CC BY
253
ВЛИЯНИЕ ПОЛЯ ЛАЗЕРНОГО ИЗЛУЧЕНИЯ НА ЭРИТРОЦИТЫ
В.В. Богатырёва, А.Ю. Москалёва Научный руководитель - д.т.н., профессор В.А. Тарлыков
Способность эритроцитов осуществлять перенос кислорода очень важна для жизни человека. Основной характеристикой является их деформируемость, связанная с жесткостью эритроцитарных мембран. Известно, что лазерное излучение способно оказывать лечебное воздействие на биологические объекты. В статье обсуждается влияние электромагнитного поля на эритроциты. Учитывается обмен энергией и информацией с окружающей средой. Рассматриваются процессы, происходящие в биовеществе под действием лазерного излучения. Приводятся данные по изменению оптических и механических характеристик эритроцитов, саморепродукции и самоорганизации. Были проведены экспериментальные исследования зависимости изменения жесткости эритроцитарных мембран и относительного радиуса эритроцитов в гипоосмотических растворах от плотности мощности излучения Ие-№-лазера. Также исследована зависимость жесткости мембран эритроцитов от длительности облучения образцов крови Ие-№-лазером.
Введение
Механизм воздействия лазерного излучения на биологические объекты до сих пор остается неизвестным. Авторы приводят различные данные по механизму лазерной биостимуляции (ЛБС). Поэтому представляет большой интерес проведение исследований в данном направлении.
Среди множества гипотез для объяснения терапевтического эффекта низкоинтенсивного лазерного излучения (НИЛИ) сегодня выделяют две основные [1]. Одна из них - стимуляция биологических процессов через фоторегуляторную систему (Н.Ф. Гамалея) [2-7] - квантово-механический подход. По другой гипотезе предполагается, что лазерное излучение реализует биостимулирующий эффект за счет передачи им энергии лазерного излучения (В.М. Инюшин) [3, 7-11] - энергоинформационный подход.
Воздействие лазерного излучения на живые биологические объекты, в частности эритроциты, в основном зависит от интенсивности излучения и экспозиции, а также длины волны излучения, плотности мощности, плотности энергии [2-6, 8, 9].
По данным исследований [2, 12] благоприятное воздействие лазерного излучения на одну и ту же ткань наблюдается при облучении излучением различного спектрального диапазона. Учитывая, что наименьшей функциональной единицей живого организма является клетка, рассматривать селективность поглощения отдельными атомами и молекулами нецелесообразно. Эти факты говорят в пользу энергоинформационного подхода. Кроме того, при облучении гелий-неоновым лазером суспензии эритроцитов, согласно квантово-механическому подходу, изменение деформируемости эритроцитов происходит вследствие поглощения излучения кислородом - запрещенный переход.
Так как клетка обладает энергией и несет в себе некоторую информацию, то световое поле может оказывать влияние на живую систему посредством энергоинформационного обмена [8, 13, 14].
Действие поля лазерного излучения на эритроциты
Эффект ЛБС может быть обусловлен тем, что живые организмы являются открытыми, неравновесными, диссипативными, самоструктурирующимися и самоорганизующимися системами, на которые может оказывать действие когерентное излучение. При этом с окружающей средой происходит обмен веществом и информацией. При ЛБС поведение биологической системы нелинейно, и потому может наблюдаться самоорганизация. Для описания этих процессов можно воспользоваться понятием производства энтропии, которое введено в неравновесной термодинамике на основе принципа Пригожина. Система «когерентный свет-биологическое вещество» идет по пути уменьшения производства энтропии [10, 15].
В биологических структурах организма существуют собственные электромагнитные поля и свободные заряды, которые перераспределяются под влиянием фотонов лазерного излучения. При оптимальных дозах воздействия на организм низкоэнергетическим лазерным излучением осуществляется энергетическая подкачка [14]. В ответ на это в системах и органах происходят процессы активизации саморегуляции, мобилизи-руются собственные резервы самогенеза.
При рассмотрении одного из возможных механизмов энергоинформационного обмена живых клеток с полем лазерного излучения следует учесть электрические свойства клеток [12]. Эритроциты имеют отрицательные поверхностные заряды. На внутренней поверхности мембраны преобладают положительно заряженные области (рис. 1). Как и другие клетки, эритроциты являются биоплазменными системами [12].
