CC BY
56
УДК 617.52-002-022.7-085.281]-07
STUDY OF MICROBIC SPECTRUM AND DEFINITION OF RESISTANCE OF MICROBES TO ANTIBIOTICS DURING ACUTE ODONTOGENEOUS PROCESSES OF MAXILLOFACIAL AREA
А.Г. Денис, Н.Ф. Колядов
ГОУ ВПО Тверская ГМА Росздрава.
Кафедра хирургической стоматологии и реконструктивной челюстнолицевой хирургии
Резюме
На основании проведенных исследований было установлено, что микробный спектр при одонтогенных инфекциях представлен смешанной флорой. Эффективными препаратами в лечении этой патологии оказались ампициллин и клиндамицин.
Ключевые слова: одонтогенная инфекция, микрофлора,
антибиотики.
Summary
Microbal spectrum at odontogeneous infections is presented by mixed microflora during the conducted researches. The most effective preparations at treatment of this pathology are ampicillin and clindamycin.
Key words: odontogeneous infection, microflora, antibiotics.
Литература
1. Артюшевич А.С. Одонтогенная инфекция: современная
патогенетическая терапия / А.С. Артюшевич, Г.М. Румин // Современная стоматология. - 2001. - №1. — С. 4-6.
2. Барер Г.М. Рациональная фармакотерапия в стоматологии (руководство для врачей ) / Барер Г.М., Зорян Е.В. - М.: Литтерра, 2006.- 562 с.
3. Клембаев С. Острые одонтогенные воспалительные заболевания челюстей / С. Клембаев .- Казань: Медицина, 2000.
4. Казанцев Н.Л. Опыт антибиотикотерапии в комплексном лечении одонтогенных воспалительных процессов у детей / Казанцев Н.Л., Сальковская Е.А. // Новое в стоматологии.- 2000.- № 2.- С.46-54.
5. Насер Н.Р. Хирургические инфекции мягких тканей. Подходы к диагностике и принципы терапии / Н.Р. Насер, С. А. Шляпников // Русский медицинский журнал. - 2006. - Т. 14, № 28. - С. 27-31.
6. Робустова Т.Г. Одонтогенные воспалительные заболевания / Т.Г. Робустова. - М.: Медицина, 2006. - 661 с.
7. Супиев Т. К. Гнойно-воспалительные заболевания челюстно-лицевой области / Т. К. Супиев.- М.: МЕДпресс, 2001.- С. 28-32.
8. Антибактериальная терапия. Практическое руководство / Страчунский Л.С., Белоусов Ю.Б., Козлов Н. [и др.].- М.: Фармединфо, 2002.-192 с.
9. Ушаков Р.В. Местное антимикробное лечение в стоматологии / Ушаков Р.В., Царев В.Н. - М.: МИА, 2004. - 138 с.
10. Царев В.Н. Антимикробная терапия в стоматологии / Царев В.Н., Ушаков Р.В. - М.: МИА, 2004. - 143 с.
11. Al - Nawas B. Infektionen im Zahn-, Mund-, Kieferbereich / B. Al - Nawas // ZMK. - 2001. - № 17. - Р. 761-184.
12. Al-Nawas B. Infektionen im Mund-, Kiefer- und Gesichtsbereich: Was hat sich in den letzten 25 Jahren geandert? / B. Al-Nawas, K.A. Grotz, R. Brahm // DtschZahnarztlZ . - 2000. - № 55. - S. 765.
13. Al-Nawas B. Einsatz von Antibiotika in der zahnarztlichen Praxis. Stellungnahme der DGZMK / B. Al-Nawas // Dtsch Zahnarztl. - 2002. - № 57. - S. 451 - 454.
14. Bouza E. Klebsiella and Enterobacter: antibitotic resistance and treatment implications / E. Bouza, E. Cercenado // Semin. Respir. Infect. - 2002. - №
17. - S. 215 - 230.
15. Buff S. Anaerobier bei submukosen und Logenabszessen - therapierelevante mikrobiologische Unterschiede / S. Buff, B. Al-Nawas, M. Hohlfelder [et al.] // Deutsche Zahnarztliche Zeitschrift in print. - 2001.
16. Eckert A.W. Erregerspektrum und Resistenzsituation bei rein anaeroben odontogenen Infektionen / A.W. Eckert, C. Hohne, J. Schubert // Mund Kiefer GesichtsChir. - 2000. - № 4. - S. 153 - 158.
17. Eick S. Erreger- und Resistenzspektrum bei intraoralen Infektionen des Kiefer-Gesichts-Bereiches unter besonderer Berucksichtigung der anaeroben Keimflora / S. Eick, W. Pfister, S. Korn-Stemme [et al.] // Mund Kiefer GesichtsChir. - 2000. - № 4. - S. 234 - 239.
