CC BY
21
кишка, жёлчный пузырь, железистый и мышечный желудок, селезёнка, правое и левое лёгкое, правая и левая почка, а вентрально печени — грудная кость.
Абсолютное увеличение массы печени, значительные темпы коэффициента роста и скорости относительного роста массы органа по отношению к массе цыплят-бройлеров интенсивно происходят с суточного до 21-суточного возраста постинку -бационого онтогенеза. Правая доля печени по ширине и длине в течение исследуемого периода онтогенеза опережает в росте левую долю органа.
Литература
1. Ткаченко Т.Е., Харламов К.В. Адаптация к кормовому стрессу крольчат и цыплят-бройлеров // Кролиководство и звероводство. 2003. № 3. С. 14—15.
2. Ерехина Г.Н. Морфология печени домашних и диких птиц // Омский научный вестник. 2006. № 5. С. 138—141.
3. Жилина О.В. Печень бройлеров по периодам и фазам пост-инкубацконкого онтогенеза // Экологическая безопасность региона: сб. статей II междунар. науч.-практич. конф. (29-30 октября 2009 г.). Брянск, 2009. С. 135-137.
4. Косенкова Д.А. Морфофункциональные изменения печени у кур кросса Хайсекс браун в возрастном аспекте / Д.А. Косенкова, Е.В. Зайцева, H.H. Крикливый [и др.] // Управление функциональными системами организма: матер. междунар. науч.-практич. интернет-конференции, посвящ. 75-летию кафедры физиологии и 60-летию кафедры хирургии Ставропольского ГАУ / Ставропольский гос. аграр. ун-т. Ставрополь, 2006. С. 50-53.
5. Красникова Л.В., Фоменко Л.В. Видовые особенности строения печени у домашних птиц // Вестник Омского государственного аграрного университета. 2014. № 2 (14). С. 58-60.
6. Ткачев Д.А. Ткачев А.А., Крикливый Н.Н. Постинкубационный морфогенез кур // Птицеводство. 2007. № 4. С. 54-55.
7. Хохлов И.В. Морфология изменения печени кур // Птицеводство. 2006. № 12. С. 27-30.
8. Hamodi H.M., Abed A.A., Taha A.M. Comparative Anatomical, Histological and Histochemical Study of the Liver in Three Species of Birds // Raf. J. Sci., 2013. Vol. 24. № 5. P. 12-23.
9. Moller R., Teliz D. Anatomm del Peritoneo Digestivo del Сandъ (Rhea americana) // Int. J. Morphol., 2009. № 27 (4). P. 981-984.
10. Salomon F.V., Gustav Ficher Lehrbuch der Geflugelenanatomie / Verlag, Jena, Stuttgart, 1993. P. 158-172.
11. Зеленевский Н.В. Международная ветеринарная анатомическая номенклатура на латинском и русском языке. М.: «Лань», 2013. 400 с.
Структурная и морфометрическая характеристика первичной почки у сирийского хомяка (Mesocricetus Auratus)
Ю.В. Алексеева, преподаватель, БУХанты-Мансийская ГМА
Эмбриональное развитие мочевой системы характеризуется сложностью, этапностью существования временных провизорных структур, которые, с одной стороны, являются необходимым временным субстрактом эмбриогенеза, а с другой стороны, могут служить источником аномалий развития. Сложность эмбриогенеза обусловлена сложностью эволюционного формирования мочевой системы, переходом от водного к наземному образу жизни. Изучение особенностей эмбриогенеза первичной почки у разных видов млекопитающих позвоночных позволяет получать сведения, которые могут быть экстраполированы и использоваться при расшифровке эмбриогенеза у человека [1—3].
В связи с этим актуальным является изучение структурной и морфометрической характеристики первичной почки в эмбриогенезе у сирийского хомяка (Mesocricetus auratus).
Материал и методы исследования. Исследование выполнено на 277 эмбрионах сирийских хомяков (класс Mammalia, отряд Rodentia, семейство Cricetidae, род Mesocricetus, вид Mesocricetus auratus), полученных от самок с датированным сроком беременности 8 сут. — 14 сут. post coitus (рс) с интервалом 6 часов, что соответствует 11—20-й стадиям развития [4]. Эксперименты на животных были проведены в соответствии с правилами защиты позвоночных, используемых в научных целях [5].
Подсадка животных проводилась с 18.00 до 20.00 в летний период 2011—2014 гг. Самок подсаживали к самцам на 2 часа, после чего оплодотворение констатировалось обнаружением сперматозоидов в неокрашенных мазках при световой микроскопии. День обнаружения сперматозоидов в мазках учитывался как нулевой день post coitus (pc) [6].
