Биотехнология и бионанотехнология
Оригинальная статья/Original article_
УДК 517.15
DOI: http://doi.org/10.20914/2310-1202-2017-3-159-163_
Выбор ферментного препарата для получения маннозосодержащих гидролизатов с пребиотической _активностью_
Зеяд Х. Радиф 1 [email protected]
Екатерина П. Анохина 1 [email protected] _Ольга С. Корнеева 1 [email protected]_
1 Воронежский государственный университет инженерных технологий, пр-т Революции, 19, г. Воронеж, 394036, Россия Реферат. Манноза и манноолигосахариды обладают рядом функциональных свойств, что подтверждает необходимость исследования их получения. Манноза, являясь незаменимым углеводным компонентом иммуноглобулинов, проявляет противовоспалительные, пребиотические, иммуностимулирующие свойства и может быть использована для профилактики и лечения различных патологических состояний. Манноолигосахариды обладают пребиотической и антиоксидантной активностью. Потенциальный источник маннозы и манноолигосахаридов - маннаны растительного сырья, ферментативная обработка которых является перспективным и экологически безопасным способом их получения. В качестве растительного сырья для выделения маннанов выбрана древесина ели обыкновенной. Было исследовано влияние дозировки ферментных препаратов в-маннаназыВ. subtilis и Tr. harzianum и продолжительности гидролиза на эффективность гидролиза маннанов древесины ели обыкновенной. Установлены рациональные параметры процесса гидролиза маннанов для в-маннаназ различного происхождения. Для в-маннаназы В. .subtilis оптимальными параметрами являются дозировка ферментного препарата 10 ед/г, продолжительность 3 ч, температура 35 °С, рН 7.0. Для в-маннаназы Tr. harzianum - дозировка ферментного препарата 15 ед/г, продолжительность 4 ч, температура 60 °С, рН 4.5. Была исследована способность маннозосодержащих гидролизатов, полученных при ферментативном гидролизе маннанов, стимулировать развитие бифидобактерий in vitro в сравнении с инулином Raftiline и маннозой. Изученные гидролизаты обладали выраженной способностью стимулировать рост бифидобактерий на протяжении всего процесса культивирования, сопоставимой с активностью признанного стимулятора роста бифидобактерий инулина. Однако гидролизаты, полученные под действием в-маннаназы В. subtilis, проявляли более выраженную пребиотическую активностью по сравнению с гидролизатами, полученными при гидролизе маннанов в-маннаназой Tr. harzianum. Таким образом, высокая каталитическая способность в-маннаназы В. subtilis расщеплять маннаны древесины ели и более выраженная способность гидролизатов стимулировать рост бифидобактерий делают предпочтительным использование этого фермента для получения маннозосодержащих гидролизатов из хвойной древесины.
The choice of enzyme preparation for mannose containing _hydrolyzates with prebiotic activity obtaining_
Zeyad Kh. Radif 1 [email protected]
Ekaterina P. Anokhina 1 [email protected] _Olga S. Korneeva 1 [email protected]_
1 Voronezh state university of engineering technologies, Revolution Av., 19 Voronezh, 394036, Russia
Summary. Mannose and mannooligosaccharides have a number of functional properties, which confirms the need to study their obtaining. Mannose, being an indispensable carbohydrate component of immunoglobulins, exhibits anti-inflammatory, prebiotic, immunostimulating properties and can be used for the prevention and treatment of various pathological conditions. Mannooligosaccharides have prebiotic and antioxidant activity. Potential source of mannose and mannooligosaccharides is mannan of plant raw materials, enzymatic treatment of which is a promising and environmentally safe way of their obtaining. As a plant raw material for mannans selection spruce wood was chosen. The effect of the dosage of enzymatic preparations of в-mannanase B. subtilis and Tr. harzianum and hydrolysis duration on the efficiency of the hydrolysis of spruce wood mannans were investigated. Rational parameters of the process of mannan hydrolysis for в-mannanases of various origins were established. For в-mannanase B. subtilis optimal parameters are the dosage of the enzyme