CC BY
44ИЩЩЛ ОРИГИНАЛЬНАЯ СТАТЬЯ
Сохранение репродуктивного материала
при помощи метода in vitro maturation у пациенток
с онкологическими заболеваниями
И.А. Лапина*1, Ю.Э. Доброхотова1, Ю.А. Сорокин2, А.А. Малахова1, Т.Г. Чирвон1, В.В. Таранов1, Н.Ю. Германович3, Е.В. Ковальская2, О.В. Кайкова4, В.М. Гомзикова1, М.А. Твердикова2
1ФГАОУ ВО «Российский национальный исследовательский медицинский университет им. Н.И. Пирогова» Минздрава России, Москва, Россия;
2Клинико-диагностический центр АО ГК «Медси» на Солянке, Москва, Россия;
3ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр хирургии им. А.В. Вишневского» Минздрава России, Москва, Россия; 4Клиническая больница №2 АО ГК «Медси», Москва, Россия
Аннотация
Обоснование. Улучшение качества жизни онкологических больных является одной из приоритетных задач медицинского сообщества. В структуре онкологической заболеваемости на долю пациенток фертильного возраста приходится до 7-10% всех злокачественных новообразований. Около 30% из них к моменту заболевания не реализовали свою репродуктивную функцию и нуждаются в сохранении генетического материала ввиду предстоящего необходимого гонадоток-сичного лечения. Учитывая ограниченные сроки до начала терапии, а также гормонозависимые варианты некоторых опухолей, перспективным методом является созревание ооцитов in vitro maturation (IVM).
Цель. Оценить количество и качество ооцитов, полученных путем применения IVM, на малой выборке пациентов.
Материалы и методы. Нами проведено проспективное исследование, в которое вошли 5 пациенток репродуктивного возраста. Все пациентки полностью обследованы, определены уровень антимюллерова гормона и количество антральных фолликулов. После проведения трансвагинальной пункции из полученной фолликулярной жидкости эмбриологами в лаборатории выделены и культивированы ооциты в течение 5-6 сут.
Результаты. Всего получено 46 незрелых комплексов ооцит-кумулюс. Через 28 ч после культивирования ооцитов в среде IVM получено 30 (46%) ооцитов на стадии метафазы II, 14 (22%) ооцитов на стадии метафазы I и 12 (18%) ооцитов на стадии профазы I. После дополнительного культивирования через 24 ч еще
1 ооцит достиг стадии метафазы II. В результате витрифицировано 30 ооцитов и 4 эмбриона.
Заключение. Метод IVM дает возможность сохранения генетического материала пациенток с онкологическими заболеваниями в короткие сроки, не откладывая начало лечения гонадотоксичной терапией, позволяя в дальнейшем осуществить им свою репродуктивную функцию. С учетом малого количества исследований и отсутствия надежных протоколов использования IVM необходимы дополнительные исследования в данной области.
