CC BY
29
УДК 617.7-007.681-089.843-092.9: 546.7
СРАВНИТЕЛЬНАЯ МОРФО-ГИСТОХИМИЧЕСКАЯ А 74.09 07
ХАРАКТЕРИСТИКА ТКАНЕЙ ГЛАЗА ПРИ ИМПЛАНТАЦИИ МОНОЛИТНОГО И ПОРИСТОГО НИКЕЛИДА ТИТАНА В ЭКСПЕРИМЕНТЕ НА КРОЛИКАХ
© А. Н. Стеблюк1, Г. М. Могильная2
1 Краснодарский филиал ФГУ «МНТК «Микрохирургия глаза» имени академика С. Н. Фёдорова Минздравсоцразвития России»;
2 ГОУ ВПО «Кубанский государственный медицинский университет Росздрава»
ф Выполнено экспериментальное исследование на 12 кроликах (12 глаз) изучающее воздействие на ткани глаза монолитного имплантата из никелида титана (^N1) в различные сроки. Проведена сравнительная морфо-цитохимической оценка реакции тканей глаз кроликов на имплантацию пористого и монолитного ^N1 в отдалённые сроки наблюдения. Материал вводился в фиброзную капсулу глаза для оценки динамики биополимерных комплексов структурных компонентов глаза (роговицы, склеры и конъюнктивы). Выявлено, что несмотря на различные морфологические изменения в зоне имплантации пористого и монолитного ^М, однотипность метаболических процессов сохраняется.
ф Ключевые слова: имплантация; интраокулярно; монолитный; пористый; никелид титана.
ВВЕДЕНИЕ
Основной причиной инвалидности по зрению в нашей стране, как было показано в материалах прошедшего IX съезда офтальмологов России, в настоящее время является глаукома [3]. Наиболее остро стоит проблема хирургического лечения рефрактерной глаукомы, которая отличается особенно упорным течением офтальмогипертен-зии, когда медикаментозное и традиционное хирургическое лечение недостаточно эффективны. К этой категории относят первичную открытоу-гольную оперированную некомпенсированную глаукому (ПОУОНГ), травматическую, увеаль-ную, неоваскулярную, афакическую, глаукому псевдофакичных глаз, юношескую и некоторые другие формы врождённой и вторичной глаукомы. Существующие методы гипотензивных вмешательств, используемые при данных основных формах рефрактерной глаукомы, не могут полностью удовлетворить клиницистов. Например, общепринятые фистулизирующие операции имеют ограниченный срок действия, в среднем 1—4 года, из-за склонности к избыточному рубцеванию с облитерацией путей оттока внутриглазной жидкости (ВГЖ) в зоне оперативного вмешательства. А дренажные устройства, ориентированные на снижение избыточного рубцевания, недостаточно биосовместимы, что зачастую приводит к значительной реакции со стороны окружающих тканей,
Памяти профессора А. И. Ерёменко
дезинтеграции микродренажа, иногда к его проре-занию, и в большинстве случаев сводится к нивелированию гипотензивного эффекта от проведённой операции [5, 10].
Принимая во внимание уникальные физико-механические свойства металлических материалов на основе никелида титана (^№), их биохимическую и биомеханическую совместимость с тканями организма, открывается перспективная возможность их использования в существующей технологии дренажной хирургии рефрактерной глаукомы. Поэтому с целью повышения эффективности гипотензивных операций, мы сочли целесообразным провести экспериментальные исследования характера изменений, происходящих в тканях склеры, роговицы и конъюнктивы в ответ на введение материалов на основе никелида титана в различные сроки наблюдения. На начальном этапе нашей работы совместно со специалистами НИИ медицинских материалов и имплантатов с памятью формы Сибирского физико-технического института при ТГУ были определены наиболее физиологические параметры конструкции микродренажей адаптированные к анатомическим параметрам фиброзной капсулы глаза с учётом предъявленных материалу определённых медико-технических требований. Это касалось коэффициента пористости, проницаемости, распределения пор по размерам, в сочетании с заданными
физико-механическими свойствами: сверхэластичностью, прочностью, циклостойкостью и др. Новизна разработок подтверждена патентом Российской Федерации. По окончанию проведения экспериментально-технических исследований на глазах кроликов, изучены морфо-цитохимические особенности тканей глаза у экспериментальных животных, вызванные пребыванием пористой конструкции на основе никелида титана в различные сроки [1, 2, 7].
