собак разноцветных окрасов). Совместно они обеспечивают рост здоровой и густой шерсти, усиливают и восстанавливают пигментацию, устраняют дерматологические проблемы, а также благотворно влияют на весь организм в целом.
При выраженных воспалительных процессах в суставах применяется разработка последнего поколения - Ге-лакан Фаст, в состав которого кроме коллагена и минерально-витаминного комплекса входит также Босвел-лин, который представляет собой вытяжку из босвеллового дерева (Boswellia serrata) и оказывает мощное и устойчивое противовоспалительное и болеутоляющее действие, улучшает кровоснабжение в поврежденных тканях. Кроме того, несомненным преимуществом препарата Гелакан Фаст является отсутствие побочных воздействий на ЖКТ и благотворное влияние на печень. При тяжелых поражениях опорно-двигательного аппарата и лечении операционных последствий особенно эффективен препарат Хондрокан - комплексный хонд-ропротектор с высоким содержанием глюкозамин сульфата, хондроитин сульфата и гидролизата коллагена. Благодаря оптимальной концентрации действующих веществ, Витамина Е и селена он незаменим для интенсивного восстановления костей, суставов и связок при травмах, операциях и дисплазии тазобедренных суставов. Может применяться для лечения собак всех пород и возрастов. Имеет пролонгированный эффект.
Препараты Гелакан и Хондрокан фирмы Orling (Чехия) зарекомендовали себя как эффективные и безопасные средства для лечения и профилактики заболеваний опорно-двигательного аппарата, сочетающие в себе лучшие традиции европейской медицинской науки.
й
(S
<&
о
Я
L
Консультации и продажа по телефонам: в Москве - (495) 779-99-40, 340-39-11; в Санкт-Петербурге - (812) 444-92-47, 495-63-88.
www.gelacan.ru
S-
о
Москва: тел.(495)340-3911, 779-9940, 505-2204 Санкт-Петербург: тел: (812) 325-7723, 495-6388
www.gelacan.ru
-э-
