CC BY
12
УДК [635.652;631.873];631.589 DOI 10.48136/2222-0364_2021_4_53
Я.В. ПУХАЛЬСКИЙ1, 2, Н.Г. КАЗЫДУБ3, СИ. ЛОСКУТОВ2, 4, АС. МИТЮКОВ1, Ю.В. ЛАКТИОНОВ5, Н И. ВОРОБЬЕВ5, А.П. КОЖЕМЯКОВ5
1 Институт озероведения Российской академии наук, Санкт-Петербург Ленинградский государственный университет им. А.С. Пушкина, Санкт-Петербург 3Омский государственный аграрный университет им. П.А. Столыпина, Омск 4Филиал Федерального научного центра пищевых систем им. В.М. Горбатова, Российская академия наук, Санкт-Петербург
5Всероссийский научно-исследовательский институт сельскохозяйственной микробиологии, Пушкин, Санкт-Петербург
ВЛИЯНИЕ САПРОПЕЛЕВЫХ НИТРАГИНОВ НА ПРОРОСТКИ СОРТОВ ФАСОЛИ ОМСКОЙ СЕЛЕКЦИИ ПРИ ВЫРАЩИВАНИИ В УСЛОВИЯХ ГИДРОСВЕТОКУЛЬТУРЫ
Работа выполнена в рамках государственного задания ИНОЗ РАН - СПб. ФИЦ РАН по теме № 0154-2019-0002.
Показан эффект от применения органо-бактериальной композиции, обладающий стимулирующим и адаптогенным действием на развитие проростков фасоли, культивируемой в условиях закрытой гидросветокультуры. Лабораторные опыты проведены на сортах Омского ГАУ, различающихся по соотношению урожайности семян к массе их клубеньков - сорт Маруся, овощного использования, и сорт Лукерья, зернового назначения. Повторность в опыте 3-кратная. На каждый вариант приходилось по 18 семян. В работе использованы методы визуального анализа: наблюдение, подсчет и измерение над- и подземных органов растений. Полученные результаты свидетельствуют о том, что данная биокомпозиция оказала выраженное стимулирующее воздействие на развитие биомассы проростков фасоли на начальном этапе онтогенеза. Наблюдались различия по показателям длины. Так, у сорта Лукерья инокуляция сделала растения более низкорослыми. У сорта Маруся подобного эффекта не наблюдалось.
Ключевые слова: фасоль, сорт, нитрагины, УДГСС, гидропоника, светокультура.
Введение
Среди зернобобовых культур фасоль (Phaseolus vulgaris L.) занимает особое место благодаря ее важной роли в обеспечении продовольственной безопасности РФ. В уникальном биохимическом составе содержится до 3% липидов, 46% углеводов и 34% белков, близких по консистенции к полноценным пищевым волокнам животного происхождения. Значение последнего показателя делает культуру равной чечевице (Lens culinaris). Также фасоль богата витаминами, важными биофильными элементами (особенно калием, магнием и железом), органическими и аминокислотами. Кроме того, в отличие, например, от сои (Glycine max), она не обладает аллергенными свойствами [1].
По данным ФАО за 2016 г., фасоль занимала наибольшие площади в мире -29,2 млн га [2]. В России посевы достигают лишь 3,9 тыс. га, а валовый сбор зерна не превышает 6,0 тыс. т., конечно, это недостаточно для обеспечения самодостаточного и полноценного рациона питания населения страны данной культурой [3; 4].
Благодаря изменению климата, связанному с глобальным потеплением, ареал ее возможного возделывания расширился на центральную и северо-западные части Рос-
© Пухальский Я.В., Казыдуб Н.Г., Лоскутов С.И., Митюков А.С., Лактионов Ю.В., Воробьев Н.И., Кожемяков А.П., 2021
сийской Федерации. Однако сдерживающий фактор ее нормального культивирования заключается в недостатке степени освещенности данных климатических зон. С учетом зональных особенностей конкретных регионов проблему повышения урожайности в современном интенсивном сельском хозяйстве необходимо совмещать с селекционными работами, направленными на выведение новых скороспелых адаптационных сортов, а также с использованием технологий возделывания культуры с помощью инокуляции семян микробиологическими препаратами и органическими биостимуляторами. Вопрос относительно совместного применения нитрагинов, созданных на основе штаммов полезных клубеньковых бактерий, с различными микробными препаратами (на основе штаммов ассоциативных PGPB-ризобактерий и AMF-грибов арбускулярной микоризы) подробно рассматривался в диссертациях С.Н. Белобровой и М.В. Барбашова [5; 6]. Было показано, что наибольший эффект, связанный с повышением продуктивности фасоли, выращиваемой в условиях северной части Центрально-Черноземного и СевероЗападного регионов РФ, оказывало бинарное или смешанное внесение биопрепаратов. В случае же моноинокуляции только клубеньковыми бактериями различных родов надежность образования эффективного симбиоза напрямую зависела от сортовой отзывчивости макросимбионта. Появились результаты исследований, которые говорят об отсутствии нодуляции на отдельных сортах фасоли [7]. Несмотря на высокую пластичность и симбиотрофность растения к данным эндосимбионтам [8], традиционно среди них выделяют комплементарные штаммы Rhizobium [9]. Так, на примере штаммов Bra-dyrhizobium diazoefficiens и Bradyrhizobium elkanii показана их малая эффективность при одиночной колонизации меристемы корней культивара. Однако отмечено небольшое увеличение симбиотического взаимодействия при совместном внесении Rhizobium tropici [10].
