CC BY
23
ИССЛЕДОВАНИЯ ВОДНЫХ БИОЛОГИЧЕСКИХ РЕСУРСОВ КАМЧАТКИ И СЕВЕРО-ЗАПАДНОЙ ЧАСТИ ТИХОГО ОКЕАНА, 2017, вып. 45
УДК 597.553.2:597-12 DOI: 10.15853/2072-8212.2017.45.62-70
ВЛИЯНИЕ НЕКОТОРЫХ ФАКТОРОВ СРЕДЫ НА МОЛОДЬ КИЖУЧА ОМСОЯИУМСИШ кшитси НА ВИЛЮЙСКОМ ЛРЗ (КАМЧАТКА) В 2017 Г. Т.В. Гаврюсева, Е.В. Бочкова, Т.В. Рязанова, Н.В. Сергеенко, Е.А. Устименко
Зав. лаб., к. б. н.; ст. н. с.; вед. н. с., к. б. н.; ст. н. с., к. б. н.; ст. н. с., к. б. н.; Камчатский научно-исследовательский институт рыбного хозяйства и океанографии 683600 Петропавловск-Камчатский, Набережная, 18
Тел./факс: (4152) 41-27-01. E-mail: [email protected]; [email protected]; [email protected]; [email protected]; [email protected]
ТИХООКЕАНСКИЕ ЛОСОСИ, ТОКСИКОЗ, АКВАКУЛЬТУРА
В настоящей работе проанализировали причины возникновения повышенной смертности мальков кижуча, выращиваемых на Вилюйском ЛРЗ в 2017 г. По результатам комплексных (вирусологических, бактериологических, паразитологических) исследований рыб установили, что эпизоотическая обстановка на заводе была удовлетворительной. При проведении гистологических и гематологических исследований обнаружили структурные нарушения в почках, печени, жабрах и дегенеративные изменения клеток крови, характерные для токсикоза. Вероятнее всего, повышенная смертность рыб на заводе возникла на фоне хронического токсикоза, вызванного недоброкачественными кормами и периодическим поступлением на завод загрязненной ручьевой воды.
INFLUENCE OF SOME ENVIRONMENTAL FACTORS ON JUVENILE COHO SALMON ONCORHYNCHUS KISUTCH REARED AT THE VILYUISKY HATCHERY (KAMCHATKA) IN 2017
Tatyana V. Gavruseva, Elena V. Bochkova, Tatyana V. Ryazanova, Natalya V. Sergeenko, Elena A. Ustimenko
Head of the lab., Ph. D.; Senior Scientist; Leading Scientist, Ph. D.; Senior Scientist, Ph. D.; Senior Scientist, Ph. D.; Kamchatka Research Institute of Fisheries and Oceanography 683600 Petropavlovsk-Kamchatsky, Naberezhnaya, 18
Tel./fax: (4152) 41-27-01. E-mail: [email protected]; [email protected]; [email protected]; [email protected]; [email protected]
PACIFIC SALMON, TOXICOSIS, AQUACULTURE
In this study, we analyzed the causes of increased mortality of juvenile coho salmon reared at the Vilyuisky hatchery in 2017. Based on the results of complex (virological, bacteriological, parasitological) studies of fish, it was established that the epizootic situation at the hatchery was satisfactory. The results of the histological and hematological studies showed structural abnormalities in the kidneys, liver and gills and degenerative changes in blood cells characteristic of toxicosis. Most likely, the increased mortality of fish arose against the backdrop of chronic toxicosis caused by poor-quality feeds and the periodic introduction of contaminated stream water in to the hatchery.
Восстановление запасов тихоокеанских лососей — болезни, связанные с нарушением гидрохимиче-важнейшее направление современного искусствен- ского режима, температурными перепадами, из-ного воспроизводства рыбных ресурсов. Научно- быточным содержанием газов, травмами и т. д. практический опыт лососевого рыбоводства по- (Грищенко и др., 1999).
