CC BY
79
УДК 639.2:574.24:574.625
Влияние кортизола на некоторые иммунологические показатели карпов
Фомина Любовь Леонидовна, кандидат биологических наук, доцент
email: fomina-luba@mail.ru
Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования «Вологодская государственная молочнохозяйственная академия им. Н.В. Верещагина»
Березина Дарья Игоревна, аспирант
email: vetxwork@gmail.com
Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования «Вологодская государственная молочнохозяйственная академия им. Н.В. Верещагина»
Пересторонина Екатерина Александровна, студент-специалист
email: cheesoid@hotmail.com
Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования «Вологодская государственная молочнохозяйственная академия им. Н.В. Верещагина»
Аннотация. В данной работе представлена оценка изменений некоторых показателей иммунной системы в контрольной и экспериментальной группах карпов под влиянием эндогенного кортизола. Было установлено, что при увеличении уровня кортизола усиливается активность клеточного иммунитета у рыб, создаваемого лейкоцитами. Остальные показатели иммунологического статуса снижаются при повышении этого гормона.
Ключевые слова: карпы, рыбы, кортизол, иммунитет, фагоцитоз, иммуноглобулины.
Актуальность
Состояние специфического звена иммунной системы рыб важно знать при оценке иммунного статуса, определении потенциальных возможностей организма рыб противостоять воздействию агрессивных факторов среды и установлении характера влияния иммуномодулирующих и вакцинных средств. Оно оценивается по данным анализа клеточных и гуморальных факторов иммунитета [1]. Наиболее филогенетически древним неспецифическим врожденным фактором иммунной защиты является фагоцитоз, поэтому оценить иммунный статус можно с помощью его изучения [2]. Все клетки крови рыб (эритроциты, лейкоциты и тромбоциты) обладают способностью к фагоцитозу [3, 4, 5, 6]. Специфичность иммунных реакций определяется лимфоцитами и иммуноглобулинами.
На любое стрессовое воздействие организм рыб отвечает активацией корти-костероидных гормонов и катехоламинов [7, 8, 9, 10]. Повышение содержания кортизола вызывает в организме рыб дестабилизацию состояния клеточных и гуморальных факторов иммунитета, истощение иммунной системы [11, 12, 13, 14] Одним из таких стресс-факторов является гипоксия [2, 7].
Российскими учеными было отмечено влияние транспортировки на снижение иммунной резистентности у рыб [15]. Установлено, что регуляция числа лейкоцитов проводится посредством гормонов, главным образом кортикостероидов [5].
Есть основания полагать, что кортизол может играть главную и важную роль в подавлении фагоцитарной активности [16].
Зарубежные коллеги утверждают, что в то время, как хронический стресс в конечном итоге является иммуносупрессивным, острый стресс или травма может помочь улучшить как клеточные, так и гуморальные компоненты врожденной защиты организма в моменты явной необходимости [17]. J. Ortuno наблюдали депрессию фагоцитарной активности и комплемента под воздействием стресса, которая восстановилась через 3 дня [18].
Китайские коллеги индуцировали холодный стресс у тилапии и обнаружили, что фагоцитарная активность и уровень иммуноглобулинов в плазме были снижены по сравнению с контрольной группой [16].
Имеющиеся данные показывают, что независимо от того, какие иммунные параметры оцениваются, как естественные, так и искусственные факторы стресса окружающей среды подавляют иммунные функции. Многие вопросы реакций организма рыб на внешние изменения ещё недостаточно изучены, поэтому необходимо исследовать динамику показателей крови с учетом основных факторов окружающей их среды.
Материалы и методы
Работа выполнена на кафедре ВНБ, хирургии и акушерства факультета ветеринарной медицины и биотехнологий Вологодской ГМХА имени Н.В. Верещагина. Опыты проводили на 10 карпах (Cyprinus carpio carpio Linnaeus, 1758), которых предварительно разделили на контрольную и экспериментальную группы.
