Цитологическая характеристика случайных гнойных ран у кошек в динамике их лечения Текст научной статьи по специальности «Ветеринарные науки»

ЦИТОЛОГИЧЕСКАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА СЛУЧАЙНЫХ ГНОЙНЫХ РАН У КОШЕК В ДИНАМИКЕ ИХ ЛЕЧЕНИЯ

Руденко Павел Анатольевич, кандидат ветеринарных наук, доцент, научный сотрудник лаборатории биологических испытаний

Филиал института биоорганической химии им. академиков М. М. Шемякина и Ю. А. Овчинникова Российской академии наук 142290, Россия, Московская область, г. Пущино, пр. Науки, 6, тел. 8(910)4897400, e-mail: [email protected]

Ключевые слова: кошки, гнойная рана, пробиотики, цитограмма В статье приводятся данные о цитологической характеристике случайных гнойных ран у кошек в динамике их лечения. Показано, что наиболее эффективным оказалось комплексное лечение кошек со случайными гнойными ранами опытной группы А3 с использованием созданных нами пробиотико-сорбционных препаратов «Дилаксил» и «Сорбелакт». Предложенная схема положительно влияет как на течение воспалительного процесса в целом, так и на отдельные фазы раневого процесса (самоочищения, заполнение грануляциями, эпителизацию).

Введение

В последние годы наблюдается резкое увеличение количества собак и кошек, которые стали полноценными жителями квартир. Увеличилась и ценность этих животных не столько в экономическом, сколько в этическом плане. Исходя из того, что мы живем в современном обществе, ветеринарные специалисты должны придерживаться принципов гуманности при обслуживании мелких животных, в частности домашних кошек. Эта ситуация требует более глубокого изучения патогенетических особенностей течения, а также разработки новых методов диагностики, профилактики и лечения многих патологических и, в частности, гнойно-воспалительных процессов у этого вида животных [1, 2].

Несмотря на создание новых поколений антибактериальных препаратов, постоянного совершенствования методов асептики и антисептики, количество осложненных гнойной инфекцией ран у животных не только не уменьшается, а наоборот, увеличивается [3-5]. Поэтому для успешной борьбы с гнойно-воспалительными процессами у животных необходимо проводить поиск новых более эффективных методов и способов.

До сих пор развитие создания пробио-тических препаратов было направлено только на коррекцию дисбактериозов и борьбу с острыми и хроническими кишечными ин-

фекциями [6-10]. Вопросами разработки и использования пробиотиков для коррекции микробиоценозов при гнойно-воспалительных процессах у животных, в частности у кошек, до сих пор не занимались. Проблема борьбы с гнойными ранами у кошек и их профилактика требует новых и современных подходов к ее решению. Поэтому раскрытие механизмов формирования микробиоценозов при случайных гнойных ранах у кошек и их коррекция с помощью новых пробиотико-сорбционных препаратов является актуальной проблемой, а ее решение позволит увеличить эффективность борьбы с гнойно-воспалительными заболеваниями у этого вида животных.

Объекты и методы исследований

С целью обоснования эффективности созданных нами пробиотико-сорбци-онных препаратов «Дилаксил» и «Сорбелакт» при лечении кошек со случайными гнойными ранами нами было проведено комплексное клинико-лабораторное исследование 64 кошек, которые поступали в государственные и частные ветеринарные клиники г. Луганска. Лечение животных проводили с учетом фазности раневого процесса. Схема лечения кошек со случайными гнойными ранами представлена в таблице 1.

В контрольную группу вошли животные, владельцы которых отказались от ле-

Группа животных

Фаза раневого Контрольная 1 опытная группа 2 опытная группа 3 опытная

процесса группа (А0), (А!), (А2), группа (А3),

n=11 n=16 n=16 n=21

Местно

Хирургическая

1 фаза. Самоочищения Хирургическая обработка раны Хирургическая обработка раны. Мазь Хирургическая обработка раны. Аппликация обработка раны. Аппликация пробиотико-сорбционного препарата «Дилаксил»

«Левомеколь» аэросила А-300

II фаза.