Рис. 1. Распределение мембранного потенциала эритроцита [16]
К основным свойствам биоплазмы относятся упорядоченность и необычайная устойчивость при насыщенности энергией [12]. В биоплазме распространяются электромагнитные и звуковые волны, гравитационные поля [11, 17]. Такие колебания высококогерентны и поляризованы. Поэтому необходимым условием биостимуляции является использование лазерных источников света, так как они обладают высокой временной и пространственной когерентностью [18]. Важно производить непрерывное облучение для обеспечения максимального согласования всего поля. Колебания в красной области спектра являются доминирующими [12]. Поэтому излучение Не-№-лазера оказывает сильное действие на биологические процессы [12].
«Вмороженное» в биоплазму волновое поле изотропно и представляет собой голограмму, несущую информацию о свойствах всего организма. Изменение структуры внешних электромагнитных полей (ЭМП) способно вызывать изменения упорядоченности биоплазмы, в результате чего может наблюдаться восстановление функций поврежденной биосистемы [11, 12].
Внутривенное лазерное облучение крови (ВЛОК) способствует снижению агрега-ционной активности эритроцитов вследствие изменения их физико-химических свойств, в частности, увеличения отрицательного электрического заряда на поверхности клетки [10].
Эффект лазерной активации суспензии эритроцитов осуществляется через цепь структурно-функциональных перестроек в системе «растворитель (вода) - клеточная поверхность». В итоге у эритроцитов наступают существенные сдвиги в сорбционной поверхности, выявляется снижение рН в среднем на 0,15, уменьшение потребления эритроцитами глюкозы и дезоксигенация гемоглобина [11].
Конформационные и структурные перестройки мембранных макромолекул под влиянием лазерного излучения сопровождаются уменьшением количества неполярных и увеличением числа полярных групп на клеточной поверхности [11]. Происходит резервирование энергии в мембранах.
Согласно другому механизму особое внимание следует уделить биожидкостям, так как они обязательно присутствуют в составе всех биообъектов [12, 15]. На основании своих исследований В.М. Инюшин и соавторы считают, что при взаимодействии НИЛИ красного и ближнего ИК-диапазона с биообъектом одним из главных звеньев
процесса является передача энергии воздействия через жидкие среды организма. Это объясняется авторами наличием резонансной спектральной «памяти» в жидких средах при лазерном облучении [5]. В работе [11] авторы выдвигают гипотезу, что наблюдаемые перестройки мембранных макромолекул являются следствием конформационных переходов в структуре поверхностной воды. Упорядочивание молекул воды в жидкой фазе крови происходит под действием поляризующего поля лазерного излучения.
Все биожидкости являются молекулярно-ионными растворами с водой в качестве растворителя [12]. Биораствор может играть роль матрицы, на которой протекают все биохимические реакции. Накопление в биосистеме участков с измененной структурой вызывает неспецифическую модификацию энергетики и кинетики метаболических процессов, протекающих в водной матрице биожидкости, и последующие эффекты биостимуляции.
Равномерное распределение молекул гемоглобина в эритроците обусловливает равномерное распределение внутриклеточной воды. Молекулы гемоглобина располагаются на внутренней стороне мембраны между двумя молекулами воды, что позволяет сохранять автономность каждой молекулы гемоглобина и обеспечивает эластичность формы клетки. Вода составляет 65-70 % от объема эритроцита. При температуре 36,8 °С она обладает уникальными свойствами: минимальной теплоемкостью и квазикристаллической упорядоченностью при одновременном сохранении свойства жидкой воды - низкой вязкости [19].
ЭМП действует на биожидкости, содержащие водородные связи. Биологическая активность воды характеризуется распределением, а не числом водородных связей среди ее молекул. В водяной матрице клетки происходят различные временные процессы [5], приводящие к возникновению локальных неоднородностей (кластеров). ЭМП влияют на движение зарядов Н+, меняя их действия на кластеры. Кроме того, наблюдается пороговый эффект: изменения накапливаются, не меняя структуры, а потом происходит раскол кластеров или их объединение [5, 20].
