CC BY
206
Для корреспонденции
Елизарова Елена Викторовна - кандидат медицинских наук,
доцент кафедры гигиены питания и токсикологии
ИПО ФГАОУ ВО Первый МГМУ им. И.М. Сеченова Минздрава
России (Сеченовский Университет)
Адрес: 119991, Российская Федерация, г. Москва,
ул. Трубецкая, д. 8, стр. 2
Телефон: (916) 561-16-56
E-mail: enota--@mail.ru
https://orcid.org/0000-0001-5300-8688
Ших Е.В., Махова А.А., Дорогун О.Б., Елизарова Е.В.
Роль фитатов в питании человека
Федеральное государственное автономное образовательное учреждение высшего образования Первый Московский государственный медицинский университет имени И.М. Сеченова Министерства здравоохранения Российской Федерации (Сеченовский Университет), 119991, г. Москва, Российская Федерация
I.M. Sechenov First Moscow State Medical University, Ministry of Health of the Russian Federation (Sechenov University), 119991, Moscow, Russian Federation
Утверждение о том, что потребление зерновых, богатых фитатами, по определению ухудшает минеральный статус, требует уточнения в связи с получением новых данных о роли фитиновых кислот (ФК) из цельнозерновых продуктов в улучшении прогнозов по состоянию здоровья населения. В связи с этим представляется целесообразным привлечь внимание практикующих врачей к необходимости коррекции рациона питания с целью профилактики неинфекционных заболеваний.
Цель данного обзора - обобщение и анализ современных данных о роли фитатов в питании человека.
Материал и методы. Проведен поиск отечественной и зарубежной литературы в библиографических базах статей по медицинским наукам через поисковые системы PubMed, MEDLINE и eLibrary.
Результаты. Недостаточность макро- и микроэлементов в рационе питания, особенно дефицит железа, кальция, селена, цинка, йода, - актуальная проблема здравоохранения многих стран. Недостаток кальция, магния, цинка, селена и железа связан с нарушением иммунной функции и повышенным риском развития как острых, так и хронических заболеваний. Веганский и вегетарианские стили поведения с ограничением и исключением животных источников биодоступных макро- и микроэлементов набирают все большую попу-
Финансирование. Исследование не имело спонсорской поддержки. Конфликт интересов. Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.
Вклад авторов. Концепция и дизайн исследования - Ших Е.В., Махова А.А.; сбор и обработка данных - Дорогун ОБ., Махова А.А.; написание текста - Ших Е.В., Махова А.А., Елизарова Е.В.; редактирование, утверждение окончательного варианта статьи, ответственность за целостность всех частей статьи - все авторы.
Для цитирования: Ших Е.В., Махова А.А., Дорогун ОБ., Елизарова Е.В. Роль фитатов в питании человека // Вопросы питания. 2023. Т. 92, № 4. С. 20-28. DOI: https://doi.org/10.33029/0042-8833-2023-92-4-20-28 Статья поступила в редакцию 12.07.2023. Принята в печать 14.08.2023.
Funding. The study did not have sponsorship.
Conflict of interest. The authors declare no conflict of interest.
Contribution. Concept and design of the study - Shikh E.V., Makhova A.A.; data collection and processing - Dorogun O.B., Makhova A.A., writing the text - Shikh E.V., Makhova A.A., Elizarova E.V.; editing, approval of the final version of the article, responsibility for the integrity of all parts of the article - all authors.
For citation: Shikh E.V., Makhova A.A., Dorogun O.B., Elizarova E.V. The role of phytates in human nutrition. Voprosy pitaniia [Problems of Nutrition]. 2023; 92 (4): 20-8. DOI: https://doi.org/10.33029/0042-8833-2023-92-4-20-28 (in Russian) Received 12.07.2023. Accepted 14.08.2023.
The role of phytates in human nutrition
Shikh E.V., Makhova A.A., Dorogun O.B., Elizarova E.V.
лярность в нашей стране. ФК - основная форма хранения фосфора в орехах, зерновых, бобовых и семенах, которая удовлетворяет потребности биосинтеза растущих тканей во время прорастания. ФК известна как пищевой ингибитор, который хелатирует макро- и микроэлементы, ограничивая их биодоступность и снижая их усвоение. Методы предварительной обработки для снижения уровня фитатов и повышения пищевой ценности рационов - это ферментация, замачивание, проращивание. Снижение содержания фитатов в продуктах растительного происхождения путем обработки приводит к измеримому улучшению минерального статуса, однако хелатирующие и антиоксидантные свойства фитатов могут быть полезными, и в настоящее время изучаются их возможности в профилактике онкологических, сердечно-сосудистых заболеваний, сахарного диабета и камнеобразования в почках.
Заключение. Рекомендуется потреблять пищу, богатую цельными зернами, бобовыми, овощами, семенами и орехами, несмотря на то, что большинство из них имеют относительно высокое содержание ФК. Несмотря на некоторые антинутриентные свойства, ФК обладают профилактическими эффектами на здоровье населения.
Ключевые слова: фитиновые кислоты; фитаты; биодоступность; антину-триенты; дефицит минеральных веществ; антиоксиданты; веганство
Claims that consumption of phytate-rich grains, by definition, worsens mineral status needs to be clarified as new evidence emerges about the role of phytic acids (FA) from whole grains in improving population health outcomes. In this regard, it seems appropriate to draw the attention of practitioners to the need to correct patient's diet in order to prevent non-communicable diseases.
The aim of this review was to generalize and analyze the modern data on the role of phytates in human nutrition.
Material and methods. A search for domestic and foreign literature in the bibliographic databases of articles on medical sciences was carried out using the PubMed, MEDLINE and eLibrary search engines.
Results. Deficit of minerals and trace elements in the diet, especially deficiency of iron, calcium, selenium, zinc, iodine, is an urgent public health problem in many countries. Calcium, magnesium, zinc, selenium, and iron deficiencies are associated with impaired immune function and an increased risk of both acute and chronic diseases. Vegan and vegetarian behavior styles with the restriction and exclusion of animal sources of bioavail-able minerals and trace elements are gaining more and more popularity in our country. FA is the main storage form of phosphorus in nuts, grains, legumes, and seeds, which satisfies the biosynthesis needs of growing tissues during germination. FA is known as a dietary inhibitor that chelates minerals and trace elements, limiting their bioavailability and reducing their absorption. Pre-treatment methods to reduce phytate levels and increase the nutritional value of diets are fermentation, soaking, and sprouting. Reducing phytate content in plant foods by processing leads to a measurable improvement in mineral status, however, the chelating and antioxidant properties of phytates may be beneficial and their potential in the prevention of cancer, cardiovascular disease, diabetes mellitus and kidney stone formation is currently being studied.
Conclusion. Essential components of a healthy diet are whole whole grains, legumes, vegetables, seeds and nuts, despite the fact that most of them are relatively high in FA. Despite some antinutrient properties, FAs have preventive effects on public health. Keywords: phytic acids; phytates; bioavailability; antinutrients; mineral deficiency; antioxidants, veganism
Биодоступность микроэлементов из ежедневного рациона человека зависит от множества факторов, в том числе от содержания микроэлементов в отдельных видах пищевых продуктов, способов их приготовления, активности пищеварительных ферментов, эффективности абсорбции в кишечнике [1]. В настоящее время отмечается дефицит в рационах питания ряда микро-нутриентов (железо, цинк, селен, йод, витамины) вследствие сформировавшихся у населения пищевых привычек и действия ряда социальных факторов [2].
