CC BY
9ВОПРОСЫ РЫБОЛОВСТВА, 2017, том 18, №4; с. 499-506 PROBLEMS OF FISHERIES, 2017, vol. 18, N94; p. 499-506
БИОЛОГИЯ ПРОМЫСЛОВЫХ ГИДРОБИОНТОВ УДК 5972/5:591.13(2625)
ВЛИЯНИЕ КАЧЕСТВЕННОГО СОСТАВА ПИЩЕВЫХ ОБЪЕКТОВ НА РЕАКЦИЮ ПИЩЕВАРИТЕЛЬНЫХ ФЕРМЕНТОВ МОЛОДИ ATHERINIDAE В ПРИБРЕЖНЫХ ВОДАХ СЕВАСТОПОЛЯ
В ЛЕТНИЙ ПЕРИОД
© 2017 г. И.В. Вдодович, Е.А. Колесникова, Н.С. Кузьминова, О.А. Рылькова, В.С. Муханов
Институт морских биологических исследований РАН, Севастополь, 299011
E-mail: vdodovich@mail.ru
Поступила в редакцию 16.02.2017 г.
Представлены данные по питанию ранней молоди рыб семейства Atherinidae. Установлено, что молодь атерины имеет широкую степень пластичности в питании: пищевые предпочтения меняются в зависимости от времени и места отбора проб. Активность а-амилазы, у-глутаминтранспептидазы, щелочной фосфатазы, содержание креатинина и уровень Р-липопротеидов у молоди атерины зависели от видового состава потребленных пищевых объектов.
Ключевые слова: ранняя молодь атерины, пищевое поведение, пищеварительные ферменты, бухты Севастополя.
ВВЕДЕНИЕ
Представители семейства Atherinidae в Черном море — коричневая А^еппа Ьопа-рат1г1, черноморская (черноморский снеток) А. шосНоп ропИса и средиземноморская А. НврзвШз атерины — одни из наиболее массовых мелких рыб прибрежно-пелагического комплекса. Личинки и мальки атерин держатся стайками в поверхностном слое на глубине 10—15 см (Дехник, 1973). Несмотря на широкое распространение, атерины не являются объектом промысла в Черном море, однако они играют существенную роль в трофологической цепи как конкуренты в питании других видов рыб и как объект питания для хищных рыб. Исследования (Дука, Гордина, 1971; Данилова, 1991) показали, что на разных этапах онтогенеза у атерин наблюдаются значительные изменения спектров питания. На ранних стадиях развития в кишечнике атерины отмечены планктонные организмы, затем в процессе роста пищевой спектр расширяется за счет мейобентоса (Дука,
Гордина, 1971; Данилова, 1991). При расширении и изменении видового состава потребленных пищевых объектов происходят адаптивные изменения в ферментной системе пищеварительного тракта рыб. Специальных исследований изучения пищевого рациона молоди черноморских рыб и ответных биохимических реакций до настоящего времени не проводилось. В то время как на пресноводных рыбах (в основном взрослых) эти работы проводятся на протяжении многих лет (Уголев, Кузьмина, 1993). Несомненно, для рыб, находящихся на ранних стадиях развития, анализ параметров, отражающих белково-углеводный обмен, особенно важен (Martinez-Lagos et al., 2014), так как это способствует пониманию процессов нормального функционирования и жизнестойкости молоди. В нашем исследовании мы остановились на анализе некоторых из них: липопротеинов щелочной фосфатазы, а-амилазы и у-глутамилтрансферазы (глютамилтранспеп-тидазы).
В задачу исследования входило изучение влияния качественного состава потребленных пищевых объектов на реакцию пищеварительных ферментов молоди рыб семейства А^еп^ае.
МАТЕРИАЛ И МЕТОДИКА
Молодь атерины была собрана в летний период в трех Севастопольских бухтах: в 2012 г. — в бухтах Голубая, Карантинная, Круглая, в 2014 г. — в бухте Карантинная. Объем обработанного материала и размерно-весовая характеристика молоди представлены в табл. 1.
Таблица 1. Объем собранного в прибрежной зоне Севастополя материала и размерно-весовая характеристика молоди атерины
Бухта Год Число Длина, Масса,
особей, мм мг
экз.
