CC BY
22
11. Butenko R.G. Biology of cells of higher plants in vitro and biotechnologies based on them. M.: FBK-Press, 1999. 160 p.
12. Agricultural biotechnology: textbook / V.S. Shev-elukha et al. M.: Higher school, 2008. 416 p.
13. Kuznetsova I.B., Makarov S.S. Features of clonal micropropagation of cultivated grapes (Vitis vinifera L.) at the stages of «introduction to culture» and «actual micropropagation». Izvestia Orenburg State Agrarian University. 2021. 90(4): 72-75. https://doi.org/10.37670/2073-0853-2021-90-4-72-75.
14. Kalashnikova E.A. Cellular engineering of plants: textbook. and workshops for universities. M.: Yurayt, 2020. 333 p.
15. Growing forest berry plants in vitro: laboratory. workshop / Comp. S.S. Makarov, E.A. Kalashnikova, I.B. Kuznetsova et al. Karavaevo: Kostroma State Agricultural Academy, 2019. 48 p.
16. Anderson W.C. Propagation of Rhododendrons by Tissue Culture. 1. Development of a Culture Medium for Multiplication of Shoots. Proc. Int. Plant Prop. Soc. 1975; 25: 129-135.
17. Lloyd G., McCown B. Commercially-feasible Micropropagation of Mountain Laurel, Kalmia latifolia, by Use of Shoot Tip Culture. Combined Proceedings of the International Plant Propagator's Society. 1980; 30: 421-427.
Сергей Сергеевич Макаров, кандидат сельскохозяйственных наук, старший научный сотрудник, makarov [email protected], https://orcid.org/0000-0003-0564-8888
Ирина Борисовна Кузнецова, кандидат сельскохозяйственных наук, доцент, [email protected], https://orcid.org/0000-0001-5011-3271
Елена Анатольевна Сурина, кандидат сельскохозяйственных наук, [email protected]
Sergey S. Makarov, Candidate of Agriculture, Senior Researcher, [email protected], https://orcid.org/0000-0003-0564-8888
Irina B. Kuznetsova, Candidate of Agriculture, Associate Professor, [email protected], https://orcid.org/0000-0001-5011-3271
Elena A. Surina, Сandidate of Agriculture, [email protected]
Вклад авторов: все авторы сделали эквивалентный вклад в подготовку публикации. Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.
Contribution of the authors: the authors contributed equally to this article. The authors déclare no conflicts of interests.
Статья поступила в редакцию 06.05.2022; одобрена после рецензирования 30.05.2022; принята к публикации 11.07.2022.
The article was submitted 06.05.2022; approved after reviewing 30.05.2022; accepted for publication 11.07.2022. -♦-
Научная статья
УДК 631.535/631.529 630*232.328.1 doi: 10.37670/2073-0853-2022-96-4-80-86
Влияние фазы развития маточного растения на укореняемость черенков декоративных культур в условиях Южного Урала*
Екатерина Михайловна Фещенко, Алия Ишембаевна Лохова
Оренбургский филиал ФГБНУ ФНЦ Садоводства, Оренбург, Россия
Аннотация. Изучена способность интродуцированных ботанических таксонов к вегетативному размножению при заготовке черенков на укоренение в различные фазы развития маточного растения. Работа проводилась в стационарной теплице Оренбургского филиала ФГБНУ ФНЦ Садоводства в 2018 -2020 гг. Способность к укоренению у зелёных черенков в разные периоды развития маточного растения у различных видов составляет от 3,8 % у Crataegus volgensis при заготовке черенков в фазу начала образования плодов до 93,2 % - у Symphoricarpos doorenbosii 'Amethyst'при заготовке черенков в фазу массового цветения. Максимальный коэффициент вариации зафиксирован при заготовке черенков на укоренение в фазу формирования плодов (V = 248,8) и в фазу начала бутонизации (V = 191,6). Выявлена связь укореняемости черенков и фенологической фазы маточного растения. Большинство исследуемых видов кустарников лучше всего черенкуются в фенологические фазы массового цветения и окончания цветения. Оптимальным сроком черенкования для Cotoneàster lucidus, Berberis thunbergii является период начала образования плодов.
Ключевые слова: декоративные культуры, маточное растение, фаза развития, укоренение, черенкование, вегетативное размножение, интродуценты.
Для цитирования: Фещенко Е.М., Лохова А.И. Влияние фазы развития маточного растения на укореняемость черенков декоративных культур в условиях Южного Урала // Известия Оренбургского государственного аграрного университета. 2022. № 4 (96). С. 80 - 86. https://doi.org/10.37670/2073-0853-2022-96-4-80-86.