Ключевые слова: онкофертильность, in vitro maturation, комплексы ооцит-кумулюс, незрелые ооциты
Для цитирования: Лапина И.А., Доброхотова Ю.Э., Сорокин Ю.А., Малахова А.А., Чирвон Т.Г., Таранов В.В., Германович Н.Ю., Ковальская Е.В., Кайкова О.В., Гомзикова В.М., Твердикова М.А. Сохранение репродуктивного материала при помощи метода in vitro maturation у пациенток с онкологическими заболеваниями. Гинекология. 2022;24(1):41-46. DOI: 10.26442/20795696.2022.1.201350
Информация об авторах / Information about the authors
*Лапина Ирина Александровна - канд. мед. наук, доц. каф. акушерства и гинекологии лечебного фак-та ФГАОУ ВО «РНИМУ им. Н.И. Пирогова». E-mail: doclapina@mail.ru; ORCID: 0000-0002-2875-6307
Доброхотова Юлия Эдуардовна - д-р мед. наук, проф., зав. каф. акушерства и гинекологии лечебного фак-та ФГАОУ ВО «РНИМУ им. Н.И. Пирогова». E-mail: pr.dobrohotova@mail.ru; ORCID: 0000-0002-7830-2290
Сорокин Юрий Александрович - рук. Центра репродуктивного здоровья КДЦ «Медси» на Солянке. ORCID: 0000-0001-9305-323X
Малахова Анастасия Александровна - аспирант каф. акушерства и гинекологии лечебного фак-та ФГАОУ ВО «РНИМУ им. Н.И. Пирогова». E-mail: anastasimed@yandex.ru; ORCID: 0000-0002-2140-8000
Чирвон Татьяна Геннадьевна - аспирант каф. акушерства и гинекологии лечебного фак-та ФГАОУ ВО «РНИМУ им. Н.И. Пирогова». E-mail: tkoltinova@gmail.com; ORCID: 0000-0002-8302-7510
Таранов Владислав Витальевич - аспирант каф. акушерства и гинекологии лечебного фак-та ФГАОУ ВО «РНИМУ им. Н.И. Пирогова». E-mail: vlastaranov@mail.ru; ORCID: 0000-0003-2338-2884
Германович Наталья Юрьевна - канд. мед. наук, онколог-маммолог ФГБУ «НМИЦ хирургии им. А.В. Вишневского». ORCID: 0000-0002-7857-275X
Ковальская Евгения Владимировна - вед. эмбриолог отд-ния ВРТ КДЦ «Медси» на Солянке. ORCID: 0000-0001-5754-1711
Кайкова Олеся Владимировна - зав. отд-нием оперативной гинекологии КБ №2 «Медси»
*Irina A. Lapina - Cand. Sci. (Med.), Pirogov Russian National Research Medical University. E-mail: doclapina@mail.ru; ORCID: 0000-0002-2875-6307
Yuliia E. Dobrokhotova - D. Sci. (Med.), Prof., Pirogov Russian National Research Medical University. E-mail: pr.dobrohotova@mail.ru; ORCID: 0000-0002-7830-2290
Iurii A. Sorokin - Head of the Clinical and Diagnostic Center "Medsi" on Solyanka. ORCID: 0000-0001-9305-323X
Anastasiia A. Malakhova - Graduate Student, Pirogov Russian National Research Medical University. E-mail: anastasimed@yandex.ru; ORCID: 0000-0002-2140-8000
Tatiana G. Chirvon - Graduate Student, Pirogov Russian National Research Medical University. E-mail: tkoltinova@gmail.com; ORCID: 0000-0002-8302-7510
Vladislav V. Taranov - Graduate Student, Pirogov Russian National Research Medical University. E-mail: vlastaranov@mail.ru; ORCID: 0000-0003-2338-2884
Natalia Iu. Germanovich - Cand. Sci. (Med.), Vishnevsky National Medical Research Center for Surgery. ORCID: 0000-0002-7857-275X
Evgeniia V. Koval'skaia - Leading embryologist, Clinical and Diagnostic Center "Medsi" on Solyanka. ORCID: 0000-0001-5754-1711
Olesia V. Kaikova - Department Head, Clinical Hospital №2 "Medsi"
ORIGINAL ARTICLE
Preservation of reproductive material using the in vitro maturation method in patients with oncological diseases
Irina A. Lapina*1, Yuliia E. Dobrokhotova1, Iurii A. Sorokin2, Anastasiia A. Malakhova1, Tatiana G. Chirvon1, Vladislav V. Taranov1, Natalia Iu. Germanovich3, Evgeniia V. Koval'skaia2, Olesia V. Kaikova4, Valeriia M. Gomzikova1, Maria A. Tverdikova2
'Pirogov Russian National Research Medical University, Moscow, Russia; 2Clinical and Diagnostic Center "Medsi" on Solyanka, Moscow, Russia; 3Vishnevsky National Medical Research Center for Surgery, Moscow, Russia; 4Clinical Hospital №2 "Medsi", Moscow, Russia
Abstract
Background. Improving the quality of life of cancer patients is one of the priority tasks of the medical community. In the structure of oncological morbidity, the proportion of patients of fertile age accounts for up to 7-10% of all malignant neoplasms. About 30% of them have not realized their reproductive function by the time of the disease and need to preserve the genetic material due to the necessary gonadotoxic treatment. Taking into account the limited time before the start of surgery, as well as hormone-dependent variants of some tumors, the maturation of oocytes in vitro maturation (IVM) is a promising method. Aim. To evaluate the quantity and quality of oocytes obtained by IVM in a small sample of patients.