Рыб содержали в аэрируемых аквариумах при температуре воды 16 °C. После периода адаптации, рыб подвергли стрессу (постепенно уменьшали уровень кислорода). Кровь получали шприцем из хвостовой вены. Взятие крови у животных, участвующих в эксперименте, проводилось сразу же после акклиматизации, и далее через 24 и 48 часов после влияния стресс-фактора (гипоксии) [2].
Для оценки состояния клеточного иммунитета определяли фагоцитарную активность клеток крови (эритроцитов, лейкоцитов, тромбоцитов). При этом в сте-
рильную пробирку вносили 0,1 мл 2%-ного стерильного раствора натрия цитрата, 0,2 мл свежевзятой крови от обследуемой рыбы, 0,2 мл одномиллиардной взвеси суточной культуры Staphylococcus aureus. Взвесь осторожно перемешивали и помещали в термостат при температуре 26°C. Через 30 минут, 1 час, 1,5 часа и 2 часа с момента термостатирования забирали смесь из пробирки, помещали на предметное стекло и делали мазки. Затем их красили по Романовскому-Гимза. После этого мазки просматривали под иммерсией (ок. 7х об.90). Подсчитывали 100 клеток [2].
Захватывающую способность клеток выражали следующими показателями: ФА - фагоцитарная активность; ФИ - фагоцитарный индекс; ФЧ - фагоцитарное число [2].
Состояние гуморального иммунитета определяли по концентрации иммуноглобулинов в сыворотке крови. Принцип метода заключается в том, что при взаимодействии с насыщенными растворами фосфатов определенной концентрации гамма-глобулины осаждаются, изменяя тем самым оптическую плотность исследуемого образца. Определение производили параллельно с другими фракциями сыворотки крови (альбуминами, альфа и бета-глобулинами), по изменению оптической плотности (ОП) на фотоэлектроколориметре [1].
Концентрацию кортизола в плазме крови устанавливали методом твердофазного хемилюминесцентного иммуноанализа в лаборатории ООО «Центр лабораторных исследований».
Полученный в ходе исследования цифровой материал обрабатывался с помощью програмного обеспечения Microsoft Excel и STATISTICA 6.0. Результаты представлены в виде средней величины и стандартной ошибки средней. Для оценки различий в зависимых выборках (до и после стресса, стресс по дням) с нормальным распределением использовали t-критерий Стьюдента для зависимых выборок, с ненормальным распределением - критерий Вилкоксона. Для оценки различий в независимых выборках с нормальным распределением использовали t-критерий Стьюдента, с ненормальным распределением - критерий Манна-Уитни.
Качественную интерпретацию силы связи выполняли по полученному значению R на основе шкалы Чеддока [19].
Результаты исследований
Одним из стресс-факторов является гипоксия. Динамика концентрации кислорода в контрольном и экспериментальном аквариумах представлена на рисунке 1.
Динамика растворенного кислорода, мг/л
1,0
0,0 -I-,-,-
1день 2 день Здень
Контрольный аквариум
Экспериментальный аквариум
Рис. 1. Динамика растворенного кислорода в эксперименте
В результате проведенного нами эксперимента было отмечено, что уровень кортизола в сыворотке крови карпов значительно изменился (табл. 1).
Таблица 1. Динамика стресс-маркеров в ходе эксперимента
Экспериментальная группа (п=5) Контрольная группа (п=! 5)
1 день 2 день 3 день 1 день 2 день 3 день
Кортизол, нг/ мл 118,0±32,3 224,8±69,0 235,5±74,5 251,7±92,0 319,3±10,2 200,6±64,4
Анализируя данные таблицы, можно отметить повышение уровня кортизола в крови рыб контрольной и экспериментальной групп на второй день эксперимента, что может быть связано с реакцией рыб на манипуляции по забору крови, но на третий день этот показатель продолжает увеличиваться у рыб экспериментальной группы и уменьшается у рыб контрольной (рис. 2).