К группам риска по развитию этих дефицитов относятся дети и подростки в период активного роста; беременные и кормящие женщины [2]; лица, находящиеся под действием хронического стресса, в том числе социального джетлага [3]. Длительный прием ряда лекарственных средств, особенно у пожилых людей, также может негативно влиять на обеспеченность организма некоторыми микронутриентами [4]. Дефицит ряда критичных микроэлементов является фактором, предрасполагающим к развитию заболеваний, например к железо-
и йоддефицитных состояний [4]. В частности, дефицит железа отрицательно сказывается на течении и исходах беременности; формировании плода; здоровье новорожденного; на физическом и ментальном развитии детей, устойчивости к инфекциям; трудоспособности взрослого населения; течении хронических заболеваний; продолжительности и качестве жизни. Цинк участвует в росте и дифференцировке клеток, а его дефицит может вызывать нарушение роста, иммунную дисфункцию, аномальное нейробихевиоральное развитие, приводит к повышению заболеваемости респираторными инфекциями [5]. С гипомагниемией ассоциировано развитие ряда заболеваний, к числу которых относят аритмию, сахарный диабет, остеопороз и др. [6].
Увеличиваются ограничительные паттерны пищевого поведения среди населения, в том числе веганство, вегетарианство, пищевая аллергия, особенно на белок коровьего молока [6, 7]. Лица, придерживающиеся веганства/вегетарианства, в рационе делают акцент на нерафинированные зерновые и бобовые продукты, но содержащиеся в них макро- и микроэлементы обладают низкой биодоступностью. Биодоступность минеральных веществ in vitro значительно варьирует в зависимости от самого элемента, его химических свойств и типа пищевой матрицы. Биодоступность из зерновых культур является низкой как за счет относительно низкого содержания минеральных веществ, так и за счет фитиновой кислоты (ФК) и других антинутриентных факторов, снижающих их биодоступность до 5-15% и ниже. В связи с этим при смещении структуры питания в пользу растительной пищи повышаются риски микроэлементных дефицитов. Следует отметить, что содержание минеральных веществ, фосфора и фитата в отрубях намного выше, чем в цельном зерне [8].
Известно, что в зависимости от страны, культуры питания и доступности пищевых продуктов ежедневное потребление фитатов различается. Имеются значимые различия в потреблении фитатов с рационами между западными странами с высоким уровнем дохода и странами с низким уровнем дохода на душу населения в таких регионах, как Южная и Юго-Восточная Азия и Центральная Африка, а также между городскими (крупными городами) и сельскими районами [9].
Фитиновая кислота (IP6) представляет собой диги-дрогенфосфатный эфир инозитола, также называемый мио-инозитол-1,2,3,4,5,6-гексакисфосфат. Цифры 1-6 означают наличие 6 потенциальных сайтов связывания. ФК - основная форма хранения фосфора и благодаря своему сродству к ионам металлов хелатирует катионы Zn2+ и Fe2+, Mg2+, Ca2+, K+, Mn2+ и Cu2+. Во время развития семян ФК накапливаются в виде смешанных солей, содержащих фосфор, магний и калий, и в меньшей степени кальций, цинк и марганец [10]. Исследования различных культур, отличающихся содержанием ФК, показывают более или менее линейное увеличение биодоступности железа и цинка при снижении содержания ФК в зерне, что связано с линейным уменьшением общих сайтов связывания минеральных веществ
при уменьшении содержания ФК [11]. Человек и моно-гастральные животные не могут метаболизировать ФК из-за отсутствия достаточного уровня активности ферментов эндофитаз, разрушающих фитат в пищеварительном тракте. В связи с этим фитаты не могут расщепляться в желудочно-кишечном тракте. Как следствие, минеральные вещества, связанные фитатами, не являются биодоступными. Связь минеральных веществ с ФК может быть разрушена при обработке пищевых продуктов ферментом фитазой, а также фитазой микро-биоты кишечника. Помимо того, что ФК является молекулой, связывающей минеральные элементы, она также может влиять на метаболизм аминокислот и углеводов (путем связывания аминокислот и пептидов); действовать как сильный антиоксидант (например, уменьшая индуцированное железом перекисное окисление липидов) и проявлять антипролиферативную активность (путем снижения сильных прооксидантных свойств свободного железа и усиления процесса апоптоза в опухолевых клетках) [12].
Имеются данные об использовании фитата натрия для обеспечения стабильности пищевых продуктов [13]. В частности, рассматривается возможность использования ФК в качестве консерванта в пищевых продуктах [14]. Сообщается также, что ФК может увеличить окислительную стабильность как сырого, так и приготовленного мяса во время хранения за счет ингибирования перекисного окисления липидов [15].
Имеются данные об использовании ФК с целью предотвращения потемнения фруктов и овощей в процессе хранения. Полифенолоксидазы (ПФО) представляют собой группу окислительных ферментов, которые вызывают ферментативное потемнение фруктов и овощей. Каталитическая активность ПФО частично зависит от меди. По этой причине добавление ФК в пищу в качестве агента, связывающего медь, может быть использовано для предотвращения нежелательного потемнения фруктов/овощей. При переработке фруктов/овощей хлорофилл (Мд2+) теряется, что приводит к нежелательному изменению цвета. Добавление ФК может стабилизировать хлорофилл (Мд2+) для сохранения цвета [16]. Исследования показали, что добавление 0,1 мМ ФК приводило к ингибированию ПФО в яблочном соке на 99,2% [17].
Источниками ФК являются зерновые, бобовые, орехи и семена, которые важны для питания человека (см. таблицу). Фитаты быстро накапливаются в семенах в период созревания. В зерновых, злаках, рисе и пшенице ФК содержится во фракции отрубей, таких как алейроновый слой и околоплодник, в кукурузе она накапливается в эндосперме. Содержание ФК в зародышах пшеницы и пшеничных отрубях составляет 1,1-3,9 и 2,0-5,3% соответственно; в рисовых отрубях -до 8,7%. В семенах бобовых фитаты находятся в эндосперме, а их содержание в целых семенах составляет от 0,2 до 2,9% и выше (>3,7% в семядолях); в семенах бобовых дикого типа содержание ФК составляет 0,98-3,14 г/100 г. В масличных культурах, таких как
соевые бобы, семена кунжута, ядра подсолнечника, семена льна и семена рапса, содержание ФК колеблется от 1,0 до 5,4%. Сообщается о максимальном содержании ФК в соевых концентратах (10,7%). Следующей группой богатых фитатом продуктов являются орехи (грецкие, миндаль, кешью), в которых содержание ФК варьирует от 0,1 до 9,4% [18].
Способы снижения содержания фитатов в рационе
Существует несколько методов, которые разработаны для удаления ФК из цельных зерен, бобовых и других источников пищевых фитатов [18].
Ферментация - метаболический процесс, который широко используется в пищевой промышленности для приготовления многих продуктов, при этом ферментация пищевых зерен улучшает биодоступность минеральных веществ. При ферментации создается оптимальный pH, который способствует деградации ФК [19], в результате чего в зерне возрастает количество растворимого железа, цинка и кальция в несколько раз. Согласно опубликованным данным, промышленная ферментация зерна проса в течение 12 и 24 ч может снизить уровень ФК на 45% [20]. Естественная ферментация приводит к значительному снижению ФК в рисовой муке под действием микробных, а также зерновых фитаз. Фитазы восстанавливают гексаформу ФК (IP6, мио-инозитол-1,2,3,4,5,6-гексакисфосфат) в более низшие формы, такие как IP5, IP4, IP3, IP2, IP1 и мио-инозитол [21]. Низшие формы ФК имеют меньшую связующую способность для металлов, таких как железо и цинк. При ферментации проростков жемчужного проса смешанными чистыми культурами Saccharomyces diasticus, S. cerevisiae, Lactobacillus brevis и L. fermentum при 30 °C в течение 72 ч было зафиксировано снижение содержания ФК на 88,3% [22]. Как правило, исследования процессов пищеварения in vitro подтверждают, что подкисление теста, вызванное ферментацией, снижает содержание фитатов и увеличивает содержание свободных ионизированных минеральных веществ [19]. В настоящее время расширяется перечень ферментированных пищевых продуктов, таких как хлеб, произведенный на закваске, что снижает содержание ФК в тесте и хлебе.
