CC BY
29
тельствуют о том, что толщина коры является информативным показателем, позволяющим не только выявлять характер межполушарных различий у отдельных индивидуумов, но и определять возрастные периоды с четко выраженной право- или левополушарной доминантностью на групповом уровне [7]. Выявленные особенности латерализации толщины коры большого мозга у детей двух возрастных групп и их специфика в функционально различных корковых полях позволяют в определенной степени разделить точку зрения ряда авторов [3, 6], в соответствии с которой межполушарную асимметрию можно рассматривать как динамический процесс, отражающий совершенствование механизмов высшей интегративной деятельности корковых формаций мозга в процессе видового и индивидуального развития.
Список литературы
1. Абрамов, В. В. Асимметрия нервной, эндокринной и иммунной систем / В. В. Абрамов, Т. Я. Абрамова. - Новосибирск : Наука, 1996. - 97 с.
2. Боголепова, И. Н. Структурная асимметрия корковых формаций мозга человека / И. Н. Боголепова, Л. И. Малофеева. - М. : Изд-во РУДН, 2003. - 156 с.
3. Любимов, Н. Н. Новая концепция о локализации центральных механизмов условного рефлекса // Современные аспекты учения о локализации и организации церебральных функций / Н. Н. Любимов; под ред. О. С. Адрианова. - М. : Медицина, 1980. - С. 215-233.
4. Плохинский, Н. А. Биометрия / Н. А. Плохинский. - Новосибирск : Новосибирское отделение АН СССР, 1961. - 364 с.
5. Фокин, В. Ф. Функциональная межполушарная асимметрия и асимметрия межполушарных отношений / В. Ф. Фокин, Н. В. Пономарева, Н. Г. Городенский и др. // Системный подход в физиологии. - 2004. - № 12. - С. 111-127.
6. Kinsboume, M. The ontogeny of cerebral dominance / M. Kinsboume // Ann. N. Y. Acad. Sci. -1975. - Vol. 263. - P. 244-250.
7. Witelson, S. F. Anatomic asymmetry in the temporal lobes : its documentation, phylogenesis and relatioship to functional asymmetry / S. F. Witelson // Ann. N.Y. Acad. Sci. - 1977. - Vol. 299. - P. 328354.
Цехмистренко Татьяна Александровна, доктор биологических наук, профессор, профессор кафедры анатомии человека медицинского факультета, ФГБОУ ВПО «Российский университет дружбы народов», Россия, 117198, г. Москва, ул. Миклухо-Маклая, д. 8, тел.: (495) 434-50-55, е-таЛ: [email protected].
Васильева Валентина Андреевна, кандидат биологических наук, старший научный сотрудник лаборатории функциональной морфологии, ФГНУ «Институт возрастной физиологии» Российской академии образования, Россия, 119121, г. Москва, ул. Погодинская, д. 8, корп. 2, тел.: (499) 245-04-33, е-таП: [email protected].
Шумейко Нина Станиславовна, кандидат биологических наук, старший научный сотрудник лаборатории функциональной морфологии, ФГНУ «Институт возрастной физиологии» Российской академии образования, Россия, 119121, г. Москва, ул. Погодинская, д. 8, корп. 2, тел.: (499) 245-04-33, е-mail: [email protected].
УДК 611.03.-28.65
© В.С. Четвертков, Д.Б. Никитюк, Э.В. Швецов, С.В. Чава, 2012
В.С. Четвертков, Д.Б. Никитюк, Э.В. Швецов, С.В. Чава
СТРУКТУРНЫЕ ХАРАКТЕРИСТИКИ ЖЕЛЕЗИСТОГО АППАРАТА ДВЕНАДЦАТИПЕРСТНОЙ КИШКИ МЫШЕЙ ПОСЛЕ ОБЛУЧЕНИЯ
ГБОУ ВПО «Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова»
Минздрава России
Изучена структурная организация дуоденальных и кишечных желез (крипт) двенадцатиперстной кишки мышей после действия различных доз радиации. Структурные изменения желез двенадцатиперстной кишки нарастают по мере увеличения дозы воздействия.
