CC BY
24
ЛИТЕРАТУРА
1. Мартьіненко A.B., Яблучанский Н.И. // Вісник Харківського національного університету імені В.Н. Каразіна, серія Медицина. - 2005. - № 705. - випуск 11. - С. 40-47.
АНАЛІЗ ВАРІАБЕЛЬНОСТІ СЕРЦЕВОГО РИТМУ ПРИ АРИТМІЯХ ЗІ ЗБЕРЕЖЕНИМ СИНУСОВИМ РИТМОМ: ФІЗІОЛОГІЧНИЙ ПІДХІД ДО КЛАСТЕРІЗАЦІЇ
О. І і. Мартиненко, М.І. Яблучанський, С.В. Острополець
Харківський національний університет імені В.Н. Каразіна, Україна
РЕЗЮМЕ
Запропоновано метод, що розширює межі застосування технології варіабельності серцевого ритму (ВСР) з її розповсюдженням на аритмії при збереженому синусному ритмі. В основу розробленого методу покладено фізіологічний підхід кластерізації ритмограми, що узагальнено на поняття емпіричної гладкості часового ряду. При розділенні на незалежні джерела реальних записів ВСР вдається виділити гармонійні і стохастичні незалежні джерела, що підтверджує точність процедури і адекватність її результатів фізіологічним уявленням про природу ВСР; обчислені для розділених джерел величини загальної потужності добре корелюють з очікуваними величинами ТР ВСР для даних вікових груп.
КЛЮЧОВІ СЛОВА: варіабельність серцевого ритму, аритмії серця, емпірична гладкість часового раду
HEART RATE VARIABILITY ANALYSIS AT ARRHYTHMIA WITH SAVED SINUS RHYTHM: PHYSIOLOGICAL APPROACH FOR CLUSTERISATION
A. V. Martynenko, M.I. Yabluchansky, S. V. Ostropolec
V.N. Karazin Kharkov National University, Ukraine
SUMMARY
The method extending spectral analysis of heart rate variability (HRV) application for patients with sinus arrhythmia was proposed. The method is based on rhythmogram physiological clusterization that generalized as empirical smooth of time series. Proposed method exactly split mixed signal on true independent sources: we obtain stochastic and harmonic sources when we split real HRV records and TP of harmonic source good correlated with expected TP value for patients’ age group. Thus method extends HRV technology for medical practice.
KEY WORDS: heart rate variability, arrhythmia, empirical smooth of time series
УДК: 616.71:018.46:612.014
ВЛИЯНИЕ В-ЛИМФОЦИТОВ НА ВОССТАНОВЛЕНИЕ КОСТНОГО МОЗГА ОБЛУЧЕННЫХ РЕЦИПИЕНТОВ АЛЛОГЕННОГО МИЕЛОТРАНСПЛАНТАТА
H.H. Попов1, ЕЛ. Романова2
'Харьковский национальный университет имени В.Н. Каразина, Украина
Государственное учреждение «Институт микробиологии и иммунологии имени И.И. Мечникова
АМН Украины», г. Харьков
РЕЗЮМЕ
Целью работы было изучение влияния обогащения аллогенного миелотрансплантата В-лимфоци-тами на восстановление гемопоэза и иммуногенеза облученных реципиентов и возможность развития у них РТПХ. Показано, что применение В-лимфоцитов совместно с миелокариоцитами оказывает стимулирующий эффект на восстановление КОЕ, ядросодержащих клеток, лимфоцитов костного мозга летально облученных реципиентов. Добавление В-лимфоцитов к аллогенному Т-истощенному мие-лотрансплантату способствует формированию толерантности к донорским клеткам и установлению клеточного химеризма.
КЛЮЧЕВЫЕ СЛОВА: трансплантация, лимфоциты, костный мозг
В настоящее время трансплантация гемо-поэтических стволовых клеток широко используется для лечения различных форм лейкозов, лимфопролиферативных заболеваний, аплазий кроветворной ткани, наследственных метаболических нарушений, тяжелых иммунодефицитных состояний. Трансплантация является единственным эффективным способом восстановления гемопоэза и иммуногенеза после общего облучения организма в высоких дозах. Терапевтический эффект применения гемопоэтической ткани в значительной мере зависит от степени гистосовместимости реципиента и трансплантата, клеточного состава трансплантата, функциональной и метаболической активности его клеток. Во многих случаях, включая наследственную патологию, возможна трансплантация только аллогенной ткани. Однако ее применение всегда связано с риском развития таких серьезных осложнений, как реакция трансплантат-против-хозяина (РТПХ) и хозяин-против-трансплантата (РХГТГ). Это угрожает отторжением трансплантата и развитием панцитопении, приводящим к летальному исходу. Избежать этого можно путем создания условий, при которых будет гарантировано развитие толерантности реципиента к донорским клеткам и становление стабильного клеточного химеризма. По нашему мнению, одним из таких подходов к решению данной проблемы может стать конструирование трансплантата с особыми свойствами: наименьшей иммуноагрессивностью, и, напротив, повышенными репопу-ляционной активностью и толерогенностью.