С учетом необходимости применения конструкций микродренажа на различных участках и структурах дренажной системы глаза человека в зависимости от формы и особенностей течения рефрактерной глаукомы, в круг дальнейших задач нашего исследования входит изучить морфо-цитохимические особенности тканей глаза у экспериментальных животных, вызванные пребыванием монолитной конструкции на основе ни-келида титана в различные сроки. И проведение сравнительной морфо-гистохимической оценки реакции тканей глаза кроликов на имплантацию пористого и монолитного никелида титана в отдалённые сроки наблюдения.
МЕТОДИКА ИССЛЕДОВАНИЯ
Экспериментально-биологические исследования проведены на 12 кроликах (12 глаз) породы «шиншилла» обоего пола в возрасте до 2 лет, средним весом 3,2 кг, в условиях имплантации монолитной конструкции на основе никелида титана с клинической оценкой и морфо-гистохимическим исследованием тканей склеры, роговицы и прилегающих тканей в различные сроки. Парные глаза вошли в контрольную группу (12 глаз). Сравнительная морфо-цитохимическая характеристика тканей глаза проведена с предыдущей группой экспериментальных животных, состоящая из 23 глаз кроликов с имплантацией пористой конструкции на основе никелида титана [2].
На экспериментальных глазах животных были выполнены основные этапы операции имплантации монолитного которая заключалась в следующем: проводилось расслоение склеры, роговицы; на заданной глубине интракорнеально, интрасклерально или субсклерально фиксировалось проволочное устройство диаметром 65—90 мкм или фольга с сечением 0,1 мм (100 мкм). Операция завершалась герметизацией операционной раны. Имплантацию проводили под общим обезболиванием (внутримышечно вводили 0,1 мл 0,005 % раствора фентанила + 10 мг 2 % раствора тиопентала натрия на 1 кг массы тела животного) с добавлением местной анестезии (инстилляции
1 % раствора дикаина). Использовался медицинский бинокулярный стереоскопический (МБС) микроскоп «ЛОМО» (Россия) оборудованный под операции на животных и микроинструментарий для экспериментальных глазных операций. В послеоперационном периоде с целью профилактики развития инфекции, в глаза всех животных инстиллировался раствор левомицетина 0,25 % по 1—2 капли 4 раза в сутки в течение первых 2 недель. Противовоспалительные лекарственные средства не применялись. Клиническая оценка состояния глаз прооперированных животных включает результаты динамического наблюдения на 1, 3, 7, 14, 21, 30, 90 сутки, 1 год после имплантации монолитной конструкции на основе никели-да титана методами наружного осмотра. Методы биомикроскопии по Шульпиной Н. Б. (1983) на щелевой лампе ЩЛ-56, тонометрии тонометром А. Н. Маклакова выполнялись после регистрации общего состояния глаз. Измерения внутриглазного давления (ВГД) проводили на 1, 3, 7, 14, 30 сутки, 1 год на фоне общего обездвиживания кроликов тиопенталом натрия (2 % раствор 5—10 мг на 1 кг массы животного внутримышечно) и местной анестезии дикаином (1 % раствор эпибульбарно). Тиопентал натрия для обездвиживания кроликов был выбран из-за характерной особенности, позволяющей беспрепятственно проводить исследования у данных животных. В момент наступления глубокого сна глазные яблоки устанавливаются в центре орбиты (роговица в центре глазной щели). Ультразвуковое исследование проводились на аппарате ЭОС-22 после измерения ВГД (Россия) для изучения состояния внутренних оболочек глаза, с целью исключения цилиохориоидальной отслойки в послеоперационном периоде. Проведённые операции имели непроникающий характер, что снижает риск появления отслойки сосудистой оболочки. Наши исследования патологии состояния внутренних оболочек глаза за период наблюдения не выявили.
