CC BY
28
Влияние кратковременной электроанальгезии на некоторые показатели гомеостаза у новорожденных телят
А.П. Жуков, д.вет.н, И.В. Радаев, соискатель,
Оренбургский ГАУ
Перспективным методом профилактики незаразных болезней телят молозивного периода роста и стимуляции у них естественной резистентности является кратковременная электроанальгезия (электростимуляция — ЭС). С этой целью используют импульсный П-образный ток частотой 100 Гц, длительностью импульсов 0,5 мкс с продолжительностью процедур 10 мин.
При использовании стандартных методик в крови 30 здоровых телят в первые 8 дней жизни и в 30 дней до и после ЭС изучены показатели морфологии крови, белкового, минерального, углеводного, липидного обмена и иммунологический статус.
Установлено, что телята реагируют на ЭС несколько иначе, чем взрослые животные. Так, в период действия тока у всех телят отмечались частые «пустые» сосательные движения с обильным выделением слюны. После процедур у них на 10— 15% возрастала сила сосательных движений, отмечалось достоверное увеличение эритроцитов, гемоглобина и лейкоцитов, что обусловлено мобилизацией части депонированных клеток крови. В течение первых шести дней отмечалось сни-
жение на 4,38—5,72% уровня общего белка. При этом изменяется соотношение отдельных фракций белка, что характеризуется увеличением на 5,38—12,8% уровня альбуминов, некоторым снижением - и -глобулиновых фракций и увеличением на 4,08—10,35% -глобулинов (табл. 1). Отмечается достоверное увеличение концентрации кальция с 2,17 до 2,82 ммоль/л, фосфора с 0,75 до 1,12 ммоль/л и незначительное снижение магния с 0,70 до 0,56 ммоль/л. Наиболее ранними признаками развивающихся нарушений в организме животных могут быть изменения функционирования иммунокомпетентной системы. Ранее нами установлено, что модификация деятельности иммунной системы происходит по ряду причин, одна из них — гипотрофия новорожденных животных, другая — неблагоприятная экологическая обстановка, связанная с антропогенной контаминацией (Жуков А.П. 1999). И в первом, и во втором случаях возникает необходимость в управлении иммунологической реактивностью животных. С этой целью нами ранее использованы тимоген, Т- и В-активин, достим, гемамин, цито-вир, рибав и споробактерин. При этом получены обнадеживающие результаты [Топурия Г.М., 1993; Топурия Г.М. и др., 2001; Аглюлина А. Р., Жуков А.П., 2003.].
1. Некоторые показатели иммунобиологического статуса телят в возрасте первого дня жизни до выпойки молозива и в период после электростимуляции
Учетное время Показатели иммунитета
лимфоциты общий белок, г/л альбумины, % глобулины, % IgG, г/л 2 « Ig г естест- венные антитела, титр
п-109/л Т-109/л В-109/л
До электро- 2,99± 0,87± 0,22± 43,67± 55,63± 19,31 11,30 13,86 0,22 0,37 -
стимуляции 0,18 0,08 0,02 3,89
После ЭС 3,37± 0,88± 0,26± 40,78± 52,42± **21,18 10,72* 15,68* 2,31** 0,49** 1:8,36±
через, часы: 2 4 0,24* 0,09 0,02 2,74** 4,03** 0,83
3,16± 0,89± 0,24± 39,89± 53,28± 20,83 8,06** 17,83** 3,23** 0,48 1:9,74±
0,21 0,07 0,01 2,38 3,61 0,78*
6 4,34± 0,91± 0,32± 38,96± 51,83± *22,36 7,49 18,32 4,29* 0,51 1:9,48±
0,33** 0,06 0,02 2,58 3,22 0,63
12 4,19± 0,89± 0,30± 38,63± 49,36± *20,62 11,75** 18,27 4,58 0,49 1:10,36±
0,24 0,08 0,03 3,12 4,12* 0,72
сутки: 1 4,15± 0,90± 0,30± 40,35± 51,67± *18,29 10,26 19,78 6,38** 0,50 1:12,42±
0,19 0,11 0,04 3,08 4,38* 0,68
2 4,23± 0,89± 0,32± 41,58± 53,72± *16,93 7 54** 21,81** 8,12** 0,52 1:14,96±
0,22 0,09 0,03 2,74 3,76 0,74
4 3,62± 0,91± 0,34± 40,84± 55,24± 16,32 7,25 21,19 9,78* 0,49 1:13,78±
0,17 0,07 0,04 3,08 4,11* 0,83
6 4.23± 0,87± 0,38± 42,93± 58,43± **11,57 8,34* 21,96 10,37 0,51 1:14,67±
0,16 0,09 0,04 2,88 3,96* 0,77
8 4.35± 0,88± 0,40± 44,31± 57,39± 11,74 8,25 22,62 10,41 0,53 1:16,57±
0,24 0,11 0,05 3,19 4,24 0,81*
30 4,63± 0,91± 0,42± **55,81 56,31± 11,36 8,95 23,38 10,94 1,52** 1:33,0±
0,28* 0,12 0,05 ±3,74 4,38 0,98**
Контрольная 4,08± 0,85± 0,30± 50,87± 52,33± **16,24 10,14** 21,29** 9,36** 1,37** 1:23,47±
группа (телята- 0,33** 0,09* 0,03** 4,03** 4,17** 0,89**
сверстники)
Примечание: * от р<0,05 до р<0,01 ** p<0,001
Использование электростимуляции с этой целью на новорожденных телятах проведено впервые. Так, у опытной группы телят, достоверно отмечалось повышение в крови концентрации лимфоцитов, причем в период последействия тока мы объясняем увеличение клеток за счет перераспределения депонированной крови, а в отдаленное учетное время повышение на 10—12% объяснимо единством адаптационной реакции животных в ответ на действие электротока.