Целью данной работы явилось изучение влияния обогащения аллогенного мие-лотрансплантата В-лимфоцитами на восстановление основных параметров костного мозга облученных реципиентов и развитие РТПХ.
МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ
Экспериментальными реципиентами трансплантата служили самки мышей линии СВА 8-10-недельного возраста массой 20-22 г. Животных облучали в дозе 9 Гр на установке РУМ-17 (38,6 р/мин, при напряжении 220 кУ, силе тока 10 тА, фильтре 1 мм Си +
1 мм А1, кожно-фокусном расстоянии 60 см). Источником клеток костного мозга (ККМ) и В-лимфоцитов служили мыши-самцы линии С57В1 8-10-недельного возраста массой 2022 г.
ККМ получали из бедренных костей. Удаление Т-лимфоцитов из суспензии ККМ производили путем ее обработки анти-ТЬу 1,2-сывороткой и комплементом [1]. Погибшие клетки удаляли с помощью центрифу-
гирования клеточной суспензии на градиенте плотности фиколла-верографина 1,090 [2].
В-лимфоциты выделяли из селезенок животных. Выделив на градиенте плотности фиколла-верографина лимфоциты, обрабатывали их анти-ТЬу 1,2-сывороткой и комплементом. От погибших клеток избавлялись по методу [2].
ККМ, истощенные по Т-клеткам и син-генные им В-лимфоциты трансплантировали реципиентам в дозе 5><10б на мышь в первые 6-8 часов после облучения.
Были сформированы следующие группы животных:
1 группа - облученные реципиенты + 5х 10б Т-истощенных аллогенных ККМ;
2 группа - облученные реципиенты + 5х10б Т-истощенных аллогенных ККМ + 5х 10б аллогенных В-лимфоцитов;
3 группа - облученные реципиенты + 5 х Юб сингенных ККМ интактных животных;
4 группа - интактные необлученные мыши СВА.
Основные морфофункциональные параметры костного мозга (абсолютное содержание ядросодержащих клеток, лимфоцитов, колониеобразующих единиц (КОЕс) в бедренной кости, популяционный состав лимфоцитов в костном мозге, их активность в смешанной культуре лимфоцитов (СКЛ) исследовались на 10, 15, 20, 30, 45 сутки после трансплантации.
Содержание КОЕс в костном мозге облученных животных изучали методом ТШ, МсСиПосЬ. 1961 [3]. Колонии в селезенках подсчитывали микроскопически после фиксации их в растворе Буэна. Тип гемопоэти-ческих колоний определяли на гистологических препаратах, приготовленных из органов.
О приживлении и активном пролифери-ровании донорских клеток самцов С57В1 в организме реципиентов (самок СВА) судили, используя метод метафазных пластин, учитывая клетки, содержащие донорскую У-хромосому самцов [4].
Относительное содержание лимфоцитов в костном мозге определяли микроскопически в мазках костного мозга, окрашенных по Романовскому-Гимзе. Абсолютное количество лимфоцитов в костном мозге подсчитывали на основании абсолютного числа ядросодержащих клеток костного мозга и относительного содержания в нем лимфоцитов.
Популяционный состав лимфоцитов костного мозга изучали методом иммунофлюоресценции, используя анти-ц и анти -ТЬу 1,2 антитела, меченные ФИТЦ [5,6].