Условия окружающей среды, особенно содержание минеральных веществ в почве, играют определяющую роль в содержании минеральных веществ в зерновой культуре, что также коррелирует с содержанием ФК. Содержание минеральных элементов существенно зависит от типа зерна: в порядке убывания - сорго > дикий рис > кукуруза > рожь, пшеница > овес, ячмень [23]. Следует отметить, что различные бобовые и семена, такие как кунжут, льняное семя, фасоль, кукуруза и соя, как правило, имеют более высокое содержание ФК по сравнению с наиболее часто употребляемыми зерновыми, такими как пшеница. Во время помола отруби и зародыши могут быть отделены от
Содержание фитиновой кислоты в основных зерновых, бобовых, масличных культурах и орехах (по Е. РегаИаЫ и соавт., 2021 [19] с модификацией)
Phytic acid content in some cereals, legumes, oilseeds, and nuts (according to E. Feizollahi et al., 2021 [19] with modification)
Продукт / Product Содержание фитиновых кислот Phytic acid content, %
Злаки / Cereals
Зародыш кукурузы / Corn germ 6,39
Пшеничные отруби / Wheat bran 2,1-7,3
Зародыши пшеницы / Wheat germ 1,14-3,91
Рисовые отруби / Rice bran 2,56-8,7
Ячмень / Barley 0,38-1,16
Сорго / Sorghum 0,57-3,35
Рожь / Rye 0,54-1,46
Просо / Millet 0,18-1,67
Бобовые / Legumes
Фасоль / Beans 0,61-2,38
Горох / Peas 0,22-1,22
Нут / Chickpeas 0,28-1,60
Чечевица / Lentils 0,27-1,51
Арахис / Peanut 0,17-4,47
Масличные культуры / Oilseeds
Соевые бобы / Soya beans 1,0-2,22
Льняное семя / Flax-seed 2,15-3,69
Кунжут / Sesame 1,44-5,36
Шрот подсолнечный / Sunflower meal 3,9-4,3
Орехи / Nuts
Миндаль / Almond 0,35-9,42
Грецкие орехи / Walnuts 0,20-6,69
Орехи кешью / Cashew nuts 0,19-4,98
эндосперма, и в результате получается белая мука с очень низким содержанием фитатов и минеральных веществ, как и все другие рафинированные зерновые продукты [24].
Содержание ФК резко снижается за счет гидролиза. Во время замачивания и приготовления продуктов предполагается полное погружение зерен в воду на определенный промежуток времени, что приводит к активации эндогенных фитаз. Замачивание при температуре от 45 до 65 °С и значении рН от 5 до 6 приводит к гидролизу значительного процента фитатов. Так, по мере увеличения времени замачивания с 2 до 12 ч содержание ФК в нуте снижалось на 47,4-55,7%. Недостатком метода является потеря наряду с фитатами минеральных веществ и белков [25].
Замачивание широко применяется и является одним из основных методов в процессе прорастания и брожения зерновых культур [26]. Приготовление пищи из вымоченных ингредиентов показало гораздо большую эффективность в снижении содержания ФК, чем только замачивание в течение короткого времени. Следует учитывать, что фитаты, которые присутствуют в хлебе, могут быть частично расщеплены фитазами в кислой среде желудка, более того, в толстой кишке происходит
ферментация пищевых волокон в присутствии специфических видов микроорганизмов с высокой фитазной активностью, что приводит к деградации значительной части ФК и солюбилизации минеральных комплексов, увеличению ионизированных свободных минеральных веществ и повышению их абсорбции в кишечнике [27]. При изучении влияния различных режимов замачивания на концентрацию фитатов и минеральных веществ в цельном и измельченном миндале, фундуке, арахисе и грецких орехах применялись следующие способы замачивания: на 12 ч в солевом растворе; на 4 ч в солевом растворе; на 12 ч в воде. Концентрации фитатов анализировали с помощью высокоэффективной жидкостной хроматографии, концентрацию минеральных веществ - с помощью масс-спектрометрии. Результаты исследования показали, что различия в концентрации фитатов между обработанными и необработанными сырыми орехами были статистически незначимыми (в пределах 10%). Замачивание приводило к снижению концентрации полезных минеральных веществ, особенно для измельченных орехов. Это исследование опровергло мнение, что «активация» орехов путем замачивания приводит к лучшему усвоению пищевых веществ [28].
Проращивание семян снижает содержание ФК до 40%. В экспериментах продемонстрировано, что солодование проса снижает содержание ФК на 23,9% через 72 ч и на 45,3% через 96 ч [29]. Исследование зерновых культур на содержание ФК показало, что проращивание в течение 10 дней приводило к статистически значимому снижению (р<0,05) содержания фитатов во всех пророщенных зернах злаков. Автоклавные и микроволновые процедуры снижают содержание ФК, что приводит к увеличению общего содержания минеральных веществ и их экстрагируемости соляной кислотой в хлебе из цельной пшеницы [30]. Приготовление под давлением (автоклавирование) обеспечивает более выраженное снижение содержания фитатов, чем приготовление при обычном атмосферном давлении. Фитаты термостабильны и поэтому не разлагаются во время приготовления пищи. Однако на ранних стадиях приготовления активация эндогенных фитаз или фосфатаз может снизить количество ФК. Другой возможной причиной снижения содержания фитатов при приготовлении пищи может быть присутствие щелочей и кислот, которые способствуют гидролизу [31].
Тем не менее увеличение высвобождения макро-и микроэлементов из их связанной с фитатами формы, которое потенциально способствует повышению всасывания в тонкой кишке цинка, железа, магния и кальция, не обязательно приводит к улучшению минерального статуса организма человека. Взаимодействие многих факторов, ингибирующих и стимулирующих биодоступность, определяет абсорбцию минеральных веществ [18, 32]. Исследования in vitro при переваривании одной пробной порции пищи в смоделированном отделе кишечника, когда факторы in vivo (нейрональная регуляция, кровоток, гормональные реакции и др.)
отсутствуют, не дают возможности экстраполировать результаты эксперимента на организм человека. Так, показано, что результаты наблюдений при однократном приеме пищи могут преувеличивать влияние усилителей и ингибиторов на всасывание железа по сравнению с работами по оценке данных при нескольких приемах пищи [33].
Таким образом, полную картину биодоступности макро- и микроэлементов из пищевых продуктов и их влияние на минеральный статус организма можно получить только путем проведения разносторонних комплексных исследований in vivo [34].
Влияние фитатов на здоровье человека
Несмотря на то что фитаты классифицируются как антинутриенты, они обладают и полезными свойствами для организма человека, что подтверждается имеющимися международными рекомендациями о целесообразности применения продуктов из цельного зерна за счет полезной клетчатки, при этом с потенциально высоким содержанием ФК [35, 36]. В связи с этим нами проведен анализ данных литературы по влиянию ФК на здоровье человека.
