CC BY
10
МАТЕРИАЛЫ V НАЦИОНАЛЬНОГО КОНГРЕССА ПО РЕГЕНЕРАТИВНОЙ МЕДИЦИНЕ
85
методике [3]. Суспензию клеток пассировали в 96-лу-ночном планшете (5х105 кл/см2), культивировали до образования монослоя, после чего подвергали воздействию лазера с помощью аппарата «Лазмик-Влок» [4] с излучающей лазерной головкой (635 нм) в дозе от 0,02 до 4,0 Дж и наносили повреждение механическим способом. С использованием микроскопии осуществляли подсчет клеток и оценивали площадь поврежденного монослоя через 0, 24 и 48 ч после облучения.
Установлена зависимость динамики восстановления монослоя от параметров НИЛИ. Показано ингиби-рующее влияние высоких доз (4 Дж) НИЛИ красного спектра на восстановление монослоя через 24 и 48 ч. При дозах облучения 0,02-3,0 Дж красным лазером через 24 ч не было выявлено значимого изменения площади повреждения; через 48 ч отмечено значительное уменьшение площади повреждения (>50%) для доз 1,0-2,0 Дж по сравнению с контролем. Таким образом, показана эффективность и установлены диапазоны доз для применения НИЛИ с целью воздействия на пролифе-ративную активность клеток СВФ ЖТ, предназначенных для последующего клинического применения.
Литература:
1. Kostnomina E., Eremin P.S., Kudryashova I.S. et. al. Bul. Rehab. Med. 2022. V. 21. P. 202-211.
2. Осипов А.Н., Владимиров Ю.А. Молекулярные, мембранные и клеточные основы функционирования биосистем: Сб. науч. трудов. Минск: БГУ. 2018. С. 5.
3. Гильмутдинова И.Р., Костромина Е.Ю., Веремеев А.В. и др. Гены и Клетки. 2021. Т. 16. № 3. С. 80-85.
4. С.В. Москвин, Т.В. Кончугова, А.А. Хадарцев. Вопр. курортол. физиотер. леч. физ. культ. 2017. Т. 94. С. 10-17.
СОЗДАНИЕ МИКРОИНКАПСУЛИРУЮЩЕЙ ТЕХНОЛОГИИ ДЛЯ ЗАЩИТЫ ЭНДОКРИННЫХ КЛЕТОК ПОДЖЕЛУДОЧНОЙ ЖЕЛЕЗЫ ПРИ ТРАНСПЛАНТАЦИИ
П.С. Ермакова1, А.Ю. Богомолова1, Наралиев Н.У.1, Д.М. Кучин1, 2, Е.А. Васильчикова1, М.А. Батенькин3, С.А. Чесноков3, В.Е. Загайнов1, 4, Е.В. Загайнова1 5, А.В. Кашина1
1 Приволжский исследовательский медицинский университет, Нижний Новгород, Россия
2 ГБУЗ НО НОКБ им. НА. Семашко, Нижний Новгород, Россия
3 Институт металлоорганической химии
им. ГА. Разуваева, Нижний Новгород, Россия
4 ГБУЗ НО Нижегородский областной клинический онкологический диспансер, Нижний Новгород, Россия
5 Университет им. Лобачевского, Нижний Новгород, Россия
e-mail: bandina-polina@mail.nu
Ключевые слова: островок Лангерганса, инкапсуляция, микрокапсулы, альгинат, PMOTA.
Инкапсуляция островков Лангерганса (ОЛ) поджелудочной железы (ПЖ) является одним из перспективных решений для защиты ОЛ при лечении диабета первого типа. Микроинкапсулирующая система представляет собой биосовместимую матрицу, проницаемую для питательных веществ и инсулина и не проницаемую для компонентов иммунной системы. До сих пор не создано идеальной капсулы, соответствующей требованиям ци-тотоксичности, биосовместимости и проницаемости.
В данном исследовании была создана и протестирована новая инкапсулирующая система для островков Лангерганса на основе альгината и полимера (поли-[2-(метакрилоилокси)этил]триметиламмонийхлоридом (PMOTA)).
Синтез капсул производился микрофлюидным методом. Для инкапсуляции использовали ОЛ экспериментальных животных. ОЛ выделяли согласно стандартным методикам с собственными модификациями. Проницаемость капсул оценивалась путем инкубирования инкапсулированных ОЛ с FITC-мечеными лектинами различных молекулярных масс. Для анализа цитотоксичности микрокапсулы определяли жизнеспособность клеток до и после инкапсуляции с использованием окрашивания Live/Dead. Для оценки биосовместимости и скорости биодеградации микрокапсулы трансплантировали в ткани сальника крыс. Через 7 дней, оценивали количество вымытых капсул, их целостность, степень адгезии клеток и фиброзирова-ния. Оставшиеся в тканях капсулы исследовали с использованием гистологического анализа.
Выявлено, что капсулы проницаемы для низкомолекулярных лектинов (36 и 75 кДа) и не проницаемы для высокомолекулярных лектинов (120 и 150 кДа), что позволяет инсулину проникать через мембрану и ограничивает антитела. Жизнеспособность ОЛ после инкапсуляции составила более 70 %. Целостность микрокапсул на основе альгината и РМОТА после вымывания составила более 80 %. Кроме того, большая часть вымытых капсул не была покрыта окружающими тканями, а гистологический анализ выявил незначительную иммунную реакцию и отсутствие фиброза вокруг капсул. Разработанная методика инкапсуляции островков Лангерганса и полученные данные могут быть использованы как основа для дальнейшей разработки технологии иммуноизолирующей микрокапсулы для лечения диабета первого типа. Работа выполнена при поддержке Министерства здравоохранения РФ (государственное задание № АААА-А20-120022590096-6).
МЕЗЕНХИМАЛЬНЫЕ СТРОМАЛЬНЫЕ КЛЕТКИ ЖИРОВОЙ ТКАНИ В ТЕРАПИИ ПАЦИЕНТОВ С ЦИРРОЗОМ ПЕЧЕНИ РАЗЛИЧНОЙ ЭТИОЛОГИИ
Е.Д. Жекибаев, О.И. Желтова, И.В. Меледина, Е.Я. Шевеля, Е.Р. Черных
ФГБНУ НИИ фундаментальной и клинической иммунологии, Новосибирск, Россия
e-mail: evgeniy.zhekibaev@bk.ru
Ключевые слова: цирроз печени, стромально-васкулярная фракция, мезенхимальные стромальные клетки.
На сегодняшний день трансплантация печени является единственным радикальным методом лечения пациентов с циррозом печени. Однако, данный метод имеет свои недостатки (длительное ожидание донора, продолжительная иммуносупрессивная терапия, высокая стоимость). Данные обстоятельства побуждают искать альтернативные методы лечения таких пациентов. В частности, метод использования клеточных технологий представляет большой интерес в связи со способностью мезенхимальных стормальных клеток выполнять функцию микроокружения для кроветворных стволовых клеток, дифференцироваться в гепато-цитоподобные клетки, оказывать стимулирующий эффект на регенерацию гепатоцитов и, оказывая супрессорную активность воспалительного процесса, препятствовать
Гены & Клетки XVII, №3, 2022
