CC BY
60
C. albicans № 416. Плесневый гриб Ch. globosum № 129 проявил усточи-вость в присутствии всех препаратов, что говорит о нецелесообразности их использования в лечении микозов, вызванных данным возбудителем.
Подводя итоги исследований следует отметить, что все предложенные для испытаний фунгицидные препараты проявляют активность в отношении дерматомицетов и дрожжей.
Подтверждена выраженная фунгицидная активность всех трех препаратов в отношении M. canis № 376. Клотримазол является отличным фунгиста-тиком / фунгицидом в отношении C. albicans № 416. Рост возбудителя плесневого микоза Ch. globosum № 129 наблюдался в присутствии всех препаратов, что говорит об их низкой активности в отношении плесеней.
По совокупному анализу предложенные противогрибковые препараты можно расположить в ряд по убыванию фунгицидных свойств клотримазол > экзодерил > терфалин.
Список литературы:
1. Антропова А.Б., Мокеева В.Л., Биланенко Е.Н., Чекунова Л.Н., Жел-тикова Т.М., Петрова-Никитина А.Д. Аэромикота жилых помещений г. Москвы // Микология и фитопатология. - 2003. - Т. 37, Вып. 6. - С. 1-11.
2. Дмитриева М.Б., Кобраков К.И., Станкевич Г.С., Балабанова. Оценка эффективности биозащитных свойств азокрасителей, содержащих 3,5-ди-хлорпиридильный фрагмент // Текстильная химия. - 2004. - № 4. - С. 10-17.
3. Алмаганбетов К.Х. Микроорганизм биотехнологиясы. - Астана, 2008. -С. 55-78.
4. Migacheva N., Souzdaltseva T., Pakhoulskaya О. Sensitization to mold in asthmatic patients // Allergy. - 2000. - Suppl. 63, V 55. - P. 112.
5. Украинский журнал дерматологии. - 2012. - № 3 (46). - Статья предоставлена представительством компании «Новартис Консьюмер Хелс Сер-висез С.А.» в Украине.
ВОЗБУДИТЕЛЬ ТОКСОКАРОЗА ОПАСНЫЙ ПАТОГЕННЫЙ АГЕНТ ДЛЯ ЖИТЕЛЕЙ МЕГАПОЛИСОВ
© Панова О.А.*, Гламаздин И.Г.4
Московский государственный университет пищевых производств, г. Москва
Проведен анализ научных данных, опубликованных в отечественной и зарубежной литературе. Рассматриваются вопросы распространения
* Аспирант кафедры «Ветеринарная медицина».
* Профессор кафедры «Ветеринарная медицина», доктор ветеринарных наук, профессор.
и контроля над возбудителем токсокароза. Приводятся данные по экстенсивности и интенсивности инвазии за рубежом и в России. Обсуждаются пути заражения токсокарозом человека и животных. Рассматриваются вопросы патогенеза данного паразитоза и описываются методы его диагностики. В заключении делается предположение, что современные технические средства и врачебные знания позволят свести проблему к минимуму, а также сделать диагностику и профилактику токсокароза более эффективной.
В настоящее время продолжают совершенствоваться и разрабатываться надежные меры контроля распространения паразитов во внешней среде, основанные на современных принципах выявления патогенов. Важным звеном в борьбе с гельминтами является диагностика болезней, вызванных паразитами, передающимися через пищу, от животных и через окружающую среду, при этом необходимо точное знание жизненного цикла, путей передачи и экологических условий, необходимых для выживания паразитов.
Токсокароз представляет значимую эпизоотологическую и эпидемиологическую проблему. С 1971 г. по 1990 г. в отчетной статистической форме № 87-СЭС «Противогельминтозные мероприятия» учитывали только 9 нозологических форм гельминтозов (аскаридоз, трихоцефалез, тениоз, тениа-ринхоз, дифиллоботриоз, описторхоз, гименолепидоз, энтеробиоз, анкило-стомидозы). С 1991 года в форме № 2 федерального государственного статистического наблюдения «Сведения об инфекционных и паразитарных заболеваниях» число учитываемых нозологических форм гельминтозов увеличилось до 11 за счет введения эхинококкоза, трихинеллеза и токсокароза, но исключения анкилостомидозов [7].