Рак толстой кишки - один из наиболее распространенных видов онкологического заболевания как среди мужчин, так и среди женщин, особенно в развитых странах [37]. Рацион питания может иметь значительное влияние на возникновение данной патологии за счет содержания различных пищевых волокон в ежедневно потребляемых пищевых продуктах. Рационы, богатые клетчаткой, источником которой являются содержащие ФК пшеничные отруби, снижают риск развития рака толстой кишки [38]. В экспериментальном исследовании [39] группа крыс, получавшая выделенную из рисовых отрубей ФК с питьевой водой во время постинициационной фазы канцерогенеза, продемонстрировала наибольшее снижение формирования очагов аберрантных крипт, что значимо для профилактики рака толстой кишки. Следует отметить, что роль ФК в профилактике рака толстой кишки может быть ограничена низкой растворимостью фитатов [40]. Механизм ингибирования ФК-окисления линолевой кислоты в толстой кишке в экспериментальных исследованиях также изучается как потенциальный путь профилактики развития онкопатологии [41].
Рак молочной железы является наиболее распространенным злокачественным новообразованием [42]. ФК может подавлять рост рака клеток молочной железы и индуцировать апоптоз раковых клеток, модулируя экспрессию генов, регулирующих апоптоз [43]. В клинических наблюдениях установлено, что перо-ральное применение инозитол гексафосфата (InsP6) может использоваться для снижения выраженности нежелательных явлений при проведении химиотерапии у женщин с раком молочной железы [44].
В экспериментальном исследовании введение в рацион крыс в течение месяца ФК (15 мМ IP6 с питьевой водой или замена 50% рациона на пшеничные
отруби или зародыши) привело к снижению окислительного стресса и увеличению апоптической активности, результатом чего стало предотвращение пролиферации клеток рака молочной железы у крыс [45]. Предполагается, что ФК может хелатировать железо и, следовательно, вызывать апоптоз раковых клеток за счет снижения окислительной активности [44]. ФК обладает способностью в зависимости от дозировки и времени экспозиции индуцировать подавление роста и дифференцировку клеток гепатоцеллюлярных линий, что также может быть использовано с целью профилактики онкопатологии [39].
Сердечно-сосудистые заболевания
Известен факт повышения риска развития сердечнососудистых заболеваний при высоком уровне в крови общего холестерина и липопротеинов низкой плотности, а также низком уровне липопротеинов высокой плотности [3]. ФК за счет увеличения выведения холестерина и желчных кислот с фекалиями [46] может привести к снижению уровня общего холестерина и липопротеинов низкой плотности, одновременно с этим повысить уровень липопротеинов высокой плотности, что снижает риск развития ишемической болезни сердца. В экспериментальных исследованиях на крысах показано, что снижение уровня общих липидов и тригли-церидов в печени происходит при поступлении ФК с высокоуглеводным рационом на уровне 0,02%, холестерина - при 0,1% [47].
Сахарный диабет
Исследования продемонстрировали значительное увеличение активности глюкозо-6-фосфатдегидро-геназы при дополнительном потреблении крысами в течение 3 нед экстракта ФК из батата, что оказало благоприятное воздействие на гликемический профиль [45]. Таким образом, употребление продуктов, богатых ФК, может способствовать нормогликемии. Кроме того, фитаты могут связываться с металлами, такими как железо, и, следовательно, снижать интенсивность процессов гликирования белка, ответственных за развитие осложнений сахарного диабета [46].
Нефролитиаз
Рацион питания, избыточный по кальцию, в ряде случаев может приводить к образованию камней в почках. Потребление продуктов, содержащих ФК, снижает уровень кальция в моче и приводит к инги-бированию кристаллизации оксалата кальция в почках и/или мочевыводящих путях. В связи с этим предлагается применять ФК для профилактики и лечения образования оксалата кальция и фосфатных камней [47]. Инозитолфосфаты (1Р), такие как IР2 и 1Р3, могут предотвратить образование кристаллов гидроксиапатита, которые являются ядрами для образования камней. При изучении влияния ФК и фитата цинка на развитие почечных уролитов у экспериментальных животных показано, что они обладают потенциалом для
лечения пациентов с кальциевым уролитиазом: фитат может ингибировать кристаллизацию кальция в оксалат и фосфатные соли [48]. Изучено взаимодействие фитата с другими известными ингибиторами кристаллизации оксалата кальция, такими как магний и цитрат [49]. Выявлен синергизм эффектов фитата с магнием. Инги-бирующее действие фитатов на камнеобразование может быть объяснено сродством его фосфатных групп к кальцию в кальциево-оксалатных и фосфатно-кальци-евых активных участках роста.
Заключение
ФК является основной формой хранения фосфора и составляет 1-5% по массе в зерновых, бобовых, масличных семенах и орехах [50], а 50-85% фосфора в растениях содержится именно в виде ФК. ФК в качестве хелатирующего агента связывается с минеральными веществами, что практически делает их недоступными. В связи с этим ее часто относят к антинутриентам, которые могут привести к дефицитам минеральных элементов [51-53]. Зерновые, содержащие ФК, составляют основную часть пищи и являются главным источником пищевых веществ в питании населения, особенно в развивающихся странах. Однообразный рацион может привести к развитию заболеваний, в связи с чем разрабатываются и используются различные стратегии, направленные на снижение содержания ФК в пищевых продуктах: замачивание, варка, проращивание, ферментация, облучение, обработка ультразвуковыми волнами, применение фитазы и др. Однако такой односторонний подход к оценке функциональной значимости ФК является неоправданным. С одной стороны, ФК может хела-тировать кальций и приводить к остеопорозу, с другой стороны, это может предотвращать образование камней в почках. Хелатирование железа ФК может привести к дефициту железа, но снижает окислительный стресс в организме. В экспериментальных исследованиях подтверждены протективные эффекты ФК в отношении рака толстой кишки, молочной железы, сахарного диабета, заболеваний сердечно-сосудистой системы и др.
ФК не является проблемой для здоровья тех, кто питается разнообразно и сбалансированно. Однако для лиц, которые находятся на обедненном однообразном рационе, наличие большого количества ФК повышает риск развития недостаточности минеральных веществ, в связи с чем и применяются различные технологии с целью снижения уровня фитатов в пище.
Использованию полезных свойств ФК и минимизации антинутриентных эффектов могут способствовать такие стратегии, как включение витаминов, которые хорошо сочетаются с минеральными веществами и повышают их биодоступность (например, комбинация витамин С и железо), или увеличение потребления белков животного происхождения с низким содержанием ФК и богатых макро- и микроэлементами, такими как железо, кальций, цинк, магний.
Сведения об авторах
ФГАОУ ВО Первый МГМУ им. И.М. Сеченова Минздрава России (Сеченовский Университет) (Москва, Российская Федерация):
Ших Евгения Валерьевна (Evgenia V. Shikh) - доктор медицинских наук, профессор, заведующий кафедрой клинической фармакологии и пропедевтики внутренних болезней ИКМ им. Н.В. Склифосовского, директор ИПО E-mail: shikh_e_v@staff.sechenov.ru https://orcid.org/0000-0001-6589-7654
Махова Анна Александровна (Anna А. Makhova) - доктор медицинских наук, доцент кафедры клинической фармакологии и пропедевтики внутренних болезней ИКМ им. Н.В. Склифосовского E-mail: makhova_a_a@staff.sechenov.ru https://orcid.org/0000-0001-9817-9886
Дорогун Олег Борисович (Oleg B. Dorogun) - студент VI курса ИКМ им. Н.В. Склифосовского
E-mail: oleg.dorogun@gmail.com
https://orcid.org/0000-0002-2586-4820
Елизарова Елена Викторовна (Elena V. Elizarova) - кандидат медицинских наук, доцент кафедры гигиены питания и токсикологии ИПО E-mail: enota--@mail.ru https://orcid.org/0000-0001-6598-7654
Литература
12.