Голубая 2012 20 14-20 10-40
Карантинная 2012 20 19-26 30-60
Круглая 2012 25 19-26 30-60
Карантинная 2014 40 14-24 10-40
Всего исследовано питание 65 экз. ранней молоди атерины в 2012 г. и 40 экз. — в 2014 г. Молодь атерины была отловлена сачком в мелководной (глубиной до 1 м) прибрежной зоне, полученный материал разделен для проведения биохимического и трофо-логического анализа.
Для проведения биохимического анализа в лаборатории производили заморозку 10—15 экз. молоди атерин из каждой бухты.
Биохимические параметры определяли в приготовленных гомогенатах с последующим пересчетом искомых параметров на концентрацию белка. Последнюю определяли по методу Лоури (Чиркин, 2002). Активность а-амилазы, у-глутамилтранспептидазы (у-ГГТ), щелочной фосфатазы (ЩФ), содержание креатинина определяли с использованием стандартных наборов реактивов фирмы «Филисит», а уровень
ß-липопротеидов — согласно описанной ранее методике (Цитофiзiологiя та бiохiмiя ..., 2006). Принцип метода определения активности у-ГГТ основан на действии фермента на переход глутаминового остатка с y-L-(+)-глутамил-4-нитроанилид на дипептидный акцептор. Оптическую плотность реакционного раствора определяют после остановки ферментативной реакции уксусной кислотой. ЩФ расщепляет фенилфосфат с образованием фенола; окислительное сообщение фенола с 4-аминофеназоном образует красный цвет, интенсивность которого определяется фотометрически. Пикриновая кислота в щелочной среде образует с креатинином желтый цвет, интенсивность которого прямо пропорциональна концентрации креатинина. Активность а-амилазы также определяют по цветной реакции йод-крахмального комплекса, а уровень ß-липопротеидов — по реакции осаждения (степени помутнения раствора) в присутствии хлорида кальция и гепарина (Цитофiзiологiя та бiохiмiя ..., 2006). Показания оптической плотности растворов снимали на спектрофотометре SPECOL (« Carl Zeiss», Швеция).
Биохимические анализы сделаны в двух повторностях из общего гомогената для каждой бухты. Рассчитана средняя величина и ошибка средней (M ± m) для малого n согласно методу Лакина (1973).
Обработку молоди атерины для изучения питания проводили согласно инструкции (Дука, Синюкова, 1976). Молодь сразу после вылова фиксировали 70%-ным раствором этанола. Массу молоди измеряли на электронных весах AXIS ADG500C. Идентификацию потребленных пищевых объектов проводили в соответствии с литературными источниками (Определитель ..., 1969; Апостолов, Маринов, 1988). По таблице средних весов (Петипа, 1957) и номограммам (Численко, 1968) находили массу пищевого объекта; затем, суммируя эти данные, вычисляли реконструируемый вес пищевого комка.
Количественную оценку микрофлоры кишечника атерин проводили с помощью
проточной цитометрии (Cytomics FC 500, «BeckmanCoulter», США). Содержимое кишечников атерин, извлеченное с помощью стерильного шприца с иглой, немедленно ре-суспендировали в 4 мл свежеприготовленного фильтрата (< 0,2 мкм) морской воды. Перед измерением объектов в проточном ци-тометре полученную суспензию фильтровали через мельничный газ с соответствующей ячеей для удаления частиц крупнее 40 мкм. Для измерений брали аликвоту 1 мл. Цито-метрический анализ проб проводили после их окрашивания флуорохромом SYBR Green (Marie et al., 1997). Долю метаболически активных бактериальных клеток в кишечниках атерин определяли на основе данных о внутриклеточном содержании нуклеиновых кислот (Lebaron et al., 2001). Фотоавтотроф-ные микроорганизмы идентифицировали по автофлуоресценции пигментов (Veldhuis,
Kraay, 2000).
По данным Даниловой (1991), стадия малька черноморской атерины в районе Чатырлыкского залива фиксируется при длине особи 17—20 мм. В нашем исследовании мы будем придерживаться трактовки Даниловой (1991), распределившей молодь атерины по морфологическим показателям и особенностям питания на три размерные группы: 1 — мальки длиной 17—22 мм, 2 — молодь длиной 23—32 мм, 3 — молодь длиной 33—43 мм. Результаты исследования питания ранней молоди представлены в целом по семейству атериновых (Atherinidae).