* Исследования выполнены в рамках реализации государственного задания ФГБНУ ФНЦ Садоводства (№ 0432-20210003 «Сохранить, пополнить, изучить генетические коллекции сельскохозяйственных растений и создать репозитории плодовых и ягодных культур, заложенные свободными от вредоносных вирусов растениями»).
Original article
The influence of the development phase of the mother plant on the rootability of cuttings of ornamental crops in the conditions of the Southern Urals
Ekaterina M. Feshchenko, Aliya A. Lokhova
Federal Horticultural Center for Breeding, Agrotechnology and Nursery, Orenburg branch, Orenburg, Russia
Abstract. The ability of introduced botanical taxa to vegetative reproduction was studied when cuttings were harvested for rooting in various phases of mother plant development. The work was carried out in a stationary greenhouse of the Orenburg branch of the Federal State Budgetary Scientific Institution of the Federal Scientific Center for Horticulture in 2018 - 2020. The ability to root in green cuttings at different periods of development of the mother plant in different species ranges from 3.8 % in Crataegus volgensis when cuttings are harvested in the phase of the beginning of fruit formation to 93.2 % in Symphoricarpos doorenbosii 'Amethyst' when cuttings are harvested in the mass production phase. flowering. The maximum coefficient of variation was recorded when harvesting cuttings for rooting in the phase of fruit formation (V = 248.8) and in the phase of the beginning of budding (V = 191.6). The relationship between the rooting rate of cuttings and the phenological phase of the mother plant was revealed. Most of the studied species of shrubs are best taken by cuttings in the phenological phases of mass flowering and the end of flowering. The optimal cutting time for Cotoneaster lucidus, Berberis thunbergii is the start of fruit formation.
Keywords: ornamental crops, mother plant, development phase, rooting, cuttings, vegetative propagation, introducers.
For citation: Feshchenko E.M., Lokhova A.I. The influence of the development phase of the mother plant on the rootability of cuttings of ornamental crops in the conditions of the Southern Urals. Izvestia Orenburg State Agrarian University. 2022; 96(4): 80-86. (In Russ.). https://doi.org/10.37670/2073-0853-2022-96-4-80-86.
Успешность интродукции растений в определённой среде обитания обусловлена жизнеспособностью в новых условиях произрастания. Стойкость и приспособленность растений характеризуется прохождением циклов развития.
Интегральная оценка перспективности интродукции позволяет описать состояние растений по ряду показателей, одним из которых является способность к размножению. С учётом трудностей, связанных с дефицитом семян или технологией выращивания из семян, большую значимость приобретает искусственное размножение вегетативным способом [1]. Поскольку при вегетативном размножении выращенные растения полностью воспроизводят генотип материнского растения, при данном способе потомство наследует хозяйственно-ценные признаки.
Исследования, посвящённые вопросу размножения растений методом черенкования, подтверждают факт возможности образования придаточных корней на раневой поверхности среза черенка, при этом органы и ткани взрослого растения содержат клетки, способные воспроизводить зачаточную корневую систему. В настоящий момент признан механизм инициации и стимуляции роста адвентивных корней, при котором контролируемая фитогормонами корневая компетентность [2] и дифференцировка чувствительных клеток в основании среза черенка скоординированы с распределением растительных ресурсов в пределах всего черенка. Основной контроль образования придаточных корней черенка ауксинами включает активацию различных факторов транскрипции и изменение ориентации микротрубочек при делении клеток. Биосинтез
жасмоновой кислоты и этилена, индуцированный образованием среза при черенковании, запускает транспорт индолилуксусной кислоты в область образования придаточных корней. Цитокинины, в свою очередь, в первые часы после образования среза способствуют увеличению концентрации индолилуксусной кислоты посредством влияния на мембранно-ассоциированные белки PIN1 и LAX3. Стриголактоны ингибируют деление клеток - основателей придаточных корней, подавляя полярный транспорт индолилуксус-ной кислоты, при этом их синтез может быть стимулирован за счёт экспрессии генов CCD7 и CCD8, кодирующих ферменты расщепления каротиноидов, необходимые для синтеза стри-голактонов. Гормональные функции ауксинов, по-видимому, связаны с эпигенетическими факторами и нацелены на метаболические сигналы, отражающие питательный статус среза. Воздействуя на отдельные физиологические процессы в черенке, факторы окружающей среды, такие, как световой режим, присутствие азота и железа, изменяют реализацию генетически контролируемой программы развития корней [3]. Наиболее выражено данное качество у камбия и сосудистых тканей [4]. Неодинаковая способность к регенерации обусловлена эндогенным контролем начала образования зачатков корней, особенностями продукции и метаболизма эндогенных ауксинов, эфиров кофейной и хинной кислот (отвечают за дифференцировку каллусной ткани) [5], наличием макро- и микроэлементов. Для формирования адвентивного корня и дальнейшего роста черенка, кроме ауксина [6], действие которого заключается в стимуляции
растяжения клеток [7, 8], и его переносчиков (киназ) [9] существенное значение имеет наличие в тканях специфических веществ с гормональной активностью (ризокалина, каулокалина, филлокалина), причём ризокалин синтезируется в листьях [10]. В реализации вышеуказанных условий для укоренения черенков значительную роль играют погодно-климатические условия региона произрастания [ll]. Знания, касающиеся образования корней у черенков, дают представление о способности растений к регенерации, открывают новые перспективы для устойчивого и эффективного использования генетических ресурсов растений.