В сроки 7, 30, 45, 90 суток и 1 года после операции по 2 экспериментальных животных выводились из эксперимента воздушной эмболией, производили энуклеацию глаза, фиксировали при помощи разработанной методики заливки глаза в целлоидин-парафине. Энуклеация и забор материала производили у всех животных. Удаление имплантатов из тканей глазного яблока производили при получении срезов. Окрашено и изучено 280 срезов. Контрольные срезы и срезы участка глаза в зоне имплантата для изучения морфологами были окрашены гематоксилином-эозином и по Ван-Гизону. Гистохимическое изучение биополи-
меров, формирующие основу микроструктур склеры, роговицы и конъюнктивы, проводили в препаратах, окрашенных различными методами. Так, для выявления углеводсодержащих биополимеров, были использованы окраски по методу ШИК [6], с контрольной обработкой срезов диастазой, альци-ановым синим при рН 2,7 [4]. Для выявления сиа-логликопротеинов использовали окраску основным коричневым при рН 1,0 [8]. Индентификацию выявленных веществ, например индентификацию сульфогликопротеанов, проводили по схеме предложенной М. Г. Шубич, Г. М. Могильной. Для обнаружения катионного белка использовали окраску бромфеноловым синим (БФС) при рН 8,2. Для обнаружения аминокислотных остатков лизина и гистидина использовали окраску пропионом при рН 5,6 с дезаминированием [9]. Результаты проведённых исследований обработаны статистически на ЭВМ-586 с помощью стандартных компьютерных программ.
РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЯ
Гистохимическое изучение биополимерных комплексов структурных компонентов глаза (роговицы, склеры и конъюнктивы) на контрольных глазах животных показало, что в зоне роговицы эпителиальная выстилка содержит значительные количества суммарного и катионного белка. Наличие последнего подтверждается присутствием в этих структурах аминокислотных остатков лизина и гистидина. Собственное вещество роговицы обнаруживает присутствие высоких концентраций нейтральных гликопротеинов, умеренные концентрации гликозаминогликанов и низкие — сиалогликопротеинов. Коллагеновые волокна и аморфный матрикс склеры и конъюнктивы содержат значительные количества суммарного белка. Катионные белки выявляются в умеренных количествах, а основные аминокислотные остатки в виде следов. Среди группы углеводсодержащих биополимеров в веществе склеры и конъюнктивы обнаружены нейтральные гликопротеины и следы сиаломуцинов в составе вещества конъюнктивы.
Морфологическое и гистохимическое изучение тканей глаза в зонах введения имплантата на глазах экспериментальных животных показало, что на 7-е сутки после введения монолитного происходит выраженное утолщение роговицы и склеры (1163 мкм), вероятно, за счет отёка, о чем свидетельствует и эффект гомогенизации коллагеновых волокон и утрата ими способности окрашиваться эозином. В зоне канала происходит формирование грануляционной ткани с отчетливо дифференцирующимися элементами лимфоидно-
макрофагального типа. В зоне вокруг участка некроза с очагами кровоизлияния и явлениями гемолиза чётко видны участки прорастания соединительной ткани с большим количеством нейтро-филов. В отдельных случаях отмечается реакция и эпителия конъюнктивы на имплантат. Она обычно проявляется увеличением числа рядов эпителиальных клеток и набуханием части из них. В целом эти изменения свидетельствуют о развитии умеренной по темпам воспалительной реакции с переходом её в стадию формирования грануляционной ткани. Изучение динамики биополимеров в эти сроки свидетельствует о нарушении метаболических процессов, приводящих к снижению уровня содержания в волокнистых компонентах роговицы, склеры и конъюнктивы нейтральных гликопротеинов, с сохранением уровня содержания гликозаминогликанов и протеогликанов, а также, даже некоторую тенденцию к увеличению их содержания в зоне вокруг имплантата. В то же время уровень содержания катионного белка в зоне вокруг имплантата резко падает или даже исчезает, и эта неокрашенная зона резко контрастирует с участками склеры, сохранившими высокий уровень его содержания. Факт снижения содержания катионного белка находит подтверждение и при выявлении основных аминокислотных остатков, уровень содержания которых также снижается.