Исследований, сочетающих изучение интегральных связей между агрономически полезными свойствами клубеньковых бактерий со стабилизирующими особенностями использования органических биостимулирующих соединений, еще недостаточно. Можно выделить работу по описанию методики создания стабильных форм биопрепаратов [11], где на примере клубеньковых бактерий для сои и козлятника (Galega officinalis) - Bradyrhizobium japonicum и Rhizobium galegae показано изменение динамики их титра под влиянием дополнительного внесения в питательную среду стабилизирующих добавок в виде полигуматов на основе сапропеля.
Традиционно фасоль выращивают в условиях открытого грунта. Отмечено, что выращивание культуры через рассаду ведет к увеличению общего и раннего урожая зеленых бобов [12]. Поэтому здесь актуален способ использования вертикальных многоярусных фитоферм или закрытых гроубоксов с системой поддержания внутреннего микроклимата и возможностью культивирования растений в условиях гидропоники (рис. 1).
Подобные методы уже активно практикуют при выращивании фасоли в зимних теплицах в Польше, Турции, США, Мексике, Греции и Израиле [13-17]. В данных фи-токомплексах семена рассаживают в пластиковые стаканчики (заполненные минеральной ватой или кокосовым субстратом), установленные в отверстия крышек пластиковых поддонов, наполненных питательным раствором с добавкой бактериальной суспензии. При выращивании в закрытых гроубоксах семена раскладывают на ровные плотики с отверстиями, сделанные из поливинилхлорида (ПВХ), или на сетчатые мостики из нержавеющей стали, которые затем погружают в пластиковые стаканчики, также заполненные жидким питательным раствором. Данная модель - аналог гнотобиотической системы и может быть использована для стерильных опытов. Такие способы бессуб-
стратного культивирования с использованием клубеньковых бактерий - основной резерв для оптимизации условий роста, позволяют растению уже на раннем этапе онтогенеза (ювенильной фазе роста) быстрее сформировать бобово-ризобиальную симбиосисте-му. Также вследствие отсутствия адсорбирующей способности почв [18] это позволяет лучше подбирать необходимые концентрации солей минеральных удобрений и органических биостимулирующих веществ при их дополнительной интродукции в среду.
Рис. 1. Примеры фитотехсистем для выращивания фасоли методом гидросветокультуры
Поскольку фасоль - весьма свето- и теплолюбивая культура, в данных условиях можно осуществлять функции подогрева субстрата, а также подбора и оптимизации энергоспектрального состава инсоляции. Как отмечено ранее, фактор света весьма важен для данной культуры при возделывании в северных регионах, особенно в фазе цветения и при закладке генеративных органов. Таким образом, в подобных фитотехком-плексах можно проводить исследовательские работы, направленные на выведение новых сортов (например - получение гибридов) или повышение адаптационного потенциала у существующих путем акклиматизации и закаливания.
Целью данной работы являлась оценка применения защитно-стимулирующей биокомпозиции на основе совместного использования клубеньковых бактерий и поли-гуматов при выращивании семян фасоли в условиях гидропоники и интенсивной светокультуры. Задача исследования - изучение изменения морфобиометрических показателей растений фасоли (длины и веса/массы) в фазу всходов и активного роста над- и подземной биомассы в зависимости от применения органо-бактериальной композиции.
Материалы и методы Лабораторный опыт проведен на базе научно-образовательного центра НОЦ «Зимний сад», созданного при ЛГУ им. Пушкина (СПб. - г. Пушкин). Для экспериментов выбраны два контрастных сорта фасоли омской селекции, различающихся по соотношению урожайности семян к массе их клубеньков [19] - сорт овощного использования Маруся и сорт зернового назначения Лукерья. Для эксперимента отбирали хорошо
выровненные и выполненные семена, без механических повреждений, не пораженные болезнями и вредителями.
Семена растений высаживали в пластиковые сосуды объемом 0,3 л, заполненные питательным раствором, приготовленным на основе дистиллированной воды, при добавлении солей до следующего композиционного состава: Ca(NO3)2 х 4H2O (100 цМ); K2HPO4 х 3H2O (600 цМ); MgSO4 х 7H2O (300 цМ); CaCl2 х 2H2O (100 цМ); KCl (300 цМ); KNO3 (1000 цМ); FeC4H4O6 х 2.5H2O (10 цМ); H3BO3 (2 цМ); MnSO4 (4 цМ); ZnSO4 (3 цМ); NaCl (6 цМ); Na2MoO4 (0,06 цМ); CuCl2 (0,06 цМ); NiCl2 (0,06 цМ); KJ (0,06 цМ); KBr (0,06 цМ); pH = 5,5. Выбор питательного раствора обоснован работой с выращиванием растений гороха на гидропонике [20]. Данный вариант в опыте был контрольным.
Параллельно были заложены варианты с совместным внесением в субстрат ультрадисперсной фракции гумато-сапропеля в концентрации 300 ppm, и/или 1,0% суспензии штаммов клубеньковых бактерий - Rhizobium phaseoli, специально отселектиро-ванных под растения фасоли. Жидкий экстракт ультрадисперсной гумато-сапропелевой суспензии (УДГСС) получен из Института озероведения (ИНОЗ РАН), филиала ФИЦ СПб. РАН. Экологически чистый сапропель доставлен из месторождения деревни Ер-молино Псковской области.
В таблице приведен качественный и количественный состав биофильных элементов и низкомолекулярных соединений полигуматов сапропеля, полученный с помощью масс-спектрометра Agilent 7500 (США) и ВЭЖХ LC 1200 (Agilent Technologes, США). Анализ проведен в лаборатории НПО ООО «БиоЭкоТех» (Санкт-Петербург).
