CC BY
120
Инфекция и иммунитет 2012, Т. 2, № 4, с. 729-734
Оригинальные статьи
СОВРЕМЕННЫЕ ПОДХОДЫ К КОМПЛЕКСНЫМ ЛАБОРАТОРНЫМ ИССЛЕДОВАНИЯМ НА ДИФТЕРИЮ
Л.А. Краева1, Е.А. Алексеева2, Г.Я. Ценева1, Л.А. Липатова3, Г.И. Беспалова4
1ФБУН НИИ эпидемиологии и микробиологии имени Пастера, Санкт-Петербург
2 ФГУЗ Центр гигиены и эпидемиологии в Вологодской области, г. Вологда
3 ФГУЗ Центр гигиены и эпидемиологии в Ленинградской области, Санкт-Петербург
4ГБОУВПО Северо-Западный государственный медицинский университет им. И.И. Мечникова Минздравсоцразвития России, Санкт-Петербург
Резюме. Установлены критерии достоверной оценки защищенности населения от дифтерии на основании двух показателей: количества суммарных антитоксических противодифтерийных антител и индекса авидности. Для этого предложено использовать модифицированный вариант иммуноферментного анализа с одновременным определением двух показателей. Выведены формулы расчета вероятности заболевания дифтерией в случае контакта с больным или носителем Corynebacterium diphtheriae и определения срока последующей ревакцинации. Разработаны «Алгоритм контроля иммунитета населения и оценки невосприимчивости к дифтерии» и «Алгоритм микробиологического исследования клинического материала на поиск C. diphtheriae».
Ключевые слова: дифтерия, поствакцинальный иммунитет, токсигенные штаммы.
MODERN APPROACHES IN COMPLEX LABORATORY TESTING FOR DIPHTHERIA
Kraeva L.A., Alekseeva E.A., Tseneva G.Y., Lipatova L.A., Bespalova G.I.
Abstract. The criteria of reliable validation of population protection against diphtheria on the base of two indices including quantity of antitoxic antibodies to diphtheria and avidity index have been established. For this purposes it was proposed to use the modified variant of ELISA allowed to detect both indices simultaneously. The formula of probable development of diphtheria in case of the close contact with patients or Corynebacterium diphtheriae bacteria carriers as well as determination of revaccination time have been proposed. The authors developed "The algorithm of population immunity control and assessment of non-susceptibility to diphtheria" and "The algorithm of microbiological testing of clinical samples for C. diphtheriae". (Infekc. immun., 2012, vol. 2, N4, p. 729—734)
Key words: diphtheria, post vaccination immunity, toxigenic strains.
Введение
В настоящее время, спустя 15 лет после прошедшей эпидемии дифтерии, повсеместно отмечается снижение внимания клиницистов к этой инфекции. Профилактические обследования не проводятся, диагностические — проводятся, но не в полном объеме. В то же время по данным статистического анализа в Санкт-Петербурге,
и Северо-Западном регионе в целом регистрируются случаи носительства Corynebacterium diphtheriae и заболеваний дифтерией, преимущественно среди лиц из закрытых коллективов. По данным Е1ек-теста выделенные штаммы C. diphtheriae в основном нетоксигенные. Тем не менее, проведенные с помощью молекулярных методов исследования показали, что среди таких штаммов до 40% несут в себе «молчащий»
поступила в редакцию 10.07.2012 Адрес для переписки:
отправлена на доработку 16.07.2012 Краева Людмила Александровна, 197101, Санкт-Петербург, ул. Мира, 14,
принята к печати 31.08.2012 д.м.н., ведущий научный сотрудник ФБУН НИИЭМ имени Пастера.
лаборатории бактериальных капельных Тел./факс: (812) 498-09-39.
инфекций ФБУН НИИЭМ имени Пастера E-mail: [email protected],
© Краева Л.А. и соавт., 2012 [email protected]
?ох+ ген [3, 12]. Несомненно, полимеразная цепная реакция (ПЦР) обладает более высокой чувствительностью и скоростью постановки [11, 13, 16, 17]. Однако результат ПЦР свидетельствует о наличии у микроорганизма гена токсигенно-сти, который, как известно, может быть репрессированным и не проявлять себя в фенотипи-ческих тестах, таких как Е1ек-тест. Известно, что при определенных условиях действие гена-супрессора прекращается и штамм возобновляет способность продуцировать токсин [14].