Продовольственная и сельскохозяйственная организация ООН (ФАО) (Food and Agriculture Organization) и Всемирная организация здравоохранения (ВОЗ) (World Health Organization) в 2013 году составили рекомендации о мерах контроля паразитов, а также информацию о их способах передачи человеку через продукты. В классификации паразитов выделили 24 вида или рода, вызывающих зоонозные болезни. Среди них: трематоды - Fasciola spp., Heterophydae, Opisthorchiidae, Paragonimus spp.; цестоды - Diphylloboth-riidae, Echinococcus granulosis, Echinococcus multilocularis, Spirometra spp., Taenia saginata, Taenia solium; нематоды - Anisakidae, Ascaris spp., Toxocara spp., Trichinella spiralis, Trichinella spp., Trichuris trichiura; простейшие - Ba-lantidium coli, Cryptosporidium spp., Cyclospora cayetanesis, Entamoeba histolytica, Giardia duodenalis, Sarcocystis spp., Toxoplasma gondii, Tripanosoma cruzi. Виды Toxocara включены в группу паразитов, которые могут передаваться со свежими фруктами и овощами, а также соками, что свидетельствует о необходимости контроля над распространением возбудителя данного паразитарного заболевания.
Изучение токсокароза, несмотря на достаточно большое количество публикаций в разных регионах, не теряет актуальности в связи с высокой экстен-
сивностью инвазии у домашних плотоядных и ростом серопозитивности у людей [3, 8, 10, 11, 17]. В отечественной ветеринарной практике чувствуется недостаток эффективных и быстрых методов диагностики гельминтозов, особенно в стадии мигрирующей личинки при токсокарозе плотоядных.
Заражение животных токсокарозом может происходить в результате:
1. проглатывания инвазионных яиц;
2. поедания мяса с инкапсулированными личинками (резервуарных хозяев);
3. внутриутробного заражения;
4. через молоко матери, когда в ее крови могут оказаться личинки 3 стадии.
По данным Ф.И. Василевича и В.Н. Шевкопляса (2012) число учтенных больных токсокарозом в России в последние десятилетия выросло более, чем в 100 раз. Ведущую роль в заражении человека играет почва (где развиваются личинки в яйцах до инвазионной стадии). Вольфом А. и Райтом И.П. доказана опасность прямого заражения человека Toxocara canis после контакта с зараженными собаками, так как 25 % образцов шерсти от собак были обсеменены яйцами круглых гельминтов в различных стадиях развития. Кошки поражаются токсокарозом значительно реже, чем собаки, вследствие чего случаи обнаружения у человека личинок T. mystax встречаются значительно реже, чем T. canis [13, 17].
Toxocara spp. могут передаваться человеку при потреблении свежих продуктов, которые были загрязнены фекалиями больных животных. В литературе имеются указания на возможность заражения человека токсокарозом при поедании сырой печени свиней, инвазированных личинками, или других органов и тканей паратенических хозяев (цыплят, ягнят, голубей) [21]. Одно из первых исследований проведено в Малайзии, где были обнаружены яйца токсокар в смывах с рыночной зелени. Исследование, проведенное в Японии в 1990 г., показало, что тараканы поедают значительное число яиц токсокар (до 170 в эксперименте) и до 25 % из них выделяются ими в жизнеспособном состоянии [10].