Комплементарные штаммы ризобий предоставлены компанией «ЭКОС» (Санкт-Петербург), филиалом Института сельскохозяйственной микробиологии (ФГБНУ ВНИИСХМ).
Схема опыта представлена ниже:
1) Контроль (минеральные соли)
2) Соли + УДГСС
3) Соли + Rhizobium phaseoli
4) Соли + УДГСС + Rhizobium phaseoli
Элементный и композиционный состав низкомолекулярных фракций УДГСС
Сахара, мг/л Аминокислоты, мкг/л Органические кислоты, мг/л Ароматические кислоты, мкг/л
Мелибиоза 168,30 Метионин 1,20 Фумаровая 0,13 Феруловая 16,10
Мальтоза 534,00 Валин 22,80 Уксусная 51,24 Паракумаровая 13,77
Ксилоза 87,87 Гистидин 4,60 Щавелевая 0,56 Сиреневая 15,58
Рибоза 223,10 Глицин 1,41 Винная 0,38 Ванилиновая 18,10
Глюкоза 0,61 Глутаминовая 15,81 Янтарная 0,24 Тирозин 5,00
Галактоза 2,48 Серин 26,40 Галловая 0,02 Фенилаланин 0,90
Арабиноза 23,00 Лейцин 10,80 Яблочная 0,05
Изолейцин 7,07 Адипиновая 0,08
Аспарагин 4,73
Алании 1,47
Триптофан 0,18
Треонин 7,50
Лизин 15,00
Аргинин 10,00
Элементный состав УДГСС, мг/г
Ca Na K Mg Ba B Zn Fe Co Mo Cu Ni Al Cd Pb
12,3 5,5 10,4 1,3 0,1 0,02 0,05 9,4 0,0 0,0 0,02 0,0 2,8 0,0 0,0
Перед посевом семена каждого сорта поверхностно стерилизовали 3%-ным пе-роксидом водорода в течение 5 мин. Имеются сведения, что, помимо выполнения функции поверхностной элиминации, данная молекула является вторичным мессенд-жером при передаче сигнальной реакции в растительных клетках и опосредованно влияет на запуск физиолого-биохимических процессов для прорастания семян [21-26]. После обработки семена были разложены в пластиковые контейнеры с сетками для проращивания в темноте при температуре 20°С (рис. 2).
Рис. 2. Процесс стерилизации и проращивания семян для их последующей рассады в пластиковые сосуды, заполненные питательной биосуспензией
Проклюнувшиеся семена (6 шт.) раскладывали на сетки из нержавеющей стали, помещенные сверху сосудов. Эксперименты проведены в 3-кратной повторности. На каждый вариант, таким образом, приходилось по 18 растений.
Растения культивировали в климатической камере (гроубоксе) - 0,6*0,4*0,6 м производства НПО ООО «БиоЭкоТех» ^ = 24-26°С, ф = 80%) в течение 10 сут (рис. 3). Рабочая площадь для прихода фотосинтетической активной радиации (ФАР) - 0,24 м2.
Рис. 3. Схематичное изображение внешнего вида закрытого гроубокса с фитолампами полного спектра. Приведена спектрограмма режима инсоляции
В качестве единственного источника освещения использовали пять светодиодных фитоламп полного спектра общей мощностью 90 Вт производства компании SpecLED (Ra = 88,3; PPFD (PAR) = 387,0/мкмольм-2 с-1 (25 800 Lx); Ee (ФАР) = 109,1 Ватт/м2). Пересчитывали люксы в мкмоли согласно формуле для белого света [27]. Высота подвеса LED-светильников в гроубоксе до апикальной точки роста равнялась 45 см. Срок фотопериодизма составил 16 ч день / 8 ч ночь.
Все статистические расчеты проводены с использованием программы PAST (версия 4.04).
Результаты исследований
Всхожесть сортов составила 80%. Отмечено, что во время прорастания у сорта Лукерья зернового использования процесс набухания семян при насыщении их влагой происходил более интенсивно по сравнению с сортом овощного назначения Маруся.
Изменения биометрических параметров на 10-е сут выращивания у разных сортов под воздействием различных биостимуляторов приведены на рис. 4-5.
Наибольшие статистические различия (<0,0001) обнаружены по длине побегов у сорта фасоли Маруся между вариантами: УДГСС и Контроль; Rhizobium phaseoli и Контроль; УДГСС + Rhizobium phaseoli и Контроль. Также найдены различия (<0,0001) по биомассе корней у сорта Лукерья между вариантами: УДГСС + Rhizobium phaseoli и Контроль; УДГСС + Rhizobium phaseoli и + УДГСС; Rhizobium phaseoli и Контроль; Rhizobium phaseoli и + УДГСС.