казывает, что одной из самых больших проблем, Для заводской молоди тихоокеанских лососей способных нанести значительный экономический часто жизненно необходима быстрая и правиль-ущерб рыбоводным заводам, являются заболевания ная диагностика того или иного заболевания, что различной этиологии, которые обусловливаются может вызывать определенные затруднения, по-многими абиотическими и биотическими фактора- скольку клиническая картина редко бывает стро-ми внешней среды. Помимо инфекционных и ин- го специфична. Для тщательного контроля эпи-вазионных, вызываемых вирусами, бактериями, зоотического состояния заводов и своевременной паразитами, водорослями и грибами, огромное постановки диагноза очень часто требуется про-влияние на состояние здоровья рыб в аквакультуре ведение комплексных исследований выращивае-оказывают незаразные болезни, возникающие в мой молоди.
результате нарушения условий содержания. К ним Цель работы — проанализировать возможные относятся алиментарные токсикозы, вызванные причины повышенной смертности молоди кижуча несбалансированными или токсичными кормами, на Вилюйском ЛРЗ в 2017 г.
МАТЕРИАЛ И МЕТОДИКА В начале апреля 2017 г. в лабораторию здоровья гидробионтов КамчатНИРО обратились сотрудники Вилюйского лососевого рыбоводного завода (ВЛРЗ) с просьбой обследовать сеголеток кижуча (Oncorhynchus kisutch) в связи с повышением ежедневного отхода. Для комплексных исследований (вирусологических, бактериологических, парази-тологических, гистологических и гематологических) провели два отбора проб: 07.04.2017 (105 экз.) и 28.04.2017 (165 экз.). В процессе работы определяли биологические показатели и описывали клинические и патологоанатомические изменения у исследуемых особей.
Для выделения вирусных патогенов рыб использовали перевиваемые линии клеток CHSE-214 (эмбрион чавычи) и EPC (эпидермальные новообразования больного оспой карпа). Культивирование и заражение линий клеток проводили по общепринятым методикам (Сборник инструкций.., 1998; Fish pathology.., 2009). Инокуляцию проводили на 96-луночных микропанелях, которые инкубировали при 15 °С в течение 14 дней, затем проводили перепассаж материала.
При бактериологических исследованиях рыб посевы проводили из почек и жабр. Использовали универсальные и селективные питательные среды. Для биохимического тестирования бактерий использовали тест-систему API 20E. По Определителю бактерий Берджи (Bergey's manual.., 2004) устанавливали таксономическую принадлежность микроорганизмов.
Для определения общего микробного числа воды (ОМЧ) проводили глубинный посев 1 мл и 0,5 мл исследуемой воды в Plate count агар. Посевы инкубировали при 27 °С в течение 5 суток. Для выявления потенциальных патогенов рыб (псевдомонад) в пробах воды применяли метод мембранной фильтрации с помощью прибора вакуумного фильтрования ПВФ-47 Б (ПП). Пробу воды пропускали через стерильные мембранные фильтры, после чего их инкубировали на дифференциально-диагностической среде Pseudomonas F agar.
Для паразитологических исследований осуществляли полное и неполное паразитологическое вскрытие (Лабораторный практикум.., 1983; Чернышева и др., 2009). Видовую принадлежность паразитов устанавливали с помощью отечественных определителей (Определитель паразитов.. , 1984). Для обнаружения сертифицируемых видов
паразитов Myxosoma cerebralis, Ceratomyxa shasta и возбудителя пролиферативной болезни почки (PKD) — зарубежные (Blue book.., 1994). Применяли окрашивание по Романовскому-Гимзе.
Кровь для гематологических исследований брали из хвостовой артерии. Мазки высушивали на воздухе, фиксировали в метаноле, окрашивали раствором Гимза. Затем препараты просматривали в 30 полях зрения под микроскопом с иммерсионным объективом (*1000). Количество незрелых эритроцитов, лейкоцитарную формулу крови определяли общепринятыми методиками (Лабораторный практикум.., 1983). Кроме того, обращали внимание на патологические изменения клеток красной и белой крови: анизоцитоз и пойкилоцитоз — изменение размеров и формы эритроцитов, амитоз — патологическое деление, фестончатый край и вакуолизацию цитоплазмы эритроцитов и лейкоцитов, присутствие макрофагов в периферическом кровяном русле и т. д. (Житенева и др., 1989).