На собаках было показано, что часть личинок, сохранившихся в тканях, может продолжать миграцию в течение нескольких лет после заражения, активизируясь при беременности и лактации, может передаваться щенкам транс-плацентарно и с молоком матери. Но, в то же время, исследования пуповин-ной крови новорожденных от серопозитивных по токсокарозу матерей показали отсутствие антитоксокарозных антител IgM класса в образцах, что свидетельствует об отсутствии трансплацентарной передачи токсокарозной инфекции у людей. Предположение о трансплацентарной передаче личинок T. canis от матери к плоду опровергли M.R. Taylor и соавт. (2005). Пятьдесят две пары образцов материнской и пуповинной крови были исследованы на наличие специфических токсокарозных антител. В образцах пуповинной
крови не было обнаружено никаких изотипов что свидетельствует об отсутствии трансплацентарной передачи у людей [16].
Примерно 2 % лиц старше 10 лет в Лондоне и более 30 % в различных африканских городах реагируют на кожные пробы с антигеном токсокар. Серопораженность токсокарозом населения наиболее высока в Колумбии (68,2 %) и на Тайване (51,4 %), значительно ниже в Нидерландах (6,1 %), а в Японии составляет всего 3,6 % [13]. Пораженность людей токсокарами в различных странах варьирует от 2,6 % в Бельгии до 80 % на Карибских островах [16]. В Российской Федерации показатель инвазированности людей токсокарозом в Москве и Тульской области равен 5,4 %, Тюменской - 7,3 %, в Брянской области - 4,9 %, в Дагестане - 7,4 %, в Иркутской области - 6,0 % [8, 10, 13]. Среди детей Санкт-Петербурга положительный титр выявлен у 9 % [18]. Высказывается предположение, что к 30-39 годам происходит накопление инвазированных лиц (или возрастает сенсибилизация организма). При ослаблении защитных сил организма личинки активизируются и продолжают миграцию, вызывая тем самым иммунологические и иммунопатологические реакции: сенсибилизацию метаболитными соматическими антигенами токсокар [3].
По данным литературы, в мире около 40 % собак инвазированы Т. сапг^' и интенсивность инвазии достаточно велика. Средняя пораженность кишечным токсокарозом собак на европейском континенте составляет около 15 %, в США 4,6-7,3 %, а в некоторых регионах тропических стран достигает 93 %. Пораженность токсокарами бродячих собак, особенно щенков, очень высока и в некоторых регионах приближается к 80-100 %. Исследования кошек показало, что токсокарами заражено 42 % животных в Дублине, 55 % на северо-востоке Испании, 43 % в Мехико и 31 % во Франции [9, 13].
В различных регионах России по данным большинства исследователей, токсокароз регистрируется у 10-76 % собак. Щенки в возрасте от рождения до 30 дней заражены токсокарами на 90-100 %. Высокая напряженность эпизоотического процесса у собак является следствием пожизненного носи-тельства личинок токсокар и трансплацентарной передачей их во второй половине беременности. В популяции кошек экстенсивность данной инвазии составляет от 15 до 45 % [1, 3, 11, 14]. В результате исследований установлено, что ИИ у собак составила 1-67 особей (16,5 ± 3,2), а у кошек от 118 (4,7 ± 0,4). Причем ИИ у самцов собак составила - 11,3 ± 1,2 особей, у самок - 8,2 ± 0,3 особей. В популяции кошек наблюдается обратная ситуация: ИИ у котов - 3,8 ± 0,2 и у кошек - 6,9 ± 0,3 особей соответственно [11, 17].
О распространенности ларвального токсокароза можно судить лишь приблизительно, поскольку не все случаи заболевания регистрируются. До настоящего времени недостаточно изучены особенности эпизоотологии, патогенез ларвального токсокароза собак, патоморфологические изменения в тканях, продолжительность персистенции и сохранения инвазионных свойств личинок токсокар у взрослых плотоядных [10].