Заполнения - Мазь «Солкосерил» (1 раз в сутки)

грануляциями

III фаза. Эпителизации - Мазь «Солкосерил» (по показаниям, 1 раз в сутки)

Перорально

Пробиотико-

1, II, III фазы Аэросил А-300 сорбционный препарат «Сорбелакт»

чения. Кошкам группы А1 в первую фазу раневого процесса 2 раза в сутки в полость раны вводили марлевый дренаж, пропитанный мазью на гидрофильной основе «Ле-вомеколь», а при отсутствии полости - выполняли ее аппликацию. Животным группы А2 в первую фазу раневого процесса 2 раза в сутки проводили аппликацию аэросила А-300, слоем не более 3 мм. Кошкам группы А3 в первую фазу раневого процесса 2 раза в сутки на поверхность раны наносили проби-отико-сорбционный препарат «Дилаксил», также слоем не более 3 мм.

В дальнейшем, по возможности, животным А1-А3 опытных групп накладывали повязку. Животным групп А1-А3 во вторую и по показаниям в третью фазы раневого процесса применяли мазь «Солкосерил» 1 раз в сутки. Кроме этого, животным 2 опытной группы, на протяжении всего лечения, один раз в сутки перорально назначали аэросил А-300, в дозе 1 г, а кошкам 3 опытной группы - пробиотико-сорбционный препарат «Сор-белакт» в дозе 1 г.

Цитологическое исследование раневого экссудата проводили методом мазков-отпечатков по оригинальной методике М.П.

Покровской и М.С. Макарова [5]. С помощью микроскопа «Konus-5604» и компьютерной программы для морфометрических исследований «Cito» определяли количественный и качественный состав клеточных элементов, на основе чего выводили тип ци-тограммы.

Результаты исследований

При анализе анамнестических данных больных кошек установлено, что чаще всего случайные гнойные раны были локализованы в области головы - 26 (40,6 %), шеи - 14 (21,9 %), холки - 8 (12,5 %) и в области грудных конечностей - 7 (10,9 %) случаев от общего количества опытных животных. Гнойные раны у опытных животных в основном регистрировали в возрасте от 1 до 5 лет - 39 (60,9%) и от 5 до 10 лет - 23 (35,9 %) случаев от общего количества больных кошек. Необходимо отметить, что подавляющее большинство - 47 (73,5 %) случаев составляли беспородные кошки, причем в основном самцы - 48 (75,0 %) животных от общего количества опытных животных. Кроме этого, нами отмечена четко выраженная сезонность возникновения гнойных ран у кошек. Так,

Показатель До лечения В процессе лечения

8-9 день 12-13 день 16-17 день 21-22 день

Кол-во лейкоцитов в поле зрения 42,09±1,02 47,63±0,87 *** 41,00±0,96 21,45±0,76 *** 5,63±0,50 ***

Деструкция лейкоцитов, % 79,36±1,67 73,09±1,22 *** 65,72±1,07 *** 44,90±0,69 *** 37,54±0,57 ***

Клеточный состав, % Нейтрофилы 94,00±0,60 90,63±0,38 *** 87,54±0,54 *** 74,18±0,61 *** 57,36±0,82 ***

Лимфоциты 1,54±0,15 2,09±0,21 * 2,54±0,15 *** 2,90±0,21 *** 2,81±0,22 **

Моноциты 1,27±0,19 1,54±0,15 1,90±0,21 1,90±0,16 1,63±0,15

Полибласты 1,18±0,32 3,00±0,23 *** 4,45±0,34 *** 13,90±0,47 *** 21,90±0,68 ***

Макрофаги 2,00±0,19 2,72±0,23 * 3,54±0,24 *** 5,45±0,31 *** 3,36±0,24 **

Фибробласты 0 0 0 1,63±0,20 *** 12,90±0,47 ***

Эпителий - - - - Одинокие клетки

Примечание: здесь и дальше *** - р<0, казателями до лечения.

