Научная статья на тему 'Влияние кортизола в комплексе с липопротеинами очень низкой плотности на развитие гепатомы на-1 и карциномы Эрлиха'

Влияние кортизола в комплексе с липопротеинами очень низкой плотности на развитие гепатомы на-1 и карциномы Эрлиха Текст научной статьи по специальности «Фундаментальная медицина»

CC BY
175
53
i Надоели баннеры? Вы всегда можете отключить рекламу.
Ключевые слова
ОПУХОЛЕВЫЕ КЛЕТКИ / ЛИПОПРОТЕИНЫ / КОРТИЗОЛ / ОПУХОЛЬ-АССОЦИИРОВАННЫЕ МАКРОФАГИ / БИОСИНТЕЗ НУКЛЕИНОВЫХ КИСЛОТ / TUMOR CELLS / LIPOPROTEINS / CORTISOL / TUMOR-ASSOCIATED MACROPHAGES / BIOSYNTHESIS OF NUCLEIC ACID

Аннотация научной статьи по фундаментальной медицине, автор научной работы — Панин Л. Е., Белоногова Ж. И., Князев Р. А., Чешенко И. О.

Исследования проводились на клетках асцитной НА-1 гепатомы и асцитной карциномы Эрлиха. После пассажа клеток на мышах выделяли смешанную культуру клеток, содержащую опухоль-ассоциированные макрофаги. Показано, что в сокультуре комплекс ЛПОНП–кортизол значительно подавлял пролиферативную активность опухолевых клеток. Полученная константа связывания кортизола с ЛПОНП указывает на то, что в комплексообразовании принимает участие белковый компонент липопротеинов. Предполагается, что в образовании такого комплекса важную роль играют опухоль-ассоциированные макрофаги. Обнаружено, что механизм подавления роста опухолевых клеток связан с апоптозом.

i Надоели баннеры? Вы всегда можете отключить рекламу.

Похожие темы научных работ по фундаментальной медицине , автор научной работы — Панин Л. Е., Белоногова Ж. И., Князев Р. А., Чешенко И. О.

iНе можете найти то, что вам нужно? Попробуйте сервис подбора литературы.
i Надоели баннеры? Вы всегда можете отключить рекламу.

Influence of cortisol and very low-density lipoproteines on the development of

Studies were conducted using ascetic HA-1 hepatomas and ascitic Ehrlich’s carcinoma cells. After passage of cells in mice, cell culture containing tumor-associated macrophages was studied. It was shown that the very low-density lipoprotein (VLDL)-cortisol complex significantly inhibited proliferative activity of tumor cells. The obtained constant of cortisol binding to VLDL indicated that the protein component of lipoproteins participated in the complex formation. Tumor-associated macrophages were suggested to play an important role in the formation of this complex. It was found that inhibition of tumor cell growth was related to apoptosis.

Текст научной работы на тему «Влияние кортизола в комплексе с липопротеинами очень низкой плотности на развитие гепатомы на-1 и карциномы Эрлиха»

УДК: 616.36-006.6:577.11]-092.9

влияние кортизола в комплексе с липопротеинами очень низкой плотности на развитие гепатомы на-1 и карциномы эрлиха

л.Е. панин, ж.И. Белоногова, р.А. Князев, И.о. чешенко

ФГБУ «НИИ биохимии» СО РАМН, г. Новосибирск 630117, Новосибирск, ул. Тимакова, 2, e-mail: knjazev_roman@mail.ru

Исследования проводились на клетках асцитной НА-1 гепатомы и асцитной карциномы Эрлиха. После пассажа клеток на мышах выделяли смешанную культуру клеток, содержащую опухоль-ассоциированные макрофаги. Показано, что в сокультуре комплекс ЛПОНП-кортизол значительно подавлял пролиферативную активность опухолевых клеток. Полученная константа связывания кортизола с ЛПОНП указывает на то, что в комплексообразовании принимает участие белковый компонент липопротеинов. Предполагается, что в образовании такого комплекса важную роль играют опухоль-ассоциированные макрофаги. Обнаружено, что механизм подавления роста опухолевых клеток связан с апоптозом.

Ключевые слова: опухолевые клетки, липопротеины, кортизол, опухоль-ассоциированные макрофаги, биосинтез нуклеиновых кислот.