Отобранных для гистологического и гистохимического анализа мальков усыпляли в 0,01%-м водном растворе анестетика MS-222 и фиксировали целиком в жидкости Дэвидсона. Дальнейшую обработку гистологических проб и окрашивание препаратов гематоксилин-эозином (Г-Э) по Мейе-ру, Романовскому-Гимзе и ШИК-световым зеленым проводили по общепринятым методикам (Austin, Austin, 1989; Bancroft et al., 1990). Градацию липоидной дистрофии проводили по К.А. Факторовичу (1984).
РЕЗУЛЬТАТЫ И ОБСУЖДЕНИЕ
При двух отборах проб от молоди кижуча на ВЛРЗ внешние признаки патологии были аналогичными. При визуальном осмотре у отдельных рыб отмечали истощение, нарушение координации движений, потемнение окраски тела, серые анемичные жабры, кровоизлияния около жаберных крышек, экзофтальмию (пучеглазие) (рис. 1) и вздутие брюшка. При патологоанатомическом вскрытии регистрировали анемичность почек.
Вирусологические исследования. При проведении вирусологических исследований на клеточных линиях CHSE-214 и EPC цитопатического эффекта не наблюдали, у молоди кижуча вирусных патогенов не выявили.
Бактериологические исследования. Патогенной микрофлоры во внутренних органах рыб не обнаружили. При первом отборе проб в посевах
из почек у 80% рыб обнаружили рост плесневых грибов. При втором отборе проб на жабрах у 3,3% рыб выявили Pseudomonas fluorescens.
Паразитологические исследования. Особо опасных инвазионных агентов, способных влиять на численность популяций рыб, не выявили. При втором отборе проб на жабрах у 40% кижуча отмечали диатомовые водоросли, в желудочно-кишечном тракте — микозную микрофлору (13,3%).
Гематологические исследования проводили только при втором отборе. У сеголеток кижуча на ВЛРЗ при подсчете лейкоцитарных формул отмечали лимфопению — уменьшение или отсутствие лимфоцитов (у 30% рыб). У 20% мальков на мазках присутствовали скопления макрофагов — клеток белой крови, регулирующих гемопоэз и повышающих естественную резистентность организма (Житенева и др., 1989).
У 80% мальков кижуча отмечали анизо- и/или пойкилоцитоз разной степени (рис. 2). Разнораз-мерность эритроцитов была выражена слабее (рис. 2Б), тогда как изменение формы клетки у 20% особей наблюдалось массово (рис. 2В).
У 20% рыб регистрировали увеличение количества незрелых эритроцитов в периферическом русле крови, у 30% — практически полное их отсутствие, что показывает на угнетение эритропоэза (нормой для сеголеток считается присутствие до 41% молодых клеток (Валова, 2000)). Патологическое деление эритроцитов (амитоз — рис. 2Г) встречали у 50% (0-2 на поле зрения микроскопа), фестончатый край эритроцитов регистрировали у 70% рыб, гемолиз (распад) эритроцитов и остающиеся после этого процесса ядерные тени отмечали у 60% (рис. 2Г). У 10% мальков на мазке присутствовали единичные клетки красной и белой крови.
Рис. 1. Визуальные признаки патологии мальков кижуча: истощение, эк-зофтальмия
Fig. 1. The visual pathological signs in coho salmon alevins: exhaustion, exophthalmia
» » * •
% • »
* • I
k * %
0
. %
% % %
I' *
5 »
%» %
% • •
• t •
\ ^Sf *
* 4
w m ^
* %
ЯТ
✓ 4
t
0
äf
% » " i *
\ 1 ^';
. . i ГЭ **?