Цель работы - установление оптимальных фаз развития маточного растения для черенкования декоративных кустарников в условиях Южного Урала.
Материал и методы. Опыт по черенкованию заложен в условиях стационарной теплицы Оренбургского филиала ФГБНУ ФНЦ Садоводства. Объектами исследований служили перспективные в декоративном и хозяйственном отношениях представители различных ботанических таксонов: Berberidaceae (Berberis thunbergii), Hydrangeaceae (Phyladelphus microphyllus), Cornaceae (Cotoneáster lucidus, Cornus alba Kes-selringi') Rosaceae (Potentilla alba, Rósa rugósa, Prúnus triloba, Physocarpus opulifolius 'Luteus', Physocarpus opulifolius 'Diabolo', Philadelphus microphyllus, Crataegus volgensis), Caprifoliaceae (Symphoricarpos doorenbosii 'Amethyst'): Elaeag-naceae (Elaeagnus commutata). Для получения экспериментальных данных взаимосвязи степени укореняемости черенков от фенологической фазы маточных растений черенкование проводилось еженедельно в течение периода с конца третьей декады апреля до конца третьей декады июня. В опыте задействованы маточные растения пятилетнего возраста.
Длину черенка в опыте определяли количеством междоузлий (1 - 3). На черенках оставались только верхние листья, в случаях с наличием массивной листовой пластинки они обрезались наполовину во избежание водопотери. Срезку боковых побегов средней части кроны проводили в утренние часы. Сроки возможного черенкования [12] в связи с прохождением фенофаз маточных растений [13, 14] определяли по наличию минимально возможной длины побега (от 7 - 10 см), пригодной для нарезки черенков, степенью одревеснения, присутствием сформированных листьев. Сроки прохождения фенофаз определяли согласно стандартным методикам [15, 16]. Для исследования брали зелёные черенки. Зелёное черенкование прекращалось после начала одревеснения эпидермиса. Исследование выполнено в трёх повторностях, количество черенков в по-вторности составляло 10 шт.
Укоренение проводили в условиях парника теплицы. Субстрат для укоренения состоял из смеси почвы, песка и торфа в соотношении 2:1:1. Почва, которая использовалась для приготовления субстрата, представлена чернозёмом южным карбонатным гумусово-аккумулятивного горизонта, почву забирали с глубины 50 см. Толщина субстрата для укоренения в парнике составляла 5 - 7 см. Орошение черенков проводилось вручную.
Значения показателей укореняемости черенков были подвергнуты статистической обработке методом вариационного анализа [17], использованы усреднённые данные за период проведения опыта. Нахождение коэффициента вариации в данной работе позволяет продемонстрировать степень изменчивости показателей укореняемости черенков при их заготовке в различные фазы развития маточного растения, а также сравнить колеблемость изучаемого признака за период проведения исследования. Также применялся дисперсионный анализ для оценки достоверности различий [18].
Результаты и обсуждение. Эффективность укоренения черенков в опыте обусловлена биологическими особенностями маточных растений, фазами их роста и развития. Период активного роста побегов исследуемых видов растений неодинаков, поэтому благоприятные периоды черенкования у одних видов отмечены в фазе интенсивного роста (Physocarpus opulifolius 'Luteus', Physocarpus opulifolius 'Diabolo'j, у других - при замедлении или окончании роста, в фазе образования плодов (Berberis thunbergii, Cotoneaster lucidus). У некоторых видов побеги были пригодны для нарезки черенков в течение короткого периода, который, как правило, сопряжён с фазой роста побегов или цветения. По этой причине важно проводить черенкование в определённые сроки. В периоды развития маточных растений с побегами, непригодными для нарезки, черенкование не проводилось (табл. 1).
