CC BY
180
УДК 632.92
Вирус шарки сливы на территории Российской Федерации
tospovirus. Bulletin OEPP/EPPO Bulletin 29, p. 465-472.
8. OEPP/EPPO (2004). Diagnostic protocol for regulated pests. PM 7/34 (1). Tomato spotted wilt tospovirus, Impatiens necrotic spot tospovirus and Watermellon silver mottle tospovirus. // Bulletin OEPP/EPPO Bulletin 34, p. 271-279.
9. Van Poelwijk F., Prins M., Goldbach R. Completion of the impatiens necrotic spot virus genome sequence and genetic comparison of the L proteins within the family Bunyaviridae // Journal of General Virology, 1997, v. 78, p. 543-546.
10. Werkman A.W., Verhoeven J.T.J., Roenhorst J.W. Plant species found infected by tomato spotted wilt virus and impa-tiens necrotic spot virus at the Dutch Plant Protection Service since 1989, 2006.
Аннотация. Статья посвящена тоспо-вирусам некротической пятнистости бальзамина (INSV) и бронзовости томата (TSWV), которые являются опасными патогенами декоративных и овощных культур в различных странах мира, но очень слабо изучены в Российской Федерации. Приведены литературные данные по кругу растений-хозяев этих вирусов, вызываемым ими болезням, вредоносности и различным аспектам их биологии.
В статье анализируются результаты 3-летнего серомониторинга INSV и TSWV в импортном подкарантинном материале цветочно-декоративных культур. Сообщается о первом случае выявления INSV на территории РФ и его идентификация методами ИФА и ПЦР
Ключевые слова. Тосповирус, некротическая пятнистость бальзамина, вирус бронзовости томата, цветочно-декоративные растения, полимеразная цепная реакция, иммуноферментный анализ.
Abstract. The article deal with Impatience necrotic spot tospovirus (INSV) and Tomato spotted wilt tospovirus (TSWV), dangerous pathogens of ornamental and vegetable crops in many countries, which are poorly studied in the Russian Federation. The article provides for published data on host range, disease, pathogenicity and various aspects the biology of these pathogens.
As well as analyses of the 3-year seromonitoring results INSV and TSWV in imported regulated article of ornamental crops. Moreover, it report the first detection and identification of INSV in the Russia with ELISA and PCR.
Keywords. Tospovirus, Impatiens necrotic spot tospovirus, Tomato spotted wilt virus, ornamental crops, polymerase chain reaction, ELISA.
Ю.Г. КУЛЕШОВА, Е.Т. РЫНЗА, агрономы лаборатории карантина растений и фитосанитарной экспертизы подкарантинных объектов Ростовского филиала ФГУ «ВНИИКР»
К наиболее опасным фитопатогенным болезням следует отнести вирусные заболевания. Это связано в первую очередь с их высокой вредоносностью, которая проявляется в угнетении роста растений, уменьшении количества и качества плодов, а также в существовании большого числа путей переноса. Одна из самых опасных вирусных болезней косточковых культур - шарка (оспа) сливы, вызываемая потивирусом Plum pox potyvirus (PPV). Потивирус поражает виды Prunus, включающие абрикос, персик, сливу. Он является карантинным объектом (список А2) для ЕОКЗР и Российской Федерации, имеющим ограниченное распространение на их территориях. В очагах патоген заражает до 90 % плодовых деревьев, а при благоприятных для его развития погодных условиях в период цветения можно вообще не получить урожай. Вредоносность болезни зависит также от сорта культуры и штамма вируса. Эффективных мер борьбы с вирусными заболеваниями, в том числе с потивирусом, до сих пор нет, поэтому единственное средство - раскорчевка и уничтожение деревьев и их поросли, что связано с большими экономическими затратами. Присутствие заболевания создает трудности для экспорта сертифицированного посадочного материала. Содержание больных деревьев в садах становится нерентабельным, что ведет к необходимости их уничтожения.
Вирус переносится с инфицированных деревьев либо путем при-
Районы обнаружения шарки сливы за период с 2000 по 2009 г.: 1 — Краснодарский край; 2 — Ставропольский край; 3 — Ростовская область; 4 — Волгоградская область; 5 — Воронежская область; 6 — Белгородская область; 7 — Тамбовская область; 8 — Липецкая область
вивки, либо неперистентно следующими тлями-переносчиками: Aphis craccivora, A. faba, A. spiraecola, Brachycaudus helichrysi, Hyalopterus pruni, Myzus persicae, M. varians, Phorodon humili. Число инфицированных деревьев в саду связано с количеством крылатых тлей и зависит от погодных условий.
Несмотря на предпринимаемые меры по локализации очагов и уничтожению пораженных деревьев, заболевание выходит за пределы питомников. Инфицированные саженцы расширяют ареал вируса, заражая растущие рядом растения (http://www.belsad.by/conference2/ files/3/22.doc). Если до 2000 г. очаги
ВНИИКР: НАУЧНЫЕ СООБЩЕНИЯ, НОВОСТИ
35
вируса были обнаружены только на территории трех субъектов РФ - Волгоградской области, Ставропольского края и Республики Кабардино-Балкарии [3], то на сегодняшний день заболевание зарегистрировано, помимо этих регионов, также на территориях Краснодарского края, Воронежской, Тамбовской, Липецкой, Белгородской и Ростовской областей [4] (http://fitokarantin.ru) (см. рисунок). Ареал потивируса постоянно расширяется, и в скором времени можно ожидать появления новых очагов на сопредельных территориях с вышеперечисленными регионами заражения.