v; \ ( г
0 0 /.С
л~ m, гэ
^.is-
%
дэ fj
s*
n
*
4
T
0
zv
гэ<
Рис. 2. Картина крови у сеголеток кижуча с ВЛРЗ: А — норма; Б — слабый анизоцитоз эритроцитов (t); В — пойкилоцитоз эритроцитов; Г — патологическое деление эритроцита (ДЭ), гемолиз эритроцитов (ГЭ), ядерные тени (ЯТ). Окраска по Гимза. Увеличение х1000
Fig. 2. The view of the blood sample of coho salmon from the Vilyuisky hatchery: A - normal, Б - light anisocytosis of erythrocytes (t); В -poikilocytosis of erythrocytes; Г -erythrocyte pathological division (ДЭ), hemolysis of erythrocytes (ГЭ), nuclear shadows (ЯТ). Giemsa staining. Magnified х1000
Кровь является надежным индикатором физиологического состояния организма в процессе его взаимодействия со средой. При интенсивном рыбоводстве в условиях заводского воспроизводства с высокой плотностью посадки и повышенным риском возникновения заразных и незаразных заболеваний, анализ изменений, происходящих в крови, позволяет дать оценку состояния здоровья рыбы. По картине крови не всегда можно диагностировать заболевание, но она всегда отражает наличие и степень патологического процесса, происходящего в организме (Житенева и др., 1989; Житенева, 1999). Так, лейкограммы рыб чутко реагируют на изменение как внешней среды, так и внутреннего состояния организма: температуру, соленость, кислородный режим, характер питания, степень созревания, токсикозы, заболевания. Макрофаги поступают в периферическое русло крови только в случаях патологических процессов в организме. На патологические процессы также указывает лимфопения.
Морфология красной крови рыб также претерпевает изменения в связи с воздействием различных факторов среды и может отражать работу кроветворных органов. Накопление продуктов распада внутри кровеносных сосудов вызывает нарушение осмотической резистентности эритроцитов, оболочка их становится зубчатой или фестончатой, что мы и наблюдали у 70% обследованных мальков кижуча. По мнению Житеневой с соавторами (Жи-тенева и др., 1989), особенно ярко это выражено при токсикозах. В дальнейшем нарушение ионного равновесия может приводить к гемолизу эритроцитов. Анизо- и пойкилоцитоз считаются дегенеративными явлениями кроветворения и наступают при угнетении эритропоэза под действием вредных факторов (химических веществ, микробов, вирусов). За исключением возрастных или сезонных явлений (в период смены первичных эритроцитов вторичными) резкое увеличение незрелых форм эритроцитов в кровяном русле также является реакцией кроветворных органов на неблагоприятные факторы — токсическое воздействие, недостаток кислорода, неполноценное питание, инфекции и инвазии и т. д. (Житенева, 1999).
Появление в периферическом русле макрофагов, уменьшение количества лейкоцитов, нарушение ионного равновесия в эритроцитах (фестончатый край и гемолиз), угнетение эритропоэза (пой-килоцитоз, амитоз, отсутствие «юных» эритроци-
тов) и другие дегенеративные изменения клеток крови указывают на наличие вредных для здоровья мальков кижуча факторов, оказывающих воздействие на кроветворный орган или непосредственно на клетку. Таким образом, картина крови, наблюдаемая нами у сеголеток кижуча с ВЛРЗ, может указывать на патологические процессы, возникающие при токсикозах разного рода, инфекционных или паразитарных заболеваниях.
Гистологические исследования. Основные гистопатологические изменения были обнаружены в жабрах, почках, печени, желудочно-кишечном тракте молоди кижуча (табл. 1).
При первом отборе проб у кижуча в жабрах регистрировали меланизацию макрофагов вокруг кровеносных сосудов жаберных дуг, локальную гиперплазию респираторного эпителия и отек подэпителиального слоя жаберных ламелл (рис. 3А). При втором отборе проб выявили аналогичные изменения, но отек подэпителиального слоя жаберных ламелл отмечали только у 6,7% рыб, тогда как встречаемость гиперплазии респираторного эпителия жаберных ламелл возросла в три раза (табл. 1). Выявленные повреждения жабр не характерны для алиментарного токсикоза и чаще возникают вследствие повышенного содержания в воде фосфорорганических соединений, аммиака, сероводорода и других токсических соединений (Вейдемейер и др., 1981; Руссо, 1981; Моисеенко, 2009). Подобные поражения жабр могли быть также усугублены уменьшением количества клеток эритроидного ряда (угнетение эритро-поэза), которое приводило к нарушению газообмена у рыб и, как следствие, к компенсаторной гиперплазии респираторного эпителия жаберных ламелл. Они встречаются при многих заболеваниях (Mallatt, 1985; Post, 1987; Ferguson, 1995) и отражают физиологическое состояние молоди.
