CC BY
5
(15 и 7), У.кп51епзепП (4 и 8) и У. Ггейенквепп (4 и 0), изолированные из разных источников в отдельных хранилищах, не вызывали кератоконъюнктивита у морских свинок и не приживались в организме подопытных животных. Это позволяет отнести изученные штаммы к непатогенным вариантам соответствующих видов.
Представленные данные указывают на повсеместное распространение и видовое разнообразие уреазопозитив-ных иерсиний в овощехранилищах. Здесь их популяции обнаруживаются с большими постоянством и частотой в течение всего года во внешней среде и на овощах. Колебания же помесячной встречаемости отдельных видов и всей группы нерсиний в целом, с одной стороны, могут быть отражением зависимости от видовой структуры местных природных популяций, а с другой стороны — зависеть от санитарно-техннческого состояния и микроусловий хранилищ. Определенная роль принадлежит биологическим различиям видов. Иерсиниям пссвдотуберкулеза свойственна выраженная сезонность [3]. Другим же уреа-зопозитивным иерсиниям присуща большая экологическая пластичность в отношении условий, среды обитания и действия сезонных факторов. Это подтверждают и результаты настоящего исследования.
Заселение овощехранилищ иерсиниями происходит разными путями. Возможны проникновение с грунтовыми водами при их высоком стоянии (просачивание через пол, стены) и занос на различной переносной таре, подошвах обуви и т. п. Внутри самих хранилищ в механическом рассеянии иерсиний не исключена роль мышевидных грызунов. Однако главный и регулярно действующий путь заселения хранилищ иерсиниями — занос их на овощах, керне- и клубнеплодах.
Попавшие в хранилища популяции иерсиний находят здесь благоприятные условия для развития и закрепления в новом месте обитания: низкую температуру, достаточную влажность, отсутствие инсоляции, обилие органических остатков и др. И если почва, грунтовые воды являются природной экологической нишей для иерсиний [7], то овощехранилища, овощные базы служат для них искусственной экологической нишей, созданной человеком в результате необходимой хозяйственной деятельности. Именно из хранилищ начинается регулярное поступление разных овощей в пищу людей, а вместе с овощами или
благодаря им популяции иерсиний вступают во взаимодействие с людьми. Несомненна роль овощей в эпидемиологии псевдотуберкулеза, но в отношении иерсиннозов иной этиологии она пока неясна. При значительной заселенности овощей другими иерсиниями, помимо псевдотуберкулезных, патологии люден, этиологически связанной с ними, нами не установлено.
Проведенные исследования позволяют заключить, что в Приморье циркулирует экологическая группа свободно-живущих уреазопозитивных иерсиний, в том числе кишечные иерсинии преимущественно I биовара и иерсиний псевдотуберкулеза IV серовара, для которых характерен низкий патогенный потенциал [2]. Не исключено, что патогенные варианты этих видов занимают иные экологические ниши, например находятся в организме млекопитающих, птиц и представляют собой экологическую группу паразитирующих иерсиний, включающую другие бно-и серовары. Однако данный вопрос является предметом специального изучения.
Литература
1. Багрянцев Н. В., Шубин Ф. Н., Каверзин С. В. и др.— В кн.: Иерсиниозы. Новосибирск, 1983, с. 90—96.
2. Калина Г. П. — Гиг. и сан., 1983, № 10, с. 4—7.
3. Кузнецов В. Г. — Там же, 1978, № 7, с. 38—41.
4. Кузнецов В. Г. — Там же, 1980, № 9, с. 81—83.
5. Кузнецов В. Г. — Лаб. дело, 1980, № 9, с. 555—557.
6. Кузнецов В. Г. — Воен.-мед. журн., 1981, № 3, с. 67— 68.
7. Кузнецов В. Г. — Там же, 1983, № 2, с. 72—74.
8. Методические рекомендации по лабораторной диагностике кишечного иерсиниоза. Иркутск, 1979.
9. Серов Г. Д., Знаменский В. А., Вишняков А. К. — Жури, микробиол., 1968, № 6, с. 146—149.
10. Шарапова Т. А., Алексеева Н. Т. — Там же, 1983, № 8, с. 50-53.
