CC BY
3УДК 619:576.895.2:616-093/-098
РОЛЬ НАКОЖНЫХ КЛЕЩЕЙ ВИДА SARCOPTES SPP. В ВОЗНИКНОВЕНИИ БАКТЕРИАЛЬНЫХ ОТИТОВ У ЛАБОРАТОРНЫХ
ГРЫЗУНОВ
А.А. Миронова - доктор ветеринарных наук; гл. научный сотрудник.
SPIN-код: 2629-3059; AuthorlD (РИНЦ): 1079519; Author ID (Scopus): 55315639100; Researcher ID (WoS): ABD-4004-2021; ORCID: 0000-0001-54878394
А.П. Марченко - младший научный сотрудник, телефон: 89616944547, почта: marchenko.alex94@ yandex.ru, ORCID: 0000-0001-7385-5411.
Северо-Кавказский зональный научно- исследовательский ветеринарный институт «Федеральный Ростовский аграрный научный центр», адрес: 346421, Новочеркасск, Ростовское шоссе, 0
Л.П. Миронова - доктор ветеринарных наук; профессор кафедры терапии и пропедевтики SPIN-код: 7132-9082; AuthorID (РИНЦ): 384754; Author ID (Scopus): 56377146600; Researcher ID (WoS): ABD-5941-2021; ORCID: 00000001-7263-3307.
Федеральное государственное бюджетное учреждение высшего
образования «Донской государственный аграрный университет», п.
Персиановский, Ростовская область, Россия.
Аннотация. Проведенными исследованиями доказано, что саркоптоз широко распространен среди грызунов вида Mus albus officinarum и Rattus norvegicus domestica, возбудителем является Sarcoptes cunicili. Установлено, что крысы наиболее предрасположены к заболеванию. При бактериальных отитах выявлены бактерии родов Enterococcus, Staphylococcus, Streptococcus, Escherichia, выявляемое количество которых взаимосвязано со степенью инвазированности животных накожными паразитами, а полученное значение корреляции между признаками (0,78) свидетельствует о хорошо выраженной прямой зависимости между анализируемыми показателями, поэтому
практикующим ветеринарным врачам рекомендуем проводить лечение, как при паразитарно-бактериальной ассоциации патогенов.
Ключевые слова: грызуны, саркоптоз, экстенсивность инвазии (ЭИ), интенсивность инвазии (ИИ), отиты, микробиология, паразитология.
ROLE OF SKIN MITES SARCOPTES SPP. IN THE APPEARANCE OF BACTERIAL OTITIS IN LABORATORY AND DOMESTIC RODENTS
A.A Mironova - Doctor of Veterinary Sciences; Ch. Researcher. SPIN code: 26293059; AuthorlD (RSCI): 1079519; Author ID (Scopus): 55315639100; Researcher ID (WoS): ABD-4004-2021; ORCID: 0000-0001-5487-8394 A.P. Marchenko - junior researcher, phone: 89616944547, email: [email protected], OCID: 0000-0001-7385-5411.
North Caucasus Zonal Research Veterinary Institute "Federal Rostov Agrarian Research Center", address: 346421, Novocherkassk, Rostov highway, 0
L.P. Mironova - Doctor of Veterinary Sciences; Professor of the Department of Therapy and Propaedeutics. SPIN code: 7132-9082; AuthorID (RSCI): 384754; Author ID (Scopus): 56377146600; Researcher ID (WoS): ABD-5941-2021; ORCID:
0000-0001-7263-3307.
Federal State Budgetary Institution of Higher Education "Don State Agrarian University", Persianovsky village, Rostov region, Russia.
Annotation. Studies have proven that sarcoptic mange is widespread among rodents of the species Mus albus officinarum and Rattus norvegicus domestica, the causative agent is Sarcoptes cunicili. It has been established that rats are most predisposed to the disease. In bacterial otitis, bacteria of the genera Enterococcus, Staphylococcus, Streptococcus, Escherichia were identified, the detected quantity of which is interconnected with the degree of infestation of animals by skin parasites, and the obtained correlation value between the signs (0.78) indicates a well-defined direct relationship between the analyzed indicators, therefore, practicing veterinarians. We recommend treatment as for parasitic-bacterial association of pathogens.
Key words: rodents, sacroptosis, extent of invasion (EI), intensity of invasion (II), host specificity, otitis, bacteriological analysis, microbiology, parasitology
Введение. Одним из выдающихся открытий второй половины XVII века является изобретение ученого А. Ван Левенгука прибора увеличения микроскопа,что впоследствии позволило человеку открыть для себя огромный удивительный мир недоступных невооруженному глазу микроорганизмов.