Влияние лимфоцитов, генерируемых костным мозгом облученных животных, на
развитие РТПХ и РХПТ было изучено в двунаправленной CKJ1 [7]. Реакцию проводили в микроварианте в планшете Cook. Для проведения реакции использовали лимфоциты селезенки интактных мышей СВ А и С57В1. К смеси эквивалентных количеств х{® 4)
этих клеток добавляли такое же количство лимфоцитов костного мозга облученных реципиентов. Смешанную культуру клеток инкубировали при Т=2ПС с автоматической подачей 5% С02 в течение 120 часов. После окончания инкубации в каждую лунку вносили 37 кБк 3Н-тимидина. Через 16 часов после внесения тимидина суспензии переносили на милипоровые фильтры и обрабатывали в соответствии с инструкцией. Активность включения 3Н-тимидина в клетки измеряли Haß-счетчике «Becman-7800» (Австрия), результат реакции клеток в CKJ1 выражали в абсолютных величинах (имп/мин). Контролем служили CKJ1, в которые не вносили лимфоциты облученных животных.
В экспериментах было использовано по 57-60 самок-реципиентов СВА (в интактном контроле - 20 животных) для каждой группы, 25 самцов С57В1 - доноров миелокарио-цитов и лимфоцитов для 1 и 2 групп, 12 самцов СВА - доноров миелокариоцитов для 3 группы.
При статистическом анализе результатов использовали параметрические методы. Для выявления значимых различий сравниваемых показателей применяли t-критерий
Стьюдента. Различия считали достоверными при уровне значимости р<0,05. Данные приведены в виде среднего арифметического значения М и среднеквадратичного отклонения о.
РЕЗУЛЬТАТЫ И ОБСУЖДЕНИЕ
Проведенные исследования показали, что добавление к аллогенному миелотрансплан-тату, истощенному по Т-клеткам, сингенных В-лимфоцитов (аллогенных реципиенту) оказывает потенцирующее влияние на восстановление косного мозга облученных реципиентов, накопление в органе пула лимфоидных клеток, восстановление числа ге-мопоэтических стволовых клеток (КОЕс) (табл. 1, 2, 3). Такие реципиенты по темпам репопуляции костного мозга опережали животных, получивших Т-истощенный мие-лотрансплантат, приближаясь к реципиентам интактных миелокариоцитов. У животных, получивших аллогенный лимфомиелотранс-плантат, и реципиентов сингенного интакт-ного миелотрансплантата восстановление клеточности костного мозга, содержания в нем лимфоидных клеток и КОЕс происходило к 30-м поттрансплантационным суткам, тогда как у реципиентов Т-истощенного ал-ломиелотрансплантата в этот период данные параметры костного мозга составляли 6480% от нормы. При этом в наибольшей степени задерживалось восстановление лимфоидного пула клеток.
Таблица 1
Численность ядросодержащих клеток (х106) в костном мозге облученных животных после трансплантации аллогенных ККМ, истощенных по Т-клеткам, per se (1) и в сочетании
с В-лимфоцитами (2) (М±о)
Сутки после трансплантации Группы животных
1 2 3
10 3,1±0,3 4,9±0,5* 6,0±0,4**
15 4,8±0,5 7,3±0,7* 10,2±0,6**
20 5,9±0,6 8,9±0,9* 11,8±0,7**
30 10,2±1,1 14,1±1,2* 15,9±1,1**
45 9,1±1,0 14,5±1,1* 15,1±1,1**
Примечания: 1. Количество ядросодержащих клеток в бедренной кости нормальных интактных мышей составляет (14,8±0,7)хЮ6
2. * - достоверность отличий показателей животных группы 2 по сравнению с показателями животных группы 1 (р<0,05);
** - достоверность отличий показателей животных группы 3 по сравнению с показателями животных группы 1 (р<0,05).
Т аблица 2
Абсолютное содержание лимфоидных клеток (хЮ6) в костном мозге облученных животных после трансплантации аллогенных ККМ, истощенных по Т-лимфоцитам, per se (1) и в сочетании с В-лимфоцитами (2) (М±о)
Сутки после трансплантации Г руппы животных
1 2 3
10 0,07±0,005 0,41±0,04* 0,48±0,03**
15 0,29±0,02 0,83±0,07* 0,93±0,09**
20 0,56±0,04 1,09±0,12* 1,22±0,14**
30 1,76±0,16 2,48±0,21* 2,86±0,20**
45 1,51±0,16 2,77±0,20 2,75±0,19**
Примечания: 1. Количество лимфоидных клеток в одной бедренной кости нормальных интактных животных составляет (2,73±0Д5)хЮ6.