11. Bercovier Н., Alonso J. М., Beniaiba Z. Н. et al. — Con-trib. Microbiol. Immunol., 1979, vol. 5, p. 12—22.
12. Brenner D. J. — Ibid., p. 33—43.
13. Niléhn В.— Acta path, microbiol. scand., 1969, Suppl. 206, p. 5—48.
Поступила 12.12.85
УДК 6И.73-07:616.34-008.827.995.02.2411-092.9-02:615.31:547.262
Г. А. Заликин, Ю. И. Москалев, П. Г. Нисимов
ВЛИЯНИЕ АЛКОГОЛЯ НА ВСАСЫВАНИЕ ИЗ ЖЕЛУДОЧНО-* КИШЕЧНОГО ТРАКТА, РАСПРЕДЕЛЕНИЕ И КИНЕТИКУ
ОБМЕНА 241Аш В ОРГАНИЗМЕ КРЫС
В последнее время установлено, что всасывание трансурановых нуклидов (ТУН) зависит от физико-химических свойств соединений нуклида и физиологического состс-я-яния организма. На уровни всасывания ТУН из желудочно-кишечного тракта (ЖКТ) существенное влияние оказывают возраст животного, голодание, содержание в дке-те кальция, витамины D и другие факторы [4—7].
Целью настоящей работы являлось изучение влияния алкоголя на всасывание цитрата и нитрата 24|Ат из ЖКТ и характер распределения нуклида в организме крыс в условиях однократного и длительного воздействия спирта.
Опыты поставлены на 150 белых нелинейных крысах-самках массой 200±Ю г (6 групп по 25 животных), которым однократно перорально вводили раствор нитрата (рН 3,0) и 5% раствор цитрата 241Ат (1-я и 2-я группы) с 1 мл 20 % водного раствора этилового спирта, при этом отношение данного раствора к растворам 24,Ат составило 10:1, а вводимое количество 24,Ат—100 кБк. Контрольные животные (3-я и 4-я группы) получали нит-fv
рат и цитрат 241Ат в тех же дозах, что и крысы 1-й и 2-й групп, но без спирта.
Животные 5-й группы в течение 60 сут до момента однократного внутривенного введения 241Ат (в количе^ стве 3,2 кБк, рН 3,0) и 40 сут после введения нуклида получали подслащенный 20 % раствор этанола. Этанол давали в стандартных поилках (одна на 5 животных). Каждые 5 крыс за 10 сут потребляли в среднем до 350— 400 мл 20 % раствора этанола. Животные имели свободный доступ как к поилке с этанолом, так и к поилке с водой. У крыс, получавших в течение 100 сут 20 % раствор этанола быстро наступало привыкание к алкоголю. По данным А. Б. Кампова-Полевого [1], в аналогичных условиях водно-спиртового режима до 50 % крыс быстро привыкают к алкоголю и потребляют его в равных количествах с водой, причем процент крыс в группах, проявляющих повышенную тропность к этанолу и относительно спокойно переносящих его, приблизительно одинаков (соответственно 23 и 25). Контрольным животным (6-я группа) внутривенно вводили нитрат 24|Ат рН 3,0 в количе-
Таблица 1
Влияние 20 % раствора этанола на всасывание 2:11Ат из ЖКТ крыс и накопление радионуклида (в % от введенного количества) в скелете и печени после однократного перорального введения (М±т)
Группа животных Срок после введения, сут
1 4 8 16 32 64
Контрольная Опытная
Контрольная Опытная
0,41 ±0,12 0,41±0,13
0,07+0,01 0,09±0,01
0,49±0.1 0,64±0,17
0,05±0,01 0,10±0.03
Цитрат ^Ат
0,24±0,06 0,27±0,07
Нитрат 241Am
0,06±0,01 0,07±0,02
0,24±0,06 0,28±0,04
0,07±0,02 0,08±0,01
0,24±0,06 0,28±0,04
0,04 ±0,01 0,06+0,004
0,25±0,08 0,27±0,09
стве 3,2 кБк. Животные 1-й и 4-й групп находились в обменных клетках, и в течение 32—64 сут у них собирали мочу и кал. На каждый срок исследования 5 животных под эфирным наркозом забивали и вскрывали на 1—64-е сутки. Содержание 241Ат в органах и тканях (крови, печени, почках, легких, селезенке, бедре) определяли с помощью сцинтилляционного спектрометра энергий у-излучения на установке «Gamma-Trac» фирмы «Тгасог Europa» (Нидерланды).
После однократного перорального введения нитрата и цитрата 241Ат и 20 % раствора этанола отмечалась выраженная тенденция к увеличению всасывания радионуклида из ЖКТ. На 4-е сутки после введения всасывание 241Ат из ЖКТ повышалось на 30—83 % по сравнению с контролем (табл. 1).