У беременных самок в условиях эфирного наркоза проводилась лапаротомия. Иссекались эмбрионы из правого и левого рогов, расположенные проксимально к телу матки. В последующем самки подвергались эвтаназии посредством ингаляции паров эфира с последующей декапитацией. На каждом сроке развития изучены от 7 до 10 зародышей, полученные от 3—4 самок (табл.).
Зародыши для последующей светооптической микроскопии фиксировали в 10-процентном нейтральном формалине, подвергали обезвоживанию, уплотнению, заливали в парафин на фосфатном буфере («Биовитрум», Санкт-Петербург) [7, 8]. Парафиновые срезы толщиной 3 мкм изготавливали с помощью роторного микротома Micron HM 340Е (Thermo scientific), окрашивали гематоксилином Караци и эозином. Гистологические препараты были подвергнуты световой микроскопии посредством микроскопа Axio Imager Z1 (Zeiss). Проведена морфометрия мезонефральных канальцев с применением программы AxioVision 4.6.3: измеряли диаметры канальцев, просветов канальцев с последующим определением площадей поперечного сечения, просвета, эпителия по формуле круга S = пА2/4, где А — величина
малого диаметра канальца в мкм. Площадь эпителия стенки канальцев определялась как разница площади канальца и площади его просвета [9, 10]. В каждой возрастной группе эмбрионов изучено 80—170 канальцев.
Базу данных формировали при помощи программы Microsoft Office Excel 2013. Полученные результаты обрабатывались с помощью программы Statistica 8.0. Критическое значение уровня статистической значимости при проверке нулевых гипотез принималось равным 0,05. Величину вероятности, имеющую более шести нулей после запятой, обозначали как Р<0,001. Для сравнения двух независимых выборок применяли U-критерий Манна-Уитни.
Результаты исследования. В результате проведённого исследования установлено, что мезонефрос располагается продольно в виде валиков по обеим сторонам тела зародыша парасагитально нервной трубке, хорде, эмбриональным аортам, дорзальной брыжейке. Индуктором морфогенезов промежуточной мезодермы выступает мезонефральный проток, образованный клетками цилиндрической формы, располагающимися на базальной мембране, имеет выраженный просвет. Рядом с протоком располагаются относительно короткие эпителиальные тяжи и канальцы, окружённые кровеносными сосудами, которые идентифицируются нами как мезонефральные канальцы.
Морфогенез мезонефроса начинается в краниальных отделах нефрогонотома и продолжается в кранио-каудальном направлении. Последовательно образуются скопления клеток мезенхимы, мезенхимо-эпителиальная дифференцировка клеток, эпителиальные канальцы с последующей диф-ференцировкой в мезонефроны.
Канальцы образованы одним слоем эпителиальных клеток от кубических до цилиндрических, имеют разный диаметр по протяжённости, слепо начинаются в мезенхиме, продолжаются дорсо-латерально с разной степенью извитости в направлении мезонефрального протока. Начальные участки канальцев характеризуется большим в сравнении с последующим сегментом диаметром,
взаимодействуют с кровеносным капилляром, формируя васкуло-тубулярные контакты. Проксимальный каналец продолжается в меньший по диаметру дистальный мезонефральный каналец.
На основании структурных и топических признаков комплекс проток + эпителиальные канальцы, тяжи, кровеносные сосуды идентифицируется как первичная почка.
В течение 14-15-й стадий наблюдалась органо-типическая дифференцировка структур первичной почки: рост вольфова протока в каудальном направлении, новообразование и дифференцировка новообразованных канальцев на проксимальный и дистальный отделы, оформлении сосудистого русла за счёт ветвей дорзальной эмбриональной аорты. В структуре мезонефронов отсутствуют ме-зонефральные (почечные) тельца, но формируются их гомологи в виде васкуло-прокситубулярных и мезенхо-прокситубулярных контактов (рис. 1).
16-я стадия развития характеризуется усложнением структуры первичной почки и инициацией двух важных морфогенезов — формирование половых желёз и постоянной почки и, как следствие, формирование провизорных структурно-функциональных органных комплексов, в основе которых лежит вольфово тело, таких, как мезо-метанефрально-гонадный комплекс, аорто-гонадо-мезонефральный комплекс (рис. 2).
В течение 20-й стадии и позднее определяются признаки инволюции первичной почки.
Оценка структурных и морфометрических параметров мезонефральных канальцев позволяет прийти к заключению о наличии существенных различий между канальцами на сроках 9 сут. 6 час. — 10 сут. 6 час. и позднее 10 сут. 12 час. рс. Канальцы в период 9 сут. 6 час. — 10 сут. 6 час. характеризуются размерами, значительно превышающими таковые у канальцев на сроках 10 сут. 12 час. и позднее.