Ведущую роль в заражении человека играет почва (где развиваются личинки до инвазионной стадии), обсемененность которой яйцами токсокар в крупных городах составляет 6 - 53,6 %. Частое обнаружение яиц токсокар в пробах почвы, взятых в местах детских игр и общественного отдыха, отмечено в городах Великобритании, Италии, США, Канады, Армении, Молдавии, Белоруссии и других стран. При исследовании почвы в общественных местах Бразилии контаминация яйцами токсокар составила 17,5-91,7 %. В Москве средний показатель обсемененности почвы яйцами токсокар игровых площадок территорий жилых домов составил 14,8 ± 1,7 %, песочниц детских образовательных учреждений - 11,0 ± 1,5 % [9, 13]. В 40 % проб почвы детских площадок, скверов, парков и территорий вокруг жилых домов содержатся яйца токсокар. Имеющиеся в квартирах собаки, даже не зараженные токсокарозом, заносят на лапах яйца в квартиры [4]. В целом по России, санитарно-паразитологическими исследованиями почвы установлено, что обсемененность яйцами токсокар варьирует от 1-3 до 50-60 % в разных регионах, с интенсивностью инвазии 1-10 яиц на 100 г почвы [17]. Анализ данных г. Тюмени по обсемененности овощей показал, что из отобранных 1645 проб, 118 оказались положительными, что составляет 7,1 %. Проследить откуда поступают овощи и зелень по районам города не представляется возможным [17].
Яйца аскарид очень устойчивы к воздействию внешних факторов: они способны развиваться в концентрированных растворах сулемы, медного купороса, сернокислого цинка, хлористого калия, азотнокислого натрия; заключенные в кале и обильно орошенные 5 %-ным раствором карболовой кислоты, они гибнут через 22 дня [1].
Высокие показатели зараженности населения токсокарозом можно объяснить недостаточным уровнем знаний об особенностях циркуляции возбудителя [13]. По результатам анкетного опроса медицинских работников, проведенного М.В. Гузеевой (2009), правильные ответы дали 54,5 % анкетированных, что свидетельствует о недостаточном уровне их знаний по вопросам эпидемиологии, клиники и диагностики, что с наличием низких титров антител к антигену токсокар при отсутствии ярко выраженной клинической картины, вероятно, является причиной редкой регистрации токсокароза [7].
Мигрирующие личинки токсокар вызывают симптомы заболевания задолго до возможности диагноза этой стадии инвазии путем обнаружения яиц гельминтов в фекалиях (для прямого обнаружения). Поэтому для диагностики ранних стадий заражения с длительным препатентным периодом рекомендуется использовать иммунологические методы [6]. На сегодняшний день невозможно различить личинки Toxocara spp., основываясь на морфологии, особенно если личинки (или части личинок) были извлечены из тканей, что покаывает очевидную необходимость проведения дифференциальной диагностики альтернативными методами.
При токсокарозе ведущую патогенетическую роль играют иммунологические реакции организма хозяина. Метаболитные и соматические антигены личинок токсокар обладают выраженным сенсибилизирующим действием, вызывая, как и при других гельминтозах в фазе миграции, аллергические реакции немедленного (РНТ) и замедленного (ГЗТ) типов, определяя стереотипность клинических проявлений и их сходство с аллергическими заболеваниями. В эксперименте было показано, что у зараженных токсока-рами мышей в легких наблюдается повышенная проницаемость легочных капилляров, воспалительная инфильтрация с преимущественным содержанием эозинофилов. Показано сходство этих изменений с изменениями легких при бронхиальной астме [16].
Развитие РНТ связано с действием реагиновых антител 1£Е и IgG4. Главным звеном при РНТ является ответ. Специфические 1£Е связываются на мембране клеток-мишеней (тучных клеток, базофилов, эозинофилов, тромбоцитов, моноцитов) посредством Fc-фрагмента. Клетки-мишени, сенсибилизированные повторным поступлением антигенов паразита подвергаются дегрануляции с высвобождением гистамина, серотонина и других медиаторов аллергических реакций. Клинически это проявляется лихорадкой, крапивницей, сокращением гладкой мускулатуры бронхов, гиперэозинофилией, повышением общего РНТ - оказывают определенное протективное действие, вызывая деструкцию гельминтов и их личинок при их прохождении через кожные и слизистые барьеры. Однако при превышении определенного порога интенсивности РНТ переходят границы адекватных физиологических и становятся иммунопатологическими [16].