При кристаллизации молекулы воды взаимно ориентируются, и происходит насыщение водородными связями. Это приводит к изменению конфигурации белковых молекул, на которые могут наращиваться и затем объединятся в сеть структуры из молекул воды. Таким образом, вокруг эритроцита находится слой воды толщиной 5-10 мкм, пронизанный сеткой льдоподобных нановолокон (гидрогель). Аналогичные структуры может образовывать инактивированный альбумин и, скорее всего, другие белковые компоненты плазмы крови [4].
В работе [21] описывается поведение эритроцитов в низкочастотном ЭМП. В системе «эритроцит-плазма» происходит периодическое изменение давлений внутренней жидкости и внеклеточной жидкости, вызывающее механические колебания мембраны клетки. Отмечается, что электромагнитный гемолиз не связан с тепловыми эффектами.
Слабое переменное магнитное поле (МП) порядка 0,8-2,0 мТл наводит ЭДС в клетках. Происходит перестройка липидных (ЖК) компонентов биологических мембран. Наблюдается переход золь-гель, изменяется электрическое сопротивление в гелях [9]. МП величиной 10-50 мТл изменяет магнитную восприимчивость макромолекул вещества, пространственное положение диполей, внутриклеточных структур и клеточных мембран, приводит к увеличению ионной активности в тканях, конформационным изменениям ЖК-структур, в первую очередь внутриклеточной воды [3].
Выдвинуто предположение [3, 9], что наблюдаемые эффекты ЛБС вызваны эффектом Фредерикса, который заключается в переориентации директора молекул ЖК в масштабах всей ячейки. Этот эффект возникает даже в слабых полях НИЛИ с мощностью 1-20 мВт, независимо от длины волны излучения. Светоиндуцированная переориентация директора приводит к изменению показателя преломления ЖК (рис. 2) [9].
п
1,3340
0,075
0,0
1,3330
0
5
10
15 1:, мин
Рис. 2. Зависимость показателя преломления п от времени облучения при различной объемной концентрации эритроцитов в суспензии [9]
Следует отметить, что в качестве ЖК выступают не только липиды мембраны, но ЖК-кластеры воды, в которых водородные связи вносят основной вклад в поляризуемость [9]. Водные кластеры можно уподобить ЖК-доменам радиусом порядка 10-15 нм (для эритроцитов). При поверхностном взаимодействии с коллоидными частицами домены существуют в течение длительного времени (от десятков минут до часов). Плотность домена может изменяться [9].
Полосы или ленты молекул воды совершают изгибные и поворотные движения вокруг своего равновесного положения. Структура жидкой воды похожа на структуру нематических ЖК с квазикристаллическим типом упаковки [22]. Дефекты скручивания являются очень устойчивыми и могут перемещаться на большие расстояния без потери формы и энергии (солитоны), поэтому вода имеет долгую память относительно внешних воздействий. Динамическое состояние жидкой воды определяется наличием в ней солитонов. Низкочастотное электромагнитное поле меняет скорость движения солито-нов [9].
Биологические молекулы представляют собой цепочку нелинейно связанных осцилляторов [23], которые переизлучают поглощенную лазерную энергию по механизму возврата Ферми-Паста-Улама. Энергия первоначального возмущения распределяется не по всем возможным колебательным состояниям цепочки (термолизация), а по отдельным высшим колебательным гармоникам, через некоторое время возвращаясь к распределению колебаний, подобному первоначальному возмущению. При переизлучении сложной биомолекулой возникают уединенные электромагнитные волны - соли-тоны. С учетом явления резонанса можно сказать, что и поглощение солитонов максимально для молекул, имеющих структуру, подобную биомолекуле-излучателю [23].
«Распространение уединенных волн в живой ткани обеспечивает энергоинформационный обмен между биологическими макромолекулами и приводит к формированию суммарного поля, которое стимулирует исправление «дефектных» молекул». Биостимуляция осуществляется за счет снижения синтеза дефектных молекул, так как нормальные молекулы за счет резонансного поглощения получают больше энергии [23].
МП вызывает ориентационную перестройку жидких кристаллов, составляющих основу мембран и клеточных структур. Происходящая переориентация сказывается на их проницаемости, что важно для регуляции биохимических процессов.