Ключевые слова: морфология, двенадцатиперстная кишка, железы, облучение. 266
V.S. Chetvertkov, D.B. Nikityuk, E.V. Shvetsov, S.V. Chava
THE STRUCTURAL CHARACTERISTIC OF THE GLANDULAR APPARATUS OF THE MICE DUODENUM AFTER IRRADIATION
The structural organization of the duodenal and intestinal glands (crypts) of the mice duodénum after the différent dose of irradiation was studied. The structural changes of the duodenal glands began to grow after the increasing of the dose of irradiation.
Key words: morphology, duodénum, glands, irradiation.
Введение. Изучение структурно-функциональных характеристик органов и систем человека и животных во взаимосвязи с действием факторов окружающей среды, к числу которых относят научно-технический прогресс, связанный, в том числе, и с проникновением человека в космос и верхние слои атмосферы, является особенностью современной анатомии [5, 7]. Успехи в медико-биологическом обеспечении освоения космического пространства неразрывно связаны с обеспечением безопасности длительных полетов, где особенно важно установление количественных и качественных характеристик развивающихся эффектов, которые могут использоваться для адекватной оценки состояния организма, прогнозирования в дальнейшем отдаленных последствий, разработки системы защиты и профилактики при действии факторов космического пространства. В ответ на длительное действие радиации низкой интенсивности, типичной для космического пространства, возможно «напряжение» адаптационных механизмов, что приводит к формированию экстремальных состояний, угрожающих жизнедеятельности [2, 11]. Одним из наиболее уязвимых органов при комических полетах и других условиях, связанных с длительным гамма-излучением, может являться двенадцатиперстная кишка, патология которой разнообразна и во многом связана с действием внешних факторов [3, 4].
Исследования авторов показали, что в экстремальных ситуациях одной из наиболее уязвимых является иммунная система. В связи с тем, что лимфоидные структуры, как и железы стенок полых внутренних органов, являются наиболее динамичными, лабильными образованиями, структурные характеристики которых активно изменяются при любых воздействиях, что позволяет рассматривать их как биологические маркеры, отражающие их результативность и эффективность [9], актуальным представляется экспериментальное исследование анатомических характеристик лимфоидных образований двенадцатиперстной кишки у мышей в разные сроки действия радиационного фактора низкой интенсивности и в различные сроки после окончания этих воздействий.
Цель: изучить структурную организацию и кишечные железы (крипт) двенадцатиперстной кишки мышей после действия различных доз радиации. Задачи исследования:
• изучение морфологических характеристик железистого аппарата двенадцатиперстной кишки у мышей в условиях нормы;
• выявление микроанатомических особенностей кишечных и дуоденальных желез у мышей после длительного воздействия разных доз радиации (100-500 сГр, на протяжении 2-10 недель).
Материалы и методы исследования. Были изучены кишечные железы в стенках двенадцатиперстной кишки у 60 мышей-самцов линии F1 (CBAxC57BL6), массой 25-30 г. Исследование проведено на испытательном стенде (в гермокамерах с рабочим объемом 12 м3), рассчитанном на длительное пребывание животных и оснащенном автономными системами жизнеобеспечения, которые используются в пилотируемых космических аппаратах. Животных содержали на стандартном виварном пищевом рационе с двухнедельным карантином. Облучение проводили с помощью гамма-установки Г0Б0-60 с источником Cs137. Экспериментальных животных (50 мышей) подвергали общему равномерному гамма-облучению в период от 2 до 10 недель (5 групп наблюдений, в каждой по 10 мышей, в контроле - также 10 мышей), при мощности дозы 25 сГр в час. Облучение проводилось 1 раз в неделю по 2 часа в утреннее время. Доза гамма-облучения за одну неделю равнялась 50 сГр. Для 1 группы наблюдений (длительность эксперимента 2 недели) доза облучения равнялась 100 сГр, для 2 группы (воздействие в течение 4 недель) - 200 сГр, для 3 группы (воздействие - 6 недель) - 300 сГр, для 4 группы (8 недель) - 400 сГр и для 5 группы (10 недель) - 500 сГр. Доза максимального экспериментального облучения (500 сГр) с учетом разницы в продолжительности жизни и чувствительности к радиационному воздействию мыши и человека соответствует дозе облучения 170 сГр для человека, что равняется для него предельно допустимому уровню, установленному для длительных межпланетных пилотируемых полетов [11].