Коденцова В.М., Вржесинская О.А. К обоснованию уровня 15. обогащения витаминами и минеральными веществами пищевых продуктов массового потребления // Вопросы питания. 2011. Т. 80, № 5. С. 64-70.
Погожева А.В., Коденцова В.М. Группы риска множественного 16. дефицита витаминов и минеральных веществ среди населения // Клиническое питание и метаболизм. 2020. Т. 1, № 3. C. 137-143. DOI: https://doi.org/10.17816/clinutr48744 17.
Ших Е.В., Махова А. А., Ших Н.В., Никитин Е.Ю. Социальный джетлаг: возможности микронутриентной поддержки // Вопросы питания. 2022. Т. 91, № 3. С. 85-95. DOI: https://doi. org/10.33029/0042-8833-2022-91-3-85-95 18.
Ших Е.В., Махова А.А., Чемерис А.В., Тормышов И.А. Ятрогенные дефициты микронутриентов // Вопросы питания. 2021. Т. 90, № 4. 19. С. 53-63. DOI: https://doi.org/10.33029/0042-8833-2021-90-4-53-63 Ших Е.В., Махова А.А., Хайтович Е.Д. Детерминанты бесплодного брака и методы их коррекции // Вопросы гинекологии, акушерства и перинатологии. 2021. Т. 20, № 1.
C. 105-112. DOI: https://doi.org/10.20953/1726-1678-2021-1-105-112 20. Ших Е.В., Махова А.А. Витаминно-минеральный комплекс при беременности. 2-е изд., перераб. и доп. Москва : ГЭОТАР-Медиа, 2022. 432 с. DOI: https://doi.org/10.33029/9704-6785-5-VMK-2022-1-432 ISBN 978-5-9704-6785-5. 21. Коденцова В.М., Рисник Д.В. Витаминно-минеральные комплексы для взрослых с высоким содержанием витаминов // Медицинский алфавит. 2018. Т. 2, № 31. С. 15-20.
Huang K., Fang H., Yu D., Guo Q., Xu X., Ju L. et al. Usual intake 22.
of micronutrients and prevalence of inadequate intake among Chinese
adults: data from CNHS 2015-2017 // Nutrients. 2022. Vol. 14, N 22.
Р. 4714. DOI: https://doi.org/10.3390/nu14224714
Kumar A., Singh B., Raigond P., Sahu C., Mishra U.N., Sharma S.
et al. Phytic acid: Blessing in disguise, a prime compound required for 23.
both plant and human nutrition // Food Res. Int. 2021. Vol. 142. Article
ID 110193. DOI: https://doi.org/10.1016/j.foodres.2021.110193
Dost K., Karaca G. Evaluation of phytic acid content of some tea
and nut products by reverse-phase high performance liquid chro- 24.
matography/visible detector // Food Anal. Methods. 2016. Vol. 9.
Р. 1391-1397. DOI: https://doi.org/10.1007/s12161-015-0319-z
Raboy V. Low phytic acid crops: observations based on four decades 25.
of research // Plants. 2020. Vol. 9, N 2. Р. 140. DOI: https://doi.
org/10.3390/plants9020140
Wilson M.S., Bulley S.J., Pisani F., Irvine R.F., Saiardi A. A novel method for the purification of inositol phosphates from biological samples reveals that no phytate is present in human plasma or urine // 26. Open Biol. 2015. Vol. 5, N 3. Article ID 150014. DOI: https://doi. org/10.1098/rsob.150014
Wang R., Guo S. Phytic acid and its interactions: contributions to protein functionality, food processing, and safety // Compr. Rev. 27. Food Sci. Food Saf. 2021. Vol. 20. Р. 2081-2105. DOI: https://doi. org/10.1111/1541-4337.12714
Sakac M., Canadanovic-Brunet J., Misan A., Tumbas V., Medic
D. Antioxidant activity of phytic acid in lipid model system // Food 28. Technol. Biotechnol. 2010. Vol. 48, N 4. Р. 524-529.
Stodolak B., Starzynska A., Czyszczon M., Zyta K. The effect of phytic acid on oxidative stability of raw and cooked meat // Food Chem. 2007. Vol. 101, N 3. P. 1041-1045. DOI: https://doi.org/10.1016/j.food-chem.2006.02.061
Sathe S.K., Venkatachalam M. Phytates // Handbook of Food Science, Technology, and Engineering. 4 Volume Set / Eds Y.H. Hui, F. Sherkat. CRC Press, 2005. P. 1821-1826. ISBN 9780429096112. Du Y., Dou S., Wu S. Efficacy of phytic acid as an inhibitor of enzymatic and non-enzymatic browning in apple juice // Food Chem. 2012. Vol. 135, N 2. P. 580-582. DOI: https://doi.org/10.1016/jfood-chem.2012.04.131
Brouns F. Phytic Acid and whole grains for health controversy // Nutrients. 2021. Vol. 14, N 1. P. 25. DOI: https://doi.org/10.3390/nu14010025 Feizollahi E., Mirmahdi R.S., Zoghi A., Zij lstra R.T., Roopesh M.S., Vasanthan T. Review of the beneficial and anti-nutritional qualities of phytic acid, and procedures for removing it from food products // Food Res. Int. 2021. Vol. 143. Article ID 110284. DOI: https://doi. org/10.1016/j.foodres.2021.110284
Gupta R.K., Gangoliya S.S., Singh N.K. Reduction of phytic acid and enhancement of bioavailable micronutrients in food grains // J. Food Sci. Technol. 2015. Vol. 52, N 2. P. 676-684. DOI: https://doi. org/10.1007/s13197-013-0978-y
Coulibaly A., Kouakou B., Chen J. Phytic acid in cereal grains: structure, healthy or harmful ways to reduce phytic acid in cereal grains and their effects on nutritional quality // Am. J. Plant Nutr. Fertil. Technol. 2011. Vol. 1. P. 1-22. DOI: https://doi.org/10.3923/ajpnft.2011.L22 Ragon M., Aumelas A., Chemardin P., Santiago S., Moulin G., Boze H. Complete hydrolysis of myo-inositol hexakisphosphate by a novel phytase from Debaryomyces castellii CBS 2923 // Appl. Micro-biol. Biotechnol. 2008. Vol. 78. P. 47-53. DOI: https://doi.org/10.1007/ s00253-007-1275-3
Kaur K.D., Jha A., Sabikhi L., Singh A.K. Significance of coarse cereals in health and nutrition: a review // J. Food Sci. Technol. 2014. Vol. 51, N 8. P. 1429-1441. DOI: https://doi.org/10.1007/s13197-011-0612-9
Vashishth A., Ram S., Beniwal V. Cereal phytases and their importance in improvement of micronutrients bioavailability // 3 Biotech. 2017. Vol. 7, N 1. P. 42. DOI: https://doi.org/10.1007/s13205-017-0698-5 Erta§ N., Turker S. Bulgur processes increase nutrition value: possible role in in-vitro protein digestability, phytic acid, trypsin inhibitor activity and mineral bioavailability // J. Food Sci. Technol. 2014. Vol. 51, N 7. P. 1401-1405. DOI: https://doi.org/10.1007/s13197-012-0638-7
Perlas L.A., Gibson R.S. Use of soaking to enhance the bioavailability of iron and zinc from rice-based complementary foods used in the Philippines // J. Sci. Food Agric. 2002. Vol. 82. P. 1115-1121. DOI: https:// doi.org/10.1002/jsfa.1156
Schlemmer U., Frolich W., Prieto R.M., Grases F. Phytate in foods and significance for humans: Food sources, intake, processing, bioavail-ability, protective role and analysis // Mol. Nutr. Food Res. 2009. Vol. 53, suppl. S2. S330-S375. DOI: https://doi.org/10.1002/mnfr.200900099 Kumari S., Gray A.R., Webster K., Bailey K., Reid M., Kelvin K.A.H. et al. Does «activating» nuts affect nutrient bioavailability? // Food
2
4
5
6
7
8
9
Chem. 2020. Vol. 319. Article ID 126529. DOI: https://doi.org/10.1016/ j.foodchem.2020.126529
29. Duodu K.G., Jideani A.I.O. Effect of malting period on physicochem- 41. ical properties, minerals, and phytic acid of finger millet (Eleusine cora-cana) flour varieties // Food Sci. Nutr. 2018. Vol. 6, N 7. P. 1858-1869. DOI: https://doi.org/10.1002/fsn3.696 42.