Под воздействием МП-эритроциты могут изменять свою форму [24], что способствует улучшению их прохождения в сосудистом русле. На тканевом уровне эффект магнитного воздействия достигается за счет повышения проницаемости мембран в зоне воздействия и улучшения микроциркуляции крови.
Также в основе ЛБС может лежать эффект Тальбота (рис. 3а) [1,10]. Поперечная периодичность поля лазерного излучения, прошедшего через клеточную структуру,
приводит к возникновению продольной (вдоль направления распространения) его периодичности (рис. 3б) [10]. Чем больший оптический путь пройден светом через биологическую ткань, тем в большей степени его структурные характеристики - спекл-пятна [25] и каустики - соответствуют характеристикам биоткани. Изменение структуры светового фронта должно идти до тех пор, пока его фрактальная размерность не сравняется с фрактальной размерностью облучаемой биоткани, что обеспечит наилучшие условия возбуждения биологических структур и макромолекул [13]. Модовая структура поля когерентного излучения, распространяющегося в клеточной среде, приводит к саморепродукции изображений и «самоисправлению» элементов структуры поля. При лазерном облучении наибольшее пропускание имеет место для пространственно-временных мод, содержащихся в падающей волне и соответствующих наинизшей моде элементарной составляющей структуры - клетке [10].
Рис. 3. Расположение плоскостей Тальбота для периодического предмета (а),
структура поля когерентного излучения при внутривенном облучении крови
транскутанным способом (б)
Свойство самореставрации периодических полей позволяет объяснить одну из причин невлияния лазерного излучения на функционирование здоровых биотканей [10].
В статье [26] описано влияние градиентного (по интенсивности) лазерного поля на органеллы, мембраны и клетки, в частности эритроциты. Показано, что градиентное лазерное поле оказывает влияние на концентрацию частиц и увеличивает их температуру, вызывая диффузию. Наблюдается обратимая деформация цитоскелета.
Приводятся результаты эксперимента по расположению эритроцитов в световом поле двух интерферирующих лазерных лучей: клетки выстраивались в максимумах интерференционной картины. После перекрывания второго луча в течение нескольких секунд они сохраняли свое положение, после чего опять располагались хаотично.
Под действием градиентного лазерного поля аргонового лазера (Х=514 нм) с изменяющейся плотностью мощности от 300 до 1200 Вт/см2 эритроцитарные монетные столбики разрушались в случае, когда они располагались под углом к интерференционным полосам [26]. Более подробно схожий эксперимент описан в [27].
Освещение биологической ткани когерентным лазерным светом приводит к сильной неравномерности распределения интенсивности излучения [27] в клетке, что в свою очередь приводит к внутри- и внеклеточным градиентным силам, действие которых может значительно повлиять на направление и скорость биологических процессов.
Авторы сделали выводы, что действие градиентного лазерного поля нерезонансного типа не сопровождается поглощением фотона, слабо зависит от длины волны, но требует высокой степени когерентности [27].
В [12] описывается эксперимент по наблюдению переизлучения поглощенного лазерного излучения корешком лука. Регистрация производилась с помощью фотоэмульсии, нанесенной на специальную пластинку и защищенной УФ-фильтрами от ко-
решка. В результате было получено изображение лука в лучах собственного излучения. Небольшая угловая расходимость излучения дает возможность предполагать, что каждый точечный источник на объекте генерирует подобно лазеру когерентное излучение, доказывая плазменную природу излучения. Умерщвление корешка вызывает свечение, засвечивающее фотопленку с большим ореолом вокруг объекта. Мертвый корешок вообще не излучал. Сделан вывод о возможности когерентного излучения нести в себе голограмму состояния объекта.
Экспериментальные исследования деформируемости эритроцитов
Важным компонентом крови являются эритроциты, выполняющие, прежде всего, дыхательную функцию [28]. Облучение крови позволяет оказывать влияние на весь организм сразу, так как она циркулирует по всем органам. ЛБС кровеносной системы посредством ВЛОК широко используется в биологической и медицинской практике, но механизм действия этого феномена остается до конца неясным. Этим обусловлен значительный интерес к изучению влияния облучения крови на ее реологические показатели (деформируемость, агрегацию эритроцитов, вязкость крови). Контроль реологических параметров необходимо осуществлять при различных заболеваниях системы крови, в том числе множественной миеломе.