Первый микроскоп в значительной степени отличался от оборудования наших дней, но все же при его использовании ученому удалось внести огромный вклад в естественные науки: описать клетки инфузорий, многих бактерий, которых он обозначил термином «Анималикулы», эритроцитов. Это явилось началом огромного научного прогресса и стало точкой зарождения таких направлений, как микробиология, протозоология, микология [2].
Современный мир значительно преобразил знания, полученные в XVII веке. К примеру, благодаря изобретению световых микроскопов стало возможно не только детально рассмотреть функциональную единицу организма клетку, но и описать строение и даже биохимические процессы, происходящие в органеллах. Так было обнаружено, что одним из характерных признаков и отличительной особенностью бактериальных клеток является отсутствие оформленного ядра. Хитин является составной частью клеточной стенки грибов. Вирусная частица - неклеточной формой жизни, образованной из генетического материала, покрытого белковой оболочкой. Полученные знания впоследствии стали одной из главных причин внесения изменений в классификацию живых организмов, поспособствовали преобразованию и появлению новых таксономических групп [1].
На сегодняшний момент в паразитологии выделено несколько групп возбудителей паразитарных заболеваний, представленных простейшими, гельминтами, насекомыми, паукообразными и другими. Наибольший интерес среди специалистов ветеринарных и медицинских направлений представляют акарозные болезни человека и животных. Причиной того является их высокая
адаптационная способность паразитов, повсеместное распространение, способность выступать непосредственным участником в переносе многих инфекционных заболеваний: Yersinia pestis, Borrelia spp., Rickettsia prowazekii, подчеркивает важность изучения данного вопроса [3]. Установлено, что в некоторых регионах цикл развития многих организмов данной группы может поддерживаться круглогодично, а интенсивность заражения может достигать критических значений, часто на фоне паразитарных поражений кожи вторично развиваются бактериальные осложнения.
У декоративных и лабораторных грызунов наиболее часто отмечают болезни, вызываемые накожными клещами родов Sarcoptes, Notoedres, Psoroptes, Chorioptes [4]. Характерными симптомами при поражении накожными клещами является наличие локальных и множественных поражений глубоких и поверхностных слоев кожи. Клещи становятся причиной интенсивного зуда, выпадения волос, множественных очагов воспаления кожи с образованием струпа [8]. Все это приводит к снижению общей резистентности организма, развитию интоксикации продуктами жизнедеятельности клещей, осложнению вторичными бактериальными инфекциями и может привести к гибели животных [5, 6].
Вопрос паразитозов декоративных и домашних грызунов изучен недостаточно, поэтому мы своей работе поставили цель - изучить бактериальные отиты лабораторных и домашних грызунов, возникающие на фоне заражения накожными клещами.
Поставленная цель исследований выполнялась поэтапным решением следующих задач: 1) проведением диагностических исследований у животных с подозрением на заражение Sarcoptes spp. с последующей идентификацией возбудителя; 2) определением паразитологических показателей, включающих расчет интенсивности, экстенсивности инвазии, степени инвазированности; 3) осуществлением бактериологического анализа полученного отделяемого ушной раковины с определением выделенных микроорганизмов.
Материалы и методы. При проведении собственных исследований материалом служили лабораторные грызуны вида Mus albus officinarum и Rattus norvegicus domestica. На основании общего осмотра и анамнестических данных сформировали опытные и контрольные группы животных.
С диагностической целью отобранный стерильным лезвием струп с пораженных участков кожи грызунов переносился на предметное стекло с предварительно нанесенной на него небольшой каплей керосина, внимательно изучали под малым увеличением микроскопа морфологию паразита; после чего подсчитывалось среднее значение обнаруженных особей в 25 полях зрения [8].
Бактериологический анализ экссудата из ушной раковины и последующая идентификация полученных микроорганизмов осуществлялись с использованием сред: желточно-солевого агара (ЖСА), мясо-пептонного агара (МПА), среды Эндо по общепринятым микробиологическим методикам [2].
Результаты исследований. В процессе проведения исследований у всех зараженных грызунов выявили паразита Sarcoptes cunicili.
У крыс (Rattus norvegicus domestica) интенсивность инвазии (ИИ) была
13,94 ± 8,8; экстенсивность инвазии (ЭИ) составила 37,5%, у мышей (Mus albus officinarum) 6,86 ± 2,33 и 18,5%, соответственно.
При сравнении полученных значений зараженных саркоптозом животных паразитологические показатели у крыс (Rattus norvegicus domestica)
превосходили таковые у мышей (Mus albus officinarum) по ИИ в 2,0 раза, по ЭИ - в 2,1 раза, что может свидетельствовать об их наибольшей предрасположенности к возбудителю саркоптоза.