чаще всего случайные гнойные раны регистрировали в весенние месяцы, в марте - 17 (26,7 %), апреле - 14 (21,9 %) и мае -12 (18,7 %) случаев от общего количества опытных животных.

При случайных гнойных ранах у кошек мы в основном регистрировали удовлетворительное общее состояние. У некоторых животных наблюдали незначительное снижение аппетита, которое не влияло на их упитанность; у 3 (12 %) кошек с гнойными ранами, которые длительно не заживали, отмечали снижение массы тела. У обследованных животных отмечали достоверное (р<0,001) увеличение общей температуры тела в 1,02 раза, по сравнению с группой контроля (38,5±0,06°С). Следует отметить, что температура тела у 60,0% животных была субфебрильной, а в 16,0% - фебрильная. На начальных стадиях раневого процесса (фаза самоочищения) наблюдали интенсивное выделение жидкого раневого экссудата.

Края, стенки и окружающие ткани вокруг раны при первичном обследовании были отечные, тестообразной консистенции, гиперемированы в непигментирован-ных участках кожи, умеренно болезненные, с повышенной местной температурой.

001, ** - р<0,01, * - р<0,05 при сравнении с по-

Вследствие ферментативного расплавления авитализированных тканей в полости ран накапливалась незначительное количество гнойного экссудата беловатого или желтоватого цвета. По мере очищения ран от омертвевших тканей и гнойного экссудата общее состояние животных улучшалось, местно уменьшался отек тканей, на дне раны регистрировали появление островков грануляционной ткани, лучше развитой у кошек группы А3.

Цитологическая картина случайных гнойных ран животных контрольной и опытных групп в процессе лечения приведена в табл. 2, 3.

Согласно полученным данным, только на 8-9 сутки наблюдения в мазках-отпечатках, полученных от кошек, которым проводили только ПХО, наблюдали достоверное увеличение количества лимфоцитов в 1,3 и макрофагов в 1,4 раза (р<0,05), а также лейкоцитов в 1,1 и полибластов в 2,5 раза (р<0,001), при сравнении с показателями до лечения. Кроме этого, отмечали достоверное снижение количества разрушенных лейкоцитов в 1,1 раза, в том числе и нейтро-филов в 1,0 раза (р<0,001), при сравнении с исходными данными.

Показатель До лечения В процессе лечения

3-4 день 5-6 день 8-9 день 12-13 день

Кол-во лейкоцитов в поле зрения 43,18±0,98 47,50±0,78 *** 35,62±0,66 *** 13,00±0,65 *** 1,12±0,15 ***

Деструкция лейкоцитов, % 79,25±1,13 72,31±1,09 *** 57,62±0,63 *** 44,81±0,88 *** 14,18±1,42 ***

Клеточный состав, % Нейтрофилы 92,81±0,46 89,56±0,56 *** 80,43±0,53 *** 61,12±1,76 *** 42,68±0,97 ***

Лимфоциты 1,75±0,14 2,25±0,17 ** 3,37±0,25 *** 3,81±0,22 *** 3,62±0,27 ***

Моноциты 1,93±0,17 2,18±0,13* 2,43±0,12** 1,93±0,17 1,68±0,17

Полибласты 1,12±0,17 3,18±0,34 *** 8,87±0,20 *** 16,75±0,45 *** 25,50±0,57 ***

Макрофаги 2,37±0,20 2,81±0,18 ** 4,00±0,25 *** 7,75±0,23 *** 5,31±0,53 ***

Фибробласты 0 0 0,87±0,22 ** 6,87±0,36 *** 21,18±0,57 ***

Эпителий - - - Одинокие клетки Группы или слои клеток

При этом в цитологической картине преобладали разрушенные формы нейтро-фильных лейкоцитов, которые представляли собой детрит без четкого контура и структуры; отмечали большое количество микроорганизмов, которые были расположены преимущественно внеклеточно. В большинстве случаев регистрировали отсутствие каких-либо признаков клеточной регенерации, при этом в 72,7 % случаях определяли по Д. М. Штейнбергу некротический, а в 27,3 % - дегенеративно-воспалительный тип цитограмм.