Согласно общепризнанной теории клональной селекции, каждый лимфоцит в процессе своего развития в центральных органах иммунитета приобретает способность реагировать лишь с определенным антигеном, еще ни разу с ними не встретившись. Предполагается, что иммунная система состоит из миллионов различных клонов Т- и В- лимфоцитов. Завершающая, антигензависи-мая дифференцировка происходит в периферических органах иммунитета, где Т-лимфоциты приобретают способность осуществлять иммунный ответ клеточного типа, а В-лимфоциты — гуморальный ответ путем выработки антител.
Как показали наши исследования, содержание Т-лимфоцитов остается практически неизменным на всех этапах исследования животных
(таблица), тогда как В-лимфоцитов стало больше на 15% через шесть часов после ЭС, и двукратно увеличивается их количество через 30 дней.
Известно, что белки сыворотки крови играют ведущую роль в обменных процессах в организме животных и функционально связаны с развитием у них основных хозяйственно ценных признаков. Исследованиями А.С. Пау (2005) установлено, что выпойка молозива в течение первых пяти дней жизни существенно стимулировала белковосин-тезирующую функцию печени, и на этом фоне концентрация белкового субстрата в крови увеличилась на 9—12 г/л. Нами получены результаты, свидетельствующие об уменьшении уровня общего белка в крови на протяжении шести дней после ЭС, на фоне выпойки молозива (табл.). Повышенный расход белка у новорожденных телят после ЭС, по-видимому, связан с необходимостью обеспечения полноценной адаптации к воздействию стрессора. Через месяц после ЭС уровень белка в крови телят превышал на 10% таковой у животных контрольной группы.
В основе иммунного ответа с участием специфической системы иммунитета при поступлении в организм чужеродного антигена лежит образование специфических антител или эффекторных
клеток определенной специфичности, направленных на распознавание и элиминацию данного антигена. — эволюционно старейший; он же
образуется на ранних этапах иммунного ответа, совместно с комплементом лизируя бактерии и другие чужеродные клетки. Молекулы 120 при первичном иммунном ответе в свободной циркуляции появляются позднее ^М. В крови новорожденных телят мы находили лишь следовые концентрации ^ О, не превышающие 0,22 г/л, через два часа после выпойки молозива отметили 10-кратное, а через шесть — уже 20-кратное увеличение ^ О. Через шесть дней после ЭС и начала выпойки молозива концентрация иммуноглобулина О увеличилась в 50 раз, и в месячном возрасте данный показатель оставался без изменений. Следует отметить, что в месячном возрасте телята контрольной группы имели оптимальный показатель концентрации ^О, но все же меньший на 15%, чем у животных опытной группы (таблица). На этом фоне изменения концентрации носят предсказуемый нарастающий характер, так, через неделю их больше уже на 40%, а через месяц их уровень возрастает в три раза, телята-сверстники контрольной группы в этом возрасте имели на 10,5% меньше чем результаты худшие.
После рождения требуется время для первичного иммунного ответа на поступающие в организм многочисленные и разнообразные антигены с образованием клеток памяти, плазматических клеток и синтезом специфических глобулинов. Проведенное исследование показало, что кровь новорожденных телят, не потреблявших молозиво, свободна от естественных антител, что ранее отмечал в своих работах А. М. Петров (1996), изучавший динамику основных иммунологических параметров у телят-трансплантантов в раннем по-стнатальном онтогенезе.
Как свидетельствуют данные таблицы, титр естественных антител после выпойки молозива нарастает ежечасно и ежедневно на протяжении всего месяца наблюдения, причем максимальные значения получены через 30 дней после рождения — 1:33,00+0,48 в опытной и 1:23,47+0,89 в контрольной группах.
Таким образом определено, что в первые часы после ЭС отмечается усиленный расход белков, углеводов и липидов, что в значительной степени способствует повышению эффективности адап-тационно-защитных механизмов организма, отмеченные изменения происходят за счет совокупности физиологических реакций в ответ на чрезвычайный раздражитель. Все эти изменения не выходят за рамки физиологической нормы, более того, обеспечивают в последующем обмен веществ и иммунобиологический статус на более высоком уровне.
Литература
1 Аглюлина, А.Р. Влияние антропогенных загрязнений на систему крови крупного рогатого скота и ее коррекция // Информ. листок № 50—002—03 / А.Р. Аглюлина, А.П. Жуков. Оренбург, 2003. 2 с.
2 Жуков, А.П. Реактивность крупного рогатого скота в различных экологических условиях Южного Урала (ее изменения и коррекция): автореф. дис. ... д-ра ветерин. наук. СПб., 1999. 45 с.
3 Пау, A.C. Становление иммунобиологического статуса телят в условиях техногенной провинции Восточного Оренбуржья: автореф. дис. ... канд. ветерин. наук. Оренбург, 2005. 22 с.
4 Петров, А.М. Динамика основных иммунологических параметров телят-трансплантатов в раннем постнатальном онтогенезе: автореф. дис. ... докт. ветерин наук. М., 1996. 32 с.
5 Топурия, Г.М. Влияние Т- и В- активина на новорожденных телят, находящихся в зоне аварии на ЧАЭС: информ. листок // Мособл ЦНТИ, 1993. 3 с.
6 Топурия, Г.М. Количественная и функциональная оценка иммунокомпетентных клеток у новорожденных телят под действием гемамина // Актуальные проблемы диагностики, профилактики, терапии болезней животных в современных экологических условиях: материалы межрегион. науч.-прак. конфер. / Г.М. Топурия, Н.П. Лысенко, Л.Ю. Топурия. Барнаул, 29—30 августа 2001. РАСХН, Сиб. отд. Барнаул, 2001. С. 62-64.