На основании изложенного нами выделены две генерации канальцев: краниальная, существующая в период 9 сут. 6 час. — 10 сут. 6 час., и каудаль-ная, существующих в период 10 сут. 12 час. рс, и позднее (рис. 3, 4).
Распределение эмбрионов сирийского хомяка по стадиям развития и возрасту
Стадия развития (А.П. Дыбан, 1975) Стадия
11-я 12-я 13-я 14-я 15-я 16-я 17-я 18-я 19-я 20-я
Срок развития эмбрионов сутки/часы рс сэ 00 VO 00 8/12 00 00 сэ сл о? 9/12 8 10/0 10,6 10/12 10,18 11/0 ,6 11,12 11,18 12/0 12,6 12/12 12,18 13/0 13,6 13,12 13,18
Количество самок, гол. 4 4 3 4 3 3 3 3 3 3 3 3 5 4 3 3 3 3 3 3 3 2 2 3 Всего 76
Количество эмбрионов 13 16 16 14 7 10 7 14 10 8 11 6 18 16 15 10 14 16 14 16 12 7 6 6 Всего 277
Всего исследовано 277 эмбрионов
Рис. 1 - Первичная почка зародыша сирийского хомяка, 15-я стадия, 10 сут. 6 час. рс: 1 -гомологи почечных телец в виде васкуло-проксиботубулярных контактов. Окраска: гематоксилин и эозин. Ув.: об. 20, ок 5
Рис. 2 - Зародыш сирийского хомяка, 16-я стадия, 10 сут. 18.00 рс. Первичная почка. Закладка половой железы. Мезонефрально-гонадный комплекс. Окраска: гематоксилин и эозин. Ув.: об. 20, ок 5
Рис. 3 - Динамика показателей площади проксимальных канальцев, просвета канальцев и эпителия в мезонефросе у сирийских хомяков в эмбриогенезе
Рис. 4 - Динамика показателей площади дистальных канальцев, просвета канальцев и эпителия в мезонефросе у сирийских хомяков в эмбриогенезе
Краниальная и каудальная генерации мезонеф-ронов различаются уровнем взаимодействия с ме-зонефральным протоком. Генерация краниальных мезонефронов взаимодействует с мезонефральным протоком, генерация каудальных мезонефронов не соединяется.
Морфогенез гомологов почечных телец в форме васкуло-прокситубулярных и мезенхо-прокси-тубулярных контактов во многом соответствует формированию нефростомы при развитии мочевых канальцев первичной почки у анамний.
Сосудистый гломерулярный компонент не формируется, мезонефроны проходят цикл морфогенеза целомодуктов, повторяя один из вариантов эволюционирования механизмов органотипиче-ской дифференцировки промежуточной мезодермы.
Вывод. В результате проведённого исследования установлено, что весь жизненный цикл первичной почки в эмбриогенезе у сирийского хомяка
соответствует этапам: I - закладка и начальная дифференцировка (13-16-я стадии); II - дифферен-цировка и структурно-функциональная активность канальцев (17-19-я стадии); III - инволютивные изменения (20-я стадия) (табл. 1). Мезонефральные канальцы являются структурно-функциональными единицами первичной почки - мезонефронами. В первичной почке сирийского хомяка (Mesocricetus auratus) формируются гомологи мезонефральных телец, представляющие собой, вероятно, один из филогенетических вариантов почечных телец. По нашему мнению, гомологом мезонефрально-го тельца являются васкуло-прокситубулярные и мезенхо-прокситубулярные контакты мезонефральных канальцев. Сосудистый компонент мезонеф-ронов представлен капиллярами, участвующими в формировании гомологов мезонефральных телец, а также формирующими перитубулярную капиллярную сеть, взаимодействующую по всей длине мезонефральных канальцев.
В целом мезонефроны первичной почки эмбрионов сирийского хомяка (МеъоспсеШъ аыгШт) характеризуются своеобразным строением, которое можно обозначить как мезонефроны метанеф-ридиального типа.
Литература
1. Соловьёв Г.С. Дивергентная теория эволюционирования тканей академика Н.Г. Хлопина и дивергенция органогенеза при формировании провизорных структур / Г. С. Соловьев,
B.Л. Янин, С.М. Пантелеев [и др.] // Вопросы морфологии XXI века. Выпуск 5. Сборник трудов: «Гистогенез, реактивность и регенерация тканей» / под ред. И.А. Одинцовой,
C.В. Костюкевича. СПб.: Издательство ДЕАН, 2018. С. 53-64.
2. Янин В.Л. Сравнительная структурная характеристика первичной почки у млекопитающих / В.Л. Янин, Г.С. Соловьев, С.А. Гольцман [и др.] // Актуальные вопросы современной фундаментальной и клинической медицины: матер. науч.-практич. конф., посвящ. 80-летию медицинского профессионального образования в ХМАО-Югре и 20-летию со дня основания Ханты-Мансийской государственной
медицинской академии // Научный медицинский вестник Югры. 2014. № 1-2 (5-6). С. 246-250.