preparation 10 U / g, duration 3 hours, temperature 35° C, pH 7.0. For в-mannanase Tr. harzianum the following characteristics were used: dosage of enzyme preparation 15 U / g, duration 4 hours, temperature 60° С, pH 4.5. The ability of mannose containing hydrolysates obtained during fermentative hydrolysis of mannans to stimulate the development of bifidobacteria in vitro in comparison with inulin Raftiline and mannose was investigated. The hydrolysates studied had a pronounced ability to stimulate the growth of bifidobacteria throughout the entire cultivation process, comparable to the activity of the recognized growth promoter of inulin bifidobacteria. However, the hydrolysates obtained by B. subtilis в-mannanase showed more pronounced prebiotic activity compared to the hydrolysates obtained in the hydrolysis of mannans with в-mannanase Tr. harzianum. Thus, the high catalytic ability of B. subtilis в-mannanase to split spruce wood mannans and the more pronounced ability of hydrolysates to stimulate the growth of bifidobacteria make it preferable to use this enzyme to produce mannose containing hydrolyzates from spruce wood.. Keywords: mannan, spruce wood, в-mannanase, hydrolysis, mannose, mannooligosaccharides, prebiotic activity
Для цитирования Радиф З.Х., Анохина Е.П., Корнеева О.С. Выбор ферментного препарата для получения маннозосодержащих гидролизатов с пребиотической активностью // Вестник ВГУИТ. 2017. Т. 79. № 3. С. 159-163. ао1:10.20914/2310-1202-2017-3-159-163
For citation
Radif Z.H., Anokhina E.P., Korneeva O.S. The choice of enzyme preparation for mannose containing hydrolyzates with prebiotic activity obtaining. Vestnik VGUIT [Proceedings of VSUET]. 2017. vol. 79. no. 3. pp. 159-163. (in Russian). doi:10.20914/2310-1202-2017-3-159-163
159
БД Agris
<Ветшк&ТУИТ/Фгоиг£^ о/Т.
Введение
В последние годы особый интерес вызывают минорные сахара и их полимеры: манноза и манноолигосахариды. Манноза является незаменимым углеводным компонентом иммуноглобулинов и других биологически активных веществ, обладает пребиотическим действием [1]. Исследования показали, что этот углевод выполняет важную роль в живом организме [2, 3], и может быть использован для профилактики и лечения урологических инфекций [4], диабета [5] и углевод-дефицитных гликопротеиновых синдромов I и II типов [6].
Манноолигосахариды наряду с маннозой обладают пребиотической активностью [7], а также проявляют антиоксидантную активность [8].
Манноза в виде гомогенных или гетерогенных полисахаридов входит в состав клеточных стенок растений и некоторых дрожжей. Наиболее перспективным и экологически безопасным способом получения маннозы и манноолигоса-харидов является ферментативный гидролиз маннанов клеточных стенок растений.
Ферментами, гидролизующими внутренние Р-1,4-гликозидные связи в маннанах, являются Р-маннаназы. Ранее получены Р-маннаназы грибного и бактериального происхождения, способные расщеплять гликозидные связи в маннанах, но обладающие разными физико-химическими свойствами и специфичностью к гидролизуемой связи.
Цель данного исследования состояла в подборе ферментного препарата р-маннаназы для получения маннозосодержащих гидроли-затов с пребиотической активностью из растительного сырья.
Объекты и методы исследования
Объектами исследования служили спирто-осажденные ферментные препараты: рекомби-нантная Р-маннаназа В. subtilis с активностью 72000 ед/г и Р-маннаназа Тг. кашапиш с активностью 2100 ед/г.
Выделение маннанов из растительного сырья проводили по описанной методике [9].
Для определения степени гидролиза манна-нов реакционную смесь, состоящую из 200 мкл 1 % раствора субстрата в соответствующем буфере и 100 мкл раствора фермента разной концентрации, выдерживали при оптимальной температуре действия фермента в течение 5 часов. Через каждый час в реакционной смеси определяли редуцирующие сахара по методу Сомоджи-Нельсона [10], по количеству которых рассчитывали степень гидролиза маннанов.
79, № 3, 2017_
Для изучения пребиотических свойств маннозосодержащих гидролизатов in vitro проводили культивирование бактерий Bifidobacterium bifidum.