Наблюдения за судьбой имплантата спустя один месяц после его введения, показывают наличие формирующейся вокруг него капсулы. Об этом свидетельствуют располагающиеся в этой зоне участки грануляционной ткани с элементами фибробластического ряда и, даже, с вновь образованными группами коллагеновых волокон. Формирование капсулы происходит неравномерно. На участке противоположной зоны с грануляционной тканью, видны очаги уже формирующейся соединительной ткани с тонкими коллагеновыми фибриллами, окрашивающиеся в красный цвет при реакции по Ван-Гизон. Отмечается сохранение грануляционной ткани с большим числом проросших кровеносных сосудов вокруг имплантата. К этому сроку метаболические процессы, связанные с динамикой углеводсодержащих биополимеров и катионного белка не восстанавливаются к исходному уровню и коллагеновые фибриллы, за исключением вновь образующихся не обнаруживают присутствия катионного белка. На 45-е сутки после введения имплантата в зоне вокруг него сохраняется отёк, в конъюнктиве происходит разрастание эпителиального пласта с явлениями лимфоид-ной инфильтрации. Коллагеновые волокна скле-
ры утрачивают упорядоченный ход, набухают. Однако изучение распределения биополимеров на участке склеры с имплантатом указывает на восстановление уровня содержания катионного белка, тогда как в зоне сформированной грануляционной ткани уровень содержания катионного белка остается низкий. Характерным для участка склеры с имплантатом является достаточно высокое содержание альцианофильных веществ. При этом коллагеновые фибриллы остаются неокрашенными или обнаруживают присутствие низких концентраций альцианофильных продуктов. Не исключено, что эти различия в окраске являются результатом отсутствия типичных коллагеновых волокон, с присущим этим структурам гликопро-теинов и гликозаминогликанов в межклеточном веществе. Для участков грануляционной ткани в эти сроки характерен лишь процесс фибриллоге-неза до уровня формирования коллагеновых фибрилл, причём волокна ещё (или вообще) не образуются.
Через 3 месяца после введения имплантата, отмечается наличие капсулы из рыхлой соединительной ткани с тонкими коллагеновыми фибриллами. Эта зона, пришедшая в соприкосновение с элементами мышечной ткани, расположенными кнаружи от склеры привела к их разрастанию и врастанию в ткань склеры. Волокна разъединены достаточно широкими прослойками соединительной ткани. Изучение динамики биополимеров в эти сроки показывает, что уровень содержания нейтральных гликопротеинов в веществе склеры начинает восстанавливаться. Это относится и к катионному белку, уровень содержания которого достигает умеренных количеств в составе колла-геновых волокон склеры, но эти белки не выявляются в волокнах сформированной рыхлой соединительной ткани.
К концу 3-го месяца, при интрасклеральном введении имплантата, соединительнотканная капсула вокруг него отсутствует. Имплантат окружен волокнами склеры, утратившими фибриллярный характер строения в зоне, прилежащей к каналу. Коллагеновые фибриллы содержат небольшие количества нейтральных гликопротеинов и протео-гликанов. Различия в характере строения стенки канала, окружающего имплантат, при его суб-и интрасклеральном введении могут быть объяснены и различием имплантируемых материалов, в одном случае монолитный материал, в другом — пористый.
На 90-е сутки введения пористого имплантата капсулы вокруг него нет. Скорее всего, это зона «раздражения», поскольку коллагеновые волокна
здесь отсутствуют, а видны в основном коллаге-новые фибриллы. На отдельных участках склеры встречается масса наполненных кровью сосудов, видны участки лимфоидной инфильтрации. Изучение распределения биополимеров показало падение концентрации углеводсодержащих биополимеров и сохранение уровня белоксодержащих биополимеров.