Динамика кортизола, нг/мл
1 день
2 день
3 день
■ Контрольная группа
► Экспериментальная группа
Рис. 2. Динамика кортизола в крови рыб
Главными задачами при оценке иммунного статуса являются иммунодиагностика нарушений иммунной системы, прогнозирование тяжести патологического процесса [20]. Снижение уровня кислорода является стресс-фактором, который при нарушении работы иммунной системы может привести к гибели рыб [2].
При изучении клеточных факторов неспецифического иммунитета карпов нами [14], как и другими авторами [3, 4, 5, 6] было установлено, что фагоцитарной активностью у рыб обладают не только лейкоциты, но и эритроциты с тромбоцитами.
При оценке фагоцитарной активности эритроцитов, лейкоцитов и тромбоцитов до и после отключения кислородного компрессора нами были получены результаты, представленные в таблице 2.
Таблица 2. Фагоцитарная активность клеток крови карпа контрольной и экспериментальной групп
Тромбоциты Лейкоциты Эритроциты
Группа ФА ФИ ФЧ ФА ФИ ФЧ ФА ФИ ФЧ
Контрольная 0,67±0,31*л/** 0,65±0,30*л/** 0,01±0,01*л/** 83,42±2,18*/** 8,09±0,65*/** 6,67±0,50*/** 7,83±0,60*" 2,39±0,34 0,18±0,03*
Экспериментальная 1,08±0,61л/** 1,28±0,56л 0,04±0,02л/** 87,50±1,51/** 8,52±0,20*/** 7,48±0,29*/** 10,42±0,95 2,06±0,34 0,22±0,03
Контрольная 2,25±0,63/*"л/** 1,89±0,44/*л 0,06±0,02/*"л/** 89,58±1,43/** 5,19±0,16/*"/** 4,65±0,340,16/*/** 11,5±0,97 2,79±0,24/* 0,33±0,04/*
Экспериментальная 0,67±0,40л/** 0,74±0,40л/** 0,02±0,01л/** 85,58±2,37/** 6,31±0,32/** 5,42±0,48 /** 11,25±1,41 3,01±0,24/* 0,33±0,04
Тромбоциты Лейкоциты Эритроциты
Группа ФА ФИ ФЧ ФА ФИ ФЧ ФА ФИ ФЧ
Контрольная 0,17±0,11л/** 0,42±0,29л/** 0,00 л/** 86,58±1,40/** 6,97±0,36/** 6,06±0,36/** 9,25±0,81 1,92±0,15 0,18±0,02
Экспериментальная 0,88±0,48л/** 0,96±0,48л 0,02±0,01л/** 89,00±1,25/** 7,05± 0,47 /«« 6,31±/ 0,48 10,67±0,82 1,91±0,15 0,21±0,02
*Различия с аналогичным показателем второго дня исследований достоверны (р<0.05)
/*Различия с аналогичным показателем третьего дня исследований достоверны (р<0.05)
"Различия с аналогичным показателем экспериментальной группы достоверны (р<0.05)
л Различия с аналогичным показателем лейкоцитов достоверны (р<0.05)
/** Различия с аналогичным показателем эритроцитов достоверны (р<0.05)
Анализируя изменения фагоцитарной активности клеток крови карпов, можно отметить одинаковую динамику показателей фагоцитоза всех клеток крови у рыб контрольной группы - рост активности на второй день исследования; у рыб экспериментальной группы на второй день выросла фагоцитарная активность только эритроцитов, а тромбоцитов и лейкоцитов заметно снизилась. На третий день показатели фагоцитоза вернулись к исходному значению.
Для оценки состояния гуморального иммунитета определяли концентрацию иммуноглобулинов в сыворотке крови. Они являются биохимической основой специфического гуморального иммунитета, выполняют функцию специфических антител к конкретным антигенам, синтезируются плазматическими клетками (В-лимфоцитами) и секретируются в кровь или тканевые жидкости. Основная их часть относится к гамма-глобулиновой фракции сыворотки крови [1].