Показатели длины корней (*± БЕ) сорта Лукерья по вариантам опыта Показатели длины корней ('± 5Е) сорта Маруся по вариантам опыта
Показатели длины побега (г± 5Е) сорта Лукерья по вариантам опыта Показатели длины побега (' ± БЕ) сорта Маруся по вариантам опыта
Рис. 4. Показатели изменения длины фасоли в зависимости от внесения в питательный субстрат биокомпозиционных добавок в виде УДГСС и/или суспензии клубеньковых бактерий (10-е сут проращивания): 1 - Rhizobium phaseoli; 2 - УДГСС; 3 - УДГСС + Rhizobium phaseoli; 4 - Контроль
Показатели массы корня (*± 5Е) сорта Лукерья по вариантам опыта Показатели массы корня (" ± БЕ) сорта Маруся по вариантам опыта
Показатели массы побега (* ± БЕ) сорта Лукерья по вариантам опыта Показатели массы побега (1 ± 5Е) сорта Маруся по вариантам опыта
Рис. 5. Показатели изменения биомассы фасоли в зависимости от внесения в питательный субстрат
биокомпозиционных добавок в виде УДГСС и/или суспензии клубеньковых бактерий (10-е сут проращивания): 1 - ЯИгжЬшт рка^'ввИ; 2 - УДГСС; 3 - УДГСС + ЯИгюЬтт рка^евИ; 4 - Контроль
Инокуляция обоими биостимуляторами на сорте Лукерья повысила биомассу органов, однако сделала растения более низкорослыми. Вероятно, у растений произошли активизация фотоассимиляционного аппарата и увеличение режима питания, за счет чего культура переключилась с активного роста на режим запасания мобилизационного резерва для дальнейшего развития и противодействия возможным стрессам. На сорте Маруся эффект от внесения биопрепарата и регулятора роста также проявился в увеличении над- и подземной биомассы. Кроме того, растения резко набирали в высоте побега. Увеличение длины в среднем по вариантам составило 60% от контроля. По изменению длины корней эффект был статистически не достоверен.
Синергентный эффект от совместного внесения ризобий и полигуматов сапропеля проявился в максимальном увеличении длины растения и биомассы корневой системы обоих сортов. Можно утверждать, что низкомолекулярные соединения, входящие в состав УДГСС, благодаря проявлению гормоноподобной активности стимулировали рост растений при нормализации биохимических процессов метаболизма (фотосинтез, дыхание), а также способствовали увеличению титра клубеньковых бактерий в питательной суспензии, улучшению их способности к колонизации корней. Благодаря этому последние также больше продуцировали в среду своих собственных активных веществ, стимулирующих рост корневой системы. Визуально изменения в развитии культур приведены на рис. 6.
■
Рис. 6. Развитие растений фасоли сорта Лукерья (А) и Маруся (Б) в зависимости от варианта обработки (на 10-й день выращивания): 1 - Контроль; 2 - УДГСС; 3 - ЯИгюЬтт рка^'ввИ; 4 - УДГСС + ЯИгюЬтт
рка^'ввИ. Масштаб (линия справа) - 5 см
Заключение и выводы
Таким образом, испытуемый раствор с добавками различных биостимуляторов в виде ризобий и/или полигуматов сапропеля оказал выраженное стимулирующее воздействие на развитие проростков фасоли на начальном этапе онтогенеза, что, несомненно, отразится и на всех последующих фазах роста. Как и ожидалось, максимальной эффект у обоих сортов проявился в варианте со смешанной инокуляцией. Данный вариант более предпочтителен для использования аграриями в полном цикле вегетации, поскольку отдельная интродукция УДГСС без инокуляции ризобий не позволит растению полностью раскрыть свой потенциал при образовании клубеньков на корнях, которые затем будут фиксировать молекулярный азот, особенно необходимый фасоли в последующем при образовании семян. Полигуматы, помимо снижения количества внесения минеральных солей, позволят также уменьшить использование фунгицидов, поскольку сами обладают антифунгальной активностью.
Ya.V. PUHALSKIY1, 2, N.G. KAZYDUB3, SI. LOSKUTOV2, 4, AS. MITYUKOV1, Yu.V. LAKTIONOV5, N.I. VOROBYEV5, A.P. KOZHEMYAKOV5
institute of Limnology of the Russian Academy of Sciences (IL RAS), Saint-Petersburg 2Pushkin Leningrad State University, Saint-Petersburg
о
Omsk State Agrarian University named after P.A. Stolypin, Omsk 4Branch of V.M. Gorbatov Federal Research Centre for Food Systems of RAS, Saint-Petersburg
5All-Russian Research Institute for Agricultural Microbiology, Pushkin, Saint-Petersburg
Effect of sapropel nitragines on seedlings of bean varieties of Omsk breeding when growing under the conditions of hydro-light culture
The paper shows the results of the use of an organo-bacterial composition, which has a stimulating and adaptogenic effect on the development of bean seedlings cultivated in closed hydro-light culture. Laboratory
experiments were carried out on the varieties of the Omsk State Agrarian University, differing in the ratio of the yield of seeds to the mass of their nodules - variety Marusya, for vegetable use, and variety Lukerya, for grain purpose. For each variant the experiments were conducted three times. Each variant had 18 seeds. Methods of visual analysis were used in the work: observation, counting, and measurement of aboveground and underground organs in plants. The results obtained indicate that this biocomposition had a pronounced stimulating effect on the development of the biomass of bean seedlings at the initial stage of ontogenesis. At the same time, differences were observed in terms of length. Thus, in the Lukerya variety, inoculation made the plants shorter. No such effect was observed on the Marusya variety.
Keywords: bean, variety, nitragines, UDHSS, hydroponics, photoculture.
Список литературы
1. Романова Х.С. Разработка технологии фасолевого матрикса и функциональных продуктов на его основе: Специальность 05.18.15 «Технология и товароведение продуктов функционального и специализированного назначения и общественного питания» : диссертация на соискание ученой степени кандидата технических наук / Романова Христина Сергеевна. - Саратов, 2019. - 166 с. -Текст : непосредственный.
2. Зернобобовые культуры в структуре функционального питания (фасоль зерновая и овощная, горох овощной, нут) / Н.Г. Казыдуб, С.П. Кузьмина, О.А. Коцюбинская [и др.]. - Текст : непосредственный // Бюллетень Государственного Никитского ботанического сада. - 2019. - № 133. -С. 157-167.
3. Волобуева О.Г. Влияние биопрепаратов и регуляторов роста на эффективность бобово-ризобиального симбиоза фасоли / О.Г. Волобуева, М.П. Мирошникова, Т.С. Наумкина. - Текст : непосредственный // Зернобобовые и крупяные культуры. - 2016. - № 3(19). - С. 56-62.