При изучении склеры спустя один год после имплантации показало наличие в ней регионарных зон инфильтрации преимущественно лимфоцитарно-гранулоцитарного типа. Вместе с тем на отдельных участках выявляется инфильтрат лимфоцитарно-плазмоцитарного характера. В этих участках плазматические клетки видны в большом количестве, среди них встречаются клетки различной степени зрелости. Появление клеток этого типа может быть истолковано как результат формирования макромолекулярного комплекса «металл-протеин», что в последующем и приводит к накоплению значительного количества избирательно локализованных плазматических клеток. Однако, предполагаемый иммунологически опосредованный тип реакции ткани, должен быть подтвержден изучением и регионарных лимфатических узлов. Обращает на себя внимание пролонгированность этой иммунной реакции, поскольку в предыдущие сроки наблюдения (90 дней) плазматические клетки не выявлялись. Не исключено, что появление этого лимфоцитарно-плазмоцитарного инфильтрата связано с аутоиммунной реакцией. Наличие лимфоцитарно-плазмоцитарного инфильтрата наблюдалось на ограниченном участке склеры (при изучении 140 серийных срезов он выявлялся отчетливо, начиная с 100). Полученные данные о морфологических изменениях в склере целесообразно сопоставить с данными о распределении в ней биополимеров. Так, при реакции на суммарный белок в коллагеновых волокнах обнаруживаются его высокие концентрации. За исключением зоны канала с имплантатом склера сохраняет в общих чертах характер распределения и уровень содержания углеводсодержащих биополимеров и протеогликанов.
ОБСУЖДЕНИЕ
Результаты введения имплантатов на основе в эксперименте показали, что характер имплантируемого материала определяет комплекс морфологическох изменений, захватывающий ткани фиброзной капсулы глаза. Так, в зоне имплантации монолитного материала, а в качестве такого мы использовали фольгу и проволочный элемент, выявлялся канал, который при окрашивании тканей глаза гематоксилином-эозином выглядел, как
участок в виде отверстия с развёрнутыми тканями, независимо от зоны имплантации — в роговицу или в склеру. Данный материал сравнительно легко удалялся. При таком же введении пористого материала изменения носили разнообразный характер, что определялось сроком пребывания имплантата в ткани. Несмотря на различие морфологических изменений пористого и монолитного обнаруженных в участке имплантации, прослеживалась однотипность метаболических процессов. Нам удалось сохранить имплантат и в виде проволочного элемента, фольги и в виде пористого материала в зоне склеры, и роговицы в течение 90 суток, что позволило сопоставить полученные результаты (рис. 1, 2).
При окраске гематоксилином-эозином отчетливо видна зона ранее занятая монолитным имплан-татом. По одному из краев канала коллагеновые волокна утратили ориентированное направление и располагаются в виде отдельных фрагментов ещё не сформированных в волокна. С другой сто-
Рис. 1. Экспериментальное животное. 90-й день после введения пористого имплантата. Субсклеральная имплантация. Окраска гематоксилином-эозином. Об. 5. ок. 10
роны канала коллагеновые волокна располагаются упорядоченно, сохраняя и характер окраски, и морфологию самих волокон.
При реакции по Ван-Гизон основное вещество склеры окрашено интенсивно, направление кол-лагеновых волокон сохранено и в целом зона локализации имплантата, то есть границы канала видны отчетливо и окрашены так же, как и рядом расположенная интактная склера. При окрашивании по методу ШИК собственное вещество роговицы и склеры окрашиваются слабо. Отмечается различная степень реакции в пределе собственного вещества. Так коллагеновые волокна, обращенные к внутренней поверхности передней камеры глаза, окрашиваются интенсивнее, чем прилегающие к эпителию (в случае участков роговицы) или конъюнктиве (в случае склеры). Стенки канала окружены коллагеновыми волокнами с низким уровнем окраски по методу ШИК, что может быть расценено и как низкий уровень содержания углеводов.
