CC BY
59
углеводном обмене, в системе антиоксидантной защиты организма, гемодинамике, приводящие, в конечном итоге, к развитию у больных хроническим холециститом метаболического синдрома.
Литература
1.Александров О.В. и др. //РМЖ.- 2006.- №6.- С. 50-55.
2.Астраханцева Э.Л. и др // Бюллетень СО РАМН.- 2004.-№1 (111).- С. 63-112.
3.Глинский В.В. и др. Статистический анализ: Уч. пособ.- 3е изд. М.:ИНФРА-М.: Новосибирск: СО, 2002.- 241с.
4.Гончаренко М.С., Латинова А.М. // Лаб. дело.- 1985.-№1.- С. 60-61.
5.ИванчековаР.А. и др. // Тер. арх..- 2005.- С. 10-14.
6.ИльинаН.И. и др. // Иммунол.- 2000.- №5.- С. 8-9.
7.Клебанов Г.И. и др. // Лаб. дело.- 1988.- №5.- С. 59-62
8.Куликова А.Н. // Цитокины и воспаление.- 2007.-Т.6., №3.- С. 14-19.
9Маянский Д.Н. и др. Комплексная оценка функции фагоцитов при воспалительных заболеваниях: методич. реком.- Новосибирск, 1988.- 24 с.
10Моисеев С.В., Фомин В.В. // Клин. фармакол. и тер.-2004.- №13 (4).- С. 70-74
11.Северов М.В. // Клин. фармакол. и тер.- 2008.- №17 (1).-С.11-15
12.Стручков П. В. и др. // Лаб. дело.- 1987.- №7.- С. 410413
13.Титов В.Н. и др. // Клин. лаб. диагн.- 2008.-№1.- С. 2334.
14.Хворостинка В.Н. и др. // Сучасна гастроентерологія.-2004.- №3.- С. 32-34.
15.ШмелевЕ.В. и др. // Лаб. дело.- 1979.- №9.- С. 13-15.
DISTINCTIVE FEATURES OF INTERSYSTEM COMMUNICATIONS AT COMBINED COURSE OF CHRONIC CHOLECYSTITIS AND METABOLIC SYNDROME
M.V. ANTONYUK, L.A. BELIK, A.V. YURENKO,
Summary
By results of inspection in 160 patients the initial correlation analysis of clinical, immune and metabolic interrelations is lead at combined course of chronic cholecystitis and metabolic syndrome. The degree of a pressure of systems of an organism and expressiveness of intersystem mutual relations is certain at development of chronic cholecystitis.
Key words: chronic cholecystitis, metabolic syndrome.
УДК 611.018.25.017.1.086 - 055.2
РОЛЬ НЕЙТРОФИЛОВ В ФОРМИРОВАНИИ МИКРОБИОЦЕНОЗА СЛИЗИСТЫХ ОБОЛОЧЕК
Ю.С.АНДРЕЕВА, И.И. ДОЛГУШИН*
В супернатантах нейтрофилов имеется огромный арсенал бактерицидных факторов, содержание которых изменяется после активации клетки. Секреторные продукты нейтрофилов оказывают селективное действие на микробиоценоз: они снижают содержание условнопатогенной флоры, при этом, не влияя на лактофлору.
Нейтрофилы относятся к тканевым фагоцитирующим клеткам [5]. В тканях нейтрофилы осуществляют все свои эффектор-ные функции, участвуя в антимикробных и воспалительных реакциях. В последние годы показано, что значительная часть этих клеток покидает ткани и мигрирует на поверхность слизистых оболочек, где они и погибают [5]. Остается не ясным, каков биологический смысл такого «марша смерти» нейтрофилов в слизистый биослой. Не исключено, что, мигрируя на поверхность эпителия и разрушаясь в результате некробиоза или апоптоза, нейтрофилы выделяют наружу антимикробные продукты своих лизосом, которые, обладая бактерицидностью, влияют на микрофлору, заселяющую слизистые оболочки. В секретах репродук-
* Кафедра микробиологии, вирусологии и иммунологии Челябинская ГМА, 454092, г. Челябинск, Воровского, 64. Тел. (351)232-74-56
тивной системы женщин содержится значительное количество нейтрофилов [13]. В этой связи возникло предположение, что одной из функций цервикальных и вагинальных нейтрофилов является участие в регуляции микробиоценоза этих биотопов.