30. Marshall A.A., Samuel J.E., Mary U.E., Inegbenose G.I. Effect of germination on the phytase activity, phytate and total phosphorus contents of rice, maize, millet, sorghum and wheat // J. Food Sci. 43. Technol. 2011. Vol. 48. P. 724-729. DOI: https://doi.org/10.1007/ s13197-010-0186-y
31. Demir M.K., Elgun A. Comparison of autoclave, microwave, IR and 44. UV-C stabilization of whole wheat flour branny fractions upon the nutritional properties of whole wheat bread // J. Food Sci. Technol. 2014.
Vol. 51, N 1. P. 59-66. DOI: https://doi.org/10.1007/s13197-011-0475-0
32. Buddrick O., Jones O.A., Cornell H.J., Small D.M. The influence 45. of fermentation processes and cereal grains in wholegrain bread on reducing phytate content // J. Cereal Sci. 2014. Vol. 59. P. 3-8. DOI: https://doi.org/10.1016/j.jcs.2013.11.006
33. Cook J.D., Dassenko S.A., Lynch S.R. Assessment of the role
of nonheme-iron availability in iron balance // Am. J. Clin. Nutr. 1991. 46. Vol. 54. P. 717-722. DOI: https://doi.org/10.1093/ajcn/54.4.717
34. Schlemmer U., Jany K.D., Berk A., Schulz E., Rechkemmer G. Degradation of phytate in the gut of pigs - pathway of gastro-intestinal inositol phosphate hydrolysis and enzymes involved // Arch. Tierernahr. 2001. 47. Vol. 55. P. 255-280. DOI: https://doi.org/10.1080/17450390109386197
35. Sandberg A.S., Scheers N. Phytic Acid: Properties, uses, and determination // Encyclopedia of Food and Health. 2016. P. 365-368. DOI: https://doi.org/10.1016/B978-0-12-384947-2.00544-4 ISBN 48. 978-0-12-384953-3.
36. Nissar J., Ahad T., Naik H.R., Hussain S.Z. A review phytic acid: as antinutrient or nutraceutical // J. Pharmacogn. Phytochem. 2017. Vol. 6, 49. N 6. P. 1554-1560.
37. Thanikachalam K., Khan G. Colorectal cancer and nutrition // Nutrients. 2019. Vol. 11. P. 164. DOI: https://doi.org/10.3390/nu11010164
38. Reddy B.S., Hirose Y., Cohen L.A., Simi B., Cooma I., Rao C.V. 50. Preventive potential of wheat bran fractions against experimental colon carcinogenesis: implications for human colon cancer prevention // Cancer Res. 2000. Vol. 60, N 17. P. 4792-4797. PMID: 10987288.
39. Norazalina S., Norhaizan M.E., Hairuszah I., Norashareena M.S. 51. Anticarcinogenic efficacy of phytic acid extracted from rice bran on azoxymethane-induced colon carcinogenesis in rats // Exp. Toxicol. Pathol. 2010. Vol. 62, N 3. P. 259-268. DOI: https://doi.org/10.1016/ 52. j.etp.2009.04.002
40. Tan B.L., Norhaizan M.E., Chan L.C. An intrinsic mitochondrial pathway is required for phytic acid-chitosan-iron oxide nanocomposite 53. (Phy-CS-MNP) to induce Gq/Gj cell cycle arrest and apoptosis in the human colorectal cancer (HT-29) cell line // Pharmaceutics. 2018.
Vol. 10, N 4. P. 198. DOI: https://doi.org/10.3390/pharmaceutics
10040198
Zajdel A., Wilczok A., W^glarz L., Dzierzewicz Z. Phytic acid inhibits lipid peroxidation in vitro // Biomed. Res. Int. 2013. Vol. 2013. Article ID 147307. DOI: https://doi.org/10.1155/2013/147307 Tufail M., Cui J., Wu C. Breast cancer: molecular mechanisms of underlying resistance and therapeutic approaches // Am. J. Cancer Res. 2022. Vol. 12, N 7. P. 2920-2949.
Al-Fatlawi A.A., Rizvi M.M.A., Ahmad A. Anticarcinogenic activity of rice bran phytic acid against human breast cancer cell line (MCF-7) // Asian J. Pharm. Clin. Res. 2014. Vol. 7, suppl. 2. P. 151-155. Proietti S., Pasta V., Cucina A., Aragona C., Palombi E., Vucenik I. et al. Inositol hexaphosphate (InsP6) as an effective topical treatment for patients receiving adjuvant chemotherapy after breast surgery // Eur. Rev. Med. Pharmacol. Sci. 2017. Vol. 21, suppl. 2. P. 43-50. Hussein M.R., Abd El-Aziz M.A., Ahmad N.S., Omran F., Abdul-hameed M. The biochemical changes associated with phytic acid on induced breast proliferative lesions in rats: preliminary findings // Cancer Biol. Ther. 2006. Vol. 5, N 9. P. 1129-1133. DOI: https://doi. org/10.4161/cbt.5.9.2952
Lee S.-H., Park H.-J., Chun H.-K., Cho S.-Y., Jung H.-J., Cho S.-M. et al. Dietary phytic acid improves serum and hepatic lipid levels in aged ICR mice fed a high-cholesterol diet // Nutr. Res. 2007. Vol. 27, N 8. P. 505-510. DOI: https://doi.org/10.1016/j.nutres.2007.05.003 Onomi S., Okazaki Y., Katayama T. Effect of dietary level of phytic acid on hepatic and serum lipid status in rats fed a high-sucrose diet // Biosci. Biotechnol. Biochem. 2004. Vol. 68, N 6. P. 1379-1381. DOI: https:// doi.org/10.1271/bbb.68.1379
Dilworth L., Stennett D., Omoruyi F. Cellular and molecular activities of IP6 in disease prevention and therapy // Biomolecules. 2023. Vol. 13, N 6. P. 972. DOI: https://doi.org/10.3390/biom13060972 Sanchis P., Rivera R., Berga F., Fortuny R., Adrover M., Costa-Bauza A. et al. Phytate decreases formation of advanced glycation end-products in patients with type II diabetes: randomized crossover trial // Sci. Rep. 2018. Vol. 8, N 1. P. 9619. DOI: https://doi.org/10.1038/s41598-018-27853-9 Grases F., Rodriguez A., Costa-Bauza A. Efficacy of mixtures of magnesium, citrate and phytate as calcium oxalate crystallization inhibitors in urine // J. Urol. 2015. Vol. 194, N 3. P. 812-819. DOI: https://doi. org/10.1016/j.juro.2015.03.099
Grases F., Garcia-Gonzalez R., Torres J.J., Llobera A. Effects of phytic acid on renal stone formation in rats // Scand. J. Urol. Nephrol. 1998. Vol. 32, N 4. P. 261-265. DOI: https://doi.org/10.1080/003655998750015412 Phillippy B.Q. Transport of calcium across Caco-2 cells in the presence of inositol hexakisphosphate // Nutr. Res. 2006. Vol. 26. P 146-149. DOI: https://doi.org/10.1016/j.nutres.2006.02.008 Petroski W., Minich D.M. Is There such a thing as «anti-nutrients»? A narrative review of perceived problematic plant compounds // Nutrients. 2020. Vol. 12, N 10. P. 2929. DOI: https://doi.org/10.3390/nu12102929
References