Необходимо отметить, что на 12-13 сутки наблюдения в мазках-отпечатках отмечали достоверное (р<0,001) увеличение количества лимфоцитов, полибластов и макрофагов в 1,6; 3,8 и 1,8 раза, а также снижение количества разрушенных лейкоцитов и нейтрофилов в 1,2 и 1,1 раза соответственно, при сравнении с показателями до лечения. При этом в мазках-отпечатках находили большое количество нейтрофилов в состоянии дегенерации и деструкции; отмечали появление признаков фагоцитарной активности; микрофлору в основном выявляли внутриклеточно в состоянии незавершенного фагоцитоза; в некоторых случаях микроорганизмы находились среди облом-

ков нейтрофилов, что свидетельствует о дегенеративном виде фагоцитоза. Мазки-отпечатки в 18,2 % случаях были отнесены к дегенеративно-воспалительному, а в 81,8% - воспалительному типу цитограмм.

На 16-17 сутки наблюдения в мазках-отпечатках наблюдали дальнейшее достоверное снижение разрушенных лейкоцитов, в том числе и нейтрофилов в 1,8 и 1,3 раза соответственно (р<0,001); увеличение полибластов и макрофагов, соответственно, в 11,8 и 2,7 раза (р<0,001) при сравнении с исходными данными; наличие первых признаков регенерации, о чем свидетельствует появление фибробластов - 1,63±0,20 %. Микрофлору, в основном, находили в небольшом количестве в состоянии активного фагоцитоза.

Стоит сказать, что только на 21-22 сутки наблюдения цитологическая картина случайных гнойных ран кошек контрольной группы свидетельствует о благоприятном течении II фазы раневого процесса. Так, в мазках-отпечатках отмечали достоверное снижение количества лейкоцитов с 42,09±1,02 до 5,63±0,50 ед., разрушенных лейкоцитов с 79,36±1,67 до 37,5 ±0,57 %, нейтрофилов с 94,00±0,60 до 57,36±0,82 % (р<0,001), а также достоверное увеличение полибластов с 1,18±0,32 до 21,90±0,68 % и фибробластов

с 0 до 12,90±0,47 % (р<0,001), при сравнении с показателями до лечения. В этот период преобладали процессы завершенного фагоцитоза, микрофлора в небольшом количестве расположена внутриклеточно, регистрировали появление регенерации эпителия - по краю ран появились молодые эпителиальные клетки. Описанные изменения в 63,6 % случаях свидетельствовали о регенераторном, а в 36,4 % - регенераторно-воспа-лительном типе цитограмм (табл. 2).

Данные, приведенные в таблице 3, свидетельствуют о том, что у кошек с гнойными ранами группы А1 до проведения лечения в мазках-отпечатках основным типом клеток были лейкоциты (43,18±0,98 ед.), большинство из которых находилась в состоянии деструкции (79,25±1,13%). Лейкоциты в основном были представлены нейтрофи-лами (92,81±0,46 %), и только в небольшом количестве отмечали появление единичных незрелых мононуклеарных элементов. В мазках наблюдали скопления некротических масс, а микрофлора в значительном количестве была расположена внеклеточно. Такая цитологическая картина соответствовала некротическому типу.

