CC BY
4
Краткие сообщения
УДК 628.36:614.777-078
Кандидаты мед. наук М. Ф. Даценко и A.A. Погуда
САНИТАРНО-БАКТЕРИОЛОГИЧЕСКОЕ ИЗУЧЕНИЕ ЭФФЕКТИВНОСТИ ОБЕЗЗАРАЖИВАНИЯ СТОЧНЫХ ВОД ВОРОШИЛОВГРАДА НА СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ ПОЛЯХ ОРОШЕНИЯ
Ворошиловградский медицинский институт
Мы изучали самоочищающую способность почвы по отношению к сточным водам Ворошиловграда, которые формируются из хозяйственно-бытовых стоков и стоков 30 промышленных предприятий. Стоки смешиваются в городском коллекторе и проходят биологическую очистку. Определяли общее количество сапрофитов, наличие индикаторных микроорганизмов — показателей санитарного состояния внешней среды и патогенных представителей кишечной группы инфекций. Изучению подвергали сточную воду, используемую для полива, и почву.
Микробное число определяли по общепринятой методике, коли-титр — трехэтапным бродильным методом, титр протея и титр перфрингенс— по общепринятым методикам с последующим изучением вида бактерий группы* кишечной палочки и протея. Патогенные микроорганизмы кишечной группы выделяли путем фильтрования сточной воды, суспензии почвы через мембранный фильтр № 2 с последующим рассевом на среды Эндо, Плоскирева, висмут-сульфит агар и селенитовую среду. Выделенные культуры идентифицировали по биохимическим и серологическим свойствам.
Используемая для орошения сточная вода после биологической очистки характеризовалась относительно небольшим микробным числом и очень низким коли-титром (очистные сооружения работали с перегрузкой).
Микроорганизмы группы кишечной палочки в сточной воде были представлены в основном Е. coli и Enterobacter aerogenes. Следует отметить, что показатели коли-титра и титра протея были относительно стабильными, а микробное число колебалось от 580 ООО до 1 ООО ООО. Такие колебания количества сапрофитной микрофлоры, возможно, связаны с изменением концентрации химических веществ в промышленных стоках во время дождей 1972 и 1973 гг. и отличаются от показателей 1971 г. Следует также подчеркнуть высокий титр протея при низком коли-титре. Из патогенных микроорганизмов в сточных водах обнаруживали сальмонеллы и реже — шигеллы Зонне и Флекснера.
Под наблюдением были поля, засеянные люцерной и свеклой, которые состояли из 2 участков: посев без полива, посев, поливаемый сточными водами. Последние вносили в почву с середины мая с интервалом 15—17 дней по 30 августа. Почву для исследования отбирали за сутки до полива, через 1—2 сут после полива, а также перед посевом сельскохозяйственных культур и перед их уборкой. Характеристика!?образцов почвы следующая: микробное число 1 650 000, коли-титр > 1, титр протея > 1.
Поскольку коли-титр и титр протея на полях без полива мало отличались от исходных образцов, а нарастание числа сапрофитных микроорганизмов не было связано с поливами, то результаты изучения этих полей не приводятся. Показатели изучения участков, поливаемых сточными водами, отражают первые 3 исследования за каждый год наблюдения. Поливы сточными водами в первые 2 года наблюдения приводили к значительному нарастанию микробного числа через 1—2 сут после полива, а к 14—16-м суткам количество сапрофитной микрофлоры снижалось до исходных цифр. Титр кишечной палочки через 2 нед снижался всего на 1 порядок или оставался без изменений. Перезимовавшая почва в связи с отсутствием поливов очищалась^от Е. coli полностью, хотя другие представители группы кишечной палочки определялись в титре 1 на 2-м году исследования и в титре 0,01—на 3-м году, что указывает на накопление микроорганизмов группы кишечной палочки в почве. Из образцов поливной почвы постоянно выделялись Е. Citrobacter и иногда Е. aerogenes. На 3-м году наблюдения поливы сточными водами не приводили к бурному размножению микрофлоры, что, возможно, связано с нарушением ее биоценоза.
Обнаружить зависимость титра протея и перфрингенс от степени и давности загрязнения нам не удалось. Со 2-го года наблюдения высеваемость протея после поливов резко снижалась. Титр протея повышался с 0,001 до 1 через сутки после полива, а через 15— 16 дней, как правило, восстанавливался до 0,01—0,001. Возможно, повышение титра протея через 2 нед после полива связано со способностью его размножаться в почве, богатой органическими веществами. Перфрингенс чаще обнаруживали в перезимовавшей почве, и последующие попытки обнаружить ее были безрезультатными. Патогенные микроорганизмы кишечной группы из почвы не выделялись. Выделенные 48 лактозонегативных культур оказались атипичными культурами, которые разлагали только глюкозу до кислоты или глюкозу, мальтозу, манннт и сахарозу до кислоты, или же были «инертными». Из указанных культур 5 были параагглютинабельными: 2^агглютинировались сальмонеллезными
сыворотками, 2 — дизентерийными и 1 — сальмонеллезными и дизентерийными. После пересевов в течение 6 мес 45 культур подверглись реверсии, все они принадлежали к непатогенным представителям семейства кишечных бактерий, за исключением 2 культур, типированных как сальмонеллы.