Materials and methods. We conducted a prospective study, which included 5 patients of reproductive age. All patients were fully examined, the level of anti-muller hormone and the number of antral follicles were determined. After transvaginal puncture, oocytes were isolated and cultured from the obtained follicular fluid by embryologists in the laboratory for 5-6 days.
Results. A total of 46 immature oocyte-cumulus complexes were obtained; 28 hours after oocyte culture in IVM medium, 30 (46%) oocytes at the metaphase II stage, 14 (22%) oocytes at the metaphase I stage and 12 (18%) oocytes at the prophase I stage were obtained. After additional cultivation, after 24 hours, another oocyte reached the metaphase II stage. As a result, 30 oocytes and 4 embryos were vitrified.
Conclusion. The IVM method makes it possible to preserve the genetic material of patients with oncological diseases in a short time, without delaying the start of treatment with gonadotoxic therapy, allowing them to carry out their reproductive function in the future. Given the small number of studies and the lack of reliable protocols for using IVM, additional research in this area is needed.
Keywords: oncofertility, in vitro maturation, oocyte-cumulus complexes, immature oocytes
For citation: Lapina IA, Dobrokhotova YuE, Sorokin IuA, Malakhova AA, Chirvon TG, Taranov VV, Germanovich NIu, Koval'skaia EV, Kaikova OV, Gomzikova VM, Tverdikova MA. Preservation of reproductive material using the in vitro maturation method in patients with oncological diseases. Gynecology. 2022;24(1):41-46. DOI: 10.26442/20795696.2022.1.201350
Введение
Обеспечение улучшения качества жизни онкологических пациентов является одной из приоритетных задач в медицинской практике. В последние десятилетия существенно возросла эффективность ранней диагностики и новых методов лечения онкологических заболеваний, что привело к улучшению исходов и увеличению выживаемости пациентов. В 2019 г. в Российской Федерации выявлено 348 894 новых случая онкологических заболеваний у пациентов женского пола. Из них 5,8% встречаются до 40 лет. Наиболее распространенными онкологическими патологиями у женщин репродуктивного периода, по данным Всемирной организации здравоохранения, являются рак молочной железы -РМЖ (24,4%), рак эндометрия (9,3%), рак шейки матки (5%) и другие виды рака (43%) [1, 2]. При этом не менее чем в 20% случаев рак возникает у женщин, не реализовавших свою репродуктивную функцию [3]. Важной проблемой является гонадотоксичность проводимого лечения у данной группы больных, которая приводит к ятрогенной преждевременной недостаточности яичников, что повышает спрос на возможности сохранения своей репродуктивной функции. Американское общество клинической онкологии рекомендует обсуждение с пациентками возможности сохранения фертильности и направление в клинику репродуктивного
Гомзикова Валерия Михайловна - ординатор каф. акушерства и гинекологии лечебного фак-та ФГАОУ ВО «РНИМУ им. Н.И. Пирогова». ОИСЮ: 0000-0001-6297-8811
Твердикова Мария Анатольевна - врач акушер-гинеколог, зав. отд-нием ЭКО КДЦ «Медси» на Солянке. ОИСШ: 0000-0003-0462-2838
здоровья. При этом лечение рака имеет первостепенное значение [3-6]. В связи с этим актуальным представляется поиск и решение проблемы сохранения фертильности у данных пациенток.
Существенной проблемой при РМЖ является высокая экспрессия рецепторов к эстрогенам (ER). В связи с этим таким пациенткам нежелательна процедура овариальной стимуляции с последующим получением репродуктивного материала. Для решения этой проблемы может быть использован метод in vitro maturation (IVM), который помогает избежать повышения уровня эстрадиола и последующего вреда для организма онкологических больных [7].