Рис. 2. Экспериментальное животное. 90-й день после введения монолитного имплантата. Интрасклеральная имплантация. Окраска гематоксилином-эозином. Об. 5. ок. 10
При окрашивании альциановым синим с рН 2,7, собственное вещество склеры окрашивается очень слабо, и различия волокон в зависимости от зоны локализации здесь отсутствуют. Стенки канала остаются также не окрашенными, что указывает на отсутствие кислых гликопротеинов в упомянутых микроструктурах. Альциановый синий при рН 1,0 окрашивает кол-лагеновые волокна собственного вещества склеры в два раза интенсивнее, чем альциановый синий при рН 2,7. При этом интенсивность окраски коллагеновых волокон даже в зоне канала сохранена.
Основной коричневый при рН 1,0 окрашивает собственное вещество склеры очень слабо, а в отдельных местах окраска отсутствует совсем. На окрашенных участках коллагеновые волокна обнаруживают слабую диффузную окраску, также слабо окрашивается и аморфное вещество. Бром-феноловый синий при рН 8,2 очень слабо окрашивает коллагеновые волокна склеры, при этом в распределении цветного продукта реакции прослеживается определённая закономерность, при которой волокна расположенные кнаружи окрашиваются несколько интенсивнее, чем волокна, расположенные на внутренней, обращённой к сосудистой оболочке поверхности.
Процион 2 БС при рН 5,6 окрашивает в срезах глаза с имплантированной фольгой коллагеновые волокна склеры и роговицы очень интенсивно. Здесь особенно отчетливо видно, что вокруг зоны канала с имплантатом эти волокна утратили ориентированное направление и имеют вид коротких волокон, окружённых зоной аморфного вещества на отдельных участках склеры видны кровенапол-ненные сосуды.
После дезаминирования интенсивность окраски проционом снижается, что указывает на присутствие в описанных микроструктурах аминокислотных остатков лизина и гистидина. При обнаружении суммарного белка отмечается интенсивная окраска коллагеновых волокон, окружающих зону канала, кнаружи от него видны участки грануляционной ткани с тонкими колла-геновыми фибриллами, окрашивающимися слабо или умеренно и с большим количеством кровеносных сосудов, стенки которых окрашиваются интенсивно. Результаты окраски этими же красителями и в те же сроки, но в условиях имплантации пористого материала свидетельствует о менее выраженных изменениях со стороны склеры.
ЗАКЛЮЧЕНИЕ
Полученные данные указывают на наличие реакции ткани на имплантат. Первые 7 суток после введения имплантата на основе никелида титана
(^№) сопровождаются падением уровня содержания катионного белка и нейтральных гликопротеи-нов в собственном веществе роговицы и в склере, в то же время содержание протеогликанов нарастает, особенно в зоне вокруг имплантата. Наиболее активный процесс фибриллогенеза с врастанием волокон в зону имплантации происходит на 45 сутки после операции, в эти сроки происходит восстановление и уровня содержания катионного белка, содержание протеогликанов в аморфном матриксе склеры в зоне имплантата остаётся высоким. В отдаленные сроки наблюдения (3 месяца и 1 год) после введения имплантата происходит восстановление цитохимических свойств склеры и роговицы. Однако, отдельные участки склеры остаются инфильтрированы большим количеством плазматических клеток, что, вероятно, связано с развитием местной иммунологической реакции на макромо-лекулярный комплекс металл-протеин. Изучение результатов имплантации монолитного и пористого материала на основе никелида титана в фиброзную капсулу глаза показывает, что имеются различные морфологические изменения в зоне имплантации, но однотипность метаболических процессов сохраняется. Это позволяет использовать в дренажной хирургии основных форм рефрактерной глаукомы не только пористый, но и монолитный никелид титана для сохранения дренажной, опорной функции патологически изменённых тканей и решения задачи фиксации тканей.
СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ
1. Еременко А. И., Гюнтер В. Э, Стеблюк А. Н. Способ микродренирования при лечении глаукомы (варианты) // Патент Российской Федерации № 20022108965 от 20 сентября 2004 г., с приоритетом от 8 апреля 2002 г. Бюл. № 33.
2. Еременко А. И. Могильная Г. М. Сахнов С. Н. и др. Современные возможности в диагностике и лечении витреоретинальной патологии // Сборник научных трудов. — 2004. — С. 121125.