Kodentsova V.M., Vrzhesinskaya O.A. The justification of levels of vitamins and minerals added to foods mass consumption. Voprosy pitaniia [Problems of Nutrition]. 2011; 80 (5): 64-70. (in Russian) Pogozheva A.V., Kodentsova V.M. Risk groups for multiple vitamin and mineral deficiencies in the population. Klinicheskoe pitanie i metabolism [Clinical Nutrition and Metabolism]. 2020; 1 (3): 137-43. DOI: https://doi.org/10.17816/clinutr48744 (in Russian) Shich E.V., Makhova A.A., Shikh N.V., Nikitin E.Yu. Social jetlag: possibilities of micronutrient support. Voprosy pitaniia [Problems of Nutrition]. 2022; 91 (3): 85-95. DOI: https://doi.org/10.33029/0042-8833-2022-91-3-85-95 (in Russian)
Shikh E.V., Makhova A.A., Chemeris A.V., Tormyshov I.A. Iatrogenic deficits of micronutrients. Voprosy pitaniia [Problems of Nutrition]. 2021; 90 (4): 53-63. DOI: https://doi.org/10.33029/0042-8833-2021-90-4-53-63 (in Russian)
Shikh E.V., Makhova A.A., Khaytovich E.D. Determinants of infertility in couples and methods for their correction. Voprosy ginekologii, akush-erstva i perinatologii [Problems of Gynecology, Obstetrics and Perinatology]. 2021; 20 (1): 105-12. DOI: https://doi.org/10.20953/1726-1678-2021-1-105-112 (in Russian)
Shikh E.V., Makhova A.A. Vitamin-mineral complex during pregnancy. 2nd ed. revised and additional. Moscow: GEOTAR-Media, 2022: 432 p. DOI: https://doi.org/10.33029/9704-6785-5-VMK-2022-1-432 ISBN 978-5-9704-6785-5. (in Russian)
Kodentsova V.M., Risnik D.V. Vitamin-mineral supplements for adults with increased vitamin content. Meditsinskiy alfavit [Medical Alphabet]. 2018; 2 (31): 15-20. (in Russian)
Huang K., Fang H., Yu D., Guo Q., Xu X., Ju L., et al. Usual intake of micronutrients and prevalence of inadequate intake among Chinese
adults: data from CNHS 2015-2017. Nutrients. 2022; 14 (22): 4714. DOI: https://doi.org/10.3390/nu14224714
Kumar A., Singh B., Raigond P., Sahu C., Mishra U.N., Sharma S., et al. Phytic acid: Blessing in disguise, a prime compound required for both plant and human nutrition. Food Res Int. 2021; 142: 110193. DOI: https://doi.org/10.1016/j.foodres.2021.110193 Dost K., Karaca G. Evaluation of phytic acid content of some tea and nut products by reverse-phase high performance liquid chro-matography/visible detector. Food Anal Methods. 2016; 9: 1391-7. DOI: https://doi.org/10.1007/s12161-015-0319-z
Raboy V. Low phytic acid crops: observations based on four decades of research. Plants. 2020; 9 (2): 140. DOI: https://doi.org/10.3390/ plants9020140
Wilson M.S., Bulley S.J., Pisani F., Irvine R.F., Saiardi A. A novel method for the purification of inositol phosphates from biological samples reveals that no phytate is present in human plasma or urine. Open Biol. 2015; 5 (3): 150014. DOI: https://doi.org/10.1098/rsob.150014 Wang R., Guo S. Phytic acid and its interactions: contributions to protein functionality, food processing, and safety. Compr Rev Food Sci Food Saf. 2021; 20: 2081-105. DOI: https://doi.org/10.1111/1541-4337.12714 Sakac M., Canadanovic-Brunet J., Misan A., Tumbas V., Medic D. Antioxidant activity of phytic acid in lipid model system. Food Technol Biotechnol. 2010; 48 (4): 524-9.
Stodolak B., Starzynska A., Czyszczon M., Zyia K. The effect of phytic acid on oxidative stability of raw and cooked meat. Food Chem. 2007; 101 (3): 1041-5. DOI: https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2006.02.061 Sathe S.K., Venkatachalam M. Phytates. In: Y.H. Hui, F. Sherkat (eds). Handbook of Food Science, Technology, and Engineering. 4 Volume Set. CRC Press, 2005. P. 1821-1826. ISBN 9780429096112.
9
2
4.
6
7
8
17. Du Y., Dou S., Wu S. Efficacy of phytic acid as an inhibitor of enzymatic 35. and non-enzymatic browning in apple juice. Food Chem. 2012; 135 (2): 580-2. DOI: https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2012.04.131
18. Brouns F. Phytic Acid and whole grains for health controversy. Nutrients. 2021; 14 (1): 25. DOI: https://doi.org/10.3390/nu14010025 36.
19. Feizollahi E., Mirmahdi R.S., Zoghi A., Zij lstra R.T., Roopesh M.S., Vasanthan T. Review of the beneficial and anti-nutritional qualities of phytic acid, and procedures for removing it from food prod- 37. ucts. Food Res Int. 2021; 143: 110284. DOI: https://doi.org/10.1016/ j.foodres.2021.110284 38.
20. Gupta R.K., Gangoliya S.S., Singh N.K. Reduction of phytic acid and enhancement of bioavailable micronutrients in food grains. J Food Sci Technol. 2015; 52 (2): 676-84. DOI: https://doi.org/10.1007/s13197-013-0978-y 39.
21. Coulibaly A., Kouakou B., Chen J. Phytic acid in cereal grains: structure, healthy or harmful ways to reduce phytic acid in cereal grains and their effects on nutritional quality. Am J Plant Nutr Fertil Technol. 2011; 1: 1-22. DOI: https://doi.org/10.3923/ajpnft.2011.1.22 40.
22. Ragon M., Aumelas A., Chemardin P., Santiago S., Moulin G., Boze H. Complete hydrolysis of myo-inositol hexakisphosphate by a novel phytase from Debaryomyces castellii CBS 2923. Appl Microbiol Biotechnol. 2008; 78: 47-53. DOI: https://doi.org/10.1007/s00253-007-1275-3 41.
23. Kaur K.D., Jha A., Sabikhi L., Singh A.K. Significance of coarse cereals in health and nutrition: a review. J Food Sci Technol. 2014; 51
(8): 1429-41. DOI: https://doi.org/10.1007/s13197-011-0612-9 42.
24. Vashishth A., Ram S., Beniwal V. Cereal phytases and their importance in improvement of micronutrients bioavailability. 3 Biotech. 2017; 7 (1):
42. DOI: https://doi.org/10.1007/s13205-017-0698-5 43.
25. Erta§ N., Türker S. Bulgur processes increase nutrition value: possible role in in-vitro protein digestability, phytic acid, trypsin inhibitor activity and mineral bioavailability. J Food Sci Technol. 2014; 51 (7): 44. 1401-5. DOI: https://doi.org/10.1007/s13197-012-0638-7
26. Perlas L.A., Gibson R.S. Use of soaking to enhance the bioavailability of iron and zinc from rice-based complementary foods used in the Philippines. J Sci Food Agric. 2002; 82: 1115-21. DOI: https://doi. 45. org/10.1002/jsfa.1156
27. Schlemmer U., Frolich W., Prieto R.M., Grases F. Phytate in foods and significance for humans: Food sources, intake, processing, bioavail-ability, protective role and analysis. Mol Nutr Food Res. 2009; 53 (suppl
S2): S330-75. DOI: https://doi.org/10.1002/mnfr.200900099 46.
