CC BY
9проявлениях и способах лечения позволяют сделать вывод об актуальности этой проблемы.
СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ:
1. Баткаев Э.А., Галямова Ю.А. Склеродермия. Учебное пособие. Российская медицинская академия последипломного образования. М., 2002.
2. Галлямова Ю.А. Очаговая склеродермия. Лечащий врач. 2008;5:46-52.
3. Гурский Г.Э., Гребенников В.А., Хоронько В.В. Современные представления о склеродермии. Клиническая дерматология и венерология. 2012; 10(2)
4. Шостак Н.А., Дворников А.С., Клименко А.А., Кондрашов А.А., Скрипкина П.А., Гайдина Т.А. Локализованная (очаговая) склеродермия в общей медицинской практике // Лечебное дело. 2015. №4.
5. Довжанский С.И. Клинико-иммунологиче-ские параллели при ограниченной и системной склеродермии. Рос. журн. кожн. вен. бол. 2002; 4: 26—29.
6. Fleming J.N., Nash R.A., Mahoney W.M.Jr. et al. Is scleroderma a vasculopathy? Curr Rheumatol Rep 2009; 11: 2: 103—110.
7. Круглова Л.С., Хамаганова И.В., Гюльалиев Д.М., Тупиченков Н.И. Лечение боль-
ных ограниченной склеродермией комбинированным ферментативным препаратом пролонгированного действия методом ультрафонофореза. Клиническая дерматология и венерология. 2014; 12(4); 3037.
8. Молочков В.А., Молочков А.В., Кильдю-шевский А.В., Фомина О.А. Новый иммунобиологический метод экстракорпоральной фотохимиоте-рапиии в лечении ограниченной склеродермии. Российский журнал кожных и венерических болезней. 2015; 18(3): 13-16.
9. Пальцев М.А., Потекаев Н.Н., Казанцева И.А., Кряжева С.С. Клинико-морфологическая диагностика и принципы лечения кожных болезней. Руководство для врачей. М. 2006.
10. Потекаев Н.Н., Круглова Л.С., Хамаганова И.В., Жукова О.В. Методические рекомендации по применению коньюгата гиалуронидазы производным N-оксида поли 1,4-этиленпиперазина 3000 МЕ в лечении ОС. М 2012.
11. Zancanaro P.C., Isaac A.R., Garcia L.T., et al. Localized scleroderma in children: clinical, diagnostic and therapeutic aspects. An Bras Dermatol 2009; 19: 2: 86—92.
12. Yamamoto T. Scleroderma — pathophysiol-ogy. Eur J Dermatol 2009; 19: 1: 14—24.
EFFECTS OF ANTIOXIDANT DILUDINE FOR PHAGOCYTARY ACTIVITY OF NEUTROPHILS IN
THE EXPERIMENT IN VIVO
Milyutin M.
Associate Professor, Department of Human Anatomy Russia, National research nuclear University MEPhI, Institute of atomic energy of the MEPhI, Obninsk
ВЛИЯНИЕ АНТИОКСИДАНТА ДИЛУДИНА НА ФАГОЦИТАРНУЮ АКТИВНОСТЬ НЕЙТРОФИЛОВ В ЭКСПЕРИМЕНТЕ IN VIVO
Милютин М.В.
Кандидат медицинских наук, доцент, кафедра Анатомии человека Россия, Национальный исследовательский ядерный университет МИФИ, Институт атомной энергетики НИЯУ МИФИ, г. Обнинск
Abstract
It is established that feeding of experimental animals (in this case - pigs) with food waste of a multi-day collection is essentially an experimental model of phagocytosis insufficiency. The most likely cause of these disorders is the activation of lipid peroxidation, which is typical for long-day food waste collection. The most appropriate way to correct the detected violations is the introduction of antioxidants. When added to food waste antiox-idant, diludin eliminates changes in phagocytic indices, returning them to the controls.
Аннотация
Установлено, что скармливание подопытным животным (в данном случае - свиньям) пищеотходов многодневного сбора по своей сути является экспериментальной моделью недостаточности фагоцитоза. Наиболее вероятной причиной этих нарушений является активация перекисного окисления липидов, характерная для пищеотходов многодневного сбора. Наиболее подходящим способом коррекции выявленных нарушений представляется введение антиоксидантов. При добавлении к пищеотходам антиоксиданта дилудина нивелирует изменения фагоцитарных показателей, возвращая их к контрольным.
Ключевые слова: перекисное окисление липидов, экспериментальная модель недостаточности фагоцитоза, показатели фагоцитарной активности нейтрофилов, антиоксиданты.
Keywords: lipid peroxidation, experimental model of phagocytosis deficiency, indicators of phagocytic activity of neutrophils, antioxidants.