Эксперимент проводили на базе ГНЦ РФ «НИИ медико-биологических проблем» РАН.
Для исследования брали двенадцатиперстную кишку, разрезали строго по передней стенке, промывали от содержимого, распластывали на фотобумаге (фиксировали нитками) и для проведения последующих микроанатомических исследований помещали на 24 часа в 10 % раствор формалина. Продольные кусочки для исследований (размером 1 х 0,5 см) получали в стандартных зонах: сразу дистальнее перехода желудка в двенадцатиперстную кишку, в середине двенадцатиперстной кишки и возле перехода ее в тощую кишку (то есть в трех зонах). После «проведения» материала по батарее спиртов восходящей концентрации выполняли парафиновые срезы толщиной 5-7 мкм, которые окрашивали гематоксилин-эозином, по Ван Гизон, по Браше. При анализе железистых образований двенадцатиперстной кишки на микропрепаратах исследовали дуоденальные (Бруннеровы) и кишечные (Либеркюновы крипты) железы. У дуоденальных желез подсчитывали длину и ширину концевых частей, долю стромы на срезе железы, длины просвета выводного протока. У кишечных желез подсчитывали общее количество эпителиоцитов на их продольном и поперечном срезах, процентное содержание аборбционных и бокаловидных клеток (на продольном срезе железы). Определяли среднее арифметическое значение показателя, его ошибку. Достоверность различий вычисляли методом доверительных интервалов [1].
Результаты и их обсуждение. В результате исследований было подтверждено, что железистый аппарат двенадцатиперстной кишки у мышей представлен дуоденальными (собственными, Брунне-ровыми) и кишечными (криптами) железами. Дуоденальные железы располагаются начальными отделами в подслизистой основе, образуя сплошную «железистую массу» в проксимальной части кишки и поодиночке - в средней и дистальной ее третях. Известно, что эти железы относятся к слизистому типу [8], их выводные протоки открываются устьями на поверхности покровного эпителия. Кишечные железы, по нашим данным, имеют у мышей трубчатую форму, располагаются на разном расстоянии друг от друга в толще собственной пластинки слизистой оболочки, в составе их эпителиальной выстилки определяются бокаловидные, абсорбционные (столбчатые) и стволовые клетки. Бокаловидные клетки находятся на протяжении всей железы, граничат друг с другом, абсорбционными и стволовыми (недифференцированными) клетками; абсорбционные клетки расположены в ближайших к устью двух третях стенки железы, соседствуют друг с другом и бокаловидными клетками; недифференцированные клетки располагаются в базальной части железы, они соседствуют друг с другом и бокаловидными клетками (но не с абсорбционными). Относительно невелика у кишечных желез мышей доля клеток с ацидофильной зернистостью (клеток Панета) [10]. А.Н. Яцковский (1994) [12] описал у лабораторных животных (крыса, мышь) Ее, G, S, и D - эндокриноциты, отметив, что их число обратно коррелирует с количеством эндокринных клеток у дуоденальных желез.