Экспериментальные исследования деформируемости эритроцитов методом лазерной дифрактометрии проводились на образцах крови больных множественной мие-ломой. При этом эритроциты помещали в гипоосмотические растворы различной концентрации или в изотонический раствор. Методика приготовления образцов крови и проведения экспериментального исследования описана в [29]. В качестве источника излучения использовался №-№-лазер (X = 0,63 мкм), плотность мощности изменялась в диапазоне от 2,5 до 170 мВт/см2, а также 235 мВт/см2. Схема экспериментальной установки приведена на рис. 4.
Рис. 4. Схема экспериментальной установки: 1 - Не-Ые - лазер (А=0,63 мкм); 2 - оптический аттенюатор; 3 - диафрагма; 4 - образец; 5 - объектив; 6 - фотоприемное устройство, 7 - персональный компьютер
Были получены следующие экспериментальные результаты.
Проведено исследование влияния плотности мощности излучения №-№-лазера на жесткость эритроцитарных мембран в условиях гипоосмотического набухания эритроцитов. Плотность мощности излучения №-№-лазера изменялась в диапазоне от 5 до
115 мВт/см2 (15 образцов крови больных множественной миеломой) и от 2,5 до 170 мВт/см2 (8 образцов крови больных множественной миеломой). Для каждого образца крови были построены графики изменения относительного радиуса совокупности эритроцитов от концентрации NaCl в растворе для каждой плотности мощности во второй фазе гипоосмотического набухания (рис. 5). Характерный вид полученной зависимости изменения жесткости эритроцитарных мембран от плотности мощности лазерного излучения для одного из образцов крови приведен на рис. 6.
Рис. 5. Изменение относительного радиуса сферулированных эритроцитов в зависимости от концентрации ЫаО! в гипоосмотическом растворе при разных плотностях мощности лазерного излучения (от 2,5 до 170мВт/см2)
Рис. 6. Характерный вид зависимости жесткости эритроцитарных мембран от плотности мощности излучения Не-Ые-лазера
При воздействии на эритроциты, находящиеся в изотоническом растворе (8 образцов крови больных множественной миеломой), излучения He-Ne-лазера, плотность мощности которого изменялась в диапазоне от 2,5 до 170 мВт/см2, для ряда образцов была получена зависимость изменения относительного радиуса эритроцитов от плотности мощности He-Ne-лазера (рис. 7), которая отражает характерные для гипоосмотического набухания процессы. Это может указывать на возможность инициации процесса
гипоосмотического набухания эритроцитов в изотоническом растворе в результате облучения образца крови.
к,
отн. ед.
1,14 -1,12 -1,1 -1,08 1,06 1,04 1,02 -1,00 -0,98 0,96
0 20 40 60 80 100 120 140 160 Р, мВт/см2
Рис. 7. Зависимость относительного радиуса эритроцитов в изотоническом растворе
от плотности мощности Не-Ые-лазера
Была обнаружена зависимость жесткости мембран эритроцитов от длительности облучения образцов крови №-№-лазером, плотность мощности 235 мВт/см2. Исследовано 5 образцов крови больных множественной миеломой (эритроциты, помещенные в гипоосмотические растворы). Длительность воздействия составила 20 минут, при этом контроль жесткости эритроцитарных мембран проводили в процессе облучения и еще в течение 20 минут после выключения лазера (через каждые 5 минут). Пример полученной зависимости жесткости мембран эритроцитов от длительности облучения для одного из образцов крови приведен на рис. 8. При этом для отдельных образцов наблюдается обратимый характер полученной зависимости после выключения лазера (рис. 8), для других образцов данная зависимость отсутствует, что может быть связано с различием исходных характеристик крови для разных больных.