Метод созревания ооцитов IVM зарекомендовал себя как вспомогательная репродуктивная технология (ВРТ) с высоким коэффициентом живорождаемости [8]. Данный способ имеет длинную историю и до 2021 г. считался экспериментальным. Однако в последних гайдлай-нах Американского комитета клинической онкологии, Американского общества репродуктивной медицины, а также Общества репродуктивных биологов и технологов и Общества вспомогательных репродуктивных технологий приведены аргументы в пользу безопасности IVM и данную технологию рекомендовано убрать из рубрики экспериментальной [9, 10].
Valeriia M. Gomzikova - Resident, Pirogov Russian National Research Medical University. ORCID: 0000-0001-6297-8811
Maria A. Tverdikova - gynecologist, Clinical and Diagnostic Center "Medsi" on Solyanka. ORCID: 0000-0003-0462-2838
Рис. 1: а - КОК, содержащий зародышевый пузырек; b - ооцит в состоянии MII (адаптировано [10]); линейная шкала: 50 мкм. Fig. 1: a - oocyte-cumulus complex containing an embryonic vesicle; b - oocyte in the state of metaphase II (adapted [10]); linear scale: 50 microns.
IVM представляет собой созревание незрелых комплексов ооцит-кумулюс (КОК) от стадии профазы I (стадия зародышевого пузырька GV) через мейоз I до достижения метафазы II (MII) после получения из фолликулов, не подвергшихся воздействию преовуляторного триггера (КОК представлены на рис. 1) [9, 11]. Данная методика состоит из двух этапов: I - сбор КОК от не/минимально стимулированных яичников, II - созревание ооцитов до стадии MII. Для созревания ооцитов от GV до MII обычно необходимо 36-48 ч культивирования in vitro, а от стадии метафазы I (MI) до MII - 6-24 ч [12].
По данным мировой литературы, существенных различий между результатами забора в разные фазы менструального цикла не выявлено [13]. Применение данной методики возможно как с применением трансвагинальной пункции (ТВП), так и непосредственно из удаленной ткани яичника - IVM ex vivo. У онкологических пациентов, по данным H. Creux и соавт., показатели созревания яйцеклеток составляют 79%, а клинические показатели беременности -18-30% при переносе эмбриона, полученного при помощи IVM [14].
Цель исследования - оценить количество и качество ооцитов, полученных путем IVM, на малой выборке пациентов.
Материалы и методы
В нашей клинике проведено проспективное исследование с участием 5 женщин репродуктивного периода с верифицированным онкологическим заболеванием до проведения химиотерапевтического лечения. Данное исследование одобрено локальным этическим комитетом. Все пациентки перед проведением процедуры IVM проинформированы о
рисках, а также возможных исходах и неудачах. Также ими подписано информированное добровольное согласие.
Критериями включения в данное исследование явились возраст пациенток от 18 до 42 лет, верифицированный диагноз РМЖ, отсутствие ранее проведенных курсов химиотерапии, уровень антимюллерового гормона (АМГ) >1 нг/мл, количество антральных фолликулов (КАФ) по данным трансвагинального ультразвукового исследования (УЗИ) более 5 в обоих яичниках суммарно.
Все пациентки полностью обследованы в соответствии с приказом №803н от 31.07.2020 «О порядке использования вспомогательных репродуктивных технологий, противопоказаниях и ограничениях к их применению». Проведены исследование гормонального профиля, включая уровень АМГ, трансвагинальное УЗИ с оценкой КАФ, маммография или УЗИ молочных желез в зависимости от возраста пациенток. Все пациентки консультированы врачом-онкологом, химиотерапевтом, радиологом, психологом и генетиком.