Более того, в условиях бесконтрольного использования антибиотиков возможно частичное подавление роста и размножения микроорганизмов, попавших на слизистые оболочки, и как следствие — получение отрицательного результата при бактериологическом исследовании из-за временного снижения количества микроорганизмов в месте входных ворот инфекции или низкой активности дифтерийного токсина, которую не всегда удается выявить с помощью Е1ек-теста [10]. Таким образом, объективно требуется улучшение качества лабораторной диагностики, направленной на поиск С. й1рМНег1ае.
С другой стороны, защищенность от дифтерии, согласно нормативным документам, в нашей стране определяется с помощью реакции прямой гемагглютинации (РПГА) [7, 8]. Однако результат реакции, выражаемый в титрах, не позволяет точно определить количество антитоксических антител (АТ-АТ). Разработка ВОЗ и повсеместное внедрение в практику оценочной шкалы защищенности от дифтерии на основании определения количества АТ-АТ позволили контролировать качество вакцинации [15]. Однако информация о количестве вырабатываемых противодифтерийных антител не всегда дает достоверный ответ на вопрос о степени защищенности от дифтерии. Это было продемонстрировано во время последней эпидемии дифтерии в России и после нее, когда у заболевших (до 40% случаев) находили в крови АТ-АТ защитных уровней [1, 6, 9]. Ранее проведенными исследованиями была установлена определяющая роль высокоавидных АТ-АТ в защите от дифтерии, которые могут быть определены наряду с количеством суммарных АТ-АТ в иммуноферментном анализе [4]. При этом была показана динамика формирования и утраты АТ-АТ, равно как и показателя их авидности, изучены особенности специфического иммунитета к дифтерии среди различных групп населения. Тем не менее, отсутствие программ и схем исследования при диагностике дифтерии и изучении напряженности иммунитета у населения, содержащих новые аргументированные данные, не позволяют полноценно и качественно проводить бактериологический и иммунологический контроль в отношении
дифтерии на местах. Поэтому целью работы явилась разработка алгоритмов комплексного лабораторного исследования на дифтерию.
Материалы и методы
В работе использованы 650 штаммов C. diph-theriae, выделенных в Санкт-Петербурге, Ленинградской и Вологодской областях в 1995—2010 гг., 1520 образцов сыворотки крови взрослых лиц, а также референс-штаммы C. diphtheriae № 10356 (tox—), № 10648 (tox+) и № 3984 (tox+/-) из NCTC (National Collection of Type Cultures Diphtheriae Reference Laboratory, Central Health Laboratory (CPHL), London, UK).
Для реализации поставленной цели использованы следующие методы: микробиологические, включая исследования по стандартным методикам, прилагаемым к диагностическим наборам, иммунологические (иммунофермент-ный анализ (ИФА), РПГА и реакция нейтрализации (РН) на клетках Vero, полученных из лаборатории детских инфекций ФБУН НИИЭМ им. Пастера), эпидемиологические (с оценкой характеристики выбранных контингентов), методы математической обработки данных, а также разработанные авторами «Экспресс-способ выявления потенциальной токсигенности у штаммов C. diphtheriae» и «Экспресс-способ выявления дифтерийного токсина на основе микротехнологий».
Результаты
Определение защищенности населения от дифтерии на основе модернизации серологического мониторинга
По данным центров госсанэпиднадзора в Северо-Западном регионе РФ в постэпидемические годы до 50% лиц, заболевших дифтерией, содержали в крови защитные уровни АТ-АТ, выявляемые с помощью регламентированного метода РПГА. В связи с этим были проведены параллельные исследования образцов сыворотки крови от 350 лиц в трех используемых в нашей стране методах: РН на культуре клеток Vero, в РПГА и ИФА.
Полученные результаты показали, что коэффициент корреляции между результатами исследования сывороток в РПГА и классической РН на культуре клеток Vero составил r = 0,5. Между тем, этот показатель для ИФА и РН (Vero) составил 0,95 с уровнем достоверности p < 0,05. Результаты ИФА выражали в международных единицах, что соответствует международным критериям.
В результате исследования образцов сывороток крови заболевших дифтерией лиц с помощью ИФА было установлено, что 29% из них содержали АТ-АТ в количестве > 0,1 МЕ/мл, которые по международным и национальным
критериям защищенности рассматриваются как обеспечивающие невосприимчивость к дифтерии. Поэтому дальнейшие исследования были посвящены изучению качества АТ-АТ и их роли в защите от дифтерии.