Реакция гиперчувствительности замедленного типа (ГЗТ) осуществляется при взаимодействии антигена с сенсибилизированными лимфоцитами. Образующиеся иммунные комплексы привлекают в ткани эозинофилы. Вокруг личинок кумулируются эозинофилы, СД4+ Т-лимфоциты, макрофаги и другие клетки иммунного воспаления - формируется паразитарная гранулема. В их формировании принимают участие также интерлейкин 4 (ГЬ-4). Поскольку в паразитарных гранулемах выявляются преимущественно эози-нофилы, СД 4+ Т-лимфоциты, а также ГЬ-4, в то время как ГЬ-2 не обнаруживается, предполагают, что их образование опосредуется не аллергической реакцией замедленного типа, а длительной реакцией поздней фазы. Пато-морфологические изменения при токсокарозе изучались преимущественно в эксперименте [16]. При повторных миграциях личинок образуются новые гранулемы, нарастают сенсибилизация и тяжесть тканевых поражений [18].
В исследованиях доказали, что имеет место положительная линейная зависимость между количеством личинок токсокар, попавших в организм и количеством антигена в кровотоке. А в исследованиях, проводимых на лабораторных мышах, инфицированных личинками Т. сат^\ у животных были выявлены изменения в гуморальном и клеточном механизмах иммунитета, а
также и у их потомства. Инфицирование привело к значительному увеличению выработки Т-лимфоцитов CD4 и снижению продукции CD8 [18].
Иммунодиагностика токсокароза основана на выявлении в сыворотке крови специфических антител или антигенов паразита. Противотоксокароз-ные антитела выявляются через 4 дня - 4 недели после инвазии и сохраняются в течение многих месяцев и даже лет [16]. Применяются различные иммунологические диагностические тесты для выявления ларвального токсокароза. Используют реакцию связывания комплемента, реакцию непрямой гемагглютинации, реакцию энзим-меченых антител, иммунофермент-ный анализ (ИФА) и др. Эти тесты имеют различную чувствительность и специфичность. Для их постановки используют антигены, приготовленные из возбудителей разных стадий развития (личинки или взрослые паразиты), применяют различные источники антигена (соматические или секреторные) [2, 5, 6, 10]. В России в клинической практике для серодиагностки токсокароза людей применяется диагностическая тест-система, выпускаемая «Ток-сокара-IgG - ИФА - БЕСТ» (ЗАО «Вектор Бест» г. Новосибирск) [15]. На сегодняшний день в России не существует эффективных диагностических систем для обнаружения ларвального токсокароза плотоядных [5].
С помощью ИФА стало возможным определять в крови больных антитела (АТ), относящиеся к разлиным классам ^ (С!, А, М), что существенным образом повысило информативность серологических методов диагностики. АТ при наличии инфекции определяются на очень ранней стадии. Достоверные результаты получают при исследовании парных сывороток крови больного, взятых в начале заболевания (3-7 день) и через 10-12 дней [12].
1£М повышаются вскоре после заболевания. Они определяются уже через 5 дней после его начала и достигают пика в промежутке от одной до четырех недель, затем снижаются до диагностически незначительных уровней в течение нескольких месяцев даже без проведенного лечения. Из-за раннего появления и относительно короткого времени жизни ^М АТ, их детекция позволяет диагностировать острую инфекцию при использовании единичного образца сыворотки. Определение только ^М недостаточно, т.к. отсутствие этого класса АТ еще не говорит об отсутствии заболевания. Острой формы заболевания нет, но может быть хроническая [12].