К, Н/м
0,030
0,025
0,020
0,015
0,010
0 5 10 15 20 25 30 35 40 1, мин
Рис. 8. Зависимость жесткости эритроцитарных мембран от длительности облучения
образца крови излучением Не-Ые-лазера (1-20 мин. - лазер включен, 21-40 мин. - лазер выключен)
Наблюдаемые при облучении крови изменения относительного радиуса эритроцитов и их деформируемости могут быть объяснены не только с позиции энергоинформационного подхода, но и происходящими при этом фотоиндуцированными процессами,
среди которых можно отметить структурные перестройки эритроцитарной мембраны и изменение ее проницаемости.
Заключение
НИЛИ оказывает эффективное терапевтическое воздействие, а также может вызывать структурные изменения биологических сред.
Подробно рассмотрено действие поля лазерного излучения согласно энергоинформационному подходу. Воздействие НИЛИ на эритроциты осуществляется за счет передачи энергии и информации клеткам. Абсолютное значение длины волны лазерного изучения не оказывает влияния на эффективность ЛБС, однако требуются монохроматичность и когерентность облучающего света (энергоинформационный подход).
Процесс взаимодействия лазерного излучения с живой тканью является самоорганизующимся: сама ткань меняет пространственные и частотные характеристики первоначального излучения, которое, в свою очередь, меняет оптические характеристики ткани за счет возбуждаемых биологических процессов. Саморепродукция биологических структур происходит за счет того, что когерентное излучение, попадая в биовещество, изменяет свое пространственное распределение интенсивности за счет оптической анизотропии ткани.
Некоторые авторы разделяют действия магнитных волн, акустических и электрических, рассматривая влияние НИЛИ на биоплазму и биологические растворы, включающие в свой состав воду. Взаимодействие структурированной воды и белковых макромолекул приводит к перестройке последних.
В результате экспериментальных исследований были получены зависимости жесткости эритроцитарных мембран и относительного радиуса красных клеток крови от плотности мощности излучения He-Ne-лазера, изменяющейся в диапазоне от 2,5 до 170 мВт/см2.
Также была обнаружена зависимость жесткости мембран эритроцитов от длительности облучения образцов крови He-Ne-лазером при плотности мощности 235 мВт/см2. Данные, полученные в результате 20-минутного облучения и дополнительного контроля в течение 20 минут после выключения лазера, показали для ряда образцов детальную обратимость изменения жесткости мембран эритроцитов после прекращения воздействия лазерного излучения.
При исследовании влияния НИЛИ на эритроциты следует учитывать не только механизмы энергоинформационного подхода, но и возможность протекания фотозависимых химических реакций в клеточной мембране.
Литература
1. Богатырева В.В. Влияние низкоинтенсивного лазерного излучения на живые клетки. // Научно-технический вестник СПбГУ ИТМО. 2006. Вып. 26. Исследования в области приборостроения. С. 10-17.
2. Карандашов В.И., Петухов Е.Б., Зродников В.С. Фототерапия (Светолечение): Рук-во для врачей. / Под ред. Н.Р. Палеева. М.: Медицина, 2001. 392 с.
3. Низкоинтенсивная лазерная терапия / Под. ред. Москвина С.В., Буйлина В.А. М.: Техника, 2000. 724 с.
4. Захаров С.Д., Иванов А.В., Вольф Е.Б. и др. Структурные перестройки в водной фазе клеточных суспензий и белковых растворов при светокислородном эффекте. // Квантовая электроника. 2003. Т. 33. № 3. С. 149-162.
5. Захаров С.Д., Иванов А.В. Светокислородный эффект - физический механизм активации биосистем квазимонохроматическим излучением. М., 2006. 50 с.
6. Гамалея Н.Ф. Световое облучение крови - фундаментальная сторона проблемы / Тезисы Всесоюзной конференции «Действие низкоэнергетического лазерного излучения на кровь». Киев, 1989. С. 180-182.
7. Малов А.Н., Выговский Ю.Н. Физика лазерной биостимуляции. М.: МИЛТА- ПКП ГИТ, 2002. 77 с.
8. Владимиров Ю.А. Лазерная терапия: настоящее и будущее. // Соросовский образовательный журнал. 1999. № 2. С. 2-8.
9. Чудновский В.М., Леонова Г.Н., Скопинов С.А. Биологические модели и физические механизмы лазерной терапии. Владивосток: Дальнаука, 2002. 157 с.