Для определения взаимосвязи между паразитологическими и бактериологическими показателями зараженных грызунов распределили с учетом среднего значения диагностируемых накожных клещей в несколько групп, что приняли за показатель степени их инвазированности.
Таблица. 1 Результат определения паразитологических показателей животных, зараженных Sarcoptes spp. в соответствии с их видовой принадлежностью.
Показатели Крысы пораженные Sarcoptes cunicili Мыши пораженные Sarcoptes cunicili
Количество животных 22 27
ИИ (Интенсивность инвазии) 13,94 ± 8,8 6,86 ± 2,33
ЭИ (Экстенсивность инвазии) 37,5% 18,5%
Процентное соотношение животных зараженных арахнозами рода Sarcoptes cunicili (1-7 особей) 33,3% 80,0%
Процентное соотношение животных зараженных арахнозами рода Sarcoptes cunicili (8-15 особей) 33,3% 20,0%
Процентное соотношение животных зараженных арахнозами рода Sarcoptes cunicili (16 и более) 33,3% -
Таким образом, преобладающей группой среди зараженных мышей (Mus albus officinarum) являлись низкоинвазированные животные, процентное соотношение которых составило 80% от общего количества инвазированных. В наименьшей степени у мышей было зафиксировано среднее значение данного показателя. С высокой степенью инвазированности было установлено 20% от общего числа мышей, подвергнутых диагностике.
У крыс (Rattus norvegicus domestica) низкоинвазированных, среднеинвазированных и высокоинвазированных возбудителем саркоптоза грызунов составило было поровну - по 33,3% (таблица 1).
Следующим этапом исследований было определение микробиологических показателей зараженных животных.
Таблица 2. Результаты бактериологического исследования ушного
экссудата в зависимости от степени инвазированности.
Исследуемый показатель (1х104 КОЕ/г) Полученные при исследовании показатели животных, инвазированных Sarcoptes cunicili Клинически здоровые животные (контрольная группа)
Низкая степень инвазированно сти (1-7 особей) Средняя степень инвазированност и (8-15 особей) Высокая степень инвазированност и (16 и более)
Зараженные саркоптозом крысы вида Rattus norvegicus domestica
Enterococcus spp. 0,70 ± 0,26*** 3,5 ± 3,0*** 37,04 ± 29,74*** 0,01 ± 0,005
Staphylococcus spp. 0,7 ± 0,2 7,3 ± 39,6*** 77,4 ± 72,1*** 0,7 ± 0,3
Streptococcus spp. 0,20 ± 0,07 5,3 ± 23,8*** 25,3 ± 10,1*** 0,20 ± 0,08
Escherichia spp. 1,53 ± 0,40 — 38,2 ± 32,3 —
Bacillus spp. - - - -
Зараженные саркоптозом мыши вида Mus albus officinarum
Enterococcus spp. 0,40± 0,12** 2,7 ± 2,1*** - 0,20 ± 0,01
Staphylococcus spp. 0,50 ± 0,26 5,30 ± 2,20*** — 0,50 ± 0,03
Streptococcus spp. 0,1 ± 0,07 2,2 ± 1,2*** - 0,10 ± 0,06
Escherichia spp. 0,23 ± 0,13*** — — —
Bacillus spp. — — — —
Примечание: *** - р < 0,001; ** - р < 0,01; * - р < 0,05;
У больных животных были идентифицированы бактерий родов Enterococcus, Staphylococcus, Streptococcus, Escherichia, варьировавшее в зависимости от степени инвазированности.
Так, у инвазированных крыс (Rattus norvegicus domestica) в зависимости от степени инвазированности количество бактерий превосходило показатели клинически здоровых животных: Enterococcus в 7,0-37,04 раз; Staphylococcus в 10,43-110,57 раз; Streptococcus в 26,5-126,5 раз; Escherichia в 1,5-38,2 раз соответственно. Средние значения найденных микроорганизмов у зараженных
саркоптозом мышей (Mus albus officinarum) преобладали над таковыми у
животных контрольных групп в зависимости от степени инвазированности: Enterococcus в 2,0-13,5 раз, Staphylococcus в 10,6 раз, Streptococcus в 22,0 раза, Escherichia в 23 раза.
Установлено, крысы вида Rattus norvegicus domestica и мыши вида Mus albus officinarum, зараженные Sarcoptes cunicili наиболее подвержены бактериальным осложнениям Enterococcus spp., Staphylococcus spp., Streptococcus spp. Следует отметить, что количество микроорганизмов в большинстве случаев взаимосвязано со степенью инвазированности животных накожными паразитами, о чем свидетельствует полученное значение корреляции между признаками (0,78), указывающее на прямую зависимость между анализируемыми показателями.