Для исследования были выбраны две панели из 185 образцов сывороток крови, взятых от больных дифтерией (на 3—5 день заболевания, не получавших в этот период лечебной противодифтерийной сыворотки) и контактных лиц, кровь от которых была взята на 1-2-й неделе после контакта с заболевшим дифтерией. Сравнивали не только уровни суммарных АТ-АТ, но и их авидность. При этом среднее значение индекса авидности (ИА) в группе заболевших дифтерией составило 17,5%, а в группе не заболевших дифтерией — 64% (рис. 1).
С помощью математической обработки данных установлено, что ИА более 30% соответствует вероятности защиты от заболевания дифтерией на 95%, а ИА, равный 10%, является показателем критического уровня, ниже которого вероятность заболевания возрастает до 99% (р < 0,001).
С помощью математического анализа был выведен комплексный показатель (КП), получаемый из данных о количестве АТ-АТ и ИА, который указывает на вероятность заболевания дифтерией у данного обследуемого в случае его контакта с дифтерийным больным. При этом коэффициент Стьюдента (1) = 16,4; достоверность (р) < 0,001, а коэффициент Фишера (Б) = 83,7, р < 0,001.
Наиболее достоверные результаты получены при использовании дискриминантного анализа. При этом степень достоверности выведенных формул была наивысшей (р = 5,64Е-26). В результате примененного статистического анализа выведена формула расчета вероятности заболевания человека дифтерией по двум известным показателям: АТ-АТ и ИА путем использования их производной — КП. Для этого сначала необходимо рассчитать функцию для лиц, не заболевших дифтерией:
у0 = -3,805 + 0,49 • КП, (1)
где КП = АТ-АТ' ИА (2)
Затем рассчитывается функция для лиц, заболевших дифтерией:
уг = -0,713 + 0,017' КП (3)
Если значение у > у0, то вероятность заболеть дифтерией, чем не заболеть. Для расчета вероятности заболевания дифтерией (ВЗд) получена следующая формула:
ВЗд = 0,82 - 0,05 ' КП (4)
Показатель вероятности заболевания может варьировать от 0 до 1: чем выше показатель, тем выше вероятность заболевания.
у незаболевших дифтерией (%)
■ Индекс авидности АТ-АТ у заболевших дифтерией (%)
Рисунок 1. Результаты определения ИА АТ-АТ в двух группах сывороток
Поскольку авидность антител, как показано, имеет определяющее значение при оценке защищенности от дифтерии, была установлена динамика их накопления и утраты. При этом созревание высокоавидных антител достигает максимума в среднем через год после ревакцинации, в то время как наибольшее количество суммарных антитоксических антител образуется через 6—9 месяцев. Период регрессии для суммарных антител более длителен, чем для высокоавидных: через 5 лет после очередной ревакцинации индекс авидности антител до-
Модель:у4=а*уЗ"ехр(-Ь*(уЗ+1)Ас) у=(14,5108)*х*ехр(-(,094068)*(х+1)"(,93444))
Рисунок 2. Математическая модель динамики индексов авидности после ревакцинации Примечания. IND_AVID (%) — индексы авидности (%), Т (мес.) — время после ревакцинации (месяцы). Средняя погрешность модели = 5%.
Чувствительность Специфичность
□ Е1ек-тест □ ICS-тест | РИГА Q Биочип-тест
Рисунок 3. Сравнение диагностической эффективности различных методов определения токсигенности у штаммов C. diphtheriae
стигает минимального (критического) уровня (10%), в то время как количественное содержание антитоксических антител остается в пределах защитных уровней (0,1—0,5 МЕ/мл) и снижается до критических значений (0,01 МЕ/мл) к 7-8-му году после ревакцинации.
Поскольку авидность антител, защищающая от заболевания дифтерией, снижается быстрее, чем количественный показатель суммарных антител, то в прогнозе необходимо ориентироваться на индекс авидности антител. Для этого на графике, представляющем собой математическую модель из исходных данных о динамике индексов авидности после ревакцинации (рис. 2), находим значение, наиболее приближенное к полученному индексу авидности антител (с учетом предыдущей вакцинации) и определяем по графику: через сколько месяцев индекс авидности снизится до критической отметки (10%). Очередную ревакцинацию (или повторное исследование) рекомендуется пройти до этой даты.
Кроме того, полученные данные о различиях в защите от дифтерии некоторых социальных и профессиональных групп аргументируют необходимость дифференцированного подхода к отбору лиц для серологического мониторинга и коррекции защищенности от заболевания.