3. Либман Е. С., Калеева Э. В. Состояние и динамика инвалидности вследствие нарушения зрения в России // IX съезд офтальмологов России. Тезисы докладов. — М., 2010. — С. 73.
4. Лилли Р. Патологическая техника и практическая гистохимия. — М.: Мир, 1969. — С. 637.
5. Паштаев Н. П., Горбунова Н. Ю. Офтальмология стран Причерноморья // IV Международная научная конференция «BSOS-IV». — Анапа, 2006. — С. 278-282.
6. Пирс Э. Гистохимия теоретическая и прикладная. — М.: Иностр. лит., 1962. — 962 с.
7. Радкевич А. А., Горбунов Н. А., Ходоренко В. Н. и др. Репара-тивный десмогенез в соединительнотканных дефектах после замещения тканевыми имплантатами из никелида
титана // Имплантаты с памятью формы. — Томск, 2008. — № 1-2. — С. 21-25.
8. Шубич М. Г. Методика гистохимического обнаружения кератина с помощью кислого раствора основного коричневого // Арх. анат., гистол. и эмбриол. — 1963. — Т. 44, № 6. — С. 114-116.
9. Шубич М. Г, Могильная Г М. Значение ШИК-метода в гистохимическом анализе углеводных и углеводсодержащих биополимеров // Арх. анат., гистол. и эмбриол. — 1982. — № 5. — С. 90-98.
10. Megevand G. S, Hengstler J. Ultrasound biomicroscopy finding after viscocanalostomy // Proceedings of the First International Congress on Non-penetrating Glaucoma Surgery: Abstract Book. — 2001. — P. 21.
11. Mermoud A, Schryder C. C, Sickenberg M, Chiou A. G. Y, Hediguer S. E. A., Foggioni R. Comparison of deep sclerectomy with collagen implant and trabeculectomy in open-angle glaucoma // J. Cataract. Refract. Surg. — 1999. — Vol. 25, N. 3. — P. 323-330.
COMPARATIVE MORPHO-HYSTOCHEMICAL ANALYSIS OF EYE TISSUES AT IMPLANTATION OF MONOLITHIC AND POROUS TITANIUM NICKELIDE IN EXPERIMENTS ON RABBITS
Steblyuk A. N, Mogilnaya G. M.
G Summary. An experimental study was carried out on 12 rabbits (12 eyes) to investigate the influence of monolithic titanium nickelide (TiNi) implant on eye tissues at different time points. A comparative morpho-cytochemical analysis of rabbit's eye tissues reaction on the implantation of porous and monolithic TiNi at long-term follow-up. The material was introduced into the fibrous eye capsule to estimate the dynamics of ocular structure components biopolymer complexes (cornea, sclera, and conjunctiva). It was revealed that in spite there were different morphological changes in the area of porous and monolithic TiNi implantation, the uniformity of metabolic processes is retained.
G Key words: implantation; intraocular; monolithic; porous; titanium nickelide.
Сведения об авторах:_
Стеблюк Алексей Николаевич — к. м. н., врач-офтальмолог. Кф ФГБУ МНТК «Микрохирургия глаза» имени академика С. Н. Федорова Минздравсоцразвития России. 350012, г. Краснодар, ул. Кр. партизан, д. 6. E-mail: okocenter@mail.cuban.ru
Могильная Галина Михайловна — д. м. н., профессор, заведующая кафедрой гистологии. Краснодарский государственный медицинский университет. 350036, г. Краснодар, ул. Седина, д. 4. E-mail: okocenter@mail.cuban.ru
Steblyuk Aleksey Nikolayevich — MD, PhD. Krasnodar Branch of the Federal State Institution of the Intersectoral Research and Technology Complex «Eye Microsurgery». Russia, 350012, Krasnodar, Krasnikh partizan st., 6. E-mail: okocenter@mail.cuban.ru
Mogilnaya Galina Mikhaylovna — PhD, professor, head of department. Department of histology, Krasnodar State Medical University. Russia. 350036, Krasnodar, Sedina st., 4. E-mail: okocenter@mail.cuban.ru