4. Зернобобовые культуры - важный фактор устойчивого экологически ориентированного сельского хозяйства / В.И. Зотиков, Т.С. Наумкина, Н.В. Грядунова [и др.]. - Текст : непосредственный // Зернобобовые и крупяные культуры. - 2016. -№ 1(17). - С. 6-13.
5. Белоброва С.Н. Продуктивность фасоли обыкновенной (Phaseolus vulgaris l.) при обработке семян микробными препаратами: Специальность 06.01.01 «Общее земледелие, растениеводство» : автореферат диссертации кандидата сельскохозяйственных наук / Белоброва Светлана Николаевна. -Санкт-Петербург, 2012. - 20 с. - Текст : непосредственный.
6. Барбашов М.В. Оценка исходного материала фасоли обыкновенной (Phaseolus vulgaris L.) для создания высокоэффективных растительно -микробных систем: Специальность 06.01.05 «Селекция и семеноводство сельскохозяйственных растений» : автореферат диссертации на соискание ученой степени кандидата сельскохозяйственных наук / Барбашов Максим Вячеславович. - Орел, 2012. - 21 с. - Текст : непосредственный.
References
1. Romanova H.S. Razrabotka tekhnologii faso-levogo matriksa i funkcional'nyh produktov na ego osnove: Special'nost' 05.18.15 "Tekhnologiya i tova-rovedenie produktov funkcional'nogo i specializiro-vannogo naznacheniya i obshchestvennogo pitaniya" : dissertaciya na soiskanie uchenoj stepeni kandidata tekhnicheskih nauk / Romanova Hristina Sergeevna. -Saratov, 2019. - 166 s. - Tekst : neposredstvennyj.
2. Zernobobovye kul'tury v strukture funkcional'nogo pitaniya (fasol' zernovaya i ovoshchnaya, go-roh ovoshchnoj, nut) / N.G. Kazydub, S.P. Kuz'mina, O.A. Kocyubinskaya [i dr.]. - Tekst : neposredstvennyj // Byulleten' Gosudarstvennogo Nikitskogo bota-nicheskogo sada. - 2019. - № 133. - S. 157-167.
3. Volobueva O.G. Vliyanie biopreparatov i re-gulyatorov rosta na effektivnost' bobovo-rizobial'nogo simbioza fasoli / O.G. Volobueva, M.P. Miroshnikova, T.S. Naumkina. - Tekst : neposredstvennyj // Zernobobovye i krupyanye kul'tury. - 2016. - № 3(19). -S. 56-62.
4. Zernobobovye kul'tury - vazhnyj faktor us-tojchivogo ekologicheski orientirovannogo sel'skogo hozyajstva / V.I. Zotikov, T.S. Naumkina, N.V. Grya-dunova [i dr.]. - Tekst : neposredstvennyj // Zernobobovye i krupyanye kul'tury. - 2016. - № 1(17). - S. 6-13.
5. Belobrova S.N. Produktivnost' fasoli obyk-novennoj (Phaseolus vulgaris l.) pri obrabotke semyan mikrobnymi preparatami: Special'nost' 06.01.01 "Obshchee zemledelie, rastenievodstvo" : avtoreferat dissertacii kandidata sel'skohozyajstvennyh nauk / Belobrova Svetlana Nikolaevna. - Sankt-Peterburg, 2012. - 20 s. - Tekst : neposredstvennyj.
6. Barbashov M.V. Ocenka iskhodnogo mate-riala fasoli obyknovennoj (Phaseolus vulgaris L.) dlya sozdaniya vysokoeffektivnyh rastitel'no-mikrobnyh sistem: Special'nost' 06.01.05 "Selekciya i semeno-vodstvo sel'skohozyajstvennyh rastenij" : avtoreferat dissertacii na soiskanie uchenoj stepeni kandidata sel'skohozyajstvennyh nauk / Barbashov Maksim Vyacheslavovich. - Orel, 2012. - 21 s. - Tekst : nepo-sredstvennyj.
7. Gur'ev G.P. Effektivnost' inokulyacii semyan fasoli preparatami kluben'kovyh bakterij i sinte-ticheskim regulyatorom rosta "Melafen" / G.P. Gur'ev, A.G. Vasil' chikov. - Tekst : neposredstvennyj // Zer-
7. Гурьев Г.П. Эффективность инокуляции семян фасоли препаратами клубеньковых бактерий и синтетическим регулятором роста «Мелафен» / Г.П. Гурьев, А.Г. Васильчиков. - Текст : непосредственный // Зернобобовые и крупяные культуры. -2018. - № 4(28). - С. 33-38.
8. Shamseldin A. The promiscuity of Phaseo-lus vulgaris L. (common bean) for nodulation with Rhizobia: a review / A. Shamseldin, E. Velazquez. -Text : direct // World Journal of Microbiology and Biotechnology. - 2020. - № 36(5). doi:10.1007/s11274-020-02839-w
9. Samago T.Y. Grain yield of common bean (Phaseolus vulgaris L.) varieties is markedly increased by rhizobial inoculation and phosphorus application in Ethiopia / T.Y. Samago, E.W. Anniye, F.D. Dakora. -Text : direct // Symbiosis. - 2017. - № 75(3). -P. 245-255. doi:10.1007/s13199-017-0529-9
10. Co-inoculation of Bradyrhizobium stimulates the symbiosis efficiency of Rhizobium with common bean / E.da C. Jesus, R.de A. Leite, R.da A. Bastos, O.O.da S. Aragao, A.P. Araujo. - Text : direct // Araujo. Plant and Soil. - 2018. - № 425(1-2). -P. 201-215. doi:10.1007/s11104-017-3541-1
11. Создание стабильной формы ростсти-мулирующих микробиологических препаратов и их эффективность / Ю.В. Лактионов, Т. А. Попова, О. А. Андреев [и др.]. - Текст : непосредственный // Сельскохозяйственная биология. - 2011. - № 3. -С. 116-118.