определяются через 15-20 дней после начала заболевания. Их уровни повышаются медленнее, чем 1£;М АТ, но остаются повышенными дольше, поэтому значительное повышение в двух последовательных образцах, взятых через 2 недели, может показывать текущую инфекцию или реинфек-цию даже при отсутствии 1£;М АТ. могут находиться на низком уровне в течение многих лет [12].
IgA в сыворотке появляются через 10-14 дней после начала заболевания, и вначале их даже можно детектировать в семинальной и вагинальной жидкостях. Уровень ^А АТ обычно снижается к 2-4 месяцу в результате успеш-
ного лечения. При реинфекциях уровень IgA вновь возрастает. Если уровень IgA не падает после проведенного лечения, то это указывает на хроническую или персистирующую формы инфекции [12].
Положительный результат теста сам по себе не может служить основанием для диагноза и не исключает возможности инфекцирования сходными организмами [2, 16]. Появление различного рода перекрестных реакций в экспериментах И.Г. Гламаздин с соавт. (2007) объясняют наличием общих антигенных структур между гельминтов различных видов, родов и даже классов. Авторы согласны с мнением большинства ученых о наличии общих антигенных детерминант у гельминтов и их хозяев и считают первичной задачей иммунохимиков в гельминтологии - выделение белков, которые максимально эволюционировали и отличаются антигенной структурой от белков таксономически близких видов червей. Пикантность данной задачи состоит в том, что эволюцией паразитов, скорее всего, поддерживаются структуры, которые не вызывают острых противоречий с иммунной системой хозяина, т.е. морфологически схожи с белками хозяина. Поэтому остается актуальным анализ сравнительной эффективности серологических тестов выявления токсокароза и классических копрологических методов, а также разработка более современных методов диагностики [5].
Благодаря доступности передовых технологий ДНК, было проведено исследование митохондриального генома T. canis, что обеспечило определение диагностических маркеров в качестве основы для молекулярно-эпиде-миологических и экологических исследований, обнаружения латентных видов и оценки родственных отношений видов Toxocara. В методах, основанных на полимеразной цепной реакции (ПЦР), используют ряд генетических маркеров в ядерном и митохондриальном геномах. ПЦР техника - диагностика, обладающая высокой чувствительностью, специфичностью и скоростью. ПЦР в реальном времени наиболее быстрый метод и может позволить анализ многих образцов в короткий промежуток времени [3, 13].
Основанные на ДНК методы пользуются преимуществом высокой генетической изменчивости в пределах молекулярных маркеров такой как ITS-2 (второй внутренний транскрибируемый спейсер) для дифференциации Т. canis и T. cati от близкородственных видов, а именно T. leonina, T. Vitulo-rum и T. malaysiensis. В своем исследовании Leonid M. Irenge et al. разработали метод двойной количественной ПЦР в реальном времени для быстрой и специфической идентификации яиц T. canis и T. cati в образцах фекалий, а также в пробах почвы из песочниц и игровых площадок. Результаты показывают, что исследования двойной количественной ПЦР в реальном времени чувствительны и специфичны для обнаружения T.canis и / или T. cati в образцах как почвы, так и кала. Эффективность ПЦР была 100 % и 95.8 % для T. canis и T. cati, соответственно. Не наблюдалось ингибирование ПЦР при анализе образцов кала и почвы [19, 20].
Применение метода ПЦР в реальном времени представляется перспективным инструментом для оценки загрязнения окружающей среды яйцами Toxocara spp., точной диагностики токсокароза у плотоядных и других видов животных, дифференциальной диагностики личиночных форм паразитов. Развитие генетических методов определения паразитов должно привести к тотальному контролю над фрагментами опасных патогенов и избавить человека и животных от контакта с инвазионными агентами.