INFLUENCE OF CORTISOL AND VERY LOW-DENSITY LIPOPROTEINES ON THE DEVELOPMENT OF HA-1HEPATOMA AND EHRLICH’S CARCINOMA L.E. Panin, Zh.I. Belonogova, R.A.Knyazev, I.O. Cheshenko Research Institute of Biochemistry, Siberian Branch of the Russian Academy of Medical Sciences, Novosibirsk 2, Timakova Street, 630117-Novosibirsk, Russia, e-mail: knjazev_roman@mail.ru

Studies were conducted using ascetic HA-1 hepatomas and ascitic Ehrlich’s carcinoma cells. After passage of cells in mice, cell culture containing tumor-associated macrophages was studied. It was shown that the very low-density lipoprotein (VLDL)-cortisol complex significantly inhibited proliferative activity of tumor cells. The obtained constant of cortisol binding to VLDL indicated that the protein component of lipoproteins participated in the complex formation. Tumor-associated macrophages were suggested to play an important role in the formation of this complex. It was found that inhibition of tumor cell growth was related to apoptosis.

Key words: tumor cells, lipoproteins, cortisol, tumor-associated macrophages, biosynthesis of nucleic acid.

Применять липопротеины крови для лечения опухолевых заболеваний предложено давно [6, 12]. Обычно их используют как транспортную форму различных цитостатиков: рубомицина, актиноми-цина Д, циклофосфана и других препаратов. Чаще всего для этого берут липопротеины низкой плотности (ЛПНП). Они обладают достаточно высоким аффинитетом по отношению к цитостатикам. Так, константа диссоциации ^д) для тамоксифена составляет 2,3*10"8 М [14]. Используется также способ ковалентной пришивки препарата к белковому компоненту ЛПНП [10]. Липопротеины высокой плотности (ЛПВП) для доставки в опухолевые клетки цитостатиков применяются редко. Существуют единичные работы по их доставке в клетки карциномы [5] и гепатомы [7]. Наблюдается разная степень связывания цитостатиков с липопротеи-нами крови. Так, циклоспорин G в плазме крови

преимущественно связывается с ЛПВП (50-60 %) и в меньшей степени с ЛПНП (20-30 %) и ЛПОНП (10 %) [13].

Нам не встречались работы, в которых липо-протеины плазмы крови использовались с целью запуска апоптоза опухолевых клеток. В этом отношении интерес представляет работа, в которой применялись липосомы, содержащие сфингомие-лин и церамид, для стимуляции апоптоза в клетках гепатоцеллюлярной гепатомы крыс [1]. Показано, что оба соединения подавляют пролиферацию и усиливают апоптоз раковых клеток. Индукторами апоптоза являются не только сфингомиелин, фос-фатидилсерин, церамид, но и стероидные гормоны (глюкокортикоиды) [4].

В данном исследовании мы для стимуляции апоптоза опухолевых клеток использовали ли-попротеины очень низкой плотности (ЛПОНП)

к’пРТ^М ГРПЯТПМк!

Рис. 1. Микрофото. Клетки асцитной НА-1 гепатомы с опухоль-ассоциированными макрофагами. Окраска по Романовскому-Гимза, *400

в комплексе с кортизолом. Это было обусловлено тем, что, во-первых, ЛПОНП достаточно богаты сфингомиелином [2] и, во-вторых, они активно связывают кортизол и кортикостерон. Константы связывания равны (5 ± 0,1) х 106М-1 и (8 ± 0,1) х 106М-1 соответственно [11].

Цель исследования - оценить кооперативный характер действия кортизола и липопротеинов очень низкой плотности в механизме запуска апоп-тоза опухолевых клеток.

Материал и методы

Исследования проводились на культурах клеток асцитной гепатомы НА-1, полученной в результате индукции мышей самцов линии A/Sn о-аминоазотолуолом (Институт цитологии и генетики СО РАН, г. Новосибирск). В экспериментах использовали клетки, выделенные на 10-е сут после перевивания их в брюшную полость мышей той же линии из расчёта 1 млн клеток на особь. Также в работе использовали мышей линии ICR с асцитной карциномой Эрлиха (Институт цитологии и генетики СО РАН). Клетки перитонеального экссудата получали на 10-е сут после пассажа опухоли для последующего культивирования. Свежевыделенные клетки ресу-спендировали в среде RPMI-1640 с L-глутамином, содержащую 20 мМ HEPES/NaOH (pH 7,4),

2 мМ L-глутатиона, 100 ед/мл пенициллина, 50 мкг/мл гентамицина, 5,6 mM глюкозы, 10 нМ инсулина. Клетки наносили на 6-луночные планшеты («Orange Scientific», Бельгия), покрытые коллагеном первого типа. Инкубацию проводили при 37°С в атмосфере 5 % СО2 и 95 % воздуха при влажности 85 %. Конечная плотность клеток 5х106 на мм2. Продолжительность инкубации

Рис. 2. Электрофорез ДНК в агарозном геле.