Ранее нами [3] была изучена поглотительная активность нейтрофилов на поверхности аутоло-гичных клеток крови у свиней в условиях применения в качестве компонента корма пищеотходов
многодневного сбора. Как известно [1], пищеот-ходы многодневного сбора в изобилии содержат гидроперекиси липидов, поэтому включение их в
рацион свиней можно принять за экспериментальную модель активации ПОЛ при различных заболеваниях человека. В результате нашего исследования [3] были зафиксированы достоверные сдвиги показателей фагоцитарной активности нейтрофи-лов (ФАН). В этой связи вызывает интерес возможность использования антиоксидантов в качестве средства коррекции выявленных нарушений фагоцитоза. Была взята кровь от 50 животных из свиноводческого хозяйства, где свиньи находятся под постоянным ветеринарным контролем. Обследованные животные были разбиты на контрольную и экспериментальную группу. Первую группу группу составили животные, имевшие в рационе пищеот-ходы многодневного сбора, что является экспериментальной моделью недостаточности фагоцитоза, характеризующейся достоверным снижением показателей ФАН (в сравнении с животными, получавшими вместо пищеотходов комбикорма), и по данным ветеринарного обследования в 75% случаев это клинически проявлялось в виде пневмонии. Во вторую была отобрана группа свиней, в корм которых наряду с пищеотходами многодневного сбора добавлялся антиоксидант дилулудин (2,6-диметил-3,5-дикарбэтоксин-1,4-дигидропиридин, ClзHl9O4). Выбор дилудина продиктован, с одной стороны, его широким использованием в животноводстве для увеличения продуктивности животных и качества их мяса), и неизученностью механизмов его воздействия на нейтрофилы, - с другой. В качестве объектов фагоцитоза (ОФ) использовали эритроцитар-ный диагностикум из шигелл Зонне, время контакта крови с ОФ - 10 и 20 минут. Определяли следующие показатели ФАН:
Процент фагоцитоза (%Ф) - количество нейтрофилов, поглотивших 1 и более ОФ, на 100 учтенных.
Фагоцитарное число (ФЧ) - среднее количество ОФ, захваченных 100 учтенных нейтрофилов.
Фагоцитарный индекс (ФИ) - среднее количество ОФ, приходящееся на каждый нейтрофил, поглотивший 1 и более ОФ.
Объемный фагоцитоз (Об.Ф) - среднее количество ОФ, захваченных нейтрофилами, содержащимися в 1 мкл крови (Об.Ф = ФЧ * Количество нейтрофилов в 1 мкл).
При употреблении в корм пищеотходов многодневного сбора совместно с антиоксидантом дилу-дином большинство показателей фагоцитоза вначале достоверно повысилось в сравнении с контрольной (пищеотходы без дилудина) группой. Так, - при 10 минутах контакта, - достоверно увеличились %Ф, ФЧ и Об.Ф. При контакте же крови и ОФ в течение 20 минут поглотительная активность нейтрофилов в экспериментальной и контрольной группах оказалась практически одинаковой по всем
исследованным показателям ФАН. Таким образом, речь идет, очевидно, о большей инертности нейтрофилов у животных, употреблявших пищеотходы многодневного сбора. Если у животных контрольной группы нейтрофилы выходят на плато своей поглотительной активности только к 20 минуте фагоцитарного процесса, то у животных экспериментальной группы нейтрофилы, став менее инертными, достигают аналогичного уровня своей поглотительной активности уже к 10 минуте. Это подтверждает имеющиеся данные, что при некоторых дефектах фагоцитоза показатели ФАН не отличаются от нормальных при достаточно длительной экспозиции крови и ОФ, а выявление дисфункции возможно только при небольшом времени контакта [2]. Это и означает, что нейтрофилы лишь становятся более реактивными к различным стимулам, не наращивая при этом свой поглотительный потенциал.
В связи с вышеизложенным, весьма информативными должны быть индексы, отражающие динамику фагоцитарного процесса. Эти индексы рассчитываются как соотношение показателей ФАН на 20 и 10 минутах. В результате расчетов выявлено, что динамика фагоцитарного процесса у свиней экспериментальной группы также претерпевает некоторые изменения - к 20 минуте количество вовлеченных в фагоцитоз нейтрофилов (%Ф) достоверно возрастает почти в 2 раза.
Таким образом, налицо активация фагоцитоза, проходящего на поверхности аутологичных клеток крови при добавлении в корм свиней пищеотходов многодневного сбора совместно с дилудином, добавление которого в рацион свиней отменяла нарушения фагоцитоза, вызванные активацией ПОЛ при употреблении пищеотходов.
Исходя из вышеизложенного, можно заключить, что значение антиоксидантов (на примере ди-лудина) как средства коррекции вторичных имму-нодефицитов, вызванных нарушением функциональной активности нейтрофилов под влиянием перекисного окисления липидов, изучено не в полной мере, хотя и представляется весьма перспективным.
СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ:
1. Богуш А.А. Откорм свиней на пищеотхо-дах. -Минск,1987. -222 с.
2. Маянский А.Н., Маянский Д.Н. Очерки о нейтрофиле и макрофаге. - Новосибирск, 1989 -344 с.
3. Milyutin M., Myalin A. Absorption activity of blood neutrophils under conditions of lipid peroxida-tion activation. - Norvegian Journal of development of the International Science - № 18/2018 -p.27-29