В отделении ВРТ 3 пациенткам проводили ТВП яичников без предварительной гормональной стимуляции, еще у 2 пациенток пунктировали фолликулы уже удаленной ткани яичника. Полученную в ходе пункции фолликулярную жидкость исследовали в эмбриологической лаборатории под стереомикроскопом на предмет наличия или отсутствия КОК. Извлеченную ткань яичника помещали в контейнер для биоматериала, наполненный 0,9% раствором №С1, и транспортировали на льду в эмбриологическую лабораторию отделения ВРТ в течение 90 мин. В лаборатории аспирировали все видимые антральные фолликулы с применением инъекционной иглы (210), присоединенной к шприцу (5 мл). Фолликулярную жидкость помещали в чашку Петри и оценивали под стереомикроскопом на наличие ооцит-кумулюсных комплексов. После этого при помощи хирургических скальпелей отделяли корковый слой яичника от мозгового, а среду (0-М0Р8), в которой проводились манипуляции, оценивали на наличие КОК. 0-М0Р8 - это специальная среда, разработанная для обработки и манипуляций с ооцитами, содержащая человеческий сывороточный альбумин.
Все полученные КОК культивировали в 4-луночных планшетах в среде для дозревания (1УМ) с добавлением 0,75 МЕ/мл фоллитропина а, 1 МЕ/мл хорионического гона-дотропина человека и 10 мг/мл сывороточного альбумина человека при 37°С в атмосфере 7% СО2 и 5% О2. Через 28 ч культивирования КОК помещали в 80 ЕД/мл раствор гиа-луронидазы и пипетированием удаляли кумулюсные клетки. Зрелость яйцеклеток оценивали по морфологическим признакам, все незрелые ооциты культивировали в среде
Таблица 1. Данные направленных пациенток с РМЖ Table 1. Data from referred breast cancer patients
Пациентка 1 Пациентка 2 Пациентка 3 Пациентка 4 Пациентка 5
Диагноз Рак левой молочной железы TlaNOMü, Ia стадия, люминальный В тип, Иег-негативный Рак правой молочной железы T2N0M0, IIa стадия, люминальный В тип, Иег-негативный Рак левой молочной железы Ш0М0, 1а стадия, люминальный А тип, Иег-негативный Рак правой молочной железы T2N0M0, Ia стадия, люминальный В тип, Иег-негативный Рак правой молочной железы T1cN0M0, Ia стадия, люминальный В тип, Иег-негативный. Носитель BRCA I. Образование левого яичника
Гистологическое заключение Неспецифическая инва-зивная карцинома G2 Инвазивный РМЖ без признаков специфичности, G2, участки рака in situ high nuclear grade Неспецифическая инвазивная карцинома G1 Неспецифическая инвазивная карцинома G2 Неспецифическая инвазивная карцинома G3
Иммуногистохимия ER 5, PR 6, Ki 67 - 25%, Иег - 1+ ER 8, PR 7, Ki 67 - 30%, Иег - 1 + ЕР 7, РР 8, Ю 67 - 10%, Иег - 0 ER 8, PR 8, Ki 67 - 25%, Иег - 1+ ER 7, PR 6, Ki 67 - 35%, Иег - 1+
Примечание. PR - рецепторы прогестерона.
Таблица 2. Результаты оценки уровня АМГ и КАФ Table 2. Results of evaluation of the level of anti-muller hormone and the number of antral follicles
Пациентка 1 Пациентка 2 Пациентка 3 Пациентка 4 Пациентка 5
Возраст 37 35 36 B4 38
АМГ, нг/мл 1,02 1,27 1,41 1,78 1,13
КАФ 5-6 в левом яичнике 6-7 в левом яичнике 8-9 в левом яичнике >20 в обоих яичниках 5-6 в левом яичнике
6-7 в правом яичнике 7-8 в правом яичнике 8-9 в правом яичнике 5-6 в правом яичнике
Рис. 2. Извлечение ооцитов из фолликулярной жидкости. Fig. 2. Extraction of oocytes from follicular fluid.