Выявлены регионарные особенности строения железистого аппарата двенадцатиперстной кишки мышей, которые наблюдаются как в норме, так и на протяжении всего эксперимента. В направлении от проксимальной к дистальной части двенадцатиперстной кишки у мышей, как контрольной, так и всех экспериментальных групп, наблюдается уменьшение общего количества эпителиоцитов у кишечных желез (в 1,2 раза), а также тенденция к снижению процентного содержания абсорбционных и бокаловидных клеток, длины и ширины концевых частей дуоденальных желез. Кроме того, прокси-мально-дистальное уменьшение числа, размеров, «упрощение» формы дуоденальных желез было доказано и у человека при проведении их изучения макро-микроскопическими методами на тотальных препаратах этого органа [6].
Кишечные и дуоденальные железы у мышей характеризуются значительной морфологической изменчивостью в ответ на действие радиационного фактора. Эффект воздействия гамма-облучения на железы двенадцатиперстной кишки - дозозависим. Изменения структурных показателей кишечных желез у мышей ожидаемо нарастают по мере увеличения продолжительности и суммарной дозы гамма-облучения (от 4 недель воздействия в дозе 200 сГр до 10 недель, 500 сГр).
При воздействии на мышей гамма облучения в суммарной дозе 100 сГр (2 недели) существенных изменений желез не наблюдается. После 4- и 6-недельного воздействия радиационного фактора (суммарная доза 200 и 300 сГр, соответственно) в стенках двенадцатиперстной кишки мышей наблюдается увеличение процентного содержания бокаловидных клеток у кишечных желез (в 1,3 раза), относительное число абсорбционных клеток остается стабильным. Наблюдается тенденция к снижению общего количества эпителиоцитов на продольном срезе кишечных желез (до 67,0 ± 2,2 через 4 недели воздействий и 64,3 ± 2,1 клетки - через 6 недель; в контроле - 70,9 ± 1,2 эпителиоцита). Отмечено недостоверное уменьшение числа эпителиоцитов на поперечном срезе кишечной железы (до 13,6 ± 0,4 клеток через 4 недели и 13,2 ± 0,7 - через 6 недель; в контроле - 14,2 ± 0,4 эпителиоцитов). Не изменяют-
ся в эти сроки большой и малый диаметры концевой части дуоденальных желез, процентное содержание стромы у этих желез, длина просвета выводного протока.
После воздействия гамма-излучения на мышей в течение 8 недель (суммарная доза составила 400 сГр) по сравнению с контролем наблюдается уменьшение общего количества эпителиоцитов на продольном срезе кишечных желез до 50,1 ± 2,8 клетки (в 1,4 раза, р > 0,05), на поперечном их срезе -до 10,8 ± 0,4 клетки (в 1,3 раза, р > 0,05). По сравнению с контролем на продольном срезе кишечной железы процентное количество абсорбционных клеток снижается до 30,5 ± 1,6 (1,5 раза, р > 0,05), бокаловидных клеток возрастает до 44,5 ± 1,2 (в 1,2 раза, р > 0,05). Наблюдается тенденция к уменьшению длины (до 12,4 ± 0,4 мкм) и ширины (до 10,4 ± 0,4 мкм) концевых частей дуоденальных желез (в контроле 14,6 ± 0,3 мкм и 12,6 ± 0,3 мкм, соответственно). У дуоденальных желез процентное содержание стромы возрастает до 15,8 ± 0,9 % (в 2,0 раза р < 0,05), происходит некоторое увеличение длины просвета выводного протока дуоденальных желез (до 10,8 ± 0,4 мкм; в контроле - 8,9 ± 0,4 мкм).