Выводы
1. Используемые для орошения промышленно-бытовые сточные воды после биологической очистки характеризуются относительно небольшим микробным числом, низким ко-лн-титром и наличием патогенных микроорганизмов — сальмонелл и шигелл.
2. Промышленно-бытовые стоки при внесении их в почву меняют соотношение сани-тарно-показательных микроорганизмов. При значительном снижении титра бактерий группы кишечной палочки (0,0001) клостридии перфрингенс и протей в ряде случаев не высеваются (>1).
3. На участках, подвергшихся в течение 2 лет орошению сточными водами, наблюдается накопление микроорганизмов группы кишечной палочки с изменением биоценоза почвы.
4. Учитывая нарушение биоценоза орошаемой стоками почвы, следует установить нормы нагрузки и время использования под полив постоянно действующих полей орошения, а также время, необходимое для полного самоочищения этих участков.
Поступила 4/XI 1974 г.
УДК в 14.37:в78.7:[57в.851.49+576.851.262
М. JI. Б рыск U Н
ВЫЖИВАЕМОСТЬ МИКРООРГАНИЗМОВ КИШЕЧНОЙ ГРУППЫ И ЗОЛОТИСТОГО СТАФИЛОКОККА НА СИНТЕТИЧЕСКИХ ПОЛИМЕРНЫХ МАТЕРИАЛАХ
Всесоюзный научно-исследовательский институт дезинфекции и стерилизации, Москва
Нами изучена выживаемость золотистого стафилококка, кишечной палочки, возбудителей брюшного тифа и дизентерии Зонне на тест-объектах из различных пластмасс — полиэтилена,1 полипропилена, полистирола, поливинилхлорида, фторопласта, полиметил-метакрилата, полиформальдегида, полиамида, поликарбоната, поливика, аминопласта и фенопласта. Тест-объекты готовили в виде пластинок размером 2X2 см. Контролем в опытах служило стекло. Образцы материалов подвергали исследованию через 3—6 мес после изготовления. Тест-объекты предварительно тщательно очищали путем обработки 1% раствором синтетического моющего средства «Новость-С» (ТУ 38-7-12-67) при 50° с последующим длительным промыванием горячей, холодной и дистиллированной водой. Далее тесты высушивали при 37° (не более 2 ч) между листками стерильной фильтровальной бумаги.
В работе использовали музейные культуры микроорганизмов: Staph, aureus, штамм № 906, Е. coli, штамм № 1257, Salm, typhi, штаммы № 675, 645 и 65, Sh. sonnei, штаммы № 6491, 5116 и 328. В связи с тем что в предварительных опытах нам не удалось установить существенных внутривидовых различий в сроках гибели возбудителей брюшного тифа и дизентерии, дальнейшие исследования проводили со штаммами S. typhi № 675 и Sh. sonnei № 6491. Для приготовления бактериальной суспензии во всех опытах использовали 18-часовые культуры микробов на мясо-пептонном агаре. 1 млрд. взвесь бактерий (в каждом опыте только 1 штамма) в физиологическом растворе в объеме 0,04 мл наносили в виде капель на пластинки изучаемых материалов так, чтобы капли были равномерно распределены на поверхности. Инфицированные тесты оставляли в чашках Петри в условиях естественного освещения при 18—22° и относительной влажности 60—69%. В разные сроки после заражения пластинки (не менее 3 пластинок каждого материала на экспозицию) переносили в широкогорлые пробирки с 10 мл физиологического раствора и встряхивали 5 мин.Отмывную жидкость засевали в чашки по методу Коха. Посевы выдерживали в термостате при 37° "в течение 24—48 ч. По мере отмирания микроорганизмов, когда чувствительность-описанной выше методики не позволяла определять их количество, устанавливали наличие или отсутствие бактерий на пластинках методом отпечатков на соответствующих селективных средах (среды Эндо, Плоскирева, висмут-сульфит агар, молочно-солевой агар). Выделенные микроорганизмы идентифицировали по стандартной методике.
Статистическую обработку полученных данных проводили по И. П. Ашмарииу и А. А. Воробьеву (1962).
Результаты экспериментов по изучению длительности выживания бактерий на полимерных материалах суммированы в таблице.
Как видно из таблицы, различные микроорганизмы могут в течение длительного времени сохранять жизнеспособность на тест-объектах из пластмасс. Наиболее устойчивыми в этих условиях оказались стафилококки; быстрее других бактерий (в течение 3— 5 сут) отмирали сальмонеллы. Материалы на основе амино- и фенолоальдегидных смол