Коммерческий препарат «Бифидобактерин сухой» предварительно растворяли и активизировали в питательной среде Блаурокка при температуре 37 °С в течение 24 ч. Его вносили в подготовленные для культивирования питательные среды в количестве 5 доз на 1 л среды.
Выращивание бифидобактерий проводили в анаэробных условиях при температуре 37 0С на среде Блаурокка (г/л): пептон - 10; NaCl - 5; агар-агар - 0,75; лактоза - 10; цистеин солянокислый - 0,1; печеночный отвар, рН 7,5. Для определения бифидогенной активности различных углеводов в питательную среду вместо лактозы вносили инулин, маннозу, маннозосодержащие гидролизаты.
Накопление биомассы бифидобактерий оценивали по оптической плотности суспензии бактерий при длине волны 590 нм [11].
Результаты и обсуждение
Маннаны - полисахариды, состоящие преимущественно из остатков D-маннозы. Также в состав маннанов различной структуры входят глюкоза и галактоза. Маннаны входят в состав гемицеллюлоз клеточных стенок растений. По литературным данным содержание гемицел-люлозы в твердой древесине составляет 10 %, а в древесине мягких пород - 25 %. Наиболее перспективным растительным сырьем, содержащим гемицеллюлозную фракцию, богатую маннанами, является древесина хвойных пород деревьев. Содержание маннанов в древесине хвойных деревьев представлено в таблице 1.
Таблица 1 .
Содержание маннанов в древесине хвойных
пород деревьев
Table 1.
The mannans content in softwood wood
Растение The pant Содержание маннанов, % The mannans content, % Соотношение углеводов в маннане The ratio of carbohydrates in mannan
Ель обыкновенная | Common spruce 11 МАН:ГЛЮ 3,7:1 MAN: GLU 3,7:1
Сосна | Pine 12 МАН:ГЛЮ:ГАЛ 1,7:1:0,26 MAN:GLU:GAL 1,7:1:0,26
Кедр сибирский| Siberian cedar 9,8 МАН:ГЛЮ 3,5:1 MAN: GLU 3,5:1
Туга канадская | Canadian tuga 6,2 МАН:ГЛЮ:ГАЛ 3:1:0,1 MAN:GLU:GAL 3:1:0,1
BecmHunJBry^T/Proceedings of VSUET, Т. 79, № 3, 207
Так, наибольшее количество маннанов находится в древесине сосны и ели обыкновенной (12 и 11 % соответственно), однако в древесине ели соотношение маннозы и глюкозы составляет 3,7:1, следовательно, ферментативный гидролиз маннанов такой структуры позволит получить высокий выход маннозы. Таким образом, ель обыкновенная является перспективным источником маннанов для получения маннозосодержащих гидролизатов. Кроме того отходы древесного производства являются широко доступными, что значительно удешевит производство маннозы в промышленных масштабах.
Был исследован процесс гидролиза маннанов древесины ели обыкновенной спиртоосажден-ными ферментными препаратами Р-маннаназы В. subtilis и Тг. кагг1апит при оптимальных условиях действия ферментов: рН 7,0 и 35°С и рН 4,5 и 60°С соответственно.
Эффективность ферментативного гидролиза полимеров зависит от ряда факторов, важными из которых являются дозировка ферментного препарата и продолжительность гидролиза.
На рисунке 1 представлена зависимость степени гидролиза глюкоманнана от дозировки ферментного препарата р-маннаназы В. subtilis. Фермент вносили в количестве 5-15 ед/г маннанов. При дозировке фермента 5 ед/г субстрата степень гидролиз составила 60 % за 3 ч. Увеличение количества фермента до 10 ед/г субстрата обеспечивало максимальную степень деструкции глюкоманнана - 88 % за 3 ч гидролиза. Более высокая дозировка фермента и увеличение продолжительности процесса не способствовали значительному увеличению степени гидролиза.