РЕЗУЛЬТАТЫ И ОБСУЖДЕНИЕ
Качественный состав пищи ранней молоди атерин отличался в зависимости от времени и места сбора проб. В б. Круглая основу рациона атерин составляли личинки Bivalvia и Gastropoda. Их доля в пищевом комке доходила до 98% от общего количества потребленных организмов. Доля амфипод, кладоцер и гарпактикоид в питании была незначительна.
В кишечниках молоди атерины из бухт Голубая и Карантинная доминировали
фитофильные и псаммофильные гарпактико-иды (БсИповота те1ап1серв, БсНповота эр., ИатрасНсив ¡ШотаИв, ИатрасНсив эр., Т1вЬе /ытса1а, Т. Л1а1а1а, Т1вЬе эр., МевосНта ру§таеа, МевосНта эр., ИМвтоЬорНоМв ыпс1па1а, И. сытиа!а ситиа!а). Их средняя длина изменялась от 0,2 до 0,55 мм, и они составляли 94% общего количества потребленных организмов (табл. 2). Вторым по значимости объектом питания были амфиподы (Amphipoda gen. эр., Б1епо1Ное топосиЫё.ев), средняя длина которых варьировала от 0,275 до 0,650 мм. Яйца гидробионтов отмечены в единичных экземплярах. Сравнительный анализ длин атерин из разных биотопов показал, что в 2012 г. в Голубой бухте отмечены самые низкие размерные показатели молоди атерины. Так, в бухтах Круглая и Карантинная длина атерин варьировала от 19 до 26 мм (в среднем — 22 мм), а в Голубой — от 14 до 20 мм (в среднем — 18 мм) (табл. 1).
Биохимический анализ показал, что величина концентрации всех анализированных биохимических параметров была максимальна у молоди из б. Круглая (табл. 3).
Так как размер особей был сходным с экземплярами из б. Карантинная, можно предположить, что активность пищеварительных маркеров не связана со степенью сформированности пищеварительного тракта (Вие^е11о et а1., 2011; Zacarias-Soto et а1., 2013; Martinez-Lagoseta1., 2014), а зависела от качественного состава потребленных пищевых объектов.
Следует отметить, что, несмотря на достаточную для проведения биохимического анализа концентрацию белка в гомогенатах, а также наличие повторных анализов, некоторые пробы были рефрактерными и содержание белков не определялось нашим прибором (табл. 3). Тот факт, что активность у-ГГТ не фиксировалась у молоди из Голубой и Карантинной бухт, а уровень креатинина у молоди из этих акваторий был низким по сравнению с таковыми из бухты Круглая, на наш взгляд, можно объяснить двояко: лучшими условиями обитания или очень низким (методически неулавливаемым) содержанием этих
Таблица 2. Видовой состав гарпактицид в кишечниках молоди атерины в 2012 и 2014 гг.
Состав 2012 2014 Место обитания*
Ectinosomatidae: Ectinosoma melaniceps Ectinosoma sp. + Илистые, песчаные, галечные грунты; глубина от 12 до 130 м**; эвритопный вид, космополит
Harpacticidae: Harpacticus littoralis Harpacticus sp. + Водоросли, редко на песке и в планктоне
Tisbidae: Tisbe furcata T. dilatata Tisbe sp. + + Водоросли, рыхлые грунты, в планктоне**; космополит
Canthocamptidae: Mesochra pygmaea Mesochra sp. + Водоросли
Laophontidae: Heterolaophonte uncinata H. curvata curvata + Водоросли, литоральная зона
Canuellidae: Canuella perplexa - + Эвритопный вид, распространен на глубине до 65 м
Harpacticidae: Harpacticus compsonyx - + Водоросли
Parastenheliidae: Parastenhelia spinosa spinosa - + Водоросли, песчаный грунт; глубина до 25 м
Diosaccidae: Amonardia sp. - + Водоросли (Algae), рыхлые грунты**
Примечание. По данным: *Определитель ..., 1969; **Апостолов, Маринов, 1988 и собственные данные.
Таблица 3. Биохимические показатели молоди атерины из разных бухт Севастопольского прибрежья (в пересчете на 1 г белка)
Показатель Бухта
Карантинная Круглая Голубая
а-Амилаза, мг/с 1,948 7,780±4,860 0,740+0,190
Креатинин, мкмоль 0,163 0,303±0,080 0,141
Щелочная фосфатаза, нмоль/с 270,140 514,420+127,120 234,340+65,490
у-ГГТ, мккат/л н/о 0,013±0,001 н/о
Р-Липопротеиды, ед/л н/о 0,154 0,080+0,050
Примечание. у-ГГТ — у-глутамилтранспептидаза, н/о — не определено.