В различные фазы вегетационного периода способность к укоренению у зелёных черенков различных видов растений существенно изменялась. Наименьшие показатели укореняемости наблюдались при заготовке черенков в фазу начала образования плодов у таких видов, как Crataegus volgensis (3,8 %), Elaeagnus commutata (5,8 %). Наилучшая степень укореняемости отмечена при заготовке черенков в фазу массового цветения у Cornus alba 'Kesselringi' (91,7 %) и Symphoricarpos doorenbosii 'Amethyst'(93,2 %).
Наибольшая вариация показателей укоре-няемости отмечена в фазу образования плодов (V = 248,8) и начала бутонизации (V = 191,6), т.е. в периоды, не благоприятные для вегетативного размножения большинства исследуемых культур, за исключением Phyladelphus microphyllus,
Physocarpus opulifolius 'Luteus', Physocarpus opulifolius 'Diabolo', которые черенкуются с момента начала бутонизации, и Cotoneâster lucidus, Rosa rugosa, способные к укоренению черенков в фазу образования плодов. Совокупность количественных данных, полученных при исследовании различных ботанических таксонов по признаку «укореняемость черенков при заготовке в различные фазы развития маточного растения», является неоднородной. Исследуемые виды растений проявляют наилучшую способность к укоренению черенков в неодинаковые периоды. Различия между вариантами являются достоверными.
Колеблемость признака укореняемости черенков различных ботанических таксонов за период проведения исследований, значения коэффициентов вариации для показателей укореняемости исследуемых ботанических таксонов при заготовке черенков в различные фазы развития маточного растения показаны в таблице 2.
Во всех исследуемых фазах развития маточных растений установлена незначительная вариация количественных показателей по признаку «укореняемость черенков таксона за период исследования», в отдельных случаях - средняя, что свидетельствует об однородности количественных данных по данному признаку у каждого из исследуемых ботанических таксонов.
Результаты исследования подтверждают прямую зависимость процента укоренённых черенков от фазы развития маточного растения. В частности, у преобладающего большинства видов кустарников древесных растений оптимальные
сроки образования адвентивных корней черенков зафиксированы при заготовке черенков на укоренение в фазу массового цветения и окончания цветения, когда метаболизм маточного растения наиболее интенсивен, увеличивается активность ферментов и гормональных регуляторов роста, осуществляется опосредованный ферментной системой транспорт ауксинов и пластических веществ к месту образования зачатков корневой системы [19 - 23]. Исключением являются Cotoneâster lucidus, Berberis thunbergii, оптимальным сроком для черенкования которых является фаза начала образования плодов.
Наиболее ранними сроками пригодности черенков для укоренения характеризовались виды Phyladelphus microphyllus, Physocarpus opulifolius 'Luteus', Physocarpus opulifolius 'Diabolo': начало заготовки черенков было возможно с фазы начала бутонизации. При этом способность к укоренению у Phyladelphus microphyllus сохранялась вплоть до начала образования плодов, а у сортов Physocarpus opulifolius - до окончания цветения.
Сравнительно недолгим оптимальным периодом черенкования характеризовался Symphoricarpos doorenbosii 'Amethyst'. При этом данная культура показала высокие проценты укореняемости в пределах оптимальных сроков заготовки черенков.
Наибольший диапазон фаз развития маточного растения отмечен для Phyladelphus microphyllus (начало бутонизации - начало образования плодов) и Rosa rugosa (бутонизация - образование плодов).
1. Укореняемость черенков декоративных культур при заготовке черенков в различные фазы вегетации маточных растений, % (среднее за 2018 - 2020 гг.)