28. Kumari S., Gray A.R., Webster K., Bailey K., Reid M., Kelvin K.A.H., et al. Does «activating» nuts affect nutrient bioavailability? Food Chem. 2020; 319: 126529. DOI: https://doi.org/10.1016/j.food-chem.2020.126529 47.
29. Duodu K.G., Jideani A.I.O. Effect of malting period on physicochem-ical properties, minerals, and phytic acid of finger millet (Eleusine cora-cana) flour varieties. Food Sci Nutr. 2018; 6 (7): 1858-69. DOI: https:// doi.org/10.1002/fsn3.696 48.
30. Marshall A.A., Samuel J.E., Mary U.E., Inegbenose G.I. Effect of germination on the phytase activity, phytate and total phosphorus contents of rice, maize, millet, sorghum and wheat. J Food Sci 49. Technol. 2011; 48: 724-9. DOI: https://doi.org/10.1007/s13197-010-0186-y
31. Demir M.K., Elgün A. Comparison of autoclave, microwave, IR and UV-C stabilization of whole wheat flour branny fractions upon the nutritional properties of whole wheat bread. J Food Sci Technol. 2014; 50. 51 (1): 59-66. DOI: https://doi.org/10.1007/s13197-011-0475-0
32. Buddrick O., Jones O.A., Cornell H.J., Small D.M. The influence of fermentation processes and cereal grains in wholegrain bread on reducing phytate content. J Cereal Sci. 2014; 59: 3-8. DOI: https://doi. 51. org/10.1016/j.jcs.2013.11.006
33. Cook J.D., Dassenko S.A., Lynch S.R. Assessment of the role of nonheme-iron availability in iron balance. Am J Clin Nutr. 1991; 52. 54: 717-22. DOI: https://doi.org/10.1093/ajcn/54.4.717
34. Schlemmer U., Jany K.D., Berk A., Schulz E., Rechkemmer G. Degradation of phytate in the gut of pigs - pathway of gastro-intestinal inositol 53. phosphate hydrolysis and enzymes involved. Arch Tierernahr. 2001; 55: 255-80. DOI: https://doi.org/10.1080/17450390109386197
Sandberg A.S., Scheers N. Phytic Acid: Properties, uses, and determination. In: Encyclopedia of Food and Health. 2016: 365—8. DOI: https:// doi.org/10.1016/B978-0-12-384947-2.00544-4 ISBN 978-0-12384953-3.
Nissar J., Ahad T., Naik H.R., Hussain S.Z. A review phytic acid: as antinutrient or nutraceutical. J Pharmacogn Phytochem. 2017; 6 (6): 1554-60.
Thanikachalam K., Khan G. Colorectal cancer and nutrition. Nutrients. 2019; 11: 164. DOI: https://doi.org/10.3390/nu11010164 Reddy B.S., Hirose Y., Cohen L.A., Simi B., Cooma I., Rao C.V. Preventive potential of wheat bran fractions against experimental colon carcinogenesis: implications for human colon cancer prevention. Cancer Res. 2000; 60 (17): 4792-7. PMID: 10987288. Norazalina S., Norhaizan M.E., Hairuszah I., Norashareena M.S. Anticarcinogenic efficacy of phytic acid extracted from rice bran on azoxymethane-induced colon carcinogenesis in rats. Exp Toxicol Pathol. 2010; 62 (3): 259-68. DOI: https://doi.org/10.1016/j.etp.2009.04.002 Tan B.L., Norhaizan M.E., Chan L.C. An intrinsic mitochondrial pathway is required for phytic acid-chitosan-iron oxide nanocomposite (Phy-CS-MNP) to induce G0/G1 cell cycle arrest and apoptosis in the human colorectal cancer (HT-29) cell line. Pharmaceutics. 2018; 10 (4): 198. DOI: https://doi.org/10.3390/pharmaceutics10040198 Zajdel A., Wilczok A., Wçglarz L., Dzierzewicz Z. Phytic acid inhibits lipid peroxidation in vitro. Biomed Res Int. 2013; 2013: 147307. DOI: https://doi.org/10.1155/2013/147307
Tufail M., Cui J., Wu C. Breast cancer: molecular mechanisms of underlying resistance and therapeutic approaches. Am J Cancer Res. 2022; 12 (7): 2920-49.
Al-Fatlawi A.A., Rizvi M.M.A., Ahmad A. Anticarcinogenic activity
of rice bran phytic acid against human breast cancer cell line (MCF-7).
Asian J Pharm Clin Res. 2014; 7 (suppl 2): 151-5.
Proietti S., Pasta V., Cucina A., Aragona C., Palombi E., Vucenik I.,
et al. Inositol hexaphosphate (InsP6) as an effective topical treatment
for patients receiving adjuvant chemotherapy after breast surgery. Eur
Rev Med Pharmacol Sci. 2017; 21 (suppl 2): 43-50.
Hussein M.R., Abd El-Aziz M.A., Ahmad N.S., Omran F., Abdul-
hameed M. The biochemical changes associated with phytic acid
on induced breast proliferative lesions in rats: preliminary findings.
Cancer Biol Ther. 2006; 5 (9): 1129-33. DOI: https://doi.org/10.4161/
cbt.5.9.2952
Lee S.-H., Park H.-J., Chun H.-K., Cho S.-Y., Jung H.-J., Cho S.-M., et al. Dietary phytic acid improves serum and hepatic lipid levels in aged ICR mice fed a high-cholesterol diet. Nutr Res. 2007; 27 (8): 505-10. DOI: https://doi.org/10.1016/j.nutres.2007.05.003 Onomi S., Okazaki Y., Katayama T. Effect of dietary level of phytic acid on hepatic and serum lipid status in rats fed a high-sucrose diet. Biosci Biotechnol Biochem. 2004; 68 (6): 1379-81. DOI: https://doi. org/10.1271/bbb.68.1379
Dilworth L., Stennett D., Omoruyi F. Cellular and molecular activities of IP6 in disease prevention and therapy. Biomolecules. 2023; 13 (6): 972. DOI: https://doi.org/10.3390/biom13060972 Sanchis P., Rivera R., Berga F., Fortuny R., Adrover M., Costa-Bauza A., et al. Phytate decreases formation of advanced glycation end-products in patients with type II diabetes: randomized crossover trial. Sci Rep. 2018; 8 (1): 9619. DOI: https://doi.org/10.1038/s41598-018-27853-9
Grases F., Rodriguez A., Costa-Bauza A. Efficacy of mixtures of magnesium, citrate and phytate as calcium oxalate crystallization inhibitors in urine. J Urol. 2015; 194 (3): 812-9. DOI: https://doi. org/10.1016/j.juro.2015.03.099
Grases F., Garcia-Gonzalez R., Torres J.J., Llobera A. Effects of phytic acid on renal stone formation in rats. Scand J Urol Nephrol. 1998; 32 (4): 261-5. DOI: https://doi.org/10.1080/003655998750015412 Phillippy B.Q. Transport of calcium across Caco-2 cells in the presence of inositol hexakisphosphate. Nutr Res. 2006; 26: 146-9. DOI: https:// doi.org/10.1016/j.nutres.2006.02.008
Petroski W., Minich D.M. Is There such a thing as «anti-nutrients»? A narrative review of perceived problematic plant compounds. Nutrients. 2020; 12 (10): 2929. DOI: https://doi.org/10.3390/nu12102929