2. * - достоверность отличий показателей животных группы 2 по сравнению с показателями животных группы 1 (р<0,05);
** - достоверность отличий показателей животных группы 3 по сравнению с показателями животных группы 1 (р<0,05).
Т аблица 3
Абсолютное содержание КОЕс и тип гемоиоэтических колоний в костном мозге облученных животных после трансплантации аллогенных ККМ, истощенных по Т-лимфоцитам, per se (1)
и в сочетании с В-лимфоцитами (2) (М±о)
Сутки после Г руппы Абсолютное число Э/М Недиф ференци-
трансплантации животных КОЕс колонии рованные колонии, %
1 34,8±3,9 3,0 57,6
10 2 48,5±4,3* 2,7 41,3*
3 65,8±7,3** 2 3** 30,1**
1 258,9±26,1 2,8 51,4
15 2 294,2±30,0 2,5 34,0*
3 347,1±32,4** 2,0** 26,2**
1 636,9±64,5 2,6 32,5
20 2 736,4±73,8 2,4 23,1*
3 825,9±71,1** 2,1** 15,8**
1 1301,5±137,6 2,6 22,3
30 2 1507,1±160,7 2,5 11,0*
3 1646,3±136,6** 2,4 10,0**
1 1290,6±129,7 2,1 29,4
45 2 1593,4±143,4* 2,3 10,1*
3 1623,1±151,2** 2,3 8,3**
Примечания: 1. Количество КОЕс в костном мозге нормальных интактных животных составляет 1630,0±101Д соотношение эритроидных и миелоидных колоний (Э/М) - 2,3, содержание недифференцированных колоний - 7,6%.
2. . * - достоверность отличий показателей животных группы 2 по сравнению с показателями животных группы 1 (р<0,05);
** - достоверность отличий показателей животных группы 3 по сравнению с показателями животных группы 1 (р<0,05).
Обращает внимание, что к концу эксперимента (45-м посттрансплантационным суткам) у животных, получивших аллоген-ные Т-истощенные ККМ, наблюдается снижение клеточности костного мозга и содержания лимфоцитов по сравнению с предыдущим этапом (30-е сутки), что может свидетельствовать о развитии иммунного конфликта между аллогенными донорскими клетками и организмом реципиента.
Цитогенетическое исследование ККМ облученных реципиентов 1 и 2 групп показало, что на 10-15-е сутки репопуляция органа происходит за счет исключительно донорских миелокариоцитов, несущих маркерную Y-хромосому. На 20-45-е сутки среди ККМ регистрируются миелокариоциты реципи-ентского происхождения. На 20-е сутки после трансплантации у животных 1 группы их содержание составляло 3%, у животных 2 группы - 7%; на 30-е сутки - 6 и 13% соответственно; на 45-е сутки - 15 и 17%.
Анализ фенотипического состава лимфоцитов облученных реципиентов определил, что у животных 1 и 2 групп они были представлены пре-В-лимфоцитами (ф,+ s|f), зрелыми В-лимфоцитами (s|i ) и ноль-лимфоцитами (табл. 4). Thy 1,2-лимфоциты у животных этих групп до 20-х суток отсутствовали, на 30-е сутки их количество составляло 0,9-1,3%, на 45-е сутки - 3,0-3,1%. Характерным является то, что у животных, получивших комбинированный трансплантат, темпы созревания В-лимфоцитов значительно выше, чем у реципиентов, получивших Т-истощенный миелотрансплантат и живот-ных-реципиентов интактных сингенных миелокариоцитов.
Изучение функциональной активности
лимфоцитов костного мозга показало, что с 20-х посттрансплантационных суток у животных 2 группы, в отличие от животных 1 группы, появляются лимфоциты с супрессорными свойствами. Будучи добавленными в двунаправленную СКЛ, в которой отвечающими и стимулирующими клетками выступают интактные клетки донорского генотипа и реципиентов, эти лимфоциты вызывают усиление реакции на 90% (табл. 5). У реципиентов аллогенного лимфомие-лотрансплантата в течение всего периода наблюдения также не отмечалось развития спленомегалии как признака развития РТПХ. Напротив, для реципиентов аллогенных ККМ, истощенных по Т-клеткам, спленоме-галия была характерным явлением, регистрируясь у всех животных на 45-е сутки после трансплантации.
Учитывая, что у реципиентов лимфомие-лотрансплантата в течение всего посттранс-плантационного периода наблюдался динамичный рост клеточности костного мозга, КОЕ, восстановления лимфоидного пула, а также отсутствие спленомегалии, можно констатировать, что в ситуации пересадки аллогенных ККМ совместно с В-лимфоцитами у реципиентов не наблюдается развития иммуноконфликта, способного влиять на восстановление гемо- и лимфопо-эза. Можно заключить, что обогащение В-лимфоцитами аллогенного Т-истощен-ного миелотрансплантата способствует формированию толерантности к клеткам донора и становлению клеточного химеризма. Это приводит к устойчивому приживлению донорских клеток и, как следствие, стабилизации гемо- и иммунопоэза.