Необходимо отметить, что на 3-4 сутки в мазках-отпечатках наблюдали лейкоцитарную инфильтрацию, при этом количество лейкоцитов в поле зрения достоверно увеличилась в 1,1 раза (р<0,001), при сравнении с исходными данными. Кроме этого, наблюдали достоверный рост количества моноцитов в 1,1 раза (р<0,05), лимфоцитов и макрофагов в 1,3 и 1,2 раза, соответственно (р<0,01), а также полибластов в 2,8 раза (р<0,001), при сравнении с цитологическими показателями до лечения. Микрофлора в мазках-отпечатках была расположена как внеклеточно, так и внутриклеточно, при этом фагоцитоз в подавляющем большинстве имел незавершенный характер. Цито-граммы были отнесены к дегенеративно-воспалительному типу.

На 5-6 сутки лечения кошек с гнойными ранами, входивших в группу А1, клинически наблюдали активное очищение раневой поверхности, появлялась здоровая грануляционная ткань; в цитограммах регистрировали увеличение элементов грануляционной ткани - полибластов, макрофагов и появление

фибробластов, что указывает на активацию регенеративных процессов.

Следует отметить, что на 8-9 сутки наблюдения в мазках-отпечатках отмечали достоверное (р<0,001) снижение количества лейкоцитов в 3,3 раза, разрушенных лейкоцитов в 1,8 раза, количества нейтрофилов в 1,5 раза; на фоне достоверного (р<0,001) роста количества лимфоцитов, полибластов, макрофагов и фибробластов, соответственно, в 2,2; 14,9; 3,3 и 6,9 раза. Микрофлора в небольшом количестве была расположена внутриклеточно, при этом фагоцитоз протекал по завершенному типу, одновременно регистрировали начало процесса краевой эпителизации. Согласно полученным данным, мазки-отпечатки в 25,0 % случаях были отнесены к воспалительно-регенераторному, а в 75,0 % - к регенераторному типу цитограмм, что позволило в большинстве случаев на раневую поверхность наложить первично-отсроченные швы.

Отметим, что на 12-13 сутки наблюдения отмечали существенные изменения в структуре клеточного состава цитограмм, а именно: достоверное снижение количества лейкоцитов, разрушенных лейкоцитов и нейтрофилов в 38,5; 5,6 и 2,2 раза (р<0,001); это регистрировали на фоне достоверного увеличения количества лимфоцитов, полибластов, макрофагов и фибробластов в 2,1; 22,8; 2,2 и 21,2 раза (р<0,001), соответственно. Во всех препаратах имел место только завершенный фагоцитоз. Кроме этого, появились пласты базальных эпителиальных клеток. Все 100 % мазков-отпечатков нами были отнесены к регенераторному типу (табл. 3).

Характеристика цитограмм кошек с гнойными ранами группы А2 в процессе лечения приведена в таблице 4. Данные таблицы свидетельствуют о том, что в цитограм-мах поверхностных раневых отпечатков при первичном обследовании основным видом клеток были лейкоциты, количество которых в поле зрения составляло 42,37±0,72 ед., которые находились среди детрита. При этом деструкция лейкоцитов составляла 79,37±0,74 %. Фрагменты распада лейкоцитов представляли собой детрит, частицы которого были бесструктурными и не имели четких контуров. При анализе клеточного

Показатель До лечения В процессе лечения

3-4 день 5-6 день 8-9 день

Кол-во лейкоцитов в поле зрения 42,37±0,72 45,43±0,71*** 18,25±0,53*** 5,43±0,47***

Деструкция лейкоцитов, % 79,37±0,74 69,68±0,61*** 48,50±0,59*** 35,81±0,67***

Клеточный состав, % Нейтрофилы 92,87±0,37 84,37±0,75*** 69,81±0,57*** 53,31±0,59***