При исследовании гуморального звена иммунитета до и после отключения кислородного компрессора нами были получены результаты, представленные в таблице 3.
Таблица 3. Показатели гуморального иммунитета в ходе эксперимента
Показатели Экспериментальна! группа(п=3) Контрольная группа(п=3)
1 день 3 день 1 день 3 день
Альбумины, г/л 4,9±1,0 2,6±0,7 4,8±1,6 2,4±0,5
а-глобулины, г/л 4,0±0,6 1,9±1,1 2,6±0,4 1,5±0,5
р-глобулины,г/л 1,1±0,2* 0,6±0,3 0,4±0,1 0,5±0,1
Y - глобулины, г/л 0,9±0,2 0,4±0,06 0,6±0,1 0,3±0,07
Общий белок,г/л 35,3±3,4 23,3±2,3 29,1±2,6 21,1±1,9
*различия с аналогичным параметром контрольной группы достоверны
Анализируя полученные результаты, можно отметить достоверные отличия только в количестве р-глобулинов в первый день исследования, остальные показатели изменялись однонаправленно, что можно связать с забором крови у рыб.
Корреляционный анализ выявил наличие от умеренной до тесной корреляционной связи между уровнем кортизола и иммунологическими параметрами крови рыб (таблица 4).
Таблица 4. Коэффициенты корреляции между кортизолом и иммунологическими показателями крови карпов
Показатели Тромбоциты Лейкоциты Эритроциты Гуморальный иммунитет
ФА ФЧ ФИ ФЧ ФА ФЧ Альбумины а-глобу-лины Y -глобулины Общий белок
Кортизол -0,3 -0,3 0,5 0,5 -0,74 -0,3 -0,4 -0,6 -0,6 -0,4
Исходя из полученных результатов, можно отметить наличие положительного коэффициента корреляции у кортизола только с активностью лейкоцитов, остальные коэффициенты имели отрицательные значения.
Наиболее качественные модели регрессии получили с а- и Y-глобулинaми
(рис. 3).
Кортизол и у-глобулины
1.2 у
1
0,8
I
с; 0,6
ю
Е 0,4 --
0,2
у = -0,0016х+0,8631
= 0,3379 ♦ Кортизол
-Линейная(Кортизол)
ели, описывающие вза-
0 100 200 300 400 500 Кортизол, нг/мл
Рис. 3. Графические изображения корреляционной зависимости и регрессионные мод
имодействия кортизола и некоторых показателей гуморального иммунитета
Выводы
Исследуя комплексное воздействие стресс-факторов, включающих в себя острую гипоксию и манипуляционные воздействия, было установлено повышение
уровня кортизола в крови рыб контрольной и экспериментальной групп на второй день эксперимента, что может быть связано с реакцией рыб на манипуляции по забору крови, но на третий день этот показатель продолжает увеличиваться у рыб экспериментальной группы и уменьшается у рыб контрольной.
Анализируя изменения фагоцитарной активности клеток крови карпов, можно отметить одинаковую динамику показателей фагоцитоза всех клеток крови у рыб контрольной группы - рост активности на второй день исследования и резкое снижение на третий день, что совпадает с динамикой у них кортизола. У рыб экспериментальной группы на второй день выросла фагоцитарная активность только эритроцитов, а тромбоцитов и лейкоцитов заметно снизилась. На третий день показатели фагоцитоза вернулись к исходному значению.
При исследовании гуморального звена иммунитета можно отметить достоверные отличия только в количестве ß-глобулинов в первый день исследования, остальные показатели изменялись однонаправленно, что можно связать с забором крови у рыб.
Исходя из корреляционно-регрессионного анализа, мы установили наличие от умеренной до тесной корреляционной связи между уровнем кортизола и иммунологическими параметрами крови рыб. При этом, чем выше уровень кортизола, тем выше активность клеточного иммунитета, создаваемого лейкоцитами. Остальные показатели иммунологического статуса рыб снижаются при повышении данного гормона.