Совершенствование лабораторной диагностики по своевременному выявлению токсигенных штаммов C. diphtheriae
Ранее проведенными исследованиями [5] было показано, что низкоинтенсивное лазерное излучение (НИЛИ) индуцирует выработку токсина штаммами C. diphtheriae, несущими tox+ ген. При этом наибольший эффект (увеличение
в 2 раза) отмечался в отношении тех штаммов, которые имели низкие уровни токсинопродук-ции, то есть могли остаться неучтенными при визуальной оценке токсигенности в Е1ек-тесте.
Кроме того, после воздействия НИЛИ на штаммы С. diphtheriae с «молчащим» геном, у 45% из 80 штаммов наступало восстановление токсинопродукции, регистрируемое в РНГА и Е1ек-тесте.
Однако определение токсигенности штаммов С. diphtheriae с помощью Е1ек-теста весьма субъективно. Поэтому нами ранее был разработан высокочувствительный способ детекции дифтерийного токсина, основанный на использовании в диагностическом наборе высокоавидных антитоксических противодифтерийных антител и современных микротехнологий [2].
Разработанный экспресс-способ обладает высокой диагностической эффективностью. При количественной оценке чувствительность способа составила 0,001 Ы/т1 дифтерийного токсина, что выше показателей любого имеющегося в настоящее время метода детекции дифтерийного токсина. Из всех фенотипичес-ких методов разработанный способ обладает наилучшими показателями по скорости пробо-подготовки, проведения реакции, а также возможности одновременной постановки большого количества проб (рис. 3).
Высокая эффективность предложенных способов и скорость осуществления наряду с низкими финансовыми затратами позволяют широко использовать их как в научных, так и в практических целях.
Обсуждение
Результаты статистической обработки данных позволили убедиться в том, что для контроля уровня иммунитета к дифтерии целесообразней использовать метод ИФА вместо РПГА, что соответствует международным стандартам. Показатель ИА АТ-АТ имеет большую достоверность (99%), чем уровень суммарных АТ-АТ (71%) при оценке защищенности от дифтерии, что объясняет, почему отмечались случаи заболевания дифтерией среди лиц, имеющих в крови защитные уровни суммарных антител. Однако наибольшую достоверность при оценке защищенности от дифтерии имеет КП. Поэтому в инструкцию по применению отечественной тест-системы включены дополнения по методике определения индекса авидности антител.
Более того, использование современного математического аппарата позволило разработать методику определения сроков последующей ревакцинации обследуемого. При отсутствии данных о защищенности отдельных лиц необходимо отталкиваться от следующей общей
тенденции: к 7—8 году после очередной ревакцинации уровень противодифтерийных АТ-АТ снижается до самых низких защитных уровней, в то время как ИА антител снижается до нижнего «порогового» уровня уже через 5 лет. Поэтому контроль популяционного иммунитета необходимо проводить в эти сроки, так же как и планировать очередную ревакцинацию среди незащищенных лиц.
Выявление групп «риска» среди населения позволило сделать вывод о необходимости проведения периодических профилактических обследований среди лиц старше 50 лет, медицинских работников, рабочих промышленных предприятий с вредными условиями труда. Более того, выявление носителей токсигенных штаммов С. й¡рЫНепае в психоневрологических интернатах говорит о целесообразности регулярных обследований контингентов в закрытых коллективах, например, 2 раза в год, для предотвращения циркуляции возбудителя и контроля защищенности от дифтерии вновь поступивших лиц.
Результатом проведенной работы явилась разработка алгоритма контроля иммунитета населения и оценки невосприимчивости к дифтерии как отдельных лиц, так и коллективов по этапам:
1. отбор крови, заполнение анкеты в БД (возраст, прививочный статус, профессия, хроническое заболевание, дата заболевания);
2. определение АТ-АТ и ИА;
3. определение вероятности заболевания по формулам;
4. определение сроков ревакцинации или повторного контроля иммунитета.
Считаем обоснованным в периоды подъемов уровней заболеваемости ЛОР-органов всех диагностических больных обследовать на дифтерию. Нетоксигенные по данным Е1ек-теста штаммы С. й1рЫкепае необходимо контролировать с помощью полимеразной цепной реакции на предмет наличия «молчащего» гена токси-генности. Источников штаммов с «молчащим» геном необходимо обследовать клинически и эпидемиологически и проводить санацию.
Разработка способа усиления токсинопро-дукции штаммами С. й1рЫкепае и высокочувствительного экспресс-способа выявления дифтерийного токсина позволили разработать алгоритм микробиологического исследования клинического материала на поиск С. й1рЫкепае по этапам:
1. Выделение из клинического материала коринебактерий. Определение вида и биохимического варианта.