У крыс опытных групп был более выражен печеночный тип распределения резорбированной доли 24íAm. Через 1 сут после перорального введения цитрата 24'Am и 20 % раствора этанола в печени содержалось 73 % от поступившей дозы, а при введении нитрата 241Ат и 20% раствора этанола — 56%. Следует отметить, что из печени 241Ат выводился достаточно быстро как у подопытных, так и у контрольных животных. Если относительное содержание 241Ат в скелете контрольных крыс и крыс, получавших цитрат 24'Am и 20 % раствор этанола, постепенно возрастало, то при введении нитрата 241Ат и 20 % раствора этанола содержание 241Ат в костной ткани к 32-м суткам уменьшалось.
На уровень всасывания 241Ат из ЖКТ существенное влияние оказывала химическая форма вводимого соеди-
нения. При введении 5 % раствора цитрата 211Аш всасывание из ЖКТ у контрольных крыс составило 0,4—0,5 %, а при введении нитрата 241Ат—0,05—0,07 %, что соответствовало ранее опубликованным данным о всасывании из ЖКТ крыс 0,54% цитрата 241Ат и 0,1 нитрата [2].
У крыс, получавших в течение 100 сут 20 % раствор этанола, через 1 сут после однократного внутривенного введения нитрата 24'Ат в печени содержалось 69,4 % от введенного количества по сравнению с 54,9 % в контроле (табл. 2). До 64-х суток наблюдения у животных опытной группы наблюдалось ускорение выведения 241Аш из печени. Через 32 сут в печени контрольных и подопытных животных содержалось соответственно 6,3 и 4,6 %, а к 64-м суткам — 3,2 и 1 % от поступившего количества. У крыс, длительно потреблявших алкоголь, отмечено также более быстрое выведение 241Ат из скелета, селезенки, почек и легких.
Содержание 24,Ат в скелете крыс за 64 сут наблюдения снижалось с 24,1 до 8,3 % от введенного количества. Ускорение выведения 24'Ат из печени и костной ткани крыс, потреблявших 20 % раствор этанола, может быть связано с функциональными нарушениями в печени [3] и уменьшением массы скелета под влиянием этанола. При сравнении эффективных периодов полувыведення 241Ат из скелета установлено, что она равна 1600—2000 сут, а при хроническом действии алкоголя — примерно 16 сут, т. е. под влиянием этанола 241Ат выводился из костной ткани примерно в 100 раз быстрее.
Таким образом, доказано, что алкоголь может повышать всасывание ТУН из ЖКТ. Выявлено некоторое уси-
Таблица 2
Содержание 241Ат (в % от введенного количества) в органах и тканях крыс после однократного внутривенного введения азотнокислого раствора радионуклида
Объекты исследования Срок после введения, сут
1 4 8 32 64
Контроль
Кровь
Печень
Почки
Селезенка
Легкие
Скелет
Кровь
Печень
Почки
Селезенка
Легкие
Скелет
0,04±0,01 54,9±8,8 2,7±0,7 0,3±0,08 0,2±0,07 26,8±8,0
0,01
69,4±2,9 3,1±0,5 0,2±0,03 0,2±0,06 24,1 ±0,8
0,005 44,7±3,2 1,2±0,2 0,3±0,07 0,1 ±0,03 25,0±2,4
0,002 45,5±8,6 1,2±0,2 0,2±0,04 0,07±0,01 18,6±5,3
0,006 32,9±0,8 0,8±0,1 0,2±0,07 0,1 ±0,02 26,3±2,9
Опыт
0,002 12,2±0,2 0,7±0,01 0,1±0,01 0,05±0,01 12,0±3,8
0,002 6,3±1,7 0,6±0,05 0,1±0,01 0,1±0,01 32,1 ±3,6
0,001 4,6±1,2 0,4±0,04 0,08±0,02 0,04±0,01 10,5±3,0
3,2±0,3 0,4±0,04 0,1±0,01 0,2±0,06 26,7±3,1
1,0±0,02 0,2±0,01 0,03±0,01 0,02±0,003 8,3±0,8
ление кинетики обмена 24,Аш в организме крыс и ускорение выведения радионуклида из скелета, что связано с токсическим действием этанола. Исследования в данном направлении интересно продолжить в условиях хронического действия различных доз алкоголя и инкорпорации ТУН.
Литература
1. Кампов-Полевой А. Б,— В кн.: Биологическая характеристика лабораторных животных и экстраполяция на человека экспериментальных данных. М., 1980, с. 316—318.
2. Проблемы радиобиологии америция-241. Под ред. 10. И. Москалева. М., 1977.
3. Серов В. В., Лебедев С. П., Мухин Л. С. — В кн.: Успехи гепатологии. Рига, 1978, вып. 7, с. 190—202.