Литература:
1. Методические указания по определению уровня естественной резистентности и оценке иммунного статуса рыб [Электронный ресурс]: утв. Минсельхозпродом РФ 25.11.1999 N 13-4-2/1795 (документ опубликован не был) // Справочная правовая система «Консультант Плюс». Разд. «Законодательство». Информ. банк «Эксперт-приложение».
2. Пересторонина, Е.А. Зависимость иммунологических показателей рыб от содержания кислорода в воде [Текст] / Е.А. Пересторонина // Молодые исследователи агропромышленного и лесного комплексов - регионам: материалы III междунар. молодеж. науч.-практ. конф., Вологда-Молочное, 26 апр. 2018 г./ ФГБОУ ВО Вологодская ГМХА. - Вологда, 2018. - Т.3. ч.2. - С. 148-152.
3. Житенева, Л.Д. Эволюция крови [Текст] / Л.Д. Житенева, Э.В. Макаров, О.А. Рудницкая ; Азов. науч.-исслед. ин-т рыб. хоз-ва (АзНИИРХ). - Ростов н/Д : Деловой мир, 2001. - 112 с.
4. Житенева, Л.Д. Тромбоциты рыб и других групп позвоночных [Текст] / Л.Д. Житенева, Э.В. Макаров, О.А. Рудницкая; Гос. ком. Рос. Федерации по рыболовству; Азов. науч.-исслед. ин-т рыб. хоз-ва (АзНИИРХ). - Ростов н/Д : Изд-во СКНЦ ВШ, 2003. - 71 с.
5. Головина, Н.А. Морфофункциональная характеристика крови рыб - объектов аквакультуры [Текст]: автореф. дис. ... докт. биол. наук.: 03.00.10 / Н.А. Головина. - Москва, 1996. - 53 с.
6. Passantino, L and Altamura, M (2002), " Fish immunology. I. Binding and engulfment of Candida albicans by erythrocytes of rainbow trout (Salmo gairdneri Richardson)", Immunopharmacology and immunotoxicology, vol. 24,
no. 4, pp.665-678.
7. Смит, Л. С. Введение в физиологию рыб: сокращ. пер.с англ. В. И. Лапина / Л.С. Смит. - М.: Агропромиздат, 1986. - 168 с.
8. Barcellos, L and Nicolaiewsky, S (1999), "Plasmatic levels of Cortisol in the response to acute stress in Nile tilapia, Oreochromis niloticus (L.), previously exposed to chronic stress", Aquaculture Research, vol. 30, no. 6, pp. 437-444.
9. Barry, T and Lapp, A (1993), " Validation of a microtitre plate ELISA for measuring cortisol in fish and comparison of stress responses of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) and lake trout (Salvelinus namaycush)" Aquaculture, vol. 117, no. 3-4, pp. 351-363.
10. Strange, R and Schreck, C (1977), "Corticoid stress responses to handling and temperature in salmonids" Transactions of the American Fisheries Society, vol. 106, no. 3, pp. 213-218.
11. Березина, Д.И. Динамика уровня кортизола при стрессе у рыб/ Д.И. Березина // Молодые исследователи агропромышленного и лесного комплексов - регионам: материалы II междунар. молодеж. науч.-практ. конф., Вологда-Молочное, 27 апр. 2017 г. / ФГБОУ ВО ВГМХА им. Н.В. Верещагина. - Вологда, 2017. - С. 12-17.
12. Березина, Д.И. Динамика уровня фибриногена в крови рыб под влиянием стресса / Д.И. Березина, Л.Л. Фомина // Молочно-хозяйственный вестник. - 2018. - № 3 (31). - С 8-15.
13. Magnadottir, B (2006), " Innate immunity of fish (overview)", Fish & shellfish immunology, vol. 20, no. 2, pp.137-151.