Примечание: 1 - контроль; 2 -ЛПОНП; 3 - ЛПОНП-кортизол

24 ч. Пролиферативную активность клеток оценивали по скорости включения 3Н-тимидина в ДНК. Последний добавляли в среду инкубации в дозе 2 мкКи/мл за 2 ч до окончания эксперимента. Радиоактивность измеряли на сцинтилляционном счётчике «Магк-Ш»(США) и выражали в имп/ мин на 1 мг белка. Содержание белка в образцах определяли по Лоури [8]. Кортизол добавляли в среду инкубации в конечной концентрации 10-6 М, ЛПОНП - 200 мкг/мл. Содержание ДНК в образцах определяли полуколичественно с помощью электрофореза в агарозном геле. Апоптоз опухолевых клеток оценивали с помощью электронной микроскопии. Для этого образцы фиксировали в 2,5 % растворе глутарового альдегида в течение 1 ч, затем - в 0,1М ФСБ, содержащем 1 % OsO4. Образцы обезвоживали в спиртовых растворах с повышающейся концентрацией и заливали в аралдит. Срезы просматривали в электронном микроскопе YEM 100B (Япония).

Статистический анализ проводили с использованием программы Statistica 6.0 (StatSoft, USA, www.statsoft.com), достоверность значений определяли по t-критерию Стьюдента.

Результаты и обсуждение

Клетки асцитной гепатомы с опухоль-ассоциированными макрофагами (рис. 1) в организме мышей активно делятся, так что продолжительность жизни животных не превышает 2-3 нед. Ранее нами было показано, что пролиферативная активность клеток НА-1 гепатомы зависит от макрофагов. При стимуляции последних комплексом ЛПВП-кортизол отмечалось резкое усиление в сокультуре биосинтеза как ДНК, так и белка [3].

В данном исследовании мы оценивали влияние комплекса ЛПОНП-кортизол на скорость биосинтеза ДНК в сокультуре. Оказалось, что кортизол и ЛПОНП независимо друг от друга несколько тормозили скорость биосинтеза ДНК (разница с контролем недостоверна). Добавление к сокультуре комплекса ЛПОНП-кортизол вдвое снижало скорость биосинтеза ДНК (табл. 1). Принимая во внимание, что обмен липопротеинов связан в первую очередь с макрофагами, следует допустить, что именно последние запускают механизм подавления опухолевого роста.

Дальнейшие исследования мы проводили на культуре клеток асцитной карциномы Эрлиха в присутствии опухоль-ассоциированных макрофагов. Пролиферативную активность клеток также оценивали по скорости включения 3Н-тимидина в ДНК. Показано, что кортизол и ЛПОНП независимо друг от друга несколько снижали скорость биосинтеза ДНК (разница с контролем недостоверна). Комплекс ЛПОНП-кортизол снижал скорость биосинтеза в 1,7 раза (табл. 2). Полученные результаты аналогичны вышеуказанным. Эти результаты подтверждены данными электрофоретического анализа ДНК в образцах клеток асцитной карциномы Эрлиха (рис. 2). Значительное снижение содержания ДНК в образцах указывает на гибель клеток асцитной карциномы.

Таблица 1

изменение скорости биосинтеза днК в сокультуре клеток нА-1 гепатомы под влиянием

комплекса лпонп-кортизол

Условия инкубации Имп/мин/мг белка M і m, n=6

Контроль 14233 і1SQ2

ЛПОНП 9647 і 1613

Кортизол 99Q3і 2644

ЛПОНП-кортизол 69Q9і 565*

Примечание: * - различия статистически значимы по сравнению с контролем (р<0,01).

Таблица 2

изменение скорости биосинтеза днК в сокультуре клеток асцитной карциномы эрлиха под

влиянием комплекса лпонп-кортизол

Условия инкубации Имп/мин/мг белка M і m, n=6

Контроль 7SQ5і 447

ЛПОНП 5QQ2і 29S

Кортизол 5939 і 236

ЛПОНП-кортизол 4176 і 376*

Примечание: * - различия статистически значимы по сравнению с контролем (р<0,05).

СИБИРСКИЙ ОНКОЛОГИЧЕСКИЙ ЖУРНАЛ. 2013. № 3 (57)

Рис. 3. Электронная микроскопия клеток асцитной карциномы Эрлиха. Действие комплекса ЛПОНП-кортизол.