Лимфоциты 1,81±0,16 3,12±0,27*** 3,68±0,29*** 4,06±0,21***

Моноциты 1,68±0,17 2,00±0,18 1,93±0,23 2,31±0,25

Полибласты 1,31±0,26 6,31±0,48*** 13,81±0,41*** 19,93±0,43***

Макрофаги 2,31±0,23 4,18±0,26*** 8,56±0,18*** 10,12±0,38***

Фибробласты 0 0 2,18±0,16*** 10,25±0,44***

Эпителий - - - Группы клеток

Таблица 5 Характеристика цитограмм кошек с гнойными ранами группы А3 в процессе лечения

Показатель До лечения В процессе лечения

3-4 день 5-6 день 8-9 день

Кол-во лейкоцитов в поле зрения 40,19±0,54 49,09±0,52*** 6,95±0,20*** 1,90±0,19***

Деструкция лейкоцитов, % 79,85±0,55 52,09±1,22*** 40,42±0,97*** 24,33±0,65***

Клеточный состав, % Нейтрофилы 93,14±0,33 77,85±0,45*** 48,42±0,69*** 39,00±0,46***

Лимфоциты 1,76±0,13 3,42±0,22*** 4,23±0,15*** 4,04±0,16***

Моноциты 1,61±0,14 0,95±0,14*** 1,33±0,14 1,38±0,21

Полибласты 1,42±0,17 11,00±0,50*** 20,47±0,33*** 23,09±0,56***

Макрофаги 2,14±0,15 5,23±0,16*** 18,00±0,21*** 12,76±0,45***

Фибробласты 0 1,52±0,13*** 7,52±0,28*** 19,71±0,27***

Эпителий - - Одинокие клетки Группы или слои клеток

состава установлено, что основной массой среди лейкоцитов были полиморфные ней-трофилы, а именно 92,87±0,37 %. Во всех препаратах наблюдали большое количество микроорганизмов, которые были расположены преимущественно внеклеточно.

Необходимо отметить, что на 3-4 сутки от начала лечения кошек с гнойными ранами А2 опытной группы наблюдали достоверное (р<0,001) снижение количества разрушенных лейкоцитов и нейтрофилов в 1,1 раза на фоне достоверного (р<0,001) увеличения количества лейкоцитов, лимфоцитов, полибластов и макрофагов в 1,1; 1,7; 4,8 и 1,8 раза соответственно, при сравнении с исходными данными. Количество микроорганизмов в поле зрения уменьшалась, при этом возрастала активность фагоцитоза - имел место как завершенный, так и незавершенный фагоцитоз.

На 5-6 сутки наблюдения в мазках-отпечатках отмечали достоверное (р<0,001) уменьшение общего количества лейкоцитов в поле зрения, разрушенных лейкоцитов и нейтрофилов в 2,3; 1,6 и 1,3 раза соответственно. Это происходило на фоне достоверного (р<0,001) роста количества лимфоцитов, полибластов, макрофагов и фибробластов, соответственно, в 2,0; 10,5; 3,7 и 2,2 раза, при сравнении с показателями до лечения. Количество микроорганизмов в поле зрения значительно уменьшалась, при этом они были расположены внутриклеточно на разных стадиях разрушения.

На цитограммах, полученных от животных группы А2 в начале фазы эпители-зации (8-9 сутки) наблюдали достоверное (р<0,001) уменьшение количества лейкоцитов в поле зрения в 7,8 раза с 42,37±0,72 до 5,43±0,47 ед., степени их деструкции

Клиническая характеристика Контроль-ная группа (А0), n=11 1 опытная группа (А1), n=16 2 опытная группа (А2), n=16 3 опытная группа (А3), n=21

Исчезновение гиперемии, суток 9,450,57 3,750,21 *** 2,750,21 *** 1,900,18 ***

Уменьшение отека, суток 11,450,57 4,620,34 *** 3,750,33 *** 2,900,18 ***

Очищение ран и формирование грануляций, суток 13,450,57 5,620,34 *** 4,750,33 *** 3,760,22 ***

Начало эпителизации, суток 23,900,41 11,620,34 *** 9,930,28 *** 7,760,23 ***

Полное заживление ран, суток 33,270,50 20,620,34 *** 17,930,28 *** 14,760,22***

Примечание: *** - р<0,001 при сравнении с животными контрольной группы.