В почках рыб при первом отборе отмечали фокальный некроз клеток (рис. 3Б) и межклеточный отек гемопоэтической ткани, эозинофильные массы в просвете почечных канальцев, локальную вакуолизацию и гиалиново-капельную дегенерацию нефроцитов (рис. 3В).
При последующем отборе проб у рыб наблюдали отек межклубочкового пространства почечных гломерул (рис. 3Г), меланизацию макрофагов вокруг кровеносных сосудов, гранулемы. Встречаемость гиалиново-капельной дегенерации не-фроцитов увеличилась в два раза. Структурные
изменения в почках являются признаками токсикоза и выявляются у рыб уже через 24 часа после воздействия токсикантов, растворенных в воде (Pathan et al., 2010).
В желудочно-кишечном тракте наблюдали вздутие и расширение просвета пилорического отдела желудка и пилорических придатков (тим-панию) (рис. 4А). При первом отборе проб в печени у молоди кижуча выявили гранулемы (рис. 4Б), жировую дистрофию гепатоцитов второй-третьей степени (рис. 4В). При втором отборе у рыб регистрировали жировую дистрофию гепатоцитов третьей-четвертой степени (рис. 4Г).
По нашим и литературным данным (Устименко и др., 2003; Абросимова, 2015), тимпания может быть инициирована дисбактериозом, вызванным бродильной активностью дрожжей в корме. Гранулемы в печени возникают в результате проли-
ферации макрофагов, а отсутствие в них признаков некроза исключает инфекционную этиологию и также свидетельствует о воздействии токсичных веществ (Лукина, 2014). Липоидная дистрофия гепатоцитов 2-3 степени, часто встречающаяся у заводских лососей, является обратимой при переходе на естественное питание (Факторович, 1984; Гаврюсева, 2006), тогда как дистрофия четвертой степени может привести к гибели рыб. Она развивается постепенно и продолжается длительное время, даже после выпуска рыб в естественные водоемы (Факторович, 1984; Грищенко и др., 1999). Жировая дистрофия печени у молоди кижуча вызывала нефроз, который сопровождался нарушением нормального функционирования почек и приводил к удержанию воды в организме и межклеточному отеку. При более длительном воздействии токсикантов происходила гиалиново-ка-
Рис. 3. Гистопатологические изменения, выявленные в жабрах и почках у молоди кижуча на Вилюйском ЛРЗ: А — меланизация макрофагов вокруг кровеносных сосудов жаберных дуг, гиперплазия респираторного эпителия и отек подэпителиального слоя (f) жаберных ламелл (х100, Г-Э); Б — фокальный некроз клеток гемопоэти-ческой ткани (f) (*400, Г-Э); В — гиалиново-капельная дегенерация нефроцитов (f) (*200, Г-Э); Г — отек меж-клубочкового пространства почечных гломерул (f) (х200, Г-Э). Гематоксилин-эозин
Fig. 3. The histopathological changes, revealed in the gills and kidneys in juvenile coho salmon from the Vilyuisky hatchery: А - melanization of macrophages around the blood vessels of the gill arches, hyperplasia of the respiratory epithelium and edema of the subepithelial layer (f) of the gills lamellae (*100, Г-Э); Б - focal necrosis of hematopoietic tissue cells (f) (*400, Г-Э); В - hyaline granular drop degeneration of nephrocytes (f) (*200, Г-Э); Г - Swelling of the intercellular space of kidney glomeruli (f) (*200, Г-Э). Hematoxylin and eosin
пельная дегенерация цилиндрического эпителия почечных канальцев.
Гистологические и гематологические исследования выявили в органах, тканях и периферическом русле крови наличие патологических изменений, характерных для токсикоза, поэтому сотрудникам завода были даны рекомендации проверить поступающие на ВЛРЗ воду и корма на токсичность.