2. Определение токсигенности с помощью Е1ек-теста. Определение токсигенности в ПЦР.
3. Если штамм не имеет tox+ гена, то выдается окончательный отрицательный ответ. Если же штамм имеет tox+ ген, то его нужно простимулировать с помощью НИЛИ.
4. Повторное определение токсигенности в микрочиповом тесте и выдача окончательного ответа по результатам теста.
Список литературы
1. Васильев К.Г., Савчук А.И. Клинико-эпидемио-логические аспекты вакцинации против дифтерии // Первый конгресс педиатров-инфекционистов России. — М., 2002. — С. 26.
2. Краева Л.А., Зимина Т.М., Ценева Г.Я., Соловьев А.В. Микротехнологии в экспресс-диагностике токсигенных штаммов С. diphtheriae // ЖМЭИ. — 2011. — № 3. — С. 62-66.
3. Краева Л.А., Ценева Г.Я. Особенности биологических свойств С. diphtheriae, циркулирующих в постэпидемический период // ЖМЭИ. — 2009. — № 3. — С. 3-6.
4. Краева Л.А., Ценева Г.Я., Николаева А.М., Алексеева Е.А. Роль высокоавидных антитоксических антител в оценке невосприимчивости к дифтерийной инфекции // Эпидемиология и инфекционные болезни. — 2011. — № 4. — С. 20-24.
5. Краева Л.А., Ценева Г.Я., Сбойчаков В.Б., Беспалова Г.И. Способ ускоренного определения токсигенности C. diphtheriae // Вестник Российской военно-медицинской академии. — 2010. — № 4 (32). — С. 144-147.
6. Матохина А.Г. Исследование специфического иммунитета у больных дифтерией // VI Росс. съезд врачей-инфекционистов. — СПб., 2003. — С. 243.
7. МУ 3.1.2943-11.3.1. Профилактика инфекционных болезней. Организация и проведение серологического мониторинга состояния коллективного иммунитета к инфекциям, управляемым средствами специфической профилактики (дифтерия, столбняк, коклюш, корь, краснуха, эпидемический паротит, полиомиелит, гепатит В). Методические указания (утв. Роспотребнадзором 15.07.2011.).
8. СП 3.1.2.1108-02 «Профилактика дифтерии».
9. Харченко Г. А., Чанпалова Л.С., Харченко О.Г. Дифтерия у привитых детей // VI Росс. съезд врачей-инфекционистов. — СПб., 2003. — С. 413-414.
10. Ценева Г.Я., Краева Л.А., Габриелян С.А., Щедер-кина Е.Е. Методы определения токсигенности у штаммов C. diphtheriae // Бюллетень ВСНЦ СО РАМН. — Иркутск, 2005. — № 7. — C. 182-186.
11. Ценева Г.Я., Щедеркина Е.Е. Применение поли-меразной цепной реакции в диагностике дифтерийной инфекции // ЖМЭИ. — 2000. — № 5. — С. 72-74.
12. Щедеркина Е.Е. Основные патогенные свойства C. diphtheriae и усовершенствование лабораторной диагностики дифтерийной инфекции. — Дис. ... канд. мед. наук. — СПб., 2001. — 132 с.
13. Aravena-Roman M., Bowman R., O'Neill G. Polymerase chain reaction for the detection of toxigenic
Corynebacterium diphtheriae // Pathol. — 1995. — N 27. — P. 71-73.
14. Cianciotto N.P., Groman N.B. Characterization of bacteriophages from tox-containing, non-toxigenic isolates of Corinebacterium diphtheriae // Microbial Pathog. — 1997. — Vol. 22. — P. 343-351.
15. Efstratiou A., Maple P.A.C. Manual for the laboratory diagnosis of diphtheria. Copenhagen: The Expanded Programme on Immunization in the European Region of WHO. — 1994 (ICP/EPI038).
16. Mikhailovich V.M., Melnikov V.G., Mazurova I.K. Application of PCR for detection of toxigenic Corynebacterium diphtheria strains isolated during the Russian diphtheria epidemic, 1990 through 1994 // J. Clin. Microbiol. — 1995. — Vol. 33. -P. 3061-3063.
17. Pallen M.J., Hay A.J., Puckey L.H. Polymerase chain reaction for screening clinical isolates of corynebac-teria for the production of diphtheria toxin // J. Clin. Pathol. — 1994. — Vol. 47. — P. 353-356.