Цель исследования - определение роли нейтрофилов и их секреторных продуктов в регуляции микробиоценоза влагалища здоровых женщин и женщин с бактериальным вагинозом.
Материалы и методы. Для достижения поставленной цели проведено иммунологическое и микробиологическое обследование 123 женщин в возрасте 19-35 лет, из которых 32 женщины имели установленный диагноз - бактериальный вагиноз, а остальные были здоровыми. Исследования проводились в первой фазе менструального цикла. У всех пациенток при обследовании были исключены трихомониаз, гонорея, сифилис, ВИЧ-инфекция, хламидиоз, уреаплазмоз, микоплазмоз, генитальный герпес и цитомегаловирусная инфекция. Для изучения функционального ответа нейтрофилы выделяли из периферической венозной крови на двойном градиенте плотности стерильных растворов фиколла-верографина (Pharmacia, Sweden; Spofa, CSSR) (плотность верхнего слоя градиента составляла 1,075-1,077, а нижнего - 1,093-1,095) и оценивали по лизосомальную активность (Фрейдлин И.С., 1984); с помощью спонтанного и индуцированного НСТ-теста проводилось определение внутриклеточного кислородзависимого метаболизма полиморфноядерных лейкоцитов (Маянский А.Н., Виксман М.К., 1979); исследование фагоцитарной активности нейтрофилов проводилось на модели поглощения частиц полистирольного латекса (Лебедев К. А., Поня-кина И. Д., 1990) и контрольных штаммов микроорганизмов (S. aureus (штамм 209), E. coli (штамм М-17) (препарат «Колибакте-рин», ФГПУ «НПО «Микроген» МЗ РФ, г. Москва), Lactobacillus spp. (препарат «Лактобактерин сухой», фирма «ИмБио», г. Нижний Новгород), Bifidobacterium spp. (препарат «Бифидумбактерин сухой», ЗАО «Экополис», г. Ковров) [7,8].
Микробиологическое обследование проводилось с целью выявления этиологически значимого возбудителя генитальной инфекции и оценки состава микрофлоры влагалища (Приказ № 286 МЗ РФ «О совершенствовании контроля за заболеваниями, передающимися половым путем» от 07.12.93 г). Исследование на гонорею и трихомониаз проводилось по общепринятым методикам и согласно приказу № 936 МЗ СССР «Об унификации лабораторных методов исследования в диагностике гонореи и трихо-мониаза» от 12 июля 1985 г. Для определения антигенов хлами-дий, уреаплазм, микоплазм, вируса простого герпеса I,II типа, цитомегаловируса и гарднерелл использовали реакции прямой и непрямой иммунофлюоресценции (РИФ). Кроме РИФ, индикация уреаплазм проводилась на основании качественной пробы на уреазу с использованием жидкой питательной среды. Для оценки микробиоценоза влагалища проводили бактериологическое исследование, с целью количественного определения резидентной и факультативной флоры [11]. Для получения продуктов секреции нейтрофилов использовали гепаринизированную венозную кровь здоровых женщин и женщин с бактериальным вагино-зом. Нейтрофилы выделяли на двойном градиенте плотности стерильных растворов фиколла-верографина (Pharmacia, Sweden; Spofa, CSSR). Плотность верхнего слоя градиента составляла 1,075-1,077, а нижнего - 1,093-1,095. Секреторные продукты нейтрофилов получали методом, разработанным научным коллективом, возглавляемым профессором Долгушиным И. И. и опубликованным в работах 1984-2001г.
Уровень оксида азота в продуктах секреции нейтрофилов определяли по содержанию нитратов, которые регистрировали в виде нитритов по реакции Грисса, после восстановления их губчатым кадмием. Активность пероксидазы определяли на основании фотометрической регистрации понижения концентрации индигокармина, который окисляется перекисью водорода в присутствии пероксидазы [12]. Определение уровня активности лизоцима проводили с помощью нефелометрического метода [13]. Концентрацию БПИ (бактерицидный/индуцирующий протеин) и дефенсинов определяли с помощью наборов реагентов «BPI-1» и «HNP1-3» (HyCult biotechnology, Нидерланды). Использованный метод основан на двух-сайтовом твердофазном иммуноферментном анализе (ИФА). ИФА-диагностика была проведена на автоматическом ИФА-анализаторе Personal Lab. Для определения бактерицидной активности гепаринизированной крови, лейкоцитарной взвеси, нейтрофилов и их секреторных продуктов использовали классический метод [8]. Полученные
результаты подвергнуты статистической обработке с использованием пакетов статистических программ БИОСТАТ и Statistica for Windows 6.0. О достоверности различий показателей судили с помощью непараметрических критериев Крускала - Уоллиса и Манна - Уитни. При проведении множественных сравнений использовали поправку Бонферрони [4].