В нашей стране изысканию новых и совершенствованию применяемых методов диагностики всегда уделялось большое внимание. На протяжении ряда лет внедрены в практическую деятельность лабораторий различные диагностические методы выявления гельминтов, что привело к повышению качества исследований и, в конечном итоге, способствовало более эффективному проведению комплекса мероприятий по снижению и ликвидации гельминтозов животных [6].
На сегодняшний день, по нашему мнению, в мировой ветеринарной и медицинской практике накопились большие теоретические знания по токсока-розу и существуют современные технические возможности для решения задачи сведения этого паразитоза к ничтожному минимуму. Необходимо сравнительное определение эффективности методов при токсокарозе (капрологи-ческие, серологические, ПЦР диагностика) для определения их практической значимости и изучения особенностей применения. Должны быть определены принципы создания и создана система контроля над возбудителем токсокаро-за во внешней среде, продуктах питания и в организме домашних животных.
Список литературы:
1. Антипин Д.Н., Ершов В.С., Золотарев Н.А., Саляев В.А. Празитоло-гия и инвазионные болезни сельскохозяйственных животных / Под ред. проф. В.С. Ершова. - М.: Колос, 1964. - 495 с.
2. Бекиш О.-Я.Л., Бекиш Л.Э. Токсокароз: эпидемиологические, диагностические, клинические и терапевтические аспекты // Медицинские новости. - 2003. - № 3. - С. 6-10.
3. Березина Е.С. Популяционная структура, особенности поведения и морфологии свободно живущих собак и кошек и значение этих животных в эпизоотических и эпидемических процессах при бешенстве, токсокарозе и токсоплазмозе: автореф. дисс. ... д.б.н., 2012. - 363 с.
4. Василевич Ф.И., Шевкопляс В.Н. МГАВМиБ им. К.И. Скрябина Научно-производственный журнал «Ветеринария Кубани». - 2012. - № 3.
5. Гламаздин И.Г., Петрушина С.В., Хисамов И.Р. Токсокароз собак, диагностика и методы эпизоотического надзора // Ветеринарный врач. - 2007. -№ 3. - С. 28-31.
6. Гламаздин И.Г., Сысоева Н.Ю., Верховская Г.Л. Классические методы диагностики гельминтозов животных. Прижизненная диагностика гельминтозов. Методы исследования: учебно-методическое пособие. - М., 2004.
7. Гузеева М.В. Роль и место редких гельминтозов в паразитарной патологии в России: автореф. дисс. ... канд. мед. наук. - М., 2009. - 26 с.
8. Демин В.А. Токсокароз собак и усовершенствование мер борьбы с ним: автореф. дисс. ... к.в.н. - 2007. - 20 с.
9. Заиченко И.В. Гельминтозы плотоядных городской популяции (распространение, диагностика, лечение): автореф. дисс. ... канд. вет. наук. -Ставрополь, 2012. - 20 с.
10. Замазий Т.Н., Здор О.А. Особенности эпидемиологии и клиническо-готечения токсокароза в современных условиях // Международный медецин-ский журнал. - 2005. - № 1. - С. 133-135.
11. Зубарева И.М. Основные гельминтозы домашних плотоядных в крупных городах (на примере г Новосибирска): автореф. дисс. ... канд. вет. наук. -Новосибирск, 2001. - 22 с.
12. Лабораторная диагностика инфекций [Электронный ресурс] / Группа компаний «БиоХимМак». - С. 242-296. - Режим доступа: www.biochem-mack.ru.
13. Малышева Н.С., Самофалова Н.А., Григорьев Д.Г., Вагин Н.А., Елизаров А.С., Гладких К.А., Шуйкина Э.Е. Проблема токсокароза в современных условиях и совершенствование подходов к его профилактике // Ученые записки: электронный научный журнал Курского государственного университета. - 2013. - № 1 (25).