соединений в тканях. Последнее было показано ранее на примере леопардового окуня и желтоперого тунца ранних стадий развития: от икры до крупных личинок активность хоть постепенно и повышалась, но оставалась очень низкой (Buentello et al., 2011; Martinez-Lagos et al., 2014). Очевидно, что и в нашем исследовании кишечник атерин был сформирован не окончательно. Кроме того, наличие гарпактикоид в кишечнике молоди атерины является обычным для данного вида рыб (Воробьева, 2003) и, возможно, при благоприятных условиях обитания не вызывает сильной активизации пищеварительных ферментов, Р-липопротеидов и креатинина. В бухте Круглой, напротив, столь высокие величины активности белков могли быть вызваны «тяжелой» пищей (личинки Bivalvia и Gastropoda), что потребовало усиленного синтеза пищеварительной системы атерин. Кроме того, известно, что при подобных биохимических исследованиях (анализ гомоге-натов всей особи, содержимого желудка или кишечника) нельзя исключать вклад в величину активности фермента объекта исследования долю активности фермента самого пищевого объекта (Уголев, Кузьмина, 1993). Так, максимальная активность а-амилазы, ЩФ и Р-липопротеидов у атерин из б. Круглая может свидетельствовать о повышен -ном синтезе этих веществв в ответ на богатую углеводами и липидами пищу (Кандюк,
1996; Gawlicka et al., 2002; Волкова, 2010) и
в то же время отражать активность фермента пищевых объектов. Мы склоняемся ко второму объяснению, так как в б. Круглая активность ЩФ в тканях молоди почти в два раза выше, чем у особей из других исследованных бухт. ЩФ, как известно, выполняет многочисленные функции, в частности, участвует не только в процессах пищеварения, но и в работе мышц, формировании костного аппарата у млекопитающих и кальцифика-ции раковин моллюсков (Кондрахин, 2004; Голотин, 2014). Следовательно, в этой бухте сами гастроподы и их раковины как пищевые объекты атерины могли повлиять на величину данного фермента.
Цитометрический анализ микрофлоры кишечников ранней молоди атерин не выявил наличия в них фотоавтотрофных микроорганизмов: в неокрашенных пробах уровень сигнала по каналу FL4 (хлорофилл, 675 нм) был низкий. Окраска проб SYBR Green показала присутствие гетеротрофных микроорганизмов двух размерных классов — 0,54 и 2,35 мкм (пико- и нанофракция). Первая из них была представлена бактериями, общая численность которых в кишечнике составляла 1,6 млн клеток. Доля метаболически активных бактерий с высоким внутриклеточным содержанием нуклеиновых кислот (HNA-бактерий) была относительно низкой и составляла около 50%. Происхождение частиц второй, более крупной нанофракции, регистрируемых проточным цитометром в зеленой части спектра флуоресценции, не было установлено. Их численность превышала бактериальную (2,7 млн клеток), что косвенно указывало на артефакты измерений, источником которых могло быть значительное количество детрита (остатков переваренных организмов) в пищевом комке. Полученные нами результаты согласуются с материалами, описанными ранее.
По данным Даниловой (1991), у молоди атерины длиной 17—22 мм численность бактерий в содержимом пищеварительного тракта составляет от 3 x 104 до 25 x 10б клеток, у мальков старшей группы длиной 33-43 мм — от 5 х 104 до 37 x 107.
В 2014 г. было изучено 40 экз. атерин, их размерно-весовой анализ представлен в табл. 1. Количество потребленных жертв в кишечнике одной особи атерины колебалось от 16 до 52 экз. Таксономический состав потребленных организмов был представлен шестью группами: Harpacticoidа, Calanoida, Cyclopoida, Amphipoda, Cirripedia, Mollusca (рисунок) .
По количеству потребленных пищевых объектов (рисунок, а) преобладали личинки моллюсков (Bivalvia и Gastropoda), их доля в пищевом комке атерин достигала 52% от общего количества потребленных объектов. Науплиусы Cirripedia и Harpacticoidа
Таксономический состав потребленных пищевых объектов в кишечниках ранней молоди сем. Atherinidae из б. Карантинная в 2014 г.; доля от общего количества потребленных организмов (а) и от веса потребленных пищевых объектов (б), %: (§§§) — Cyclopoida (Oithona davisae); (' ) — Harpacticoida, (Ц) — Amphipoda, (Ш) — Calanoida, (В) — Cirripedia, ( ) — Mollusca.