Результаты. Прежде чем изучить способность нейтрофи-лов и их секреторных продуктов влиять на микробиоценоз влагалища здоровых женщин и женщин с бактериальным вагинозом, нами была исследована способность бактерий, наиболее часто заселяющих влагалище, влиять на функциональный статус ней-трофилов. Функциональная активность нейтрофилов периферической крови была изучена после активации различными видами микроорганизмов (S. aureus (штамм 209), E. coli (штамм М-17), Lactobacillus spp, Bifidobacterium spp.) и частицами латекса. Исследования показали, что нейтрофилы способны фагоцитировать частицы латекса, условно-патогенные и непатогенные микроорганизмы, при этом поглотительная функция нейтрофилов была минимальна по отношению к бифидобактериям. Способность нейтрофилов к внутриклеточному киллингу оценивалась с помощью НСТ-теста, позволяющего определить активность кислородзависимых систем бактерицидности, являющихся ин-тралейкоцитарными микробоцидными факторами при фагоцитозе. Процент клеток, восстанавливающих НСТ после активации микроорганизмами и латексом, был выше исходного уровня. Отличия имелись при индукции нейтрофилов частицами латекса, E. coli и S. aureus. Индексы индуцированного стафилококками и латексом НСТ-теста, выраженные в условных единицах, были достоверно выше базальной реакции, а при индукции лакто- и бифидобактериями - значимо не отличались от исходного уровня. Лизосомальная активность не менялась при действии частиц полистирольного латекса, лакто- и бифидобактерий в сравнении с исходным уровнем свечения лизосом и была выше после взаимодействия нейтрофилов с E. coli, S. aureus.
Получены данные о том, что внутриклеточные киллинговые системы нейтрофилов активируются в большей степени продуктами E. coli (штамм М-17) и S. aureus (штамм 209), чем Lactobac-terium spp.(препарат «Лактобактерин сухой», фирма «ИмБио», г. Нижний Новгород) и Bifidobacterium spp. (препарат «Бифидум-бактерин сухой», ЗАО «Экополис», г. Ковров).
Таблица 1
Показатели уровня бактерицидных факторов в супернатантах активированных и неактивированных нейтрофилов периферической крови здоровых женщин (п=20)
Показатели Секреторные продукты нейтрофилов
СНН САНЕ САН8 САНЬ САНВ
Лизоцим, мкг/мл 0,7±0,08 0,69±0,08 0,65±0,12 0,65±0,07 0,55±0,05
Нитраты и нитриты, мкМоль/л 19,4±1,57 19.7±1,75 19,69±1,75 19,4±1,84 18,53±1,65
Пероксида-за, мкат/л 1,08±0,14 0,90±0,14 0,89±0,15 1,13±0,17 1,13±0,13
Дефенсины, нг/мл 3,24±0,42 2,55±0,53 2,29±0,43 2,15±0,33 2,46±0,58
БПИ, нг/мл 0,79±0,22 1,12±0,28 1,44±0,32 2,65±1,01 3,2±0,95*
Лактофер-рин, нг/мл 30,2±4,97 31,62±6,1 52,22±11,5 40,84±4,9 52,7±10*
Примечание: * - достоверность различий показателей по отношению к СНН; СНН - супернатант неактивированных нейтрофилов; CAHS -супернатант нейтрофилов, активированных S. aureus (штамм 209);
САНЕ - супернатант нейтрофилов, активированных E. coli (штамм М-17);
CAHL - супернатант нейтрофилов, активированных Lactobacterium spp.;
САНВ - супернатант нейтрофилов, активированных Bifidobacterium spp.
Учитывая, что нейтрофилы на поверхности слизистых оболочек оказывают антимикробное действие за счет внутри- и внеклеточного киллинга, важно было оценить бактерицидные свойства их секреторных продуктов. Нами был изучен спектр антимикробных компонентов в продуктах секреции активированных и неактивированных нейтрофилов. Для опыта использовались супернатанты неактивированных нейтрофилов и нейтрофилов, активированных в течение 30 минут при температуре +370С in vitro в присутствии различных бактериальных индукторов секреции (S. aureus (штамм 209), E. coli (штамм М-17), Lactobacterium spp., Bifidobacterium spp.). В супернатантах определяли уровень оксида азота, активность пероксидазы, содержание лизоцима, концентрацию БПИ и дефенсинов.