На территории Ростовской области вирус шарки сливы впервые был выявлен в мае 2008 г. в Азовском и Мартыновском районах на общей площади 29,7 га. В 2009 г. были обнаружены новые очаги заболевания в Каменском и Егорлыкском районах на общей площади 2,8 га. В обнаруженных очагах были проведены фитосанитарные мероприятия по уничтожению деревьев и поросли.
Симптомы шарки сливы не всегда бывают четкими, что затрудняет выявление заболевания на толерантных сортах и в случае латентной инфекции. Только через несколько лет заболевание начинает распространяться от первично зараженных деревьев. На сегодняшний день в практике широко используются два метода диагностики потивируса - полимеразная цепная реакция (ПЦР) и иммуноферментный анализ (ИФА), которые позволяют в кратчайшие сроки (1-3 дня) в лабораторных условиях протестировать несколько сотен образцов. Однако, по данным П.А. Походенко и М.Т. Упадышева [1], метод ПЦР при тестировании растений in vitro более чувствителен, чем ИФА, и позволяет с высокой степенью достоверности выявить вирус PPV в древесине растений. Тем не менее, в соответствии с диагностическим протоколом ЕОКЗР (EPPO Standard PM 7/32 (1), 2009) обнаружение и идентификация карантинного объекта должны подтверждаться как минимум двумя методами.
Одним из основных источников заболевания являются инфицированные саженцы и черенки, попадающие на новые территории из селекционных коллекций и с сортоиспытательных участков. Высокий инфекционный фон в насаждениях косточковых культур обусловливает необходимость скорейшего перевода отечественного питомниководства на без-вирусную основу, важнейшим условием которого является выращивание наиболее устойчивых сортов сливы к вредоносным вирусам косточковых культур [2]. Кроме того, распространение инфекции может быть связано с массовым размножением тлей на приусадебных участках в городах и сельской местности, контролировать которое не всегда удается, поэтому следует вести борьбу с основными распространителями болезни - тлями.
В связи с тем, что вирус шарки сливы распространяется на новых территориях, целесообразно охватывать обследованиями большие площади. Необходимо уделять особое внимание диагностике заболевания, так как затраты на нее несоизмеримы с потерями от заражения вирусом и расходами на искоренение инфекции и восстановление садов. Только своевременное выявление опасного заболевания при выращивании и реализации посадочного материала косточковых культур позволит уменьшить распространение данного карантинного организма на территории РФ.
ЛИТЕРАТУРА
1. Походенко П.А., Упадышева М.Т. // Защита и карантин растений, 2008, № 7, с. 25-26.
2. Приходько Ю.Н., Чирков С.Н., Мет-лицкаяК.В., ЦубераЛ.В.//Сельскохозяйственная биология, 2008, № 1, с. 26-32.
3. Справочник по карантинному фитосанитарному состоянию Российской Федерации. - Москва, 1999 г
4. Справочник по карантинному фитосанитарному состоянию Российской Федерации. - Москва, 2000-2009 г
УДК 632.92
Белоакациевая
Ю.И. ГНИНЕНКО, заведующий лабораторией Всероссийского НИИ лесоводства и механизации лесного хозяйства А.Г. РАКОВ,
младший научный сотрудник e-mail: gninenko-yuri@mail.ru
Родиной белоакациевой моли-пестрянки Phyllonorycter robiniella является Северная Америка. В 1983 г впервые в Европе бабочка была выявлена в Швейцарии, и с тех пор распространилась в Австрии, Словении, Румынии, Польше, Венгрии, Хорватии, Украине и других странах. Гусеницы питаются листьями белой акации Robineapseudoacacia, нанося существенные повреждения.
Бабочки (Lepidoptera: Gracilla-riidae) мелкие, в размахе крыльев 66,5 мм. Расцветка передних крыльев пестрая, состоит из пятен золотисто-желтого или желто-серого и белого цветов, обрамленных полосами коричневого или темного цвета. На верхнем углу передних крыльев имеется пятно черного цвета, окаймленное желтоватым полем. Задние крылья узкие, от серого до коричневатого цвета, с обильным опушением по краям.
Куколка коричневая, после вылета бабочки куколочный экзувий обычно остается наполовину в мине и хорошо заметен на листе. Мины белого цвета, расположены с нижней стороны листовой пластинки, часто по несколько на одной листовой лопасти сложного листа акации.
В горах Италии развивается в двух поколениях, в равнинной части Пьемонта дает 3 поколения, а в Ломбардии - 4. Зимуют бабочки в трещинах коры старых деревьев.
Весной самки откладывают яйца на верхнюю сторону листьев. Гусеницы 1, 2 и 3-го возрастов питаются клетками эпидермиса листьев и только в 4 и 5-м возрастах переходят на питание мезофильными тканями. Число мин в течение лета увеличивается и достигает максимума к концу периода питания.
36
ВНИИКР: НАУЧНЫЕ СООБЩЕНИЯ, НОВОСТИ