Вид/сорт Фаза развития маточного растения
начало бутонизации бутонизация начало цветения массовое цветение окончание цветения начало образования плодов образование плодов
Berberis thunbergii 15,1 ± 1,8 23,6 ± 1,7 43,8 ±2,3 75,2 ± 1,9
Phyladelphus microphyllus 23,8 ± 1,2 46,1 ± 2,3 62,4 ± 3,1 88,5 ± 2,4 89,1 ± 2,6 51,8 ± 2,8
Cotoneaster lucidus 10,8 ± 0,2 21,3 ± 1,5 43,1 ± 2,2 70,3 ± 3,1 34,2 ± 0,5
Cornus alba Kesselringi' 62,8 ± 0,9 91,7 ± 2,7 85,9 ± 2,3 67,4 ± 2,1
Potentilla alba 15,8 ± 0,6 46,2 ± 1,2 73,9 ± 1,5 71,8 ± 2,6 39,7 ± 1,4
Rosa rugosa 28,4 ± 2,3 56,1 ± 1,5 76,3 ± 0,9 72,4 ± 1,2 54,8 ± 1,7 23,7 ± 2,6
Prunus triloba 29,8 ± 2,1 49,7 ± 1,6 72,3 ± 2,7 39,8 ± 3,1
Physocarpus opulifolius 'Luteus' 52,7 ± 0,8 76,9 ± 3,5 65,8 ± 2,8 60,4 ± 2,4 39,7 ± 1,7
Physocarpus opulifolius 'Diabolo' 45,8 ± 2,2 81,7 ± 3,6 69,7 ± 2,9 57,6 ± 2,7 35,9 ± 2,5
Symphoricarpos doorenbosii 'Amethyst' 57,8 ± 2,3 93,2 ± 1,9 91,7 ± 3,7 49,6 ± 2,8
Elaeagnus commutata 10,2 ± 1,6 23,4 ± 1,8 5,8 ± 0,3
Crataegus volgensis 8,9 ± 0,7 15,2 ± 1,1 3,8 ± 0,1
Коэффициент вариации V, % 191,6 149,7 67,7 68,4 59,0 83,3 248,8
НСР05 1,7 2,3 1,7 1,2 1,4 1,9 5,2
2. Вариация показателей укореняемости (V, %) за период исследования (среднее за 2018 - 2020)
Вид/сорт Фаза развития маточного растения
начало бутонизации бутонизация начало цветения массовое цветение окончание цветения начало образования плодов образование плодов
Berberis thunbergii 3,8 7,2 5,3 2,5
Phyladelphus microphyllus 5 5 5 2,7 2,9 3,4
Cotoneâster lucidus 1,9 7 5,1 4,4 1,5
Cornus alba Kesselringi' 1,4 2,9 2,7 3,1
Potentilla alba 3,8 2,6 2 3,6 3,5
Rosa rugosa 8,1 2,7 1,2 1,7 3,1 11
Prunus triloba 7,1 3,2 3,7 7,8
Physocarpus opulifolius 'Luteus' 1,5 4,6 4,3 4 4,3
Physocarpus opulifolius 'Diabolo' 4,8 4,4 4,2 4,7 7
Symphoricarpos doorenbosii Amethyst ' 4 2 4 5,7
Elaeagnus commutata 15,7 7,7 5,2
Crataegus volgensis 7,9 7,2 2,6
Elaeagnus commutata и Crataegus volgensis показали низкую укореняемость черенков и короткий период черенкования. Данные виды следует отнести к трудноукореняемым в регионе произрастания.
Выводы. Способность к укоренению у зелёных черенков в разные периоды развития маточного растения у различных видов составляет от 3,8 % у Crataegus volgensis при заготовке черенков в фазу начала образования плодов до 93,2 % у Symphoricarpos doorenbosii 'Amethyst' при заготовке черенков в фазу массового цветения. В различные фенологические фазы маточного растения способность к укоренению у зелёных черенков различных видов варьирует, максимальная вариация укореняемости отмечена при заготовке черенков на укоренение в фазу образования плодов (V = 248,8) и начала бутонизации (V = 191,6).
Количественные показатели укореняемости черенков за период исследования характеризуются незначительной и средней вариацией, что означает наличие оптимальных фаз развития маточных растений для заготовки черенков у ботанических таксонов.
У многих видов кустарников оптимальные сроки образования придаточных корней черенков отмечены при заготовке черенков на укоренение в период массового цветения и окончания цветения. Для Cotoneâster lucidus, Berberis thunbergii благоприятным сроком черенкования является период начала образования плодов.
Список источников
1. Деденко Т.П., Хазова Е.П. Интродукция декоративных древесных и кустарниковых пород: учеб. пособ. Воронеж: ВГЛТУ, 2015. 90 с.
2. Plant regeneration: cellular origins and molecular mechanisms / M. Ikeuchi, Y. Ogawa, A. Iwase et al. Development. 2016; 143: 1442-1451.
3. Molecular and physiological control of adventitious rooting in cuttings: phytohormone action meets resource allocation / U. Druege, A. Hilo, J. Manuel Pérez-Pérez et al. Annals of Botany. 2019; 123(6): 929-949. https://doi. org/10.1093/aob/mcy234.
4. When stress and development go hand in hand: main hormonal controls of adventitious rooting in cuttings / C.T. da Costa, M.R. de Almeida, C.M. Ruedell et al. Frontiers in Plant Science. 2013; 4: 133. https://doi. org/10.3389/fpls.2013.00133.
5. Franklin G., Dias A.C.P. Chlorogenic acid participates in the regulation of shoot, root and root hair development in Hypericum perforatum. Plant Physiology and Biochemistry. 2011; 49(8): 835-842. https://doi.org/10.1016/j. plaphy.2011.05.009.