В супернатантах неактивированных нейтрофилов периферической крови здоровых женщин определялся широкий спектр антимикробных факторов. После активации клеток уровень антимикробных факторов в продуктах секреции меняелся: содержание бактерицидных факторов прямого действия (лизоцим, оксид азота, дефенсины) несколько снижался, в тоже время уровень противобактериальных агентов непрямого и внутриклеточного действия (лактоферрин и БПИ) повышался и в супернатантах нейтрофилов, после активации бифидобактериями, значительно превосходил исходный уровень (табл. 1)
Для оценки бактерицидного эффекта, прежде всего, было изучено исходное состояние влагалищной флоры, а затем определено влияние на ее состав гепаринизированной крови, лейкоцитарной взвеси, чистой взвеси нейтрофилов и супернатантов нейтрофилов, активированных вагинальным содержимым и супернатантов неактивированных нейтрофилов.
Для проведения исследований в день опыта у женщины забирали 0,1 мл вагинального содержимого в пробирку с 0,9 мл изотонического раствора хлорида натрия и 15 мл крови из локтевой вены в пробирку с антикоагулянтом. Цельную гепаринизиро-ванную кровь использовали в качестве тестируемого образца. Лейкоцитарную взвесь получали из гепаринизированной крови после седиментации эритроцитов. Выделение чистой взвеси нейтрофилов проводили на двойном градиенте растворов фикол-ла-верографина. Выделенные клетки доводили до концентрации 5х106 кл/мл. Секреторные продукты неактивированных нейтрофилов получали после инкубации клеток (концентрация 5х106 кл/мл) при температуре +370С в течение 30 минут без индукторов секреции. После этого клетки центрифугировали 20 мин при 3х103 об/мин, полученный супернатант фильтровали через мембранные фильтры и сразу использовали для тестирования. Секреторные продукты активированных нейтрофилов получали после инкубации клеток (концентрации 5х106 кл/мл) в тех же условиях, но в присутствии вагинального содержимого. После центрифугирования при 3х103 об/мин, полученный супернатант пропускали через мембранные фильтры и сразу использовали в опыте.
Для регистрации возможного влияния нейтрофилов, их секреторных продуктов, лейкоцитарной взвеси и гепаринизирован-ной крови на микрофлору влагалища, 0,9 мл каждого тестируемого образца соединяли с 0,1 мл вагинального содержимого. Для контр оля использ ов али 0 , 9 мл физиоло гиче с ко го раств ор а. Смесь инкубировали в течение 30 мин при температуре +370С. После инкубации из контрольной и опытных пробирок производили высев количественным методом на 5% кровяной, желточносолевой агар, на тиогликолиевую среду, среду MRS и Сабуро. Через 48 часов инкубации в эксикаторе со свечой изучали рост микроорганизмов, определяли степень обсеменения вагинальной слизи, выделяли чистые культуры и проводили их идентификацию. У здоровых женщин из влагалища в основном высевались лактобактерии, в 23% случаев встречались коагулазонегативные стафилококки и в единичных случаях - дрожжеподобные грибы и E. coli (табл. 2), что совпадало с данными литературы [1,3,9,10].
Таблица 2
Состав микрофлоры здоровых женщин и женщин с бактериальным вагинозом, lg
Вид микроорганизма Спектр вагинальной флоры 34 здоровых женщин Спектр вагинальной флоры 32 женщин с бактериальным вагинозом
Lactobacterium spp. 4,75±0,15 2,29±0,42
32 28
Staphy^o^us spp. 3,88±0,35 3,80±0,29
8 10
Candida spp. 4,00±0,00 4,33±0,33
1 3
E. coli 4,33±0,33 3,00±0,00
3 1
G. vaginalis 0 4,64±0,28
0 25
Bifidobacterium spp. 0 5,00±0,00
0 1
Proteus spp. 0 7,00±0,00
0 1
Содержание лактобактерий в пробе под действием нейтро-филов, их секреторных продуктов, гепаринизированной крови и лейкоцитарной взвеси существенно не менялось. Нейтрофилы значимо снижали лишь содержание коагулазонегативных стафилококков в вагинальной слизи. На дрожжеподобные грибы и Е.еоН все тестируемые образцы оказывали бактерицидное дейст-
вие, но значимых отличий по сравнению с контролем не выявлено. Супернатанты не- и активированных нейтрофилов, лейкоцитарная взвесь и гепаринизированная кровь существенно не влияли на состав флоры влагалища здоровых женщин.