были на втором месте по избирательности: 18 и 17% соответственно. Доля вселенца цикло-поидной копеподы ОИНопа йаю'иае составила 4%. Весовой анализ состава пищи показал доминирование копепод, вклад представителей группы Harpacticoidа был наиболее весомым — 44% от общего веса потребленных пищевых объектов (рисунок, б).
Средняя длина потребленных пищевых объектов колебалась: у гарпактикоид от 0,2 до 0,7 мм; науплиусов Cirripedia — от 0,2 до 0,3 мм; ОНИопа ¿аю'иаг — от 0,26 до 0,3 мм, у представителей группы Calanoida — от 0,3 до 0,56 мм. Водоросли и яйца гидро-бионтов в кишечниках атерин отмечены в единичных экземплярах.
Согласно известным литературным источникам (Дука, Гордина, 1971; Данилова, 1991), состав пищи мальков атерины может различаться в зависимости от возраста, местообитания и времени отбора проб, что, по-видимому, и отразилось на различиях в пищевом спектре проанализированных атерин.
ЗАКЛЮЧЕНИЕ
Цитометрический анализ микрофлоры кишечников ранней молоди атерин не выявил наличия в них фотоавтотрофных микроорганизмов; численность гетеротроф-
ных бактерий в среднем составляла 1,6 млн клеток.
В период наших исследований основой питания молоди атерины были ракообразные и моллюски. По количеству потребленных пищевых объектов преобладали личинки моллюсков, весовой анализ состава пищи показал доминирование копепод, вклад представителей Harpacticoidа был наиболее значительный.
Активность а-амилазы, у-ГГТ, ЩФ, содержание креатинина и уровень Р-липопротеидов у молоди атерины зависели от потребленных пищевых объектов. При наличии в кишечниках атерины моллюсков активность указанных белков была увеличена, из чего можно предположить, что активность пищеварительных маркеров не связана со степенью сформированности пищеварительного тракта, а зависит от качественного состава потребленных пищевых объектов.
БЛАГОДАРНОСТИ
Авторы выражают признательность за ценные советы Ю.А. Загородней, А.Н. Ха-найченко и В.Е. Гирагосову; И.Е. Драпун, М.В. Макарову и В.А. Гринцову — за помощь в определении пищевых объектов (личинок балянусов, моллюсков и амфипод).
Работа выполнена в рамках госзадания ФАНО России (№ 0828-2014-0016, 0828-2014-0014, 0828-2014-0013).
СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ
Апостолов А.М., Маринов Т.М. Фауна на България. Т. 18. Copepoda, Harpacticoida (морски харпактикоиды). София: Изд-во На Българ. акад. на наук.,
1988. 384 с.
Волкова И.В. Особенности функционирования пищеварительной системы рыб различных трофических групп: Автореф. дис. ... докт. биол. наук. Астрахань: Астра-хан. гостехун-т, 2010. 44 с.
Воробьева Л.В. Методическое пособие по лекционному курсу «Мейобентосоло-гия» для студентов 4—5 курсов дневного отделения биологического факультета. Одесса: Астропринт, 2003. 53 с.
Голотин В.А. Рекомбинантная щелочная фосфатаза морской бактерии Cobetia marina: получение, свойства, перспективы применения: Автореф. дис. . канд. биол. наук. Владивосток: Тихоокеан. ин-т биоорган. химии им. Г.Б. Елякова ДВО РАН, 2014. 23 с.
Данилова М.М. Питание молоди атерины Atherina boyeri Черного моря // Вопр. ихтиологии. 1991. Т. 31. Вып. 1. С. 123-129.
Дехник Т.В. Ихтиопланктон Черного моря. Киев: Наук. думка, 1973. 235 с.
Дука Л А, Гордина А.Д. Видовой состав и питание молоди рыб Черного моря в зарослях цистозиры // Биология моря. 1971. Вып. 23. С. 133-159.
ДукаЛ.А., Синюкова В.И. Руководство по изучению питания личинок и мальков морских рыб в естественных и экспериментальных условиях. Киев: Наук. думка, 1976. 110 с.