в 2,2 раза с 79,37±0,74 до 35,81±0,67 %, а также количества нейтрофилов в 1,7 раза с 92,87±0,37 до 53,31±0,59 % при сравнении с исходными данными. И наоборот, отмечали достоверное (р<0,001) увеличение общего количества клеток, характерных для активной репарации, созревания грануляционной ткани и эпителизации, а именно полибластов, макрофагов, фибробластов, соответственно, в 15,2; 4,4; 10,2 раза, а также разрастание эпителиальных клеток. По этим показателям мазки-отпечатки в 100,0 % случаях нами были отнесены к регенераторному типу цитограмм.

Характеристика цитограмм кошек с гнойными ранами группы А3 в процессе лечения нашла свое отражение в таблице 5.

Следует отметить, что уже на 3-4 сутки наблюдения в мазках-отпечатках гнойных ран животных группы А3 отмечали резкое уменьшение количества микроорганизмов, которые находились в состоянии активного фагоцитоза. В этот период клинически наблюдали активное очищение раневой поверхности, появление здоровой, сочной грануляционной ткани, в цитограммах регистрировали достоверное (р<0,001) увеличение элементов грануляционной ткани - полибластов, макрофагов и появление фибробластов, что указывало на активацию регенеративных процессов. По Д. М. Штейнбергу, в 81,0 % случаях регистрировали воспалительно-регенераторный, а в 19,0 % - регенераторный тип цитограмм.

На 5-6 сутки от начала лечения коли-

V Д W

чество лейкоцитов в А3 опытной группе со-

ставляла 6,95±0,20 ед. в поле зрения, из них наблюдали 40,42±0,97 %, которые были с дегенеративными изменениями. Достоверно (р<0,001) снизилось количество нейтро-фильных лейкоцитов в 1,9 раза с 93,14±0,33 до 48,42±0,69 %, при сравнении с исходными данными. Достоверно (р<0,001) возросло количество полибластов, макрофагов и фибробластов в 14,4; 8,4 и 7,5 раза соответственно, появились одинокие эпителиальные клетки. Во всех мазках-отпечатках внеклеточного расположения микрофлоры не наблюдали. Имел место только завершенный фагоцитоз.

Дальнейшее цитологическое наблю-

V Д W

дение гнойных ран у кошек А3 опытной группы свидетельствует о положительной динамике репаративных процессов. Так, на 8-9 сутки в мазках-отпечатках отмечали, наряду с уменьшением общего количества лейкоцитов и их дегенеративных и разрушенных форм, существенное (р<0,001) увеличение количества лимфоцитов, полибластов, макрофагов и фибробластов в 2,3; 16,3; 6,0 и 19,7 раза соответственно, при сравнении с цитологическими показателями до лечения. Микроорганизмы в препаратах практически отсутствовали, а те, что встречались, находились внутриклеточно. Фагоцитоз был завершенным, одновременно проходил процесс активной краевой эпителизации, при этом в мазках-отпечатках эпителий был представлен в виде групп или слоев клеток.

Таким образом, комплексное лечение кошек со случайными гнойными ранами опытной группы А3 с использованием проби-

отико-сорбционных препаратов «Дилаксил» и «Сорбелакт» ускоряет процессы очистки и регенерации тканей, которые выражаются в существенном ускорении макрофагальной реакции и пролиферативных изменениях клеток, а также способствуют активному развитию грануляций.