По проекту завода, его водоснабжение должно осуществляться из трех источников: подземных скважин, поверхностных ручьев и озерного водозабора. В период обращения в лабораторию озерный водозабор не использовали. До первого отбора проб водоснабжение завода осуществлялось из ручья и скважины, после 7 апреля завод перевели полностью на скважинное водоснабжение. Из-за аварийного отключения насоса на скважи-
нах 21 апреля возникло резкое падение уровня воды в бассейнах. Когда случилась авария, начали закачивать воду из ручья. Ее сильный напор поднял осадок, скопившийся в дренажных трубах и отделении водоподготовки, который пошел в бассейны. Практически до конца апреля завод получал ручьевую воду. Химический анализ проб поступающей на завод воды провели только второго мая (Протокол № 13/1П-2-17 Филиала ФГБУ «ЦЛАТИ по ДФО»). По основным неорганическим показателям, фенолам и нефтепродуктам значения ПДК не превышали нормативные. Бактериологический анализ показал отсутствие патогенных для рыб бактерий, ОМЧ (общее микробное число) составило 9 КОЕ/мл, что не превышало нормы. К началу мая ситуация с водоснабжением нормализовалась, завод полностью перешел на воду из скважин.
Таблица 1. Встречаемость гистопатологических изменений у молоди кижуча на Вилюйском ЛРЗ в 2017 г. Table 1. The frequency of the histopathological changes in juvenile coho salmon from Vilyuisky hatchery in 2017
Органы Патология Встречаемость(%) Frequency (%)
Organs Pathology 1-й отбор 1-st sample 2-й отбор 2-nd sample
Жабры Gills Меланизация макрофагов вокруг кровеносных сосудов жаберных филаментов и дуг Melanization of macrophages around blood vessels gill filaments and arches Отек подэпителиального слоя жаберных ламелл Edema of the subepithelial layer of the gills lamellae 100 20 100 6,7
Гиперплазия респираторного эпителия жаберных ламелл Hyperplasia of the respiratory epithelium of the gills lamellae 10 33,3
Интерстициальный отек гемопоэтической ткани почки Interstitial edema of hematopoietic tissue of the kidney Отек межклубочкового пространства Edema of the intercellular space 33,3 0 40 13,3
Локальная вакуолизация клеток почечных канальцев Local vacuolization of renal tubule cells 6,7 0
Почки Фокальный некроз клеток гемопоэтической ткани Focal necrosis of hematopoietic tissue cells 6,7 0
Kidney Гранулема в передней почке Granuloma in anterior kidney 0 13,3
Скопление эозинофильных масс в просвете почечных канальцев Accumulation of eosinophilic masses in the lumen of the renal tubules 26,7 0
Меланизация макрофагов вокруг кровеносных сосудов Melanization of macrophages around blood vessels 0 40
Гиалиново-капельная дегенерация нефроцитов Hyaline granular drop degeneration of nephrocytes 13,3 26,7
Гранулема / Granuloma 6,7 0
Печень Liver Локальная вакуолизация, вторая-третья степень липоидной (жировой) дистрофии гепатоцитов Local vacuolation, the second-third degree of lipoid (adipose) dystrophy of hepatocytes Третья-четвертая степень липоидной (жировой) дистрофии гепатоци- 26,7 0
тов
60
The third-fourth degree of lipoid (adipose) dystrophy of hepatocytes
Желудочно- Вздутие и расширение просвета пилорического отдела желудка и
кишечный пилорических придатков (тимпания)
тракт Swelling and dilatation of the pyloric lumen of the stomach and pyloric caeca
Digestive tract (tympania)_
33,3
0
0
В начале мая рыбоводы провели полную замену корма, а перед этим в течение двух дней молодь не кормили, и изменили кратность кормления: вместо одного раза в час кормили один раз в два часа. Уже через два дня смертность снизилась практически во всех бассейнах, к началу июня отход уменьшился в 3-10 раз (рис. 5) и впо-
следствии перестал превышать допустимый. Мальки активно питались, двигались и реагировали на раздражители, внешних признаков отклонений от нормы не было.