Т аблица 4
Популяционный состав лимфоцитов костного мозга облученных животных после трансплантации аллогенных ККМ, истощенных по Т-лимфоцитам, per se (1) и в сочетании с В-лимфоцитами (2) (М±о)
Сутки после Г руппы Относительное содержание клеток, %
трансплантации животных -|- — СЦ S(t S(t Thy 1,2+ Ноль-клетки
1 32,0±1,6 5,2±0,4 - 55,8±2,3
10 2 46,5±2,1* 16,6±0,9* - 36,9±1,8*
3 36,0±1,5** 9,9±0,5** 6,3±0,2** 47,8±2,1
1 32,6±1,7 7,3±0,4 - 60,1±3,1
15 2 40,6±1,8* 31,0±1,9* - 28,4±1,6*
3 37,7±1,6 16,1±0,8** 6,1±0,2** 40,1±1,6**
1 33,4±1,8 14,5±0,8 - 52,1±2,7
20 2 35,1±1,9 36,1±1,9* - 28,8±1,6*
3 37,4±1,8 21,4±1,3** 5,1±0,2** 36,1±1,9**
1 33,1±1,6 26,1±1,4 1,3±0,1 39,5±2,1
30 2 32,4±1,5 38,6±2,1* 0,9±0,01 28,1±1,5*
3 35,7±1,4 34,1±1,9** 2,6±0,1** 27,6±1,2**
1 31,8±1,8 29,1±1,5 3,0±0,1 36,1±2,0
45 2 30,9±1,6 39,7±2,2* 3,1±0,1 26,3±1,6**
3 29,6±1,4 40,5±2,0** 3,2±0,1 26,7±1,3**
Примечания: 1. Популяционный состав лимфоцитов костного мозга нормальных интактных животных: cu su~ клетки -29,2±1,2%, s|i+ клетки - 40,1±2,0%, Thy 1,2+ клетки - 3,3±0Д%, ноль-клетки - 27,4±1,2%.
2 . * - достоверность отличий показателей животных группы 2 по сравнению с показателями животных группы 1 (р<0,05);
** - достоверность отличий показателей животных группы 3 по сравнению с показателями животных группы 1 (р<0,05).
Т аблица 5
Влияние лимфоцитов костного мозга облученных животных после трансплантации аллогенных ККМ, истощенных по Т-лимфоцитам, per se (1) и в сочетании с В-лимфоцитами (2), на реакцию
клеток в CKJI (М±о)
Сутки получения лимфоцитов из костного мозга облученных животных Уровень включения JH-THMHflHHa в СКЛ, имп/мин
1 2
10 50123±6031 50123±5124
15 49673±4836 4974±506*
20 49715±5034 3789±403*
30 48165±5165 3784±401*
45 54073±5581 3491±396*
Примечания: 1. Уровень включения Н-тимидина в CKJI (лимфоциты СВА+лимфоциты С57В1)(контроль) - 50067±5286.
2. 1 - СКЛ (лимфоциты СВА+лимфоциты С57В1+лимфоциты облученных реципиентов 1-й группы); 2 - СКЛ (лимфоциты
СВА+лимфоциты С57В1+лимфоциты облученных реципиентов 2-й группы).
3. * - достоверность отличий показателей 1 по сравнению с показателями 2 (р<0,05).
ВЫВОДЫ
1. Обогащение В-лимфоцитами аллогенно-го Т-истощеиного миелотрансплантата оказывает стимулирующий эффект на восстановление КОЕ, ядросодержащих клеток, лимфоцитов костного мозга летально облученных реципиентов.
ЛИТЕРАТУРА
1. Калинкович А.Б., Пинегин Б.В., Орлов Э.В. и др. //Иммунология. - 1986. - №2. - С. 31-34.
2. Davidson W.F., Parish C.R. // J.Immunol.Meth. - 1975. - Vol.7. - №2-3. - P. 291-300.
3. Till J.E.,McCullochE.A. //Radiation Res. - 1961. - Vol. 14. -№12. - P. 213-233.
4. Получение хромосомных препаратов лимфоидных клеток / Иммунология: Практикум / Е.У. Пастер, В.В. Овод, В.К. Позур, Н.Е. Вихоть. -К.:Вьпца школа. - 1989. - С. 254-264.