Рисунок 1. Зависимость степени гидролиза глюкоманнана от концентрации р-маннаназы В. subtilis (ед/г глюкоманнана) при температуре 35 °С и рН 7,0
Figure 1. The dependence of the degree of hydrolysis of glucomannan on the concentration of p-mannanase B. subtilis (U / g glucomannan) at 35 °C and pH 7.0
Динамика ферментативной деструкции маннанов при разной концентрации ферментного препарата Р-маннаназы Тг. Иатапит представлена на рисунке 2. Ферментный препарат вносили в количестве 5-25 ед/г маннанов. Количество фермента 5 ед/г субстрата обеспечивало гидролиз на 58 % за 4 ч. При увеличении концентрации фермента до 10 ед/г степень гидролиза за это время составила около 70 %. Дозировка 15 ед/г обеспечивала максимальную степень деструкции маннанов - 90 %. Более высокая концентрация фермента не способствовала значительному увеличению степени гидролиза.
-5ед/г|Шд -10 ед/г j Шд -15 едГг| Шд -20 ед!г| Шд -25 ед/г i Шд
0 1 2 3 4 5
время, ч | time, h
Рисунок 2. Зависимость степени гидролиза глюкоманнанов от концентрации р-маннаназы Tr. harzianum (ед/г глюкоманнанов) при температуре 60 0С и рН 4,5
Figure 2. The dependence of the degree of hydrolysis of glucomannan on the concentration of p-mannanase Tr. harzianum (U / g glucomannan) at 60 °C and pH 4,5
Таким образом, были установлены рациональные параметры процесса гидролиза маннанов ели обыкновенной для Р-маннаназ различного происхождения. Для Р-маннаназы В. subtilis оптимальными параметрами являются дозировка ферментного препарата 10 ед/г, продолжительность 3 ч, температура 35 °С, рН 7,0. Для Р-маннаназы Tr. harzianum - дозировка ферментного препарата 15 ед/г, продолжительность 4 ч, температура 60 °С, рН 4,5.
В результате гидролиза маннанов Р-манна-назами различного происхождения образуются различные конечные продукты: манноолигосаха-риды различной молекулярной массы и манноза.
Известно, что маннозосодержащие гидро-лизаты обладают пребиотическими свойствами, поэтому была исследована способность маннозо-содержащих гидролизатов, полученных при оптимальных условиях гидролиза Р-маннаназами В. subtilis и Tr. harzianum, стимулировать развитие бифидобактерий. Исследование активности гидролизатов, как единственного источника углерода в питательной среде для бифидобактерий, проводили в сравнении с инулином Raftiline и маннозой. Контролем служила среда с лактозой.
QemHunßTWHT/Prouedmßs of VSUET, Т. 79, № 3, 2GÎ7,
SB línuTnnnh I Tfintrnl
18 24 42 (Tr. harzianum)
Время культивирования, ч [ Cultivation time, h
Рисунок 3. Накопление биомассы бифидобактерий при культивировании на средах с маннозосодержа-щими гидролизатами
Figure 3. The accumulation of biomass of bifidobacteria during cultivation on media with mannose-containing hydrolysates
Из представленных данных видно, что изученные гидролизаты обладают выраженной способностью стимулировать рост бифидобактерий
ЛИТЕРАТУРА
1 Korneeva O. S, Cheremushkina I. V, Glush-chenko A. S, Mikhaflova N. A. et al. Prebiotic properties of mannose and its effect on specific resistance // Zh Mikrobiol Epidemiol Immunobiol. 2012. № 5. P. 67-70.
2 Sharma V., Ichikawa M„ Freeze H. H. Mannose metabolism: more than meets the eye // Biochem Biophys Res Commun. 2014. V. 453. № 2. P. 220-228. DOI: io. 1016/j.bbrc.2014.06.021.
3 Fekete F.. Fadgyas В., Papp É„ Szilágyi Á. et al. The role of mannose binding lectin on fever episodes in pediatric oncology patients // Pathol Oncol Res. 2016. V. 22, № 1,P. 139-143. DOI: 10.1007/sl2253-015-9992-x.
4 Kranjcec В., Papes D.. Altarac S. D-mannose powder for prophylaxis of recurrent urinary tract infections in women: a randomized clinical trial // World J Urol. 2014, V. 32, № 1, P. 79-84. DOI: 10.1007/s00345-013-1091-6.