Еще в большей степени изменения (регресс) железистого аппарата кишки наблюдается после 10 недель воздействия лучевого фактора (суммарная доза 500 сГр). По сравнению с контролем в эти сроки наблюдается уменьшение общего количества эпителиоцитов на продольном срезе кишечных желез до 46,8 ± 2,0 клетки (в 1,5 раза, р > 0,05), на поперечном их срезе - до 10,2 ± 0,4 клетки (в 1,4 раза, р > 0,05). На продольном срезе кишечной железы процентное количество абсорбционных клеток снижается до 26,8 ± 1,3 % (в 1,3 раза, р> 0,05), бокаловидных клеток возрастает до 44,8 ± 1,6 (в 1,2 раза, р > 0,05). Наблюдается тенденция к уменьшению длины (до 12,0 ± 0,4 мкм) и ширины (до 10,5 ± 0,4 мкм) концевых частей дуоденальных желез (в контроле 14,6 ± 0,3 мкм и 12,6 ± 0,3 мкм, соответственно). У дуоденальных желез процентное содержание стромы возрастает до 18,8 ± 0,9 % (в 2,3 раза, р < 0,05), происходит увеличение длины просвета выводного протока дуоденальных желез до 14,8 ± 0,4 мкм (в 1,7 раза по сравнению с контролем, р < 0,05). Таким образом, на 10 неделе воздействия облучения регрессивные изменения лимфоидной ткани двенадцатиперстной кишки у мышей выражены максимально.
Заключение. Сруктурные изменения желез двенадцатиперстной кишки, не выраженные после 2 недель воздействия лучевого фактора (суммарная доза 100 сГр), нарастают по мере увеличения дозы воздействия. Полученные данные еще раз убеждают, что железы стенок внутренних органов, характеризующиеся значительной существенной лабильностью к действию внешних факторов, могут быть использованы как биоиндикаторы в экспериментально-морфологических исследованиях.
Список литературы
1. Автандилов, Г. Г. Морфометрия в патологии / Г. Г. Автандилов. - М. : Медицина, 1980. -
324 с.
2. Агаджанян, Н. А. Взаимодействие организма с факторами газовой среды и критерии адаптации / Н. А. Агаджанян // Тез. 14-го совещания по Интеркосмосу. - Варна, 1981. - С. 4.
3. Василенко, В. Х. Болезни желудка и двенадцатиперстной кишки / В. Х. Василенко,
A. Л. Гребенев. - М. : Медицина, 1982. - 344 с.
4. Василенко, В. Х. Внелуковичные язвы двенадцатиперстной кишки / В. Х. Василенко,
B. М. Майоров, М. М. Сальман. - М. : Медицина, 1975. - 143 с.
5. Ерофеева, Л. М. Морфология тимуса при моделировании экстремальных воздействий (гипергравитации и ионизирующих излучений) : автореф. дис. ... д-ра мед. наук / Л. М. Ерофеева. - М., 2002. - 34 с.
6. Никитюк, Д. Б. Макро-микроскопическая анатомия желез двенадцатиперстной кишки взрослого человека / Д. Б. Никитюк, С. А. Буров // Российские морфологические ведомости. - 1996. -Вып. 4. - С. 73-75.
7. Сапин, М. Р. Иммунная система человека / М. Р. Сапин, Л. Е. Этинген. - М. : Медицина, 1996. - 304 с.
8. Сапин, М. Р. Дуоденальные (Бруннеровы) железы у человека / М. Р. Сапин, Э. В. Семенов // Морфология в физической культуре, спорту и авиакосмической медицине. - М., 2001. - С. 241-245.
9. Синельников, Р. Д. Значение макро-микроскопии для экспериментальных морфологических исследований / Р. Д. Синельников, Л. Н. Кисилева, Н. Г. Лебединец // Труды VII Всесоюзного съезда анатомов, гистологов и эмбриологов (г. Тбилиси, 6-13 июня 1966 г.) / редкол. : С. Н. Боголюбский и др. - Тбилиси : Мецниереба, 1966. - С. 473-484.
10. Хэм, А. Гистология / А. Хэм, Д. Кормак; пер. с англ. - М. : Мир, 1983. - Т. 4. - 242 с.
11. Шафиркин, А. В. Межпланетные и орбитальные космические полеты. Радиационный риск для космонавтов / А. В. Шафиркин, Ю. Г. Григорьев. - М. : Экономика, 2009. - 640 с.
