CC BY
16
При образовании 2-4 нижних ярусов бобов этот показатель недостоверно (Р < 0,95) увеличился и был следующим: горох -42,2 г/кг; пелюшка - 34,5 г/кг; вика - 40,3 г/кг.
- При созревании семян этих растений содержание СП возрастает у всех культур: горох - 53,0 г/кг; пелюшка - 38,2 г/кг; вика - 44,8 г/кг, при достоверной разнице (Р >
0,95) в сравнении с началом цветения.
В зеленой массе кукурузы в фазе образования початков количество СП составляло 16,7 г/кг, при молочной и восковой спелости зерна - 18,2 и 18,7 г/кг соответственно, то есть изменения незначительны.
В яровом рапсе в начале цветения содержание СП было на уровне 36,6 г/кг, при полном цветении растений оно повысилось до 38,5 г/кг, разница недостоверна (Р < 0,95).
Проведенные многолетние исследования позволяют сделать следующие выводы.
1. Учитывая содержание СП, злаковые культуры необходимо использовать в кормлении животных в виде зеленой массы и для производства сена, силоса, сенажа и травяной муки в фазе начала колошения злаков, а многолетние бобовые травы — в фазе полной бутонизации растений.
2. Зернобобовые культуры (горох, вика и пелюшка), используемые на зеленый корм, а также для заготовки сенажа, силоса, сена и травяной муки, лучше скашивать в фазу созревания семян.
3. В зеленой массе кукурузы и рапса изменения содержания СП по фазам развития растений незначительны
Библиографический список
1. Лебедев А.Т., Усович П.Т. Методы исследования кормов, органов и тканей животных. - М.: Россельхозиздат, 1976. - С. 164-170.
2. Определение в кормах протеина: Гост 13496.4-84.
3. Петухова Е.А. и др. Зоотехнический анализ кормов. - М.: Колос, 1981. - С. 95-99.
3 ТКСОа*
СПОСОБ ВЗЯТИЯ ЦЕЛЬНОЙ крови БЕЗ ДОСТУПА ВОЗДУХА И УСТРОЙСТВО ЕГО ОСУЩЕСТВЛЕНИЯ
А.В. Требухов *
В настоящие время применение современных приборов для определения кислотно-щелочного состояния крови ограничено трудоемкостью получения и транспортировки цельной крови, взятой без доступа воздуха в лабораторию. Поэтому данные приборы используются лишь ограниченно в специально оборудованных для этих целей клинических лабораториях, в которых для получения крови без контакта ее с кислородом воздуха используется инъекционные шприцы и иглы, после чего кровь сразу подвергается анализу.
Таким образом, указанный способ эффективен при индивидуальном, стационарном исследовании животных. В условиях производства, при необходимости исследования крови больших групп животных не только ка кислотно-щелочное состояние, но и на другие морфологические и биохимические показатели, он стано-
вится неудобным по ряду причин, а именно:
1. Инъекционная игла имеет меньший диаметр, чем кровопускательная, что увеличивает время забора крови и вероятность образования тромба в ней, а следовательно, вызывает необходимость неоднократного введения иглы.
2. Создается чрезмерная стрессовая ситуация для животного.
3. Процесс извлечения или введения шприца в иглу (в зависимости от очередности забора крови в пробирки и шприц) вызывает беспокойство животного.
4. Требуются специальные навыки и определенный опыт оператора.
Предлагаемое нами устройство состоит из кровопускательной иглы (1), резиновой трубочки длиной 20 мм с внешним и внутренним диаметром 7 и 4 мм соответственно (2) и одноразового шприца на 2 см3 (3) с колпачком и иглой (4).
3 1
Рис. 1. Устройство для забора цельной крови „,;,ч ^ без доступа воздуха в сборе
После предварительной стерилизации резиновую трубочку надевают на канюлю иглы, после чего оператор производит забор крови «обычным» способом (для морфологического, биохимического и др. видов исследования), наполняя необходимое количество пробирок.
Для получения крови без доступа кислорода оператор захватывает пальцами левой руки резиновую трубочку, а правой берет заранее подготовленный стерильный шприц (стенки шприца необходимо смочить гепарином - последовательно сначала набрав, а затем выдавив 2 см3 раствора гепарина (20000 ЕД), но так, чтобы канюля шприца осталась наполненной раствором), и вводит его канюлю в резиновую трубочку. После этого, не изменяя положения шприца, перехватывает его левой рукой, а правой оттягивает поршень и набирает кровь до уровня 2 см3. По завершении этой манипуляции оператор извлекает иглу, снимает резиновую трубочку с канюли шприца, который быстро закрывает собственным колпачком с иглой.
Для достоверного определения кислот-но-щелочного состояния крови, перед введением образца крови в прибор, первую каплю крови из шприца необходимо аккуратно выдавить и удалить ватным тампоном.
Описанное выше устройство и способ забора крови позволяют:
1. Применять его непосредственно на ферме и доставлять материал в лабораторию в течение часа.
2. Последовательно производить забор крови «традиционным» способом (в пробирки) и без доступа кислорода воздуха, с помощью одной пункции.
3. Наличие резинового переходника между иглой и шприцем компенсирует ненужные движения иглы в вене во время присоединения, отсоединения и забора крови при помощи шприца.
Данный способ исключает:
1. Воздействие воздуха на пробу крови.
2. Многократную пункцию вены (артерии).
3. Отсутствие специальных навыков.
4. Вызов чрезмерного стресса животного.
СЕЗОННЫЕ ИЗМЕНЕНИЯ БИОХИМИЧЕСКОГО СТАТУСА У КОРОВ ПРИ СУБКЛИНИЧЕСКОМ КЕТОЗЕ
А,В. Требухов
В современных условиях интенсивного животноводства все чаще на первый план выступают болезни обмена веществ, среди которых кетоз молочных коров занимает особое место. По разным данным кетоз как в клинической, так и в субклинической форме поражает от 12 до 80% всего поголовья высокопродуктивных коров старших возрастных групп [1, 2]. В этой связи нами была поставлена цель - изучить распро-
странение и особенности проявления суб-клинического кетоза у коров в хозяйствах пригородной зоны г. Барнаула.
Материалы и методы. Исследования проводились в учхозе «Пригородное» АГАУ г. Барнаула в зимне-весенний период. Было исследовано 14 коров-аналогов черно-пестрой породы в возрасте 5-7 лет, которые были разделены на 2 группы: 1-я группа (опытная) - больные субклиниче-
3 4
Рис. 2. Шприц с колпачком