14. Солопов П.А. Иммуноферментный метод диагностики токсокароза собак, сероэпизоотологический мониторинг и терапия: дисс. . канд. вет. наук. - Рязань, 2009. - 114 с.
15. Тест-система D-2752 Тиаскар-стрип. Инструкция по применению.
16. Тумольская Н.И., Сергиев В.П., Лебедева М.Н., Мазманян М.В., Полетаева О.Г. и др. Токсокароз. Клиника. Диагностика. Лечение. Профилактика. - Новосибирск, 2004. - 48 с.
17. Фадеева О.В. Токсокароз домашних плотоядных г. Тюмени: автореф. дисс. . канд. вет. наук. - Тюмень, 2007. - 19 с.
18. Шпилевая Т.И., Куропатенко М.В., Тихомирова О.В. Распространенность токсокароза и его особенности у беременных // Сибирский медицинский журнал. - 2008. - № 7. - С. 8-10.
19. Jia Chen, Dong-Hui Zhou, Alasdair J. Nisbet, Min-Jun Xu, Si-Yang Huang, Ming-Wei Li, Chun-Ren Wang, Xing-Quan Zhu. Advances in molecular identification, taxonomy, genetic variation and diagnosis of Toxocara spp. // Journal Infection, Genetics and Evolution. - 2012. - № 12. - Р. 1344-1348.
20. Leonid M Irenge1,Renata Fogt-Wyrwas, Catherine Dumont, Jean-Pierre Doucet, Bernard Mignon, Bertrand Losson, Jean-Luc Gala. Duplex quantitative real-time PCR assay for the detection and discrimination of the eggs of Toxocara canis and Toxocara cati (Nematoda, Ascaridoidea) in soil and fecal samples // Parasites & Vectors. - 2012. - № 5. - Р. 288. - ISSN 1756-3305.
21. Yoshitaka Morimatsu, Nobuaki Akao, Hiroya Akiyoshi, Taketoshi Kawa-zu, Yoshinobu Okabe, Hisamichi Aizawa. Case reports: a familial case of visceral larva migrans after Ingestion of raw chicken livers: appearance of specific antibody In bronchoalveolar lavage fluid of the patients // Am. J. Trop. Med. Hyg. -2006. - № 75(2). - Р. 303-306.
ПРОВЕДЕНИЕ ВЕТЕРИНАРНЫХ ПРОФИЛАКТИЧЕСКИХ МЕРОПРИЯТИЙ В СВИНОВОДСТВЕ
© Семёнов С.В.*
Оренбургский государственный аграрный университет, г. Оренбург
Представлены рациональные способы ветеринарных обработок свиней разного возраста и разного технологического цикла, позволяющие профилактировать развитие инфекционных заболеваний животных бактериальной и вирусной этиологии.
Ключевые слова- свиньи, вакцинация, классическая чума свиней, рожа, профилактика.
Свиноводству отводится первостепенная роль в наращивании производства мяса.
Использование новых высокопродуктивных пород свиней зарубежной селекции способствует в короткие сроки существенно увеличить продуктивность животных и получить качественную и безопасную мясную продукцию.
Свинина отличается высокой калорийностью, хорошими органолепти-ческими качествами, содержит много полноценных белков, незаменимых аминокислот, макро- и микроэлементы, витамины.
Интенсификация отрасли свиноводства является на сегодняшний день решающим фактором, определяющим темп развития отрасли. Она осуществляется путем специализации и концентрации производства, расширения существующих свиноводческих предприятий с внедрением на них современной промышленной технологии.
Одним из важнейших факторов повышения эффективности производства мяса свиней является внедрение технологий, обеспечивающих контроль за физиологическим состоянием животных, контроль показателей продуктивности и т.д.
Основными направлениями развития свиноводства в стране являются разработка и комплексное внедрение новых ресурсосберегающих, экологи-
* Аспирант кафедры Технологии переработки и сертификации продукции животноводства.