4. Harrison J. D. — Radiat. Protect. Dosimetry, 1983, vol.5, p. 19—35.
5. Sullivan M. F„ Gorham L. S. — Hlth Phys., 1983, vol.44, Suppl. 1, p. 411-417.
6. Sullivan M. P., Miller B. M„ Gorham L. S. — Radiat. Res., 1983, vol. 96, p. 580—591.
7. Sullivan M. F„ Miller В. M., Ruemmler P. S., Ryan J. L. -Hlth Phys., 1985, vol. 48, p. 61—73.
Поступила 14.11.85
УДК 615.471.03:1616.831-02:613.6471-073.97
В. В. Варецкий, Л. Н. Галич, А. В. Давиденко, В. И. Дьяченко,
В. В. Энговатов
БЕЗАРТЕФАКТНЫЕ ЭЛЕКТРОДЫ ДЛЯ ИССЛЕДОВАНИЯ ЭЛЕКТРИЧЕСКОЙ АКТИВНОСТИ МОЗГА ЛАБОРАТОРНЫХ ЖИВОТНЫХ ВО ВРЕМЯ ВОЗДЕЙСТВИЯ ЭЛЕКТРОМАГНИТНЫХ
ПОЛЕЙ
Киевский НИИ общей и коммунальной гигиены им. А. Н. Марзеева
В связи с широким использованием энергии электромагнитных полей (ЭМП) и возможным неблагоприятным воздействием ее на организм человека в настоящее время большое внимание уделяется изучению биологического действия этого фактора окружающей среды. Одной из наиболее чувствительных систем организма к воздействию рассматриваемого фактора является ЦНС.
Для регистрации электроэнцефалограммы (ЭЭГ) и вызванных потенциалов (ВП) в практике электрофизиологии обычно применяются металлические электроды. Однако при использовании их для регистрации электрофизиологических показателен во время воздействия ЭМП они могут вызывать локальное увеличение напряженности поля в 10 000 000 раз [2|. Этим могут объясняться различия в результатах, получаемых при облучении животных с электродами, обладающими малым сопротивлением, н без них [1, 3].
В настоящее время для электрофизиологических исследований предложено несколько типов электродов [1, 4]. Мы применяем жидкостные электроды, изготовляемые в лабораторных условиях.
Для этой цели нами проведена разработка методов изготовления и вживления жидкостных электродов, а также способа регистрации с их помощью электрофнзиоло-гических показателей.
Электроды изготавливают из стеклянных трубок внутренним диаметром 1 мм, внешним 1,5 мм (заготовки для микроэлектродов). Из одной трубки длиной 105 мм оттягивают несколько электродов, размеры которых в миллиметрах указаны на рис. 1. В оттянутые с одного конца стеклянные электроды протягивают хлопчатобумажную нитку со стороны большего диаметра. На широкий конец
Рис. 1. Схематическое изображение жидкостного электрода. / — стеклянная пипетка; II — поливинилхлорндная трубка; III — хлопчатобумажная нить.
электрода со вдетой в него нитыо плотно надевают медицинскую поливинилхлоридную трубку длиной около 3 см и соответствующего внутреннего диаметра (0,4 мм). На расстоянии 2 мм от края трубки, надетого на стеклянный электрод, нагретой иглой по всей окружности трубки делают углубление. Это обеспечивает фиксацию трубки при вживлении электродов. Перед вживлением электроды с помощью шприца со стороны поливинилхлоридной трубки заполняют горячим 2—3 % агар-агаровым гелем, приготовленным на физиологическом растворе.
Для оценки возможного взаимодействия с полем сверхвысокой частоты (СВЧ) описанных выше электродов нами осуществлены термографические исследования температурного поля вблизи электродов, помещенных в поле СВЧ 10 ГГц при плотности потока мощности 2— 3 мВт/см2. Для сравнения выполнены аналогичные исследования электродов, изготовленных из высокоомной металлической проволоки (нихром, германий с погонным сопротивлением 0,1 — 10 Ом/м). Исследования проведены на термографе АйА (Швеция). Изображение температурного поля фотографировалось с экрана тонального монитора, для численной оценки проведено микроденсометрирование негативного изображения на пленке. Полученные графики приведены на рис. 2, из которого следует, что использование любых материалов с погонным сопротивлением ниже 1 кОм на 1 см вызывает искажения равномерности ЭМП,
г -
-:-1-1-1-1—.
/ 2 3 4 5 у А
Рис. 2. Структура температурного поля вдоль образцов электродов.
¿ — длина проводника; X —длина волны ЭМП; I — нихремовая проволока диаметром 0,3 мм; II — оловянный микропровод диаметром 0,01 мм; /// — жидкостные электроды. По оси абсцисс — соотношение длины проводника и волны ЭМП; по оси ординат—интенсивность температурного поля, усл. ед.