Так как, по результатам вирусологических, бактериологических и паразитологических исследований, эпизоотическая обстановка на заводе
Рис. 4. Гистопатологические изменения, выявленные в желудочно-кишечном тракте и печени у молоди кижуча на Вилюйском ЛРЗ: А — вздутие и расширение просвета пилорического отдела желудка и пилорических придатков (х50, Г-Э); Б — гранулема ф в печени (х200, Г-Э); В — жировая дистрофия гепатоцитов второй степени (х400, Г-Э); Г — жировая дистрофия гепатоцитов четвертой степени (х400, Г-Э). Гематоксилин-эозин Fig. 4. The histopathological changes, revealed in the gastrointestinal tract and liver in juvenile coho salmon in the Vilyuisky hatchery: А - swelling and dilatation of the pyloric lumen of the stomach and pyloric caeca (tympania) (х50); Б - granuloma (|) in the liver (х200); В - secondary degree of lipoid (adipose) dystrophies in hepatocytes (х400); Г -fourth degree of adipose dystrophies in hepatocytes (х400). Hematoxylin and eosin
1600-1
J=
in 1С 1400-
Чч
^ О î_i 1200-
ro <u
« X> m g юоо-
ч 2
о с H >> 800-
о = га 600-
С
О 400-
s 200-
3 4 5
Номера бассейнов / Basin №
Рис. 5. Отход молоди кижуча на ВЛРЗ в мае-июне 2017 г.
Fig. 5. The mortality of juvenile coho salmon in the Vilyuisky hatchery in May-June of 2017
была признана благополучной, то основными причинами развития токсикоза, по нашему мнению, мог стать кумулятивный эффект двух факторов (загрязненная органикой талая ручьевая вода и, возможно, некачественные корма). На недоброкачественность кормов указывают рост плесневых грибов из внутренних органов, а также гистопа-тологические изменения в желудочно-кишечном тракте исследованных рыб. Токсикоз у мальков кижуча на ВЛРЗ в период исследований сопровождался умеренной смертностью и, в большинстве случаев, обратимыми патологическими изменениями органов и тканей, что позволило отнести его к хроническому.
Для предотвращения подобных ситуаций на рыбоводных заводах Камчатки необходимо неукоснительно соблюдать биотехнологические правила подращивания молоди лососей, строго следить за качеством поступающей воды и кормов.
ЗАКЛЮЧЕНИЕ
В результате комплексных исследований молоди кижуча на Вилюйском ЛРЗ, проведенных в апреле-июне 2017 г., выявили, что эпизоотическая обстановка в отношении особо опасных инфекционных и инвазионных заболеваний удовлетворительная. Вероятнее всего, повышенная смертность рыб на ВЛРЗ возникла на фоне хронического токсикоза, вызванного, возможно, недоброкачественными кормами и периодическим поступлением на ВЛРЗ загрязненной ручьевой воды. После смены кормов и нормализации обстановки с подачей на завод скважинной воды гибель молоди резко сократилась и не превышала допустимый уровень.
БЛАГОДАРНОСТИ
Авторы выражают искреннюю благодарность главному рыбоводу ЛРЗ «Вилюйский» Е.С. Мах-мутовой за предоставленную информацию.
СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ
Абросимова К.С. 2015. Оптимизация кормов и кормления молоди осетровых рыб для профилактики и лечения тимпании в интенсивной аквакуль-туре. Автореф. дис. ... канд. биол. наук. Ростов-на Дону: Южный научный центр РАН. 23 с. Валова В.Н. 2000. Рыбоводный стандарт молоди кеты // Рыболовство и рыбоводство. № 4. С. 23. Вейдемейер Г.А., Мейер Ф.П., Смит Л. 1981. Стресс и болезни рыб. М.: Легк. и пищ. пром-сть. 127 с.
Гаврюсева Т.В. 2006. Морфологические изменения у молоди тихоокеанских лососей из естественных водоемов и на рыбоводных заводах Камчатки. Автореф. дис. ... канд. биол. наук. Владивосток: Ин-т биологии моря. 24 с.