14. Пересторонина, Е. А. Влияние кортизола на иммунологические показатели рыб / Е.А. Пересторонина, Л.Л. Фомина // Молодые исследователи-раз-витию молочнохозяйственной отрасли - материалы II всеросс. С междунар. участ. науч.-практ. конф., Вологда-Молочное, 29 нояб. 2018 г. / ФГБОУ ВО ВГМХА им. Н.В. Верещагина. - Вологда, 2018. - С. 181-187.
15. Микряков, В.Р. Влияние транспортировки на состав лейкоцитов периферической крови карпа [Текст] / В.Р. Микряков, Л.В. Балабанова, Д.В. Микряков // Вопросы рыболовства. - 2007. - Т. 8, №2(30). - С. 209-214.
16. Chen, W and Sun, L (2002) "Cold-stress induced the modulation of catecholamines, cortisol, immunoglobulin M, and leukocyte phagocytosis in tilapia", General and comparative endocrinology, vol. 126, no. 1, pp. 90-100.
17. Tort, L (2011) "Stress and immune modulation in fish", Developmental & Comparative Immunology, vol. 35, no. 12, pp. 1366-1375.
18. Ortuno, J and Esteban, M (2001) "Effects of short-term crowding stress on the gilthead seabream (Sparus aurata L.) innate immune response", Fish & shellfish immunology, vol. 11, no. 2, pp. 187-197.
19. Шихова, О.А. Математическая биостатистика: учеб. пособие [Текст] / О.А. Шихова. - ФГБОУ ВО Вологодская ГМХА, 2016. - 90 с.
20. Иванов, А.А. Физиология рыб: учебное пособие для студентов вузов [Текст] / А.А.Иванов. - Санкт-Петербург: Лань, 2011. - 279 с.
References:
1. Guidelines for determining the level of natural resistance and evaluation of the immune status of fish. Available at: http://www.consultant.ru/cons/cgi/online. cgi?req=doc&base=EXP&n=388702#06684824047939455 (accessed 18 June 2019).
2. Perestoronina E. A. The dependence of immunological parameters of fish on the oxygen content in water. Molodye issledovateli agropromyshlennogo i lesnogo kompleksov - regionam: materialy III mezhdunar. molodezh. nauch.-prakt. konf. [Proc. of III international youth scientific and practical conference "Young researchers of agro-industrial and forest complexes to regions"]. Vologda-Molochnoye, 2018, vol.3. part 2, pp. 148-152. (In Russian).
3. Zhiteneva L.D. Evolyutsiya krovi [The evolution of blood]. Rostov-on-Don, Business World Publ., 2001. 112 p.
4. Zhiteneva L.D. Trombotsity ryb i drugikh grupp pozvonochnykh [Platelets of fish and other groups of vertebrates]. Rostov-on-Don, 2003. 71 p.
5. Golovina N.A. Morfofunktsional'naya kharakteristika krovi ryb - ob'ektov akvakul'tury. Avtoref. Dokt. Diss. [Morphofunctional characteristics of the blood of fish - aquaculture objects. Doct. Diss. Abstract]. Moscow, 1996. 53 p.
6. Passantino L., Altamura M. et al. Fish immunology. I. Binding and engulfment of Candida albicans by erythrocytes of Rainbow trout (Salmo gairdneri Richardson) Immunopharmacology and immunotoxicology, 2002, vol. 24, no. 4. pp.665678.
7. Smith L. S. Introduction to fish physiology. T.F.N. Publications, 1982. 352 p. (Russ. Ed.: Smith L. S. Vvedenie v fiziologiyu ryb: sokrashch. per.s angl. Moscow, Agropromizdat Publ., 1986.168 p.).
8. Barcellos L., Nicolaiewsky S. Plasma levels of cortisol in the response to acute stress in Nile tilapia, Oreochromis niloticus (L.), previously exposed to chronic stress. Aquaculture Research, 1999, vol. 30, no. 6, pp. 437-444.