6. Pacurar D.I., Perrone I., Bellini C. Auxin is a central player in the hormone cross-talks that control adventitious rooting. Physiologia Plantarum. 2014; 151: 83-96. https:// doi.org/10.1111/ppl.12171.
7. Effect of auxins (IAA, IBA and NAA) on clonal propagation of solanum procumbens stem cuttings / L.H. Tien et al. Plant Cell Biotechnology and Molecular Biology. 2020; 55: 113-120.
8. Han H., Zhang S., Sun X. A review on the molecular mechanism of plants rooting modulated by auxin. African Journal of Biotechnology. 2009; 8 (3): 348-353.
9. Transcriptomic analysis reveals ethylene as stimulator and auxin as regulator of adventitious root formation in petunia cuttings / U. Druege, P. Franken, S. Lischewski et al. Frontiers in Plant Science. 2014; 5: 494. https://doi. org/10.3389/fpls.2014.00494.
10. Haissing B.E. Influences of auxins and auxin synergists on adventions root primordium initiation and-development. New Zealand J. Forest Sci. 1974; 4(3): 311 - 323.
11. Хайлова О.В. Денисов Н.И. Влияние сроков черенкования на укореняемость зелёных черенков древесных растений // Научные ведомости. Серия «Естественные науки». 2012. № 9 (128). Вып. 19. С. 49 - 54.
12. Комиссаров Д.А. Биологические основы вегетативного размножения растений черенками: автореф. дис. ... д-ра биол. наук. Л.: АН СССР, 1958. 46 с.
13. Вехов Н.К., Ильин М.П. Вегетативное размножение древесных растений летними черенками. Л.: Изд-во ВИР, 1934. 284 с.
14. Иванова З.Я. Значение сроков черенкования при размножении декоративных кустарников // Вопросы декоративного садоводства. Барнаул, 1964. С. 8 - 26.
15. Булыгин Н.Е. Фенологические наблюдения под древесными растениями. Л., 1979. 96 с.
16. Зайцев Г.Н. Фенология древесных растений. М.: Наука, 1981. 120 с.
17. Статистика: показатели и методы анализа / Н.Н. Бондаренко, Н.С. Бузыгина, Л.И. Василевская и др. / под ред. М.М. Новикова. Минск: Современная школа. 2005. 628 с.
18. Доспехов Б.А. Методика полевого опыта. М.: Колос, 1985. 416 с.
19. Комаров И.А. Укореняемость летних черенков некоторых кустарниковых пород в связи с содержанием в побегах гетероауксина // Лесное хозяйство. 1956. № 4. С. 26.
20. Dissecting the contribution of microtubule behaviour in adventitious root induction / M. Abu-Abied, O. Rogovoy, I. Mordehaev et al. Journal of Experimental Botany. 2015; 66: 2813--2824.
21. Myosin XI-K is involved in root organogenesis, polar auxin transport, and cell division / M. Abu-Abied, E. Belausov, S. Hagay et al. Journal of Experimental Botany. 2018; 69: 2869-2881. https://doi.org/10.1093/jxb/ery112
22. Agulló-Antón M.Á., Ferrández-Ayela A., Fernández-García N. Early steps of adventitious rooting: morphology, hormonal profiling and carbohydrate turnover in carnation stem cuttings. Physiologia Plantarum. 2014; 150: 446-462. https://doi.org/10.1111/ppl.12114
23. Molecular physiology of adventitious root formation in Petunia hybrida cuttings: involvement of wound response and primary metabolism / A.H. Ahkami, S. Lischewski, K-T. Haensch et al. New Phytologist. 2009; 181: 613-625.
References
1. Dedenko T.P., Khazova E.P. Introduktsiya dekora-tivnykh drevesnykh i kustarnikovykh porod: uchebnoe posobie. Voronezh: VGLTU, 2015. 90.
2. Plant regeneration: cellular origins and molecular mechanisms / M. Ikeuchi, Y. Ogawa, A. Iwase et al. Development. 2016; 143: 1442-1451.
3. Molecular and physiological control of adventitious rooting in cuttings: phytohormone action meets resource allocation / U. Druege, A. Hilo, J. Manuel Pérez-Pérez et al. Annals of Botany. 2019; 123(6): 929-949. https://doi. org/10.1093/aob/mcy234
4. When stress and development go hand in hand: main hormonal controls of adventitious rooting in cuttings / C.T. da Costa, M.R. de Almeida, C.M. Ruedell et al. Frontiers in Plant Science. 2013; 4: 133. https://doi.org/10.3389/fpls.2013.00133.