12. Зернобобовые культуры в Западной Сибири (фасоль и бобы овощные, нут): биология, генетика, селекция, использование : монография / Н.Г. Казыдуб, С.П. Кузьмина, М.А. Боровикова [и др.]. - Омск : ФГБОУ ВО Омский ГАУ, 2020. -251 c. - ISBN 978-5-89764-879-5. - Текст : непосредственный.
13. Фасоль в теплицах - беспочвенное выращивание. - URL: http://government.ru (дата обращения: 03.01.2020), https://www.podoslonami.pl/ar-tykuly-reklamowe/fasola-tyczna-tunelach-uprawa-bezg-lebowa/. - Текст : электронный.
14. Application and Fate of Cyromazine in a Closed-Cycle Hydroponic Cultivation of Bean (Pha-seolus vulgaris L.) / G. Patakioutas, D. Savvas, C. Ma-takoulis, T. Sakellarides, T. Albanis. - Text : direct // Journal of Agricultural and Food Chemistry. - 2007. -№ 55(24). - P. 9928-9935. doi:10.1021/jf071726i
15. Bayram D. Differential Response of Bean (Phaseolus vulgaris L.) Roots and Leaves to Salinity in Soil and Hydroponic Culture / D. Bayram, B.S. Din-ler, E. Tasci. - Text : direct // Notulae Botanicae Horti Agrobotanici Cluj-Napoca. - 2014. - № 42(1). -P. 219-226. doi:10.15835/nbha4219286
16. Hopkinson S. Effect of pH on Hydroponi-cally Grown Bush Beans (Phaseolus vulgaris) / S. Hopkinson, M.P. Harris. - Text : direct // International Journal of Environment Agriculture and Biotechnology. - 2019. - № 4(1). - P. 142-145.
nobobovye i krupyanye kul'tury. - 2018. - № 4(28). -S. 33-38.
8. Shamseldin A. The promiscuity of Phaseolus vulgaris L. (common bean) for nodulation with Rhizo-bia: a review / A. Shamseldin, E. Velázquez. - Text : direct // World Journal of Microbiology and Biotechnology. - 2020. - № 36(5). doi:10.1007/s11274-020-02839-w
9. Samago T.Y. Grain yield of common bean (Phaseolus vulgaris L.) varieties is markedly increased by rhizobial inoculation and phosphorus application in Ethiopia / T.Y. Samago, E.W. Anniye, F.D. Dakora. -Text : direct // Symbiosis. - 2017. - № 75(3). -P. 245-255. doi:10.1007/s13199-017-0529-9
10. Co-inoculation of Bradyrhizobium stimulates the symbiosis efficiency of Rhizobium with common bean / E.da C. Jesus, R.da A. Leite, R.do A. Bastos, O.O.da S. Aragäo, A.P. Araujo. - Text : direct // Araujo. Plant and Soil. - 2018. - № 425(1-2). -P. 201-215. doi:10.1007/s11104-017-3541-1
11. Sozdanie stabil'noj formy roststimuli-ruyushchih mikrobiologicheskih preparatov i ih effek-tivnost' / Yu.V. Laktionov, T.A. Popova, O.A. An-dreev [i dr.]. - Tekst : neposredstvennyj // Sel'skoho-zyajstvennaya biologiya. - 2011. - № 3. - S. 116-118.
12. Zernobobovye kul'tury v Zapadnoj Sibiri (fasol' i boby ovoshchnye, nut): biologiya, genetika, selekciya, ispol'zovanie : monografiya / N.G. Kazy-dub, S.P. Kuz'mina, M.A. Borovikova [i dr.]. - Omsk : FGBOU VO Omskij GAU, 2020. - 251 c. - ISBN 978-5-89764-879-5. - Tekst : neposredstvennyj.
13. Fasol' v teplicah - bespochvennoe vyrash-chivanie. - URL: http://government.ru (data obra-shcheniya: 03.01.2020), https://www.podoslona-mi.pl/artykuly-reklamowe/fasola-tyczna-tunelach-uprawa-bezglebowa/. - Tekst : elektronnyj.
14. Application and Fate of Cyromazine in a Closed-Cycle Hydroponic Cultivation of Bean (Pha-seolus vulgaris L.) / G. Patakioutas, D. Savvas, C. Ma-takoulis, T. Sakellarides, T. Albanis. - Text : direct // Journal of Agricultural and Food Chemistry. - 2007. -№ 55(24). - P. 9928-9935. doi:10.1021/jf071726i
15. Bayram D. Differential Response of Bean (Phaseolus vulgaris L.) Roots and Leaves to Salinity in Soil and Hydroponic Culture / D. Bayram, B.S. Dinler, E. Tasci. - Text : direct // Notulae Botanicae Horti Agrobotanici Cluj-Napoca. - 2014. - № 42(1). -P. 219-226. doi:10.15835/nbha4219286
16. Hopkinson S. Effect of pH on Hydroponi-cally Grown Bush Beans (Phaseolus vulgaris) / S. Hopkinson, M.P. Harris. - Text : direct // International Journal of Environment Agriculture and Biotechnology. - 2019. - № 4(1). - P. 142-145.