Кандюк Р.П. Сравнительная оценка активности и термостабильности пищеварительных ферментов некоторых планктоно-ядных и бентосоядных рыб северо-западной части Черного моря: Автореф. дис. ... канд.
биол. наук. Одесса: Одес. отд. ИнБЮМ АН УССР им. А. О. Ковалевского, 1966. 23 с.
Кондрахин И.П. Методы ветеринарной клинической лабораторной диагностики.
М.: Колос, 2004. 516 с.
Лакин Г.Ф. Биометрия. М.: Высш. шк., 1973. 343 с.
Петипа Т.С. О среднем весе основных форм зоопланктона Черного моря // Тр. Севастоп. биостанции. 1957. Т. 9. С. 39—57.
Определитель фауны Черного и Азовского морей. Т. 2. Свободноживу-щие беспозвоночные. Ракообразные. Киев: Наук. думка, 1969. 536 с.
Уголев А.М., Кузьмина В.В. Пищеварительные процессы и адаптации у рыб. СПб.: Гидрометеоиздат, 1993. 238 с.
Чиркин А.А. Практикум по биохимии. Минск: Новое знание, 2002. 512 с.
Численко Л.Л. Номограммы для определения веса водных организмов по размерам и форме тела (морской мезобентос и планктон). Л.: Наука, 1968. 107 с.
Цитофiзiологiя та бiохiмiятравлення.
Киев: Кпв. ун-т, 2006. 271 с.
Buentello JA., Margulies D., Pohlenz C. et al. A preliminary study of digestive enzyme activities and amino acid composition of early juvenile yellowfin tuna (Thunnus albacares) // Aquaculture. 2011. V. 312. P. 205-211.
Gawlicka A., Herold M.A., Barrows F.T. et al. Effects of dietary lipids on growth, fatty acid composition, intestinal absorption and hepatic storage in white sturgeon (Acipenser transmontanus R.) larvae // J. Appl. Ichthyol. 2002. V. 18. P. 673-681.
Lebaron P., Servais P., Agogue H. et al. Does the high nucleic acid content of individual bacterial cells allow us to discriminate between active cells and inactive cells in aquatic systems? // Appl. Environ. Microbiol. 2001. V. 67. P. 1775-1782.
Marie D., Partensky F., Jacquet S., Vaulot D. Enumeration and cell cycle analysis of natural populations of marine picoplankton by flow cytometry using the nucleic acid stain SYBR
green I. // Ibid. 1997. 63. P. 186-193.
Martinez-Lagos R., Tovar-Ramirez D, Gracia-Lo'pez V., Lazo J. P. Changes in digestive enzyme activities during larval development of leopard grouper (Mycteroperca rosacea) // Fish Physiol. Biochem. 2014. V. 40. P. 773785. DOI 10.1007/s10695-013-9884-5
Veldhuis M.J.W., Kraay G.W. Application of flow cytometry in marine phytoplank-ton research: current applications and future per-
spectives // Sci. Marina. 2000. V. 64. № 2. P. 121-134.
Zacarias-Soto M., Baryn-Sevilla B., Lazo J.P. Ontogeny and distribution of alkaline and acid phosphatase in the digestive system of California halibut larvae (Paralichthys califor-nicus) // Fish Physiol. Biochem. 2013. V. 39. P. 1331-1339. DOI 10.1007. s10695 - 0139787-5
EFFECT OF THE QUALITATIVE COMPOSITION OF FOOD OBJECTS ON THE DIGESTIVE ENZYMES ACTIVITY OF ATHERINIDAE FAMILY 0-GROUP IN THE COASTAL WATERS OFF SEVASTOPOL IN SUMMER
© 2017 у. I.V. Vdodovich, Е.А. Kolesnikova, N.S. Kuzminova, О.А. Rilkova,V.S. Mukhanov
Institute of Marine Biological Research A.O. Kovalevsky Russian Academy of Sciences, Sevastopol, 299011
The data on physiological status and feeding behavior of Atherinidae family 0-group have been presented. It was found, that Atherinidae family 0-group has a wide variability in the diet, change in their food preferences depend on time and place of sampling. The activity of a-amylase, y-GGT, alkaline phosphatase, concentration of creatinine and P-lipoproteine in Atherinidae family 0-group tissues depended on the consumed food items. Keywords: Atherinidae family 0-group, feeding behavior, digestive enzyme, coastal waters of Sevastopol.