5. Pietrangeli С.Е., Osmond D.G. // Cell Immunol. - 1987. - Vol. 107. - №2. - P. 348-357.
6. Goldshneider J. // Cell Immunol. - 1976. - Vol. 24. - № 2. - P. 289-307.
7. Зарецкая Ю.М. Смешанная культура лимфоцитов / Клиническая иммуногенетика. -М.: Медицина. - 1983. - С.47-50.
2. Обогащение аллоге иного миелотрансплантата, истощенного по Т-клеткам, В-лимфоцитами способствует становлению клеточного химеризма в организме реципиента, оказывая на него толерогенное влияние.
ВПЛИВ В-ЛІМФОЦИТІВ НА ВІДНОВЛЕННЯ КІСТКОВОГО МОЗКУ ОПРОМІНЕНИХ РЕЦИПІЄНТІВ АЛОГЕННОГО МІЄЛОТРАНСПЛАНТАТУ
М.М. Попов1, О.А. Романова2
'Харківський національний університет імені В.Н. Каразіна, Україна
2Державна установа «Інститут мікробіології та імунології імені 1.1. Мечникова АМН України», м. Харків
РЕЗЮМЕ
Метою роботи було вивчення впливу збагачення алогенного мієлотрансплантату В-лімфоцитами на відновлення гемопоезу та імуногенезу опромінених реципієнтів та можливість розвитку в них РТПХ. Показано, що застосування В-лімфоцитів сумісно з мієлокаріоцитами справляє стимулюючий ефект на відновлення КУО, ядромістких одиниць, лімфоцитів кісткового мозку летально опромінених реципієнтів. Додавання В-лімфоцитів до Т-виснаженого мієлотрансплантату сприяє формуванню толерантності до донорських клітин і встановленню клітинного хімеризму.
КЛЮЧОВІ СЛОВА: трансплантація, лімфоцити, кістковий мозок
INFLUENCE OF B-LYMPHOCYTES ON BONE MARROW RECOVERY OF THE IRRADIATED RECIPIENTS OF ALLOGENIC MIELOTRANSPLANT
N.N. Popovl, E.A. Romanova2
'V.N. Karazin Kharkov National University, Ukraine
2State establishment «I.I Mechnykov Institute of Microbiology and Immunology of the Academy of Medical Science of Ukraine», Kharkiv
SUMMARY
The study of influencing of enriching allogenic mielotransplant by B-lymphocytes on recovery of hemopoiesis and immunogenesis of the irradiated recipients and possibility of development at them GVHD was the purpose of work. It is rotined that application of B-lymphocytes is joint with mielocariocytes renders a stimulant effect on renewal total organcellularity, number of CFU, lymphocytes of bone marrow of the lethally irradiated recipients. Adding of B-lymphocytes to allogenic T-depleted mielotransplant is instrumental in forming of tolerance to the donor cells and establishment of cellular chimerism.
KEY WORDS: transplantation, lymphocytes, bone marrow
УДК: 616-018.1-095:578.245-078
АССОЦИИРОВАННЫЕ ИНФЕКЦИИ ПРИ ХРОНИЧЕСКИХ ВОСПАЛИТЕЛЬНЫХ ЗАБОЛЕВАНИЯХ МОЧЕПОЛОВОГО ТРАКТА
A.B. Скрипченко, М.В. Смелянская, С.Д. Перемот, А.В.Мартынов
Государственное учреждение «Институт микробиологии и иммунологии имени И.И. Мечникова АМН Украины», Харьков
РЕЗЮМЕ
Ассоциации внутриклеточных инфекций и трихомонад в этиологии хронических воспалительных заболеваний мочеполовых органов у мужчин выявлены в 97% случаев. Чаще всего (более 60%) выявлены ассоциации трех инфекционных агентов, один из которых - трихомонада. Наличие в ассоциации вирусного агента (ВПГ или ЦМВ) обусловливает более тяжелое клиническое течение заболевания мочеполового тракта.
КЛЮЧЕВЫЕ СЛОВА: ассоциации инфекций, хроническое воспаление, мочеполовая система
В последнее время все больше специалистов проявляют интерес к изучению проблемы роли внутриклеточных агентов в этиологии воспалительных заболеваний урогени-
тального тракта человека. Это связано с тем, что инфекции, вызванные этими патогенами, значительно распространены во всех странах мира и в последние 10-15 лет отмечается