Грищенко Л.И., АкбаевМ.Ш., ВасильковГ.В. 1999. Болезни рыб и основы рыбоводства. М.: Колос. 456 с.
Житенева Л.Д. 1999. Экологические закономерности ихтиогематологии. Ростов-на-Дону: АзНИИРХ. 54 с.
Житенева Л.Д., Полтавцева Т.Г., Рудницкая О.А. 1989. Атлас нормальных и патологически измененных клеток крови рыб. Ростов-на-Дону. 112 с. Лабораторный практикум по болезням рыб. 1983. Под редакцией В.А. Мусселиус. М.: Легк. и пищ. пром-сть. 294 с.
Лукина Ю.Н. 2014. Проблемы здоровья рыб в водных системах европейско-сибирской области Палеарктики. Автореф. дис. ... докт. биол. наук. Петрозаводск: Петрозаводский гос. ун-т. 37 с. Моисеенко Т.И. 2009. Водная токсикология. Теоретические и прикладные аспекты. М.: Наука. 400 с. Определитель паразитов пресноводных рыб фауны СССР. 1984. Паразитические простейшие / Под ред. О.Н. Бауэр и др. Л.: Наука. Вып. 143. Т. 1. Ч. 1. 431 с.
Руссо Р. 1981. Последние достижения в исследованиях токсичности нитритов для рыб / Теор. вопр. водной токсикологии. Л.: Наука. С. 186196.
Сборник инструкций по борьбе с болезнями рыб. 1998. Ч. 1. М.: Отдел маркетинга АМБагро. 310 с. Устименко Е.А., Гаврюсева Т.В., Сергеенко Н.В. 2003. Признаки алиментарного токсикоза у молоди лососей на рыбоводных заводах Камчатки // Экологические и социально-экономические проблемы Камчатки: Мат-лы науч.-практ. конф. (Петропавловск-Камчатский, 25-27 марта 2003 г.). Петропавловск-Камчатский: КамчатГТУ. С. 21-32. Факторович К.А. 1984. Алиментарные заболевания рыб // Биологические основы рыбоводства: паразиты и болезни рыб. М.: Наука. С. 144-159. Чернышева Н.Б., Кузнецова Е.В., Воронин В.Н., Стрелков Ю.А. 2009. Паразитологическое исследование рыб. Методическое пособие. Санкт-Петербург: ГОСНИОРХ. 20 с. Austin B., Austin D.A. 1989. Methods for the microbiological examination of fish and shellfish // Edinburgh EH1 1HX. Scotland. 260 p.
70 TaBproceBa, EoHKOBa, Pa3aHOBa, CepreeHKO, ycTHMeHKO
Bancroft D., Stevens A., Turner D.R. 1990. Theory and practice of histological techniques. Edinburgh, London, Melbourne, New York: Churchill Livingstone Inc. 725 p.
Bergey's manual of systematic bacteriology. 2004. Ed. by Garrity G.M., Bell J.A., Lilburn T.G. 2 Ed. New York: Springer. 330 p.
Blue book. Suggested procedures for the detection and identification of certain finfish and shellfish patho-gens.1994. 4th ed. Ver. I. Fish Health Sec. Am. Fish. Soc. 294 p.
Ferguson H.W. 1995. Systematic pathology of fish. A text and atlas of comparative tissue responses in diseases of Teleosts. Iowa: Iowa State Univ. Press Ames. 267 p.
Fish pathology Section Laboratory Manual. 2009. Edited by Meyers T.R. // Alaska Dep. fish and game. spec. publ. № 12. 252 p.
Mallatt G. 1985. Fish gill structure changes induced by toxicants and other irritants: A statistical review // Can. J. Fish. Aquat. Sci. V. 42. P. 630-648. Pathan T.S., Shinde S.E., There P.B., Sonawane D.L. 2010. Histopathology of liver and kidney of Rasbora daniconius exposed to paper mill effluent // Research Journal of Biological Sciences. Vol. 5. P. 389-394. Post G. 1987. Textbook of fish health. Neptune City: T.F.H. Publ., Inc. Ltd. 288 p.