17. Yíeld and dynamics of growth in bean (Phaseolus vulgaris L.) grown in soil or in hydroponics / A. García-Esteva, J. Kohashi-Shibata, G.A. Baca Castillo, J.A.S. Escalante-Estrada. - Text : direct // 1996. - P. 225-226.
17. Yield and dynamics of growth in bean (Phaseolus vulgaris L.) grown in soil or in hydroponics / A. García-Esteva, J. Kohashi-Shibata, G.A. Baca Castillo, J.A.S. Escalante-Estrada. - Text : direct // 1996. - P. 225-226.
18. Кисленко В.Н. Адсорбция бактерий почвой и ее эпидемиологическое значение / Н.Г. Кисленко. - Москва : ИНФРА-М, 2018. -156 с. - Текст : непосредственный.
19. Оценка клубенькообразующей способности образцов зернобобовых культур в условиях южной лесостепи Западной Сибири / Н.Г. Казыдуб, Т.В. Маракаева, Д.А. Золкин [и др.]. - Текст : непосредственный // Вестник Омского государственного аграрного университета. - 2015. - № 1(17). -С. 23-27.
20. Multiple impacts of the plant growth-promoting 298 rhizobacterium Variovorax paradoxus 5C-2 on nutrient and ABA relations of Pisum sativum / F. Jiang, L. Chen, A.A. Belimov, A.I. Shaposhnikov, F. Gong, X. Meng, W. Hartung, D.W. Jeschke, W.J. Da-vies, I.C. Dodd. - Text : direct // Journal of experimental botany. - 2012. - V. 63(18). - P. 6421-6430.
21. Гамалей И.А. Перекись водорода как сигнальная молекула / И.А. Гамалей, И.В. Клюбин. -Текст : непосредственный // Цитология. - 1996. -№ 38(1). - С. 1233-1247.
22. Аверьянов А.А. Активные формы кислорода и иммунитет растений / А.А. Аверьянов. -Текст : непосредственный // Успехи современной биологии. - 1991. - № 111(5). - С. 722-737.
23. Niu L. Hydrogen Peroxide Signaling in Plant Development and Abiotic Responses: Crosstalk with Nitric Oxide and Calcium / L. Niu, W. Liao. -Text : direct // Front Plant Sci. - 2016. - № 7. -P. 230.
24. Neill S.J. Hydrogen peroxide and nitric oxide as signalling molecules in plants / S.J. Neill, R. Desikan, A. Clarke, R.D. Hurst, J.T. Hancock. -Text : direct // J. Exp. Bot. - 2002. - № 53(372). -P. 1237-1247.
25. Reth M.Hydrogen peroxide as second messenger in lymphocyte activation / M. Reth. - Text : direct // Nat. Immunol. - 2002. - № 3(12). - P. 11291134.
26. Пероксид водорода как новый вторичный посредник / В.А. Ткачук, П.А.Тюрин-Кузьмин, В.В. Белоусов [и др.]. - Текст : непосредственный // Биологические мембраны. - 2012. - Т. 29. - № 12. - С. 21.
27. Sharakshane A. An easy estimate of the PFDD for a plant illuminated with white LEDs: 1000 lx = 15 ^mol/s/m2 / A. Sharakshane. - Text : direct // BioRxiv. - 2018. DOI: 10.1101/289280
18. Kislenko V.N. Adsorbciya bakterij pochvoj i ee epidemiologicheskoe znachenie / N.G. Kislenko. -Moskva : INFRA-M, 2018. - 156 s. - Tekst : nepo-sredstvennyj.
19. Ocenka kluben'koobrazuyushchej sposob-nosti obrazcov zernobobovyh kul'tur v usloviyah yuzhnoj lesostepi Zapadnoj Sibiri / N.G. Kazydub, T.V. Marakaeva, D.A. Zolkin [i dr.]. - Tekst : nepo-sredstvennyj // Vestnik Omskogo gosudarstvennogo agrarnogo universiteta. - 2015. - № 1(17). - S. 23-27.
20. Multiple impacts of the plant growth-promoting 298 rhizobacterium Variovorax paradoxus 5C-2 on nutrient and ABA relations of Pisum sativum / F. Jiang, L. Chen, A.A. Belimov, A.I. Shaposhnikov, F. Gong, X. Meng, W. Hartung, D.W. Jeschke, W.J. Da-vies, I.C. Dodd. - Text : direct // Journal of experimental botany. - 2012. - V. 63(18). - P. 6421-6430.
21. Gamalej I.A. Perekis' vodoroda kak sig-nal'naya molekula / I.A. Gamalej, I.V. Klyubin. -Tekst : neposredstvennyj // Citologiya. - 1996. -№ 38(1). - S. 1233-1247.
22. Aver'yanov A.A. Aktivnye formy kisloroda i immunitet rastenij / A.A. Aver'yanov. - Tekst : ne-posredstvennyj // Uspekhi sovremennoj biologii. -1991. - № 111(5). - S. 722-737.
23. Niu L. Hydrogen Peroxide Signaling in Plant Development and Abiotic Responses: Crosstalk with Nitric Oxide and Calcium / L. Niu, W. Liao. -Text : direct // Front Plant Sci. - 2016. - № 7. -P. 230.
24. Neill S.J. Hydrogen peroxide and nitric oxide as signalling molecules in plants / S.J. Neill, R. Desikan, A. Clarke, R.D. Hurst, J.T. Hancock. -Text : direct // J. Exp. Bot. - 2002. - № 53(372). -P. 1237-1247.
25. Reth M. Hydrogen peroxide as second messenger in lymphocyte activation / M. Reth. - Text : direct // Nat. Immunol. - 2002. - № 3(12). - P. 11291134.