Примечание: 1 - погибшая клетка;

2 - клетка в состоянии апоптоза, х 8000

Электронно-микроскопический анализ изменения структуры клеток выявил потерю микроворсин, секвестрацию цитоплазмы в среду инкубации и фрагментацию ядер (рис. 3). Обнаруженные признаки позволяют отнести механизм гибели опухолевых клеток под влиянием комплекса ЛПОНП-кортизол к апоптозу. Отсутствие выраженного эффекта подавления пролиферативной активности опухолевых клеток под влиянием

ЛПОНП или кортизола говорит о том, что мы имеем дело с кооперативным механизмом действия обоих компонентов комплекса. Полученная величина константы связывания гормона с ЛПОНП указывает на то, что в комплексообразовании принимает участие белковый компонент последних. Однако какой белок ЛПОНП принимает в этом участие -пока нами не установлено.

Заключение

Описан новый механизм подавления роста опухолевых клеток НА-1 гепатомы и карциномы Эрлиха, обусловленный кооперативным эффектом действия кортизола и ЛПОНП. Результаты электронной микроскопии позволяют утверждать, что данный механизм связан с апоптозом клеток.

ЛИТЕРАТУРА

1. Заварзин В.А., Зайнагетдинов Р.З., Какурина Г.В. и др. Роль сфингомиелина и церамида в регуляции процессов пролиферации и апоптоза клеток гепатоцеллюлярной карциномы // Сибирский онкологический журнал. 2006. № 3 (20). С. 41-45.

2. Климов А.Н., НикульчеваН.Г. Обмен липидов и липопротеидов и его нарушения. СПб.: Питер Ком, 1999. 512 с.

3. Панин Л.Е., Хощенко О.М., Поляков Л.М. Влияние стероидных гормонов в комплексе с аполипопротеином А-1 на биосинтез ДНК и белка в клетках асцитной гепатомы НА-1 // Вопросы онкологии. 2007. Т. 53, № 5. С. 562-565

4. Суханова Г.А., Акбашева О.Е. Апоптоз. Томск: Изд. ТПУ, 2006. 171 с.

5. Kader A., Pater A. Loading anticancer drugs into HDL as well as LDL has little effect on properties of complexes and enhances cytotoxicity to human carcinoma cells // J. Control Release. 2002. Vol. 80 (1-3). P. 29-44.

6. Lindholm A., Henricsson S., Gang P. The free fraction of cy-closporine in plasma: clinical findings with a new method // Transplant Proc. 1988. Vol. 20. P 377-381.

7. Lou B., Liao X.L., Wu M.P. et al. High-density lipoprotein as a potential for delivery of a lipophilic antitumoral drug into hepatoma cells // World J. Gastroenterol. 2005. Vol. 11 (7). P 954-959.

8. Lowry O.H., Rosebrough N.J., Farr A.L. et al. Protein measurement with the Folin phenol reagent // J. Biol. Chem. 1951. Vol. 193. P. 265-275.

9. Maniatis T., Fritsch E., Sambrook J. The methods of genetic engineering. Molecular cloning. Moscow: Mir, 1984. 480 p.

10. Masquelier M., Vitols S., PalssonM. et al. Low density lipoprotein as a carrier of cytostatics in cancer chemotherapy: study of stability of drug-carrier complexes in blood // J. Drug Target. 2000. Vol. 8 (3). P. 155-164.

11. Panin L.E., Kunitsyn VG., Polyakov LM. Structural changes in blood plasma lipoproteins in the physiological temperature range and their interaction with steroid hormones // Protein Structure / Ed. L.M. Haggerty. USA: Nova Science Publ., Inc. 2011. P. 123-153.

12. Sharma A., Lawrence SJ. Lipoprotein - cyclodextrin interaction // Clin. Chim. Acta. 1991. Vol. 199. P. 129-138.

13. Yatscoff R.W., Honcharik N., Lukowski M. et al. Distribution of cyclosporin G (NVa2 cyclosporin) in blood and plasma // J. Clin Chem. 1993. Vol. 39 (2). P. 213-217.

14. Winnerer R.C., Juthries S.C., Clark J.H. Characterization of a triphenylethylene-antiestrogen binding site on rat serum low density lipoprotein // Endocrinology. 1983. Vol. 112. P 1823-1827.

Поступила 14.02.13

i Надоели баннеры? Вы всегда можете отключить рекламу.