3. Янин В.Л. Структурные особенности нефронов первичной почки грызунов / В.Л. Янин, С.А. Гольцман, Ю.В. Алексеева [и др.] // Морфология. 2014. Т. 145. № 3. С. 233.
4. Дыбан Л.П. Лабораторные млекопитающие: мышь Mus musculus, крыса Rattus norvegicus, кролик Oryctolagus cuniculus, хомячок Cricetus griseous / Л.П. Дыбан, В.Ф. Пучков, В.С. Баранов [и др.] // Объекты биологии развития. М.: Наука, 1975. С. 505-567.
5. Рекомендации комитетам по этике, проводящим экспертизу биомедицинских исследований. Женева, 2000.
6. Детлаф Т.А. Объекты биологии развития. М.: Наука, 1975. 571 с.
7. Саркисов Д.С., Перов Ю.Л. Руководство по гистологической технике. М.: Медицина, 1996. 242 с.
8. Семченко В.В. Гистологическая техника: учеб. пособие. 3-е изд., доп. и перераб. / В.В. Семченко, С.А. Барашкова, В.Н. Ноздрин [и др.]. Омск-Орел: Омская областная типография, 2006. 290 с.
9. Автандилов Г.Г. Медицинская морфометрия. Руководство. М.: Медицина, 1990. 384 с.
10. Гланц С. Медико-биологическая статистика. М.: Практика, 1999. 459 с.
Влияние сверхвысокочастотного излучения
низкой интенсивности на содержание
Т- и В-лимфоцитов в крови подопытных животных
В.Ю. Сафонова, д.б.н., профессор, ФГБОУ ВО Оренбургский ГПУ
Одной из актуальных задач современной ветеринарной медицины и биологии является изучение влияния различных факторов окружающей среды на животных, включая человека, находящихся в помещениях, которые, как правило, изолированы от внешней среды ферромагнитными материалами. Они способны изменять природные электромагнитные поля (ЭМП) и тем самым способствовать искажениям геомагнитного поля (ГМП). Таковыми материалами могут стать железобетонные строительные конструкции, включая стены, пол, перекрытия, различное оборудование, предназначенное для медико-биологических исследований. Проведённые ранее исследования показывают, что ослабление и искажение естественного геомагнитного поля (ГМП) отрицательно влияет на нервную и сердечно-сосудистую системы [1]. К группе таковых порой относят и приборы, излучающие СВЧ-волны (сверхвысокочастотные волны).
Приборы, излучающие СВЧ-волны, используются в медицинской и ветеринарной практике для локального прогрева тканей, они предназначены для СВЧ- или УВЧ-терапии. Электромагнитным излучениям (ЭМИ) приписывается и более широкий диапазон действий, включая их положительное влияние на некоторые параметры иммунной системы. Известно, что ЭМИ при определённых условиях оказывают отрицательное действие на млекопитающих и среду их обитания. Поэтому широкое использование таковых приборов в ветеринарной и медицинской практике вызывает интерес в плане их влияния на некоторые показатели гомеостаза
организма. На практике чаще всего используются приборы, излучающие СВЧ-волны с плотностью потока энергии менее или не превышающие 10 мВт/см2, создающие нагрев тканей менее 0,1°С. Есть сведения, что такое СВЧ-облучение с данным потоком энергии воздействует на работу нервной системы, в то числе на спинной и головной мозг [1]. По некоторым свидетельствам, указанное физическое воздействие с конкретными параметрами не вызывает изменений в морфологическом составе крови и в лейкоцитарной формуле [2], оно также не оказывает отрицательного влияния на процесс образования аутоиммунных реакций [3].
Наряду с этим интерес вызывает влияние СВЧ-облучения на такие факторы иммунитета, как Т- и В-лимфоциты. Роль Т- и В-лимфоцитов в организме имеет огромное значение, поскольку те и другие являются главными представителями иммунной системы. Основная роль Т-лимфоцитов связана с уничтожением паразитов, находящихся внутри клеток, а также с нейтрализацией клеток организма, заражённых вирусами. Основная роль В-лимфоцитов заключается в их способности синтезировать иммуноглобулины и обеспечивать пожизненный иммунитет к ряду инфекций. Они активно участвуют в приобретённом иммунитете после вакцинации. Т- и В-клетки, будучи иммунными клетками, при встрече со знакомым им уже возбудителем быстро его нейтрализуют. Такое действие зависит от качественного и количественного состава этих клеток в организме. При этом очень важно, чтобы их соотношение всегда находилось в физиологической норме. Доступная нам литература не располагает подобными сведениями, связанными с влиянием СВЧ-облучения