18. Eick S. Pathogen and resistance spectrum in intraoral infections of the jaw-facial area with special reference to anaerobic bacterial / S. Eick, W. Pfister,
S. Korn-Stemme [et al.] // Mund Kiefer Gesichtschir. - 2000. - № 4. - P. 234.
19. Managing skin and soft tissue infections: Expert panel recommendations on key decision points / L.J. Eron, B.A. Lipsky, D.E. Low [et al.] / J. Antimicrob. Chemother. - 2003. - Vol. 52 (Suppl. S1). - Р. 13- 17.
20. Falagas M.E. Bacteroides, Prevotella, and Porphyromonas species: a review of antibiotic resistance and therapeutic options / M.E. Falagas, E. Siakavellas // Int. J. Antimicrob. Agents. - 2000. - Vol 15(1). - Р.1- 9.
21. Newmann V.G. Antibiotic and antimicrobial practice / V.G. Newmann,
A.J. van Winkelhoff // Quintessence Publishing Co inc., 2001. - 327 p.
22. The epidemiology of hospitalised cases of skin and soft tissue infection in Europe / S. Pulgar, M. Mehra, A. Quintana [et al.] // 18th European Congress of Clinical Microbiology and Infectious Diseases. - Barcelona, 2008. - P. 821.
23. Schubert J. Odontogene Infektionen // Horch H-H (Hrsg): Praxis der Zahnheilkunde. - Urban und Fischer, Munchen-Jens, 2003.
24. Vogel F. Rationaler Einsatz oraler Antibiotika bei Erwachsenen / F. Vogel, H. Scholz // Chemother. - 2002. - 47, J 11. - S. 58.
Острая одонтогенная инфекция является одной из актуальных проблем современной хирургической стоматологии [6,7,11,23]. В последнее время наметилась тенденция к изменению инфекционных этиологических факторов развития этих заболеваний [22]. Все чаще выявляются представители условно-патогенной и облигатной микрофлоры [3,18,20]. Параллельно с ростом количества заболеваний, связанных с одонтогенной инфекцией, повышается и частота неудовлетворительных результатов их лечения, которая достигает 21,3-27,6 % [4,12].
Антибактериальная терапия является неотъемлемой составляющей лечения инфекционной патологии [8,9,10,19]. Она должна быть комплексной, этиологически и патогенетически обоснованной [1,2, 5,13,15, 24]. Нерациональное применение антибиотиков является причиной появления резистентных штаммов микроорганизмов, устойчивых к их действию (Ефимова Н.А., 2003) [18,14,16,17,21].
Высокая частота одонтогенной инфекции и неудовлетворительных результатов ее лечения определяет значимость микробиологических исследований в комплексном обследовании больных одонтогенными воспалительными заболеваниями челюстно-лицевой области.
Целью нашей работы явилось изучение микробного спектра различных одонтогенных инфекций у больных с воспалительными заболеваниями и выявление адекватных противомикробных лекарственных средств в современных условиях.
Материалы и методы
Исследован микробиологический материал 32 больных (18 мужчин и 14 женщин), поступивших в клинику челюстно-лицевой хирургии г. Нюрнберга в июле-сентябре 2009 и январе-феврале 2010 г., в возрасте от 21 до 68 лет с воспалительными заболеваниями челюстно-лицевой области одонтогенного происхождения (абсцессы, острый гнойный периостит, острый и хронический периодонтит и пародонтит).
Таблица 1
Возрастная характеристика больных с нагноительными заболеваниями челюстно-лицевой области
Возраст Мужчины (N=18) Женщины (N=14)
20-30 лет 3 16,67 2 14,29
31 -40 лет 8 44,44 5 35,71
41-50 лет 4 22,22 5 35,71
51 -60 лет 2 11,11 2 14,29
Старше 61 года 1 5,56 - -
Всего 18 100,00 14 100,00
Большая часть больных (75 %) имели локализацию абсцессов на нижней челюсти и меньшая часть (25 %) - на верхней челюсти. Из всех нагноительных процессов в 67 % причиной явились осложнения хронических периодонтитов и хронических пародонтитов. У одного из обратившихся за помощью больного установлено сопутствующее заболевание - сахарный диабет. Никому из больных на этапе обследования и до вскрытия гнойного очага антибактериальную терапию не проводили. Предварительно перед вскрытием абсцесса в полости рта проводили антисептическую обработку 0,05 % раствором хлоргексидина и 10 % раствором «Betaisodona». При заборе микробиологического материала перед операцией производили пункцию или брали мазок из очага воспаления после вскрытия гнойника стерильным тампоном и помещали в стерильную пробирку.