Было продолжено исследование бактерицидной активности нейтрофилов периферической крови, их секреторных продуктов, а также лейкоцитарной взвеси и гепаринизированной крови в отношении представителей влагалищной флоры женщин с бактериальным вагинозом. При бактериальном вагинозе наблюдаются нарушения микробиоценоза влагалища, характеризующиеся снижением удельного веса лактобактерий и ростом уровня условно-патогенных микроорганизмов.
Одним из проявлений такого состояния является нормальное содержание лейкоцитов в вагинальной слизи [9] и практически полное отсутствие классической воспалительной реакции.
У женщин с бактериальным вагинозом из влагалища выделяется более широкий спектр микроорганизмов, чем у здоровых женщин (табл. 2). Наряду с лактобактериями, которые определялись в более низких титрах, из влагалища в 78% случаев высевали гарднереллы, в 30% случаев встречались коагулазонегативные стафилококки и в единичных случаях - дрожжеподобные грибы, бифидобактерии, E. соН и протей, что совпадает с данными литературы [1,10]. При исследовании влияния нейтрофилов и их медиаторов на флору вагинальной слизи было отмечено снижение содержания в секрете количества стафилококков под действием секреторных продуктов нейтрофилов, лейкоцитарной взвеси и гепаринизированной крови (табл. 3).
Инкубация с вагинальным секретом очищенной фракции нейтрофилов не оказывала существенного влияния на уровень стафилококков. Нейтрофилы (НФ), супернатант неактивированных (СНН) и активированных (САН) нейтрофилов, лейкоцитарная взвесь (ЛВ) и гепаринизированная кровь значимо снижали содержание гарднерелл в вагинальной слизи. Супернатанты активированных и неактивированных нейтрофилов содержат токсические формы кислорода, губительно действующие на анаэробную флору. Кроме того, IgG - антитела, которые в больших количествах определяются в сыворотке и вагинальной слизи женщин с бактериальным вагинозом [6] обладают опсонически-ми свойствами и могут стимулировать адгезию, дегрануляцию нейтрофилов и облегчать киллинг микроорганизмов [2].
Таблица 3
Влияние нейтрофилов и их секреторных продуктов на количество коагулазонегативных стафилококков, G. vaginalis, бифидобактерий, бактерий рода Proteus, дрожжеподобных грибов рода Candida, E.coli и лактобактерий в вагинальной слизи женщин с бактериальным вагинозом, lg
Вид микроорганизма Конт- роль кровь ЛВ НФ СНН САН
1 2 3 4 5 6
Staphylococcus spp. 3,80 1,00 1,29 2,00 0,40 1,71
0,29 0,68 0,64 0,63 0,40 0,52
Pl-2 0,007 P1-3 0,006 P1-5 0,002 P1-6 0,005
G. vaginalis 4,64 2,35 2,50 1,53 2,54 2,38
0,28 0,65 0,57 0,53 0,57 0,55
Pl-2 0,002 P1-3 0,002 P1-4 0,001 P1-5 0,005 6 02 P0,
Bifidobacterium spp. 5,00 3,00 3,00 0,00 3,00 4,00
0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00
Proteus spp. 7,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00
0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00
E.coli 3,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00
0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00
Candida spp 4,33 3,00 2,67 3,00 3,00 3,00
0,33 1,53 1,76 1,00 1,00 0,00
Lactobacterium spp. 2,29 5,35 3,17 2,30 1,20 1,41
0,42 0,48 0,49 0,67 0,63 0,45
28 20 23 20 10 17
Pl-2 0,00005 P2-3 0,001 P2-5 0,0002 P2-6 0,00002
имеют биологический смысл, возможно, именно так ежемесячно идет саморегуляция состава флоры генитального тракта.
В результате проведенных исследований можно сделать вывод о том, что нейтрофилы и их секреторные продукты обладают широким спектром антимикробных факторов и оказывают регулирующее и нормализующее влияние на состав флоры слизистых оболочек, тем самым, участвуя в селективной деконтаминации влагалищного биотопа. Бактериальный вагиноз - это эпителиальная инфекция, и, по-видимому, дефицит локальной лейкоцитарной реакции может быть одной из причин развития вагинального дисбиоза. В то же время восполнение этих клеток в секрете нормализует влагалищную флору.