12. Яцковский, А. Н. Закономерности морфо-функциональной организации дуоденальных желез (сравнительно-морфологическое и экспериментальное исследование) : автореф. дис. ... д-ра мед. наук / А. Н. Яцковский. - М., 1994 - 43 е.
Четвертков Виталий Сергеевич, ассистент кафедры анатомии человека, ГБОУ ВПО «Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова» Минздрава России, Россия, г. Москва, ул. Моховая, д. 11, корп. 10, тел.: (495) 203-74-09, е-mail: [email protected].
Никитюк Дмитрий Борисович, доктор медицинских наук, профессор кафедры анатомии человека, ГБОУ ВПО «Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова» Минздрава России, Россия, г. Москва, ул. Моховая, д. 11, корп. 10, тел.: (495) 203-74-09, е-mail: [email protected].
Швецов Эдуард Владимирович, доктор медицинских наук, профессор, профессор кафедры анатомии человека, ГБОУ ВПО «Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова» Минздрава России, Россия, г. Москва, ул. Моховая, д. 11, корп. 10, тел.: (495) 203-74-09, е-mail: [email protected].
Чава Светлана Валерьевна, доктор медицинских наук, профессор кафедры анатомии человека, ГБОУ ВПО «Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова» Минздрава России, Россия, г. Москва, ул. Моховая, д. 11, корп. 10, тел.: (495) 203-74-09, е-mail: [email protected].
УДК 611. 341:611.42
© А.Э. Эседова, Т.С. Гусейнов, С.Т. Гусейнова, А.Ш. Кадиев, 2012
А.Э. Эседова, Т.С. Гусейнов, С.Т. Гусейнова, А.Ш. Кадиев
ЦИТОЛОГИЧЕСКАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА ТИМУСА ПРИ ВОЗДЕЙСТВИИ ЙОДОБРОМНЫХ ВАНН
ГБОУ ВПО «Дагестанская государственная медицинская академия», г. Махачкала
На основании результатов морфометрического исследования доказано, что действие йодобромных минеральных ванн на организм крыс по сравнению с контрольной группой животных вызывает различные по характеру изменения структуры и цитоконструкции тимуса. Наиболее заметные цитологические изменения наблюдаются в подкапсулярной и корковой зонах тимуса белых крыс линии «Vistar».
Ключевые слова: ванны, йодобром, белые крысы линии «Vistar», тимус.
А.Е. Esedova, T.S. Guseynov, S.T. Guseynova, A.Sh. Cadiev
THE CYTOLOGICAI CHARACTERIZATION OF THYMUS UNDER THE INFLUENCE
OF THE IODINE-BROMIDE BATHS
The cytological characterization of the thymus under the influence of the iodine-bromide baths based on the results of the morphometric research there were proved that the action of iodide-bromide mineral baths on the organism of rats in comparison to the control group of animals caused a variety of pattern changes of the structure and the cytological construction of the thymus. Most noticeable changes were observed in cytological subcapsular and cortical areas of the thymus of white rats of «Vistar» type.
Key words: baths, iodine-bromide, white rats of «Vistar» type, thymus.
Введение. Принимая во внимание широкое распространение лечебных санаторно-курортных (природных) факторов, вместо фармакологических (лекарственных) средств, а также отсутствие сведений об их влиянии на центральный орган иммуногенеза [1], было предпринято экспериментальное исследование структуры и клеточного состава тимуса крыс после воздействия на них йодобромных вод. Выявленные в тимусе изменения в соотношении содержания лимфоцитов, пролиферативной активности клеток и вариабельность деструкции клеток при действии йодобромных ванн, безусловно, отражаются на функциональном состоянии не только самого органа, но и иммунной системы в целом.
Цель: установить особенности макро-микроскопического строения тимуса белых крыс линии «Vistar» при воздействии йодобромных ванн.
270