Клинические результаты лечения кошек со случайными гнойными ранами в контрольной и опытных группах приведены в таблице 6. Данные таблицы 6 свидетельствуют, что использование пробиотико-сорбционных препаратов при лечении кошек с гнойными ранами существенно ускоряет их заживление. Так, средний срок очищения ран и формирования грануляций у животных группы (А3) отмечали в 3,6 раза быстрее, чем у кошек контрольной группы (р<0,001).

Это обусловливало скорейшее начало роста по периферии ран эпителиальной каймы, возникающее в 3,1 раза быстрее у кошек 3 опытной группы, по сравнению с животными группы А0 (р<0,001). Необходимо отметить, что полное заживление ран с образованием рубца наступало в А1, А2 и А3 группах животных в 1,6, 1,9 и 2,3 раза соответственно быстрее, чем у кошек контрольной группы (р<0,001).

Выводы

На основании комплексных исследований установлено, что предложенные нами пробиотико-сорбционные препараты «Дилаксил» и «Сорбелакт» при комплексном лечении кошек со случайными гнойными ранами положительно влияют как на течение воспалительного процесса в целом, так и на отдельные фазы раневого процесса (самоочищения, заполнение грануляциями, эпителизацию).

Библиографический список

1. Carr, A. Prospective evaluation of the incidence of wound infection in rattlesnake en-venomation in dogs / A. Carr , J. Schultz // J. Vet. Emerg. Crit. Care. - 2015. - №25(4). - Р. 546-551.

2. Руденко, П. А. КлЫчна характеристика рiзних форм гшйно-запальних

процеав м'яких тканин у колв / П. А. Руденко, В. Й. 1здепський // Ветеринарна медицина Украши. - № 11. - 2012. - С. 33-35.

3. Fukuyama, Y. The palliative efficacy of modified Mohs paste for controlling canine and feline malignant skin wounds / Y. Fukuyama , S. Kawarai, T. Tezuka // J. Vet. Q. - 2016. - № 1.

- Р. 1-7.

4. Effectiveness and safety of cefove-cin sodium, an extended-spectrum injectable cephalosporin, in the treatment of cats with abscesses and infected wounds / R. Six, D. M. Cleaver, C. J. Lindeman [et al.] // J. Am. Vet. Med. Assoc. - 2009. - №234(1). - Р. 81-87.

5. Chandra, J. Epithelium еxpressing the E7 oncoprotein of HPV16 attracts immune-modulatory dendritic cells to the skin and suppresses their antigen-processing capacity / J. Chandra , Y. Miao , N. Romoff [et al.] // PLoS One. - 2016. - № 11(3). - Р. 246-254.

6. Получение новых пробиотиков и изучение их влияния на белковый обмен и формирование нормальной микрофлоры у поросят / Г. И. Новик, А. Н. Михалюк, А. А. Самарцев [и др.] // Биотехнология. - 2006. -№6. - С. 63-71.

7. Rudenko, P. A. The part of microbial factors in the mechanisms of formation and progress of suppurative-inflammatory processes of the soft tissues in cats / P. A. Rudenko // Materialy 6 miedzynarodowej naukowi-prakty-cznej konferencji «Dynamika naukowych badan

- 2010». - Przemysl. - 2010. - Vol. 9. - S. 90-92.

8. Kampo medicine Dai-kenchu-to prevents bacterial translocation in rats / K. Yo-shikawa, N. Kurita, J. Higashijima [et al.] // Dig. Dis. Sci. - 2008. - №53(7). - P. 824-831.

9. Role of probiotics on gut permeability and endotoxemia in patients with acute pancreatitis: a double-blind randomized controlled trial / B. Sharma, S. Srivastava, N. Singh [et al.] // J. Clin. Gastroenterol. - 2010. - №3. - Р. 243247.

10. Wynn, S. G. Probiotics in veterinary practice / S. G. Wynn // J. Am. Vet. Med. Assoc.

- 2009. - №234(5). - Р. 606-613.

SI SS

es

»1

Si

p £ £ ll

и 'if

■ ■ 1 У

■■■ «5

00 s!