5. Franklin G., Dias A.C.P. Chlorogenic acid participates in the regulation of shoot, root and root hair development in Hypericum perforatum. Plant Physiology and Biochemistry. 2011; 49(8): 835-842. https://doi.org/10.1016/j. plaphy.2011.05.009
6. Pacurar D.I., Perrone I., Bellini C. Auxin is a central player in the hormone cross-talks that control adventitious rooting. Physiologia Plantarum. 2014; 151: 83-96. https:// doi.org/10.1111/ppl.12171
7. Effect of auxins (IAA, IBA and NAA) on clonal propagation of solanum procumbens stem cuttings / L.H. Tien et al. Plant Cell Biotechnology and Molecular Biology. 2020; 55: 113-120.
8. Han H., Zhang S., Sun X. A review on the molecular mechanism of plants rooting modulated by auxin. African Journal of Biotechnology. 2009; 8 (3): 348-353.
9. Transcriptomic analysis reveals ethylene as stimulator and auxin as regulator of adventitious root formation in petunia cuttings / U. Druege, P. Franken, S. Lischewski et al. Frontiers in Plant Science. 2014; 5: 494. https://doi. org/10.3389/fpls.2014.00494.
10. Haissing B.E. Influences of auxins and auxin syner-gists on adventions root primordium initiation anddevelop-ment. New Zealand J. Forest Sci. 1974; 4(3): 311 - 323.
11. Khailova O.V., Denisov N.I. Vliyanie srokov cheren-kovaniya na ykorenyaemost'zelenykh cherenkov drevesnykh rastenij. Nauchye vedomosti. Seriya Estestvennye nauki. 2012; 9(128(19)): 49-54.
12. Komissarov D.A. Biologicheskie osnovy vegeta-tivnogo razmnozheniya rastenij cherenkami: avtoref. dis. ... Dr. Biol. Sci. L.: AN SSSR, 1958. 46 p.
13. Vekhov N.K., Il'in V.P. Vegetativnoe razmnoszenie drevesnykh rastenij letnimi cherenkami: L.: Izd-vo VIR, 1934: 284.
14. Ivanova Z.Ya. Znachenie srokov cherenkovaniya pri razmnozhenii decorativnykh kustarnikov // Voprosy dekorativnogo sadovodstava. Barnaul, 1964. P. 8 - 26.
15. Bulygin N.E. Fenologicheskie nablyudeniya pod drevesnymi rasteniyami. L., 1979. 96 p.
16. Zaitsev G.N. Fenologiya drevesnykh rastenij. M.:Nauka, 1981: 120 p.
17. Statistika: pokazateli i metody analiza / N.N. Bondarenko, N.S. Buzygina, L.I. Vasilevskaya et al. Pod red. M.M. Novikova. Minsk: Sovremennaya shkola, 2005. 628 p.
18. Dospekhov B.A. Metodika polevogo opyta. M.: Kolos, 1985. 416 p.
19. Komarov I.A. Ukorenyaemost' cherenkov nekotorykh kustarnikovykh porodv svyazi s soderzhaniem v pobegakh geteroauksina. Lesnoe khozyajstvo. 1956; 4: 26.
20. Dissecting the contribution of microtubule behaviour in adventitious root induction / M. Abu-Abied, O. Rogovoy, I. Mordehaev et al. Journal of Experimental Botany. 2015; 66: 2813--2824.
21. Myosin XI-K is involved in root organogenesis, polar auxin transport, and cell division / M. Abu-Abied, E. Belausov, S. Hagay et al. Journal of Experimental Botany. 2018; 69: 2869-2881. https://doi.org/10.1093/jxb/ery112
22. Agulló-Antón M.Á., Ferrández-Ayela A., Fernández-García N. Early steps of adventitious rooting: morphology, hormonal profiling and carbohydrate turnover in carnation stem cuttings. Physiologia Plantarum. 2014; 150: 446-462. https://doi.org/10.1111/ppl.12114
23. Molecular physiology of adventitious root formation in Petunia hybrida cuttings: involvement of wound response and primary metabolism / A.H. Ahkami, S. Lischewski, K-T. Haensch et al. New Phytologist. 2009; 181: 613-625.
Екатерина Михайловна Фещенко, младший научный сотрудник, [email protected], https://orcid.org/0000-0003-4237-2059
Алия Ишембаевна Лохова, младший научный сотрудник, [email protected], https://orcid.org/0000-0001-6123-9451
Ekaterina M. Feshchenko, junior researcher, [email protected], https://orcid.org/0000-0003-4237-2059
Aliya I. Lokhova, junior researcher, [email protected], https://orcid.org/0000-0001-6123-9451
Вклад авторов: все авторы сделали эквивалентный вклад в подготовку публикации. Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.