5 Пат. 2097041, RU, Cl A61K 31/70. Способ лечения сахарного диабета / Чепурной И.П., Больбат К.Э.; заявитель и патентообладатель Чепурной И.П. № 94042023/14; Заявл. 22.11.1994.;0публ 27.11.1997.
6 Martín Hernández Е„ Vega Pajares A.I., Pérez González B., Ecay Crespo M.J. et al. Congenital disorder of glycosylation type 1b. Experience with mannose treatment // AnPediatr (Bare). 2008, V. 69, № 4, P. 358-365.
7 Anokhina E. P., Shuvaeva G. P., Radif Z. K„ Korneeva O. S. Investigation of the prebiotic properties of mannose-containing hydrolysates // International Journal of Probiotics and Prcbiotics. 2016, V. 11, № 3/4, P. 137-140.
Я Черенков Д.А., Анохина Е.П., Кирьянова C.B., Корнеева О. С. Антиоксидантная активность продуктов гидролиза природных полимеров (маннана и фукоидана) // Вестник Воронежского государственного университета инженерных технологий. 2012. № 1. С. 151-153.
9 Пат. 2392332, RU, Cl С13К13/00, A23L1/0528 Способ получения маннанов из растительного сырья / Корнеева О.С., Глущенко А.С., Черемушкина И.В., Черенков Д.А., Слепокуров А.А. № 2008149923/13; Заяв. 18.12.2008; Опубл. 20.06.2010, Бюл. № 17.
на протяжении всего процесса культивирования, сопоставимой с активностью признанного стимулятора роста бифидобактерий инулина и не уступающей чистой маннозе. При этом гидролизаты, полученные под действием ß-маннаназы В. subtilis, обладали более выраженной пребиотической активностью по сравнению с гидролизатами, полученными при гидролизе маннанов ß-маннаназой Tr. harzianum, о чем свидетельствует увеличение прироста биомассы бифидобактерий.
В результате проведенных исследований установлено, что применяемые ферментные препараты ß-маннаназы способны гидролизо-вать маннаны древесины ели обыкновенной. Однако, маннозосодержащие гидролизаты, образующиеся под действием ß-маннаназы В. subtilis, обеспечивали больший прирост биомассы бифидобактерий, что свидетельствует о целесообразности применения этого фермента для получения гидролизатов с пребиотической активностью из хвойной древесины.
ЮПолыгалина Г.В., Чередниченко B.C., Ри-марева Л.В. Определение активности ферментов. Справочник. М.: ДеЛи принт, 2003. 376 с.
11. Санина Т.В.. Кирьянова СВ.. Черемушкина И.В.. Корнеева О.С. Исследование бифидогенной активности фукозы и ее полимеров II Вестник Воронежского государственного университета. Серия: Химия. Биология. Фармация. 2011. № i. С. 141-143.
REFERENCES
1 Korneeva O. S, Cheremushkina I. V, Glush-chenko A. S, Mikhaflova N. A. et al. Prebiotic properties of mannose and its effect on specific resistance. Zh Mikrobiol Epidemiol Immunobiol. 2012, no 5, pp. 67-70.
2 Sharma, V., Ichikawa M., Freeze H. H. Mannose metabolism: more than meets the eye. Biochem Biophys Res Commun. 2014, vol. 453, no 2, pp. 220-228. DOI: 10.1016/j.bbrc.2014.06.021.
3 Fekete F., Fadgyas B., Papp É., Szilágyi Á. et al. The role of mannose binding lectin on fever episodes in pediatric oncology patients. Pathol Oncol Res. 2016, vol. 22, no i, pp. 139-143. DOI: 10.1007/s12253-015-9992-x.
4 Kranjcec B., Papes D., Altarac S. D-mannose powder for prophylaxis of recurrent urinary tract infections in women: a randomized clinical trial. World J Urol. 2014, vol. 32, no 1, pp. 79-84. DOI: 10.1007/s00345-013-1091-6.
5 Chepurnoy I. P., Bolbat K. E. Sposob lecheniya sa-harnogo diabeta [The method of treatment of diabetes mellitus]. Patent RF, no 2097041, 1997. (in Russian).
6 Martín Hernández E., Vega Pajares A.I., Pérez González B., Ecay Crespo M.J. et al. Congenital disorder of glycosylation type ib. Experience with mannose treatment. An Pediatr (Barc). 2008, vol. 69, no 4, pp. 358-365.