26. Peroksid vodoroda kak novyj vtorichnyj po-srednik / V.A. Tkachuk, P.A.Tyurin-Kuz'min, V.V. Be-lousov [i dr.]. - Tekst : neposredstvennyj // Biologi-cheskie membrany. - 2012. - T. 29. - № 1-2. - S. 21.
27. Sharakshane A. An easy estimate of the PFDD for a plant illuminated with white LEDs: 1000 lx = 15 ^mol/s/m2 / A. Sharakshane. - Text : direct // BioRxiv. - 2018. DOI: 10.1101/289280
Пухальский Ян Викторович, м.н.с., ИНОЗ РАН - ФИЦ СПб РАН; ЛГУ им. Пушкина, puhals-kyyan@gmail.com; Казыдуб Нина Григорьевна,
Puhalsky Yan Viktorovich, junior researcher, St. Petersburg Federal Research Centre of the Russian Academy of Sciences (SPC RAS) - Institute of Lim-
д-р с.-х. наук, проф. кафедры садоводства, лесного хозяйства и защиты растений, Омский ГАУ, kazydub@yandex.ru; Лоскутов Святослав Игоревич, канд. с.-х. наук, директор НОЦ при ЛГУ им. Пушкина; ст. науч. сотр. ВНИИПД - филиал ФГБНУ «ФНЦ пищевых систем им. В.М. Горбатова», lislosk@mail.ru; Митюков Алексей Савельевич, д-р с.-х. наук, в.н.с., ИНОЗ РАН - ФИЦ СПб. РАН, mitals@yandex.ru; Лактионов Юрий Владимирович, канд. биол. наук, ст. науч. сотр. ВНИ-ИСХМ, laktionov@list.ru; Воробьев Николай Иванович, канд. техн. наук, ст. науч. сотр., ВНИ-ИСХМ, nik.ivanvorobyov@yandex.ru; Кожемяков Андрей Петрович, канд. биол. наук, завлаб. ВНИИСХМ, kojemyakov@rambler.ru.
nology of the Russian Academy of Sciences (IL RAS), Pushkin Leningrad State University, puhals-kyyan@gmail.com; Kazydub Nina, Doc. of Agr. Sci., Prof., Department of Horticulture, Forestry and Plant Protection, Omsk SAU, ng-kazydub@yandex.ru; Loskutov Svyatoslav Igorevich, Cand. of Agr. Sci., director of scientific educational center of Pushkin Leningrad State University, Senior Research of All-Russia Research Institute for Food Additives - Branch of V.M. Gorbatov Federal Research Center for Food Systems of RAS, Saint-Petersburg, lislosk@mail.ru; Mityukov Alexey Savelievich, Doc. of Agr. Sci., Leading Researcher, St. Petersburg Federal Research Centre of the Russian Academy of Sciences (SPC RAS) - Institute of Limnology of the Russian Academy of Sciences (IL RAS), mitals@yandex.ru; Laktio-nov Yuri Vladimirovich, Cand. of Biol. Sci., Senior Research Fellow, ARRIAM, laktionov@list.ru; Voro-byev Nikolay Ivanovich, Cand. of Techn. Sci., Senior Research Fellow, ARRIAM, nik.ivanvorobyov@yan-dex.ru; Kozhemyakov Andrey Petrovich, Cand. of Biol. Sci., head of the laboratory, ARRIAM, kojemya-kov@rambler. ru.
УДК 633.854.78:631.52(571.5) DOI 10.48136/2222-0364_2021_4_64
ЮН. СУВОРОВА1, Л.В. ОМЕЛЬЯНЮК2, А.М. АСАНОВ2 1Сибирская опытная станция - филиал Федерального научного центра «Всероссийский научно-исследовательский институт масличных культур имени В.С. Пустовойта», Исилькуль 2Омский аграрный научный центр, Омск
ПОДСОЛНЕЧНИК И СОЯ - ПЕРСПЕКТИВНЫЕ ИНТРОДУЦИРОВАННЫЕ МАСЛИЧНЫЕ КУЛЬТУРЫ ДЛЯ ЗАПАДНОЙ СИБИРИ
Подсолнечник (Helianthus annuus L.) и соя (Glycine max L. Merrill.) не имеют себе равных в качестве продовольственных и кормовых высокомасличных сельскохозяйственных культур мирового значения. Являясь растениями короткого дня, они с продвижением на север замедляют свое развитие. Успех их акклиматизации в Западно-Сибирском регионе невозможен без правильно подобранного генотипа. Потребовались десятилетия кропотливой селекционной работы на Сибирской опытной станции - филиале ВНИИМК и в Омском аграрном научном центре, чтобы создать скороспелые продуктивные сорта подсолнечника и сои, стабильно вызревающие в условиях Омской области. Создание новых генотипов этих культур, сочетающих высокую продуктивность семян с укороченным периодом вегетации, - одна из главных задач сибирских селекционеров. Исследования проведены в 2017-2020 гг. в южной лесостепи Западной Сибири. Объект исследования - сорта подсолнечника и сои сибирской селекции. Подсолнечник изучался в лаборатории селекции, семеноводства и агротехники подсолнечника Сибирской опытной станции - филиала ФГБНУ ФНЦ ВНИИМК (Омская область, г. Исилькуль) в 5-польном зернопаровом севообороте, предшественник - черный пар. Соя - в лаборатории селекции зернобобовых культур Омского АНЦ (г. Омск) в 4-польном зернопаровом севообороте, предшественник - озимая пшеница на зер-
© Суворова Ю.Н., Омельянюк Л.В., Асанов А.М., 2021