Contribution of the authors: the authors contributed equally to this article. The authors declare no conflicts of interests.
Статья поступила в редакцию 12.05.2022; одобрена после рецензирования 04.06.2022; принята к публикации 30.06.2022.
The article was submitted 12.05.2022; approved after reviewing 04.06.2022; accepted for publication 30.06.2022.
-Ф-
Научная статья
УДК 635.9:631.529.631.527
doi: 10.37670/2073-0853-2022-96-4-86-90
Интродукция сортов Potentilla fruticosa L. в условиях лесостепи Алтайского края
Галина Эдуардовна Синогейкина
Федеральный Алтайский научный центр агробиотехнологий, Барнаул, Россия
Аннотация. Представлены результаты исследований интродукции сортов лапчатки кустарниковой (Potentilla fruticosa L.) в лесостепной зоне Алтайского края, на юге Западной Сибири. Изучены сезонное развитие и морфологические признаки цветка, представлен анализ параметров кроны. Все сорта зимуют под естественным снежным покровом, без дополнительного укрытия, без повреждений. В течение вегетационного сезона проходят все фазы развития. Цветение наступает с конца 3-й декады мая и продолжается 3,0 - 4,5 мес. до наступления осенних заморозков. Высота куста в среднем варьирует от 53,7 до 94,7 см, диаметр кроны - от 42,7 до 75,3 см. Все сорта в условиях интродукции близки к оптимальной высоте, заявленной оригинатором, но по диаметру кроны и цветка значительно уступают. У сортов Abbotswood, Gold Finger, Pink Queen, Princess крона шаровидная, у сортов Gilford Cren, Mango Tango - компактная прямостоячая. Диаметр цветка колеблется от 2,1 до 2,9 см, варьирование в пределах нормы - 4,1 - 9,5 %. Наиболее крупный цветок у сорта Gold Finger, более мелкий - у сортов Pink Queen, Princess. Наименьшая изменчивость диаметра цветка под влиянием погодных условий отмечена у сорта Princess, наибольшая - Pink Queen и Gilford Cren. Дана характеристика наиболее адаптированных сортов. Учитывая все декоративные качества, в том числе особенности длительного цветения в течение всего лета, все сорта рекомендованы для озеленения городов и других населённых пунктов в условиях лесостепи Алтайского края.
Ключевые слова: интродукция, Potentilla fruticosa L., сорт, сезонное развитие, морфологические признаки цветка, параметры кроны.
Для цитирования: Синогейкина Г.Э. Интродукция сортов Potentilla fruticosa L. в условиях лесостепи Алтайского края // Известия Оренбургского государственного аграрного университета. 2022. № 4 (96). С. 86 - 90. https://doi.org/10.37670/2073-0853-2022-96-4-86-90.
Original article
Introduction of varieties Potentilla fruticosa L. in the conditions of the forest-steppe of the Altai Territory
Galina E. Sinogeikina
Federal Altai Scientific Centre of Agro-BioTechnologies, Barnaul, Russia
Abstract. The results of studies on the introduction of varieties of Potentilla fruticosa L. in the forest-steppe zone of the Altai Territory, in the south of Western Siberia, are presented. The seasonal development and morphological characteristics of the flower were studied, and an analysis of the crown parameters was presented. All varieties winter under natural snow cover, without additional shelter, without damage. During the growing season, all phases of development go through. Flowering begins from the end of the 3rd decade of May and lasts 3.0-4.5 months. before the autumn frosts. The height of the bush varies on average from 53.7 to 94.7 cm, the diameter of the crown is from 42.7 to 75.3 cm. All varieties under the conditions of introduction are close to the optimal height declared by the originator, but they are significantly inferior in crown and flower diameter. The varieties Abbotswood, Gold Finger, Pink Queen, Princess have a spherical crown, the varieties Gilford Cren, Mango Tango have a compact upright crown. The diameter of the flower ranges from 2.1 to 2.9 cm, the variation is within the normal range of 4.1-9.5 %. The largest flower is in the Gold Finger variety, the smaller one is in the Pink Queen, Princess varieties. The smallest variability of the flower diameter under the influence of weather conditions was noted in the Princess variety, the largest - Pink Queen and Gilford Cren. The characteristics of the most adapted varieties are given. Considering all the decorative qualities, including the features of long flowering throughout the summer, all varieties are recommended for landscaping cities and other settlements in the conditions of the forest-steppe of the Altai Territory.