Результаты позволяют заключить, что нейтрофилам и их секреторным продуктам принадлежит роль в регуляции микробиоценоза влагалища женщин, и, наряду с эпителиальными клетками влагалища, вагинальной слизью, микрофлорой генитального тракта и другими факторами неспецифической защиты они участвуют в формировании колонизационной резистентности слизистых оболочек репродуктивной системы женщины.
Нейтрофилы и их секреторные продукты участвуют в регуляции измененного микробиоценоза влагалища, поскольку обладают селективной бактерицидностью: они подавляют рост условно-патогенной флоры и не влияют на резидентные бактерии влагалищного биотопа. Полученные данные расширяют представление об участии нейтрофилов и их секреторных продуктов в формировании микробиоценоза слизистых оболочек гениталий женщины, открывают перспективу для проведения клинических испытаний локального использования аутологичных секреторных продуктов нейтрофилов в комплексе с основной терапией с целью оптимизации коррекции дисбиотических состояний репродуктивной системы женщин, повышения качества лечения больных с бактериальным вагинозом, а также для детального изучения механизмов бактерицидности продуктов нейтрофилов.
Литература
1.Бактериальный вагиноз: Пос. для врачей / Л.В. Кудрявцева и др.- М., 2003.
2.Барсуков А А. и др.// Успехи совр. биол.-2004.- Т. 124, № 6 - С. 542-554.
ЪВалышев А.В. и др.//Ж. микробиол., эпидемиол. и имму-нобиол. .-2001.-№ 4.- С. 78-84.
4 . Г л а н ц С. М ед и ко - б и о ло г ич е с кая стати с тика . - М . : Пр ак-тика, 1999.
5.Долгушин И.И., Бухарин О.В. Нейтрофилы и гомеостаз -Екатеринбург : Изд-во УрОРАН, - 2001.
6.Долгушина В.Ф. и др // Ж. микробиол.- 2001.- №4.- С. 89.
7.Иммунологические методы / Под ред. Г. М. Фримеля.- М.: Медицина, 1987.
8.Иммунологические методы исследования: Уч. пос./Под ред. Е.А. Олейникова, Л.Я. Эберта.- Саранск, 1981.
9.Кафарская Л.и др. //Ж. микробиол.- 2002.- № 6.- С. 91.
10.Кира Е.Ф. Бактериальный вагиноз.- Спб.: Нева-Люкс,
2001.
11.Об унификации микробиологических (бактериологических) методов исследования, применяемых в клиникодиагностических лабораториях лечебно-профилактических учреждений: приказ М-ва здравоохранения СССР № 535 от 22 апреля 1985 г.- М., 1985.
12.Показатели липидного обмена в сыворотке крови практически здорового населения, проживающего в южно-уральском регионе в условиях адаптации к климатическим и техногенным воздействиям: Метод.рекомендии / Э.Н. Коробейникова, А.В. Зурочка, Е.В. Евдокимова и др.- Челябинск, 2001.
13. Телешева Л.Ф. Иммунологические факторы секретов репродуктивного тракта женщин: Дис. ... докт. мед. наук.- Челябинск, 2000.
Примечание: р - достоверность различий показателей; кровь - гепаринизированная кровь; ЛВ - лейкоцитарная взвесь;НФ - нейтрофилы;
СНН - супернатант неактивированных нейтрофилов; САН- супернатант нейтрофилов, активированных вагинальным содержимым
При изучении влияния продуктов нейтрофилов на лактофлору было обнаружено незначительное бактерицидное действие супернатантов на эти бактерии. Добавление цельной крови к вагинальному содержимому женщин с бактериальным вагинозом стимулирует рост лактобактерий (табл. 3). Это может быть связано с наличием факторов роста для лактобактерий в гепаринизи-рованной крови. Циклические менструальные кровотечения
THE ROLE OF NEUTROPHILS IN MICROBIOCENOSIS FORMATION OF LACTOFLORA
YU.S. ANDREEVA, I.I DOLGUSHIN Summary
The arsenal of bactericidal factors is available in supernatants of neutrophils, maintenance which changes after activation of a cell. The secrets products of neutrophils have selective an effect on microbio-cenosis: they considerably reduce the maintenance of its conditional-pathogenic flora, thus, not influencing on lactoflora.
Key words: microbiocenosis, neutrophils, lactoflora.