Таблица 3. Результаты полученного материала Table 3. Results of the received material
Пациентка 1 Пациентка 2 Пациентка 3 Пациентка 4 Пациентка 5
GV 0 3 1 7 3
MI 2 3 (верифицированы) 1 5 3
MII 1 8 (верифицированы) 3 (витрифи-цированы) 10 8 (витрифи-цированы)
Эмбрионы 1 (верифицирован) 0 (не оплодотворяли) 0 (не оплодотворяли) 3 (витрифи-цированы) 0(не оплодотворяли)
Дегенерировали 1 3 1 3 1
Рис. 3. Пункция фолликулов из удаленной ткани яичника. Fig. 3. Puncture of follicles from the removed ovarian tissue.
для дозревания еще 24 ч. Зрелые яйцеклетки оплодотворяли методом интрацитоплазматической инъекции сперматозоида спермой партнера при наличии информированного добровольного согласия пациентки. Полученные эмбрионы культивировали в среде GTL (специальная среда для непрерывной культуры в инкубаторе) при 37°С в атмосфере 7% СО2 и 5% О2 в течение 5-6 сут. Качество эмбрионов оценивали на 3, 5 и 6-й дни культивирования.
Результаты
Из онкологического отделения для рассмотрения вопроса о возможности сохранения репродуктивного материала направлены 5 пациенток с РМЖ. Из табл. 1 видно, что у всех пациенток определяется большое количество ER, в связи с чем пациенткам не рекомендовано проведение гормональной стимуляции яичников. Стоит отметить, что больные находились на разных стадиях лечения: 2 пациенткам на момент осмотра репродуктологом уже проведена радикальная подкожная мастэктомия, 2 пациентки готовились к прохождению неоадъювантной химиотерапии. Еще 1 пациентка готовилась к комбинированному оперативному лечению по поводу РМЖ и удалению образования левого яичника, ей предложено проведение IVM ex vivo.
Возраст пациенток указан в табл. 2. Обращает на себя внимание тот факт, что самой молодой пациентке на момент осмотра 34 года, однако репродуктивная функция у всех исследуемых еще не реализована. Всем пациенткам перед проведением пункции фолликулов выполнено УЗИ малого таза с оценкой КАФ. У 1 из пациенток перед проведением IVM выявлены мультифолликулярные яичники с КАФ>20 в каждом яичнике. Также исследован уровень АМГ у всех пациенток для оценки овариального резерва. Полученные данные представлены в табл. 2. Как видно из таблицы, отмечена корреляция между уровнем АМГ и КАФ.
Среднее время от обращения пациентки к репродуктологу до проведения процедуры 1УМ составило 4-5 дней.
Четырем пациенткам выполнена ТВП фолликулов с получением фолликулярной жидкости, содержащей КОК.
В лаборатории эмбриологии исследовали фолликулярную жидкость и извлекали из нее КОК. Процесс извлечения изображен на рис. 2. У каждой пациентки получено разное количество КОК в зависимости от исходного уровня АМГ и КАФ. Следует отметить, что у пациентки с КАФ>20 в каждом яичнике получено 22 КОК, что подтверждает взаимосвязь между уровнем КАФ и количеством получаемых КОК. Полученные результаты представлены в табл. 3. Из всех ооцитов 9 дегенерировали, остальные культивировали в течение 28 ч. У пациенток 2, 3 целью стало криоконсервировать полученные ооциты, для пациенток 1, 4 дополнительно проводили оплодотворение методом интрацитоплазматической инъекции сперматозоида. Всего оплодотворено 13 ооцитов, из них получено 6 эмбрионов. Два эмбриона остановились в
Рис. 4. Общее количество полученных ооцитов на разных стадиях развития.
Fig. 4. The total number of oocytes obtained at different stages of development.
Полученные ооциты, %
■ О/
■ М1
■ М11
Щ Дегенерировали
развитии, не витрифицированы, остальные эмбрионы, достигнув стадии бластоцисты, криоконсервированы.
Также следует отметить, что 1УМ проведено в различные дни менструального цикла. Существенных различий в количестве полученных КОК не наблюдалось. Это может говорить о том, что выполнение данной технологии возможно в любой день менструального цикла.