10. Malov A.N., Malov S.N., Feshchenko V.S. Resonance nature of laser biostimulation from the point of view quasi-optics. // Laser Physics. 1996. Vol. 6. №5. Р. 979-982.
11. Инюшин В.М. Биоэнергофикация - новое направление для интенсификации производства. / Биоэнергетика организмов. Сб. науч. ст./ Под ред. В.М. Инюшина. Алма-Ата, 1987. 79 с.
12. Инюшин В.М. Биостимуляция лучом лазера и биоплазма. // Казахстан, 1975. 120 с.
13. Саляев Р.К., Дударева Л.В., Ланкевич С.В. и др. Влияние пространственной структуры лазерного излучения на эффективность лазерной биостимуляции / www.media-security.ru
14. Крайнов В.П. Ориентация и фокусировка молекул полем лазерного излучения. // Соросовский образовательный журнал. 2000. Т. 6. Вып. 4. С. 90-95.
15. Опритов В.А. Энтропия биосистем. // Соросовский образовательный журнал. 1999. № 6. С. 33-38.
16. Лукашев Е.А. Асимптотическое решение модели форм эритроцита как автоволнового процесса. // Биофизика. 1991. Т. 36. Вып. 1. С. 83-89.
17. Семенов С.Н. Фонон - квант биологической (клеточной) мембраны. / www.sciteclibrary.ru
18. Будаговский А.В. О способности клеток различать когерентность оптического излучения. // Квантовая электроника. 2005. Т. 35. № 4. С. 369-374.
19. Цветков В. Д. Кислородное обеспечения сердца и принцип оптимального вхождения. Пущино, 2004. 152 с.
20. Сусак И.П., Пономарев О.А., Шигаев А.С. О первичных механизмах воздействия электромагнитных полей на биологические объекты. // Биофизика, 2005. Т. 50. № 2. С.367-370.
21. Жгенти Т.Г., Кеванишвили Г.Ш. О воздействии низкочастотного электромагнитного поля на биологическую клетку. // Биофизика. 1991. Т. 36. Вып. 3. С. 483-486.
22. Скопинов С.А. Локальная структура и ее роль в формировании ориентационного порядка в нематических жидких кристаллах // Автореф. дисс. на соиск. учен. степ. к. ф.-м. н. / Урал. политех. ин-т им. С.М. Кирова // Свердловск, 1983. 23 с.
23. Загускин С. Л. Лазерная терапия - мифы и реальность, возможные пути развития. // Лазер Информ, 1999. Вып. 2 (161). С. 1-6.
24. Христофоров В.Н., Грабовщинер А.Я., Любимова И.П., Христофорова Т.В. Механизмы нелинейных оптических процессов в биологии при квантовой терапии. / Х международная научно-практическая конференция по квантовой медицине. 01 - 05 дек. 2003. М., 2004. С. 74-76.
25. Союз врача и инженера.М: Знание, 1988. 64 с.
26. Стародубцов В. Магнитотерапия. // 9 месяцев. 2006. №8. / www.7ya.ru
27. Иванов А. П., Кацев И. Л. О спекл-структуре светового поля в дисперсионной среде, освещенной лазерным пучком. // Квантовая электроника. 2005. Т. 35. № 7. С. 670-674.
28. A.N. Rubinov. Physical grounds for biological effect of laser radiation. // J. Phys. D: Appl. Phys., 2003. Vol. 36. P. 2317-2330.
29. S.B. Bushuk, J.V. Kruchenok, G.I. Kurilo et al. Orientation of erythrocytes in the fringes of an interference laser field. // J. Opt. A: Pure Appl. Opt. 2005. Vol. 7. P. 382-385.
30. Иржак Л.И. Состав и функции крови. // Соросовский образовательный журнал. 2001. Т. 7. №. 2. С. 11-19.
31. Москалева А.Ю. , Смирнова О. А. Дифрактометрический метод исследования влияния плотности мощности лазерного излучения на деформируемость эритроцитов. // Вестник II межвузовской конференции молодых ученых. Сборник научных трудов. // СПб: СПбГУ ИТМО, 2005. Т. 2. С. 207-212.