Заключение. Таким образом, нашими исследованиями доказано, что при поражении животных накожными клещами вида Sarcoptes spp. одновременно
регистрируются отиты бактериальной этиологии, вызванные Enterococcus spp., Staphylococcus spp., Streptococcus spp., поэтому практикующим ветеринарным врачам рекомендуем проводить лечение, как при паразитарно-бактериальной ассоциации патогенов.
Библиографический список
1. Болатчиев, К.Х. Результаты эпизоотологического и эпидемиологического мониторинга по токсокарозу на юге России / К. Х. Болатчиев // Российский паразитологический журнал. - 2019. - Т. 13, № 4. - С. 17-24. - DOI 10.31016/1998-8435-2019-13-4-17-24. - EDN TFZHWZ.
2. Бабичев С. А. Медицинская микробиология, иммунология и вирусология. Учебное пособие для медицинских вузов / С. А. Бабичев . -Санкт-Петербург : СпецЛит, 2010. - 778с. - ISBN 978-5-299-00425-0
3. Изучение влияния ассоциативного проявления Cheyletiella spp. и Trichodectes spp. на цитологические показатели лабораторных животных с учетом инокуляционной особенности / А. П. Марченко, А. А. Миронова, Л. П. Миронова, Л. Н. Фетисов // Ветеринария Кубани. - 2023. - № 1. - С. 26-28. -DOI 10.33861/2071-8020-2023-1-26-28. - EDN ABMYPM.
4. Латыпов, Д. Г. Паразитарные болезни кроликов : учебное пособие для вузов / Д. Г. Латыпов, Р. Р. Тимербаева, Е.Г.Кириллов.- Санкт-Петербург : Лань, 2021.- 108 с.
5. Латыпов, Д. Г. Паразитарные болезни плотоядных животных : учебное пособие для вузов / Д. Г. Латыпов, Р. Р. Тимербаева, Е. Г. Кириллов. -2-е изд., стер. - Санкт-Петербург : Лань, 2022.- 208с.
6. Латыпов, Д.Г. Гельминтозы животных опасные для человека: учебное пособие для вузов / Латыпов Д.Г. стер. - Санкт-Петербург: Лань, 2021. - 440с.
7. Титов, Н.С. Паразитология, и инвазионные болезни животных. Ветеринарная гельминтология: методические указания / Титов Н.С., Датченко О.О., Ермаков В.В. стер. - Санкт-Петербург : Лань, 2020. - 60с.
8. Форейт, У.Дж. Ветеринарная паразитология. Справочное руководство / перевод с английского Н. В. Молотовой. - Москва : Аквариум Принт, 2019. - 248 с.
Reference
1. Bolatchiev, K. Kh. Results of epizootological and epidemiological monitoring of toxocariasis in the south of Russia / K. Kh. Bolatchiev // Russian Journal of Parasitology. - 2019. - T. 13, №. 4. - P. 17-24. - DOI 10.31016/19988435-2019-13-4-17-24. - EDN TFZHWZ.
2. Babichev S. A. Medical microbiology, immunology and virology. Textbook for medical universities / S. A. Babichev. - St. Petersburg: SpetsLit, 2010. - 778 p. -ISBN 978-5-299-00425-0
3. Study of the influence of the associative manifestation of Cheyletiella spp. and Trichodectes spp. on the cytological parameters of laboratory animals taking into account the inoculation features / A. P. Marchenko, A. A. Mironova, L. P. Mironova, L. N. Fetisov // Veterinary Science of Kuban. - 2023. - №. 1. - p. 26-28. - DOI 10.33861/2071-8020-2023-1-26-28. - EDN ABMYPM.
4. Latypov, D. G. Parasitic diseases of rabbits: a textbook for universities / D. G. Latypov, R. R. Timerbaeva, E. G. Kirillov. - St. Petersburg: Lan, 2021. - 108 p.
5. Latypov, D. G. Parasitic diseases of carnivores: a textbook for universities / D. G. Latypov, R. R. Timerbaeva, E. G. Kirillov. - 2nd ed., ster. - St. Petersburg: Lan, 2022. - 208 p.
6. Latypov, D.G. Helminth infections of animals dangerous to humans: a textbook for universities / Latypov D.G. erased - St. Petersburg: Lan, 2021. - 440 p.
7. Titov, N.S. Parasitology and invasive animal diseases. Veterinary helminthology: guidelines / Titov N.S., Datchenko O.O., Ermakov V.V. erased - St. Petersburg: Lan, 2020. - 60 p.
8. Foreyt, W. J. Veterinary parasitology. Reference guide / translation from English by N.V. Molotova. - Moscow: Aquarium Print, 2019. - 248 p.