Последние исследования, проведенные в мире, показывают, что в среднем количество ооцитов, полученных из удаленной ткани яичника, составляет 14,7±2,2, а среднее количество созревших КОК после 24-48 ч культивирования - от 23 до 62% [15, 16]. В нашем исследовании из ткани яичника, полученного в ходе овариэктомии у пациентки 5, извлечено 19 незрелых КОК. Через 48 ч культивирования в среде УМ -8 ооцитов на стадии М11, 3 ооцита - на стадии М1, 3 ооцита -на стадии 0У. Процесс получения фолликулярной жидкости с незрелыми КОК представлен на рис. 3. Криоконсервирова-ны 11 (57,9% от всех полученных КОК) ооцитов на стадии М1 и М11, что сопоставимо с данными литературы.
По итогу всего получено 46 незрелых КОК. Через 28 ч после культивирования ооцитов в среде 1УМ получено 30 (46%) ооцитов на стадии М11, 14 (22%) ооцитов на стадии М1 и 12 (18%) ооцитов на стадии профазы I (0У). После дополнительного культивирования через 24 ч еще 1 ооцит достиг стадии М11. Наглядное распределение всех полученных ооцитов представлено на рис. 4.
В целом, по данным мировой литературы, среднее количество ооцитов, полученных после 1УМ без стимуляции яичников, у онкологических больных колеблется от 5 до 17, а скорость созревания колеблется от 50 до 61,2% [14]. В нашем исследовании 21 ооцит достиг зрелости, что составляет 45,6%. Ооциты могут быть криоконсервированы либо на стадии 0У, либо на стадии зрелого М11. В настоящее время в основном существуют данные о качестве ооцитов на стадии 0У, полученных в результате овариальной стимуляции. Однако, по данным ряда авторов, эти качества отличаются у 0У-ооцитов, полученных в результате 1УМ. Результаты показывают, что частота созревания ооцитов на стадии 0У выше, если 1УМ выполняется до витрификации [17].
Заключение
1УМ является перспективным методом, который дает возможность сохранения генетического материала паци-
енток с онкологическими заболеваниями в короткие сроки, не откладывая начало лечения гонадотоксичной терапией, позволяя в дальнейшем осуществить им свою репродуктивную функцию. Для получения удовлетворительного результата необходим достаточный овариальный резерв, так как имеется зависимость между уровнем АМГ, КАФ и получаемыми КОК. Также следует отметить, что фаза менструального цикла не имеет значения для проведения данной методики, так как количество полученных ооцитов в различные дни сопоставимо.
IVM может быть предложена пациенткам с РМЖ с высокой экспрессией ER, которым противопоказана гормональная стимуляция как альтернативный метод сохранения фертильности. Также возможно получение ооцитов из удаленной ткани IVM ex vivo, что является перспективным для пациенток с образованиями яичников. Эффективность данной процедуры сравнима с экстракорпоральным оплодотворением с овариальной стимуляцией, что подтверждается данными нашего наблюдения, а также мировой литературы.
С учетом малого количества исследований и отсутствия надежных протоколов использования IVM необходимы дополнительные исследования в данной области.
Раскрытие интересов. Авторы декларируют отсутствие явных и потенциальных конфликтов интересов, связанных с публикацией настоящей статьи.
Disclosure of interest. The authors declare that they have no competing interests.
Вклад авторов. Авторы декларируют соответствие своего авторства международным критериям ICMJE.
Authors' contribution. The authors declare the compliance of their authorship according to the international ICMJE criteria.
Источник финансирования. Авторы декларируют отсутствие внешнего финансирования для проведения исследования и публикации статьи.
Funding source. The authors declare that there is no external funding for the exploration and analysis work.
Информированное согласие на публикацию. Пациент подписал форму добровольного информированного согласия на публикацию медицинской информации.
Consent for publication. Written consent was obtained from the patient for publication of relevant medical information and all of accompanying images within the manuscript.
Соответствие принципам этики. Протокол исследования был одобрен локальным этическим комитетом (выписка из протокола локального этического комитета ФГАОУ ВО «РНИМУ им. Н.И. Пирогова» №213). Одобрение и процедуру проведения протокола получали по принципам Хельсинкской конвенции.