Посев исследуемого материала производили на питательные среды (желточный агар, среда Эндо, анаэробные среды). Культивирование бактерий осуществляли при температуре 37 °С в течение 1-2 суток в аэробных или анаэробных условиях. Затем определяли количество выросших колоний, а также морфологические, тинкториальные, биохимические свойства и факторы патогенности бактерий.
Идентификацию осуществляли с использованием API-системы французской фирмы “Bio Merieux”. Далее методом бумажных дисков, пропитанных различными антибактериальными препаратами, определяли резистентность микроорганизмов к пенициллину, ампициллину,
доксициклину, эритромицину, клиндамицину, ампициллин/сульбактаму («Амписд»), амоксициллин/клавулановой кислоте («Амоксиклав»).
Результаты исследования
У всех 32 больных в результате исследования было выделено 121 культуру, в том числе 81 анаэробных и 40 аэробных культур, что составляет пропорцию 2:1. Число культур, выявленных от каждого больного, колебалось от 1 до 7, в среднем от 3 до 4 культур. Количество больных с аэробно-анаэробной инфекцией составляло 23 (71 %),
анаэробная моноинфекция обнаружена у 4 человек (13%), анаэробная полиинфекция - у 5 (16 %).
□ анаэробная моноинфекция
ЕЗ аэробно-анаэробная инфекция
□ анаэробная полиинфекция
Рис.1. Диаграмма распределения культур на аэробы и анаэробы
Таблица 2
Видовая идентификация анаэробов и аэробов
Граммположительн ые анаэробные возбудители 38 Граммотрицательн ые анаэробные возбудители 43 Аэробные возбудители 40
Eubacterium 9 Prevotella 23 Streptococcus 23
Peptostreptocuccus 8 Fusobacterium 10 Staphylococcus 5
Асбпотусе8 6 Bacteroides 3 Staphylococcus 5
Gemella 3 Porphyromonas 2 Neisseria 4
Streptococcus 3 Capnocytophaga 2 Corynabacterium 3
Clostridium 1 Veillonella 1 Escherichia 2
Corynebacterium 1 Tissierrella 1 Enterobacter 1
Capnocytophaga 1 Lactobacillus 1
Haemophillus 1 Micrococcus 1
Bifidobacterium 1
Lactobacillus 2
Г раммположительные анаэробные палочки 2 Г раммотрицательные анаэробные палочки 1 Граммотрицательные аэробные палочки 1
Среди 40 идентифицированных аэробных культур преобладали стрептококки, стафилококки. Среди 81 анаэробных культур - Prevotella Fusobacterium (граммотрицательные) и Eubacterium, Peptostreptocоccus (граммположительные).
Резистентность к антибиотикам
Среди аэробных микроорганизмов самая высокая резистентность определялась к доксициклину (17 %), ампициллину (12 %), эритромицину (8,1), клиндамицину (4,65). Самая низкая - к пенициллину (2,25 %). Резистентность не выявлена к ампициллин/сульбактаму,
амоксициллин/клавулановой кислоте.
ампи циллин / клавулановая к-та
0%
ампи циллин / сульбактам
0%
Рис.2.
клиндамицин эритромицин 1 4,65%
1 8,10%
доксициклин 1 17%
ампициллин 1 12%
п ен и циллин 1 2,25%
0% 5% 10% 15% 20%
Характер распределения резистентности аэробных микроорганизмов к антибиотикам
Среди анаэробных микроорганизмов самая высокая резистентность определялась к эритромицину (5,1 %), доксициклину (4,6 %), пенициллину (4,6 %). Самая низкая - к ампициллину (1,3 %) и клиндамицину (0,7 %). Резистентность не обнаружена к ампициллин/сульбактаму, амоксициллин/клавулановой кислоте.
ампициллин / клавулановая к-та
ампи циллин / сульбактам клиндамицин эритромицин до ксициклин ампициллин пенициллин
0%
0%
0,7%
D 1,3%
5,1%
4,6%
4,6%
I I
0% 1% 2% 3% 4% 5% 6%
Рис.3. Характер распределения резистентности анаэробных микроорганизмов к антибиотикам
Выводы
1. На основании проведенных исследований установлено, что одонтогенные инфекции представлены спектром смешанной микрофлоры -анаэробы-аэробы, из которых большая часть является анаэробными
микроорганизмами (66,9 %). Выявлена процентная разница резистентности анаэробов и аэробов к антибиотикам.
2. Для аэробной микрофлоры показано использование пенициллина
(устойчивость - 2,25 %). Резистентность не выявлена к
ампициллин/сульбактаму, амоксициллин/клавулановой кислоте.
3. Наиболее эффективными антибиотиками в современных условиях
согласно исследованиям являются для анаэробов ампициллин (устойчивы
1,3 %) и клиндамицин (0,7 %). Резистентность не обнаружена к
ампициллин/сульбактаму, амоксициллин/клавулановой кислоте.