7 Anokhina E. P., Shuvaeva G. P., Radif Z. K. Korneeva O. S. Investigation of the prebiotic properties of mannose-containing hydrolysates. International Journal of Probiotics and Prebiotics. 2016, vol. 11, no 3/4, pp. 137-140.
BecmHunJBry^T/Proceedings of VSUET, Т. 79, № 3, 2017m
8 Cherenkov D. A., Anokhina E. P, Kiryanova S. V, Korneeva O. S. The antioxidant activity of the products of hydrolysis of natural polymers (mannan, and fu-coidan). Vestnik Voronezhskogo gosudarstvennogo uni-versiteta inzhenernyh tekhnologij [Proceedings of Voronezh State University of Engineering Technology], 2012, no. 1, pp. 151-153. (in Russian)
9 Korneeva O. S., Gluschenko A. S., Cheremushkina I. V., Cherenkov D. A. et al. Sposob polucheniya mannanov iz rastitelnogo syirya [The method of obtaining mannans from plant material]. Patent RF, no 2392332, 2010. (in Russian)
СВЕДЕНИЯ ОБ АВТОРАХ Зеяд Х. Радиф аспирант, кафедра биохимии и биотехнологии, Воронежский государственный университет инженерных технологий, пр-т Революции, 19, г. Воронеж, 394036, Россия, [email protected] Екатерина П. Анохина к.т.н. доцент, кафедра биохимии и биотехнологии, Воронежский государственный университет инженерных технологий, пр-т Революции, 19, г. Воронеж, 394036, Россия, [email protected] Ольга С. Корнеева д.б.н., профессор, зав. кафедрой, кафедра биохимии и биотехнологии, Воронежский государственный университет инженерных технологий, пр-т Революции, 19, г. Воронеж, 394036, Россия, [email protected]
КРИТЕРИЙ АВТОРСТВА Зеяд Х. Радиф обзор литературных источников по исследуемой проблеме, провёл эксперимент, написал рукопись Екатерина П. Анохина корректировала рукопись статьи до подачи в редакцию, несёт ответственность за плагиат Ольга С. Корнеева консультация в ходе исследования
КОНФЛИКТ ИНТЕРЕСОВ
Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.
10 Polygalina G. V., Cherednichenko V. S., Ri-mareva L. V. Opredelenie aktivnosti fermentov. Spravochnik. [Determination of enzyme activity. Directory]. Moscow, DeLi print, 2003. 300 p. (in Russian)
11 Sanina T. V., Kiryanova S. V., Cheremushkina I. V., Korneeva O. S. The study bifidogenic activity fucose and its polymers. Vestnik Voronezhskogo gosudarstvennogo uni-versiteta. Seriya: Himiya. Biologiya. Farmatsiya [Herald of the Voronezh state University. Series: Chemistry. Biology. Pharmacy], 2011, no. 1, pp. 141-143. (in Russian)
INFORMATION ABOUT AUTHORS Zeyad Kh. Radif graduate, department of biochemistry and biotechnology, Voronezh state university of engineering technologies, Revolution Av., 19 Voronezh, 394036, Russia, [email protected]
Ekaterina P. Anokhina candidate of technical sciences, associate professor, department of biochemistry and biotechnology, Voronezh state university of engineering technologies, Revolution Av., 19 Voronezh, 394036, Russia, [email protected] Olga S. Korneeva doctor of biological sciences, professor, department of biochemistry and biotechnology, Voronezh state university of engineering technologies, Revolution Av., 19 Voronezh, 394036, Rus-sia, [email protected]
CONTRIBUTION Zeyad Kh. Radif review of the literature on an investigated problem, conducted an experiment, wrote the manuscript Ekaterina P. Anokhina corrected the manuscript before filing in editing and is responsible for plagiarism Olga S. Korneeva consultation during the study
CONFLICT OF INTEREST
The authors declare no conflict of interest.
ПОСТУПИЛА 25.08.2017 RECEIVED 8.25.2017
ПРИНЯТА В ПЕЧАТЬ 09.09.2017 ACCEPTED 9.9.2017