9. Barry T., Lapp, A. Validation of a microtitre plate ELISA for measuring cortisol in fish and comparison of stress responses of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) and lake trout (Salvelinus namaycush). Aquaculture, 1993, vol. 117, no. 3-4, pp. 351-363.
10. Strange R., Schreck C. Corticoid stress responses to handling and temperature in salmonids. Transactions of the American Fisheries Society, 1977, vol. 106, no. 3, pp. 213-218.
11. Berezina D. I. Dynamics of cortisol level under stress in fish. Molodye issledovateli agropromyshlennogo i lesnogo kompleksov - regionam: materialy II mezhdunar. molodezh. nauch.-prakt. konf. [Proc. of II international youth scientific and practical conference "Young researchers of agro-industrial and forest complexes to regions"]. Vologda, 2017, pp. 12-17. (In Russian).
12. Berezina D. I., Fomina L. L. Dynamics of fibrinogen level in fish blood under the influence of stress. Molochnokhozyaystvennyy vestnik [Dairy Bulletin], 2018, no. 3 (31), pp. 8-15.
13. Magnadottir B. Innate immunity of fish (overview). Fish & shellfish immunology, 2006, vol. 20, no. 3.2, pp.137-151.
14. Perestoronina E.A., Fomina L.L. The effect of cortisol on immunological parameters of fish. Molodye issledovateli - razvitiyu molochnokhozyaystvennoy otrasli - materialy II vseross. S mezhdunar. uchast. nauch.-prakt. konf. [Proc. of the II all-Russian with international participation scientific and practical
conference "Young researchers - to the development of canned milk industry"]. Vologda, 2018, vol.3. part 2, pp. 181-187. (In Russian).
15. Mikryakov V.R. Effect of transportation on the composition of peripheral blood leukocytes of carp. Voprosy rybolovstva [Fisheries issues], 2007, Vol. 8, no. 2(30), pp. 209-214.
16. Chen W. and Sun L. Cold-stress induced the modulation of catecholamines, cortisol, immunoglobulin M, and leukocyte phagocytosis in tilapia. General and comparative endocrinology, 2002, vol. 126, no. 1, pp. 90-100.
17. Tort L. Stress and immune modulation in fish. Developmental & Comparative Immunology, 2011, vol. 35, no. 12, pp. 1366-1375.
18. Ortuno J. and Esteban M. Effects of short-term crowding stress on the gilthead seabream (Sparus aurata L.) innate immune response. Fish & shellfish immunology, 2001, vol. 11, no. 2, pp. 187-197.
19. Shikhova O. A. Matematicheskaya biostatistika: ucheb. posobie [Mathematical biostatistics: textbook]. FGBOU VO Vologodskaya GMKhA, 2016, 90 p.
20. Ivanov A. A. Fiziologiya ryb: uchebnoe posobie dlya studentov vuzov [The physiology of fishes: a textbook for university students]. St. Petersburg, Lan' Publ., 2011, 279 p.
The influence of cortisol on some immunological parameters of carps
Fomina Lyubov Leonidovna, Candidate of Science (Biology), associate professor e-mail: fomina-luba@mail.ru
Federal State Budgetary Educational Institution of Higher Education "The Vereshchagin Vologda State Dairy Farming Academy"
Berezina Daria Igorevna, postgraduate student
e-mail: vetxwork@gmail.com
Federal State Budgetary Educational Institution of Higher Education "The Vereshchagin Vologda State Dairy Farming Academy"
Perestoronina Ekaterina Alexandrovna, student-specialist
e-mail: cheesoid@hotmail.com
Federal State Budgetary Educational Institution of Higher Education "The Vereshchagin Vologda State Dairy Farming Academy"
Abstract. This paper presents an assessment of changes in some indicators of the immune system in the control and experimental group of carp under the influence of endogenous cortisol. It was found that when the level of cortisol increases the activity of cellular immunity in fish created by leukocytes increases as well. Other indicators of the immunological status decrease with the increase of this hormone.
Keywords: carps, fish, cortisol, immunity, phagocytosis, immunoglobulins.