Ethics approval. The study was approved by the local ethics committee (extract from the protocol of the Local Ethics Committee of the Pirogov Russian National Research Medical University №213). The approval and procedure for the protocol were obtained in accordance with the principles of the Helsinki Convention.
Литература/References
1. Каприн А.Д., Старинский В.В., Шахзадова А.О. Состояние онкологической помощи населению России в 2019 году. М.: МНИОИ
им. П.А. Герцена - филиал ФГБУ «НМИЦ радиологии» Минздрава
России, 2020 [Kaprin AD, Starinskii VV, Shakhzadova AO. Sostoianie onkologicheskoi pomoshchi naseleniiu Rossii v 2019 godu. Moscow: MNIOI im. P.A. Gertsena - filial FGBU "NMITs radiologii" Minzdrava Rossii, 2020 (in Russian)].
2. International Agency for Research on Cancer World Health Organization Sours: Globocan, 2020.
3. Shirasawa H, Terad Y. In vitro maturation of human immature oocytes for fertility preservation and research material. Reprod Med Biol. 2017;16:258-67.
4. Harada M, Osuga Y. Fertility preservation for female cancer patients. Japan Society of Clinical Oncology. 2018;24(1):28-33.
5. ESHRE guideline: female fertility preservation. Hum Reprod Open. 2020. DOI:10.1093/hropen/hoaa052
6. Dolmans M, Manavella DD. Recent advances in fertility preservation. Obstet Gynaecol Res. 2019;45(2):266-79.
7. Konstantinos D. Dinas fertility counseling and preservation for breast cancer patients. Adv Exp Med Biol. 2020;1252:181-7.
8. Roesner S, Dietrich JE, Weigert J, et al. Time-lapse imaging reveals diferences in growth dynamics of embryos after in vitro maturation compared with conventional stimulation. Fertil Steril. 2017;107(3):606-12e3.
9. Practice Committees of the American Society for Reproductive Medicine, the Society of Reproductive Biologists and Technologists,
and the Society for Assisted Reproductive Technology. In vitro maturation: a committee opinion. Fertil Steril. 2021;115(2):298-304. D0I:10.1016/j.fertnstert.2020.11.018
10. Plancha CE, Rodrigues P, Marques M, et al. The time is ripe for oocyte in vitro maturation. J Assist Reprod Genet. 2021;38:1281-3.
11. Gong X, Li H, Zhao Y. The improvement and clinical application of human oocyte in vitro maturation (IVM). Reprod Sci. 2021.
12. Yang Z, Chian R. Development of in vitro maturation techniques for clinical applications. Fertil Steril. 2017;108(4):577-84.
13. Hatirnaz Ç, Ata B, Hatirnaz ES, et al. Oocyte in vitro maturation: A sytematic review. Turk J Obstet Gynecol. 2018;15(2):112-25.
14. Creux H, Monnier P, Son WY, Buckett W. Thirteen years' experience in fertility preservation for cancer patients after in vitro fertilization and in vitro maturation treatments. J Assist Reprod Genet. 2018;35(4):583-92.
15. Nikiforov D, Junping C, Cadenas J, et al. Improving the maturation rate of human oocytes collected ex vivo during the cryopreservation of ovarian tissue. J Assist Reprod Genet. 2020;37(4):891-904.
16. Kedem A, Yerushalmi GM, Brengauz M, et al. Outcome of immature oocytes collection of 119 cancer patients during ovarian tissue harvesting for fertility preservation. J Assist Reprod Genet. 2018;35(5):851-6.
17. Kasapi E, Asimakopoulos B, Chatzimeletiou K, et al. Vitrification of human germinal vesicle oocytes: before or after in vitro maturation? Int J Fertil Steril. 2017;11(2):85-92.
Статья поступила в редакцию / The article received: 05.12.2021 Статья принята к печати / The article approved for publication: 25.02.2022
omnidoctor.ru
