CC BY
0
УДК 616-001.4-001.17:615.468 DOI 10.31684/25418475-2023-3-19
РЕЗУЛЬТАТЫ ЗАЖИВЛЕНИЯ ОЖОГОВЫХ РАН С ПОМОЩЬЮ РАНЕВЫХ ПОКРЫТИЙ НА ОСНОВЕ БАКТЕРИАЛЬНОЙ ЦЕЛЛЮЛОЗЫ В ЭКСПЕРИМЕНТЕ
Алтайский государственный медицинский университет, г. Барнаул 656038, Алтайский край, г. Барнаул, пр. Ленина, д. 40
Жариков А.Н., Алиев А.Р., Орлова О.В., Дворникова Л.Г., Мазко О.Н., Макарова О.Г., Прокопьев В.В., Семенихина Н.М.
Резюме
Цель исследования: в экспериментальных исследованиях оценить эффективность заживления и изменения микробного спектра глубоких ожоговых ран при лечении их с помощью раневых покрытий на основе бактериальной целлюлозы.
Материалы и методы. Объектом экспериментальных исследований явились 60 крыс породы Wistar, которым формировался глубокий ожог кожи. Все .'животные были разделены на 3 группы, из которых в 1 группе (n=20) лечение ожоговых ран осуществлялось с помощью раневых покрытий на основе чистой влажной бактериальной целлюлозы (БЦ), во 2 группу (n=20) вошли особи, где использовалась БЦ с экспозицией в 1% растворе хлоргексидина и в 3 группе (n=20) осуществлялось традиционное лечение с помощью мази Левоме-коль. На 5,10,15, 20, 28 сутки в группах оценивалась площадь раневых поверхностей, динамика их уменьшения, а также изучался микробный спектр.
Результаты и выводы. Установлено, что раневые покрытия на основе влажной бактериальной целлюлозы, применяемые в чистом виде и с экспозицией антисептика (1% раствор хлоргексидина) в течение 28 суток увеличивают скорость заживления ожоговых ран в среднем на 18% по сравнению с группой традиционного лечения. Формирующийся струп над раной при высыхании БЦ обеспечивает раневой поверхности механический защитный барьер, который препятствует микробной контаминации, травматизации формирующихся дермальных клеток, и тем самым увеличивает скорость эпителизации в закрытой среде. Ключевые слова: глубокие ожоги кожи, экспериментальные исследования, раневые покрытия, бактериальная целлюлоза, эпителизация ран, микробная контаминация.
RESULTS OF HEALING BURN WOUNDS USING WOUND DRESSINGS BASED ON BACTERIAL CELLULOSE IN THE EXPERIMENT
Altai State Medical University, Barnaul, Russia
656038, Altai Krai, Barnaul, Lenina Ave., 40
Zharikov A.N., Aliev A.R., Orlova O.V., Dvornikova L.G., Mazko O.N., Makarova O.G., Prokopiev V.V., Semenikhina N.M.
Abstract
Purpose of the study: in experimental studies to evaluate the effectiveness of healing and changes in the microbial spectrum of deep burn wounds during their treatment using wound dressings based on bacterial cellulose. Materials and methods. The object of the experimental studies was 60 Wistar rats, which formed a deep skin burn. All animals were divided into 3 groups, of which in group 1 (n=20) burn wounds were treated with pure wet bacterial cellulose (BC) wound dressings, in group 2 (n=20) BC was used with exposure to a 1% chlorhexidine and in group 3 (n=20) traditional treatment was performed with Levomekol ointment. On days 5,10,15, 20, 28 in the groups, the area of the wound surfaces, the dynamics of their decrease, and the microbial spectrum were studied. Results and conclusions. We registered that wound dressings based on wet bacterial cellulose, applied in pure form and with exposure to an antiseptic (1% chlorhexidine solution) for 28 days, increase the healing rate of burn wounds by an average of 18% compared to the traditional treatment group. The formed scab over the wound, when BC dries, provides the wound surface with a mechanical protective barrier that prevents injury to emerging dermal cells, microbial contamination and thereby increases the rate of epithelialization in a closed environment. Keywords: deep skin burns, experimental studies, wound dressings, bacterial cellulose, wound epithelialization, microbial contamination.
Актуальность
Лечение глубоких ожогов кожи и мягких тканей представляет серьезную медицинскую и социальную проблему, которая связана с длительным их заживлением, наличием постоянного болевого синдрома, с развитием грубой рубцовой ткани и последующей социальной
дезадаптацией пациентов. Установлено, что процесс заживления ожоговой раны делится на три критически важные и последовательные фазы: воспаление, пролиферация и ремоде-лирование [1, 2], где необходим динамический контроль реципрокного взаимодействия между внеклеточным матриксом, факторами роста и
дермальными клетками [3]. При глубоких ожогах кожи восстановление ткани и ее функции -это еще более сложный процесс, и возникающие изменения могут привести к неадекватному или усиленному отложению коллагеновых волокон с последующим нарушением локальной подвижности и иннервации со значительным изменением чувствительности и возникновением боли [4].
В настоящее время существует несколько ключевых факторов в стандартной процедуре лечения ожоговых ран, что влияет на ускорение их заживления при минимизации процессов рубцевания [5]: предотвращение экссудации из ран (увеличивается до 70 раз по сравнению с нормальной кожей), защита раневой поверхности от инфекции, быстрое и эффективное закрытие раны, которое может быть выполнено с использованием кожного трансплантата или других заменителей кожи (ауто-, аллотрансплантаты, ксенотрансплантаты) [6, 7]. Однако по-прежнему существует необходимость в разработке перевязочного материала для локального лечения ожоговых ран, который может в достаточной степени защитить раны от инфекции или чрезмерной потери жидкости. В этой связи биологические и функциональные свойства биополимеров, таких как бактериальная целлюлоза (БЦ), в последнее время вызывают большой научный интерес применения в различных сферах медицины, и в том числе в комбустио-логии [8]. В многочисленных исследованиях установлено, что повязки БЦ особенно эффективны при экссудирующих ожоговых ранах и ранах с повышенной температурой [9]. Благодаря высокому содержанию воды они могут охлаждать место ожога и снимать боль [10]. В случае свежих и неглубоких ожоговых ран повязки БЦ ускоряют процесс эпителизации, снижая риск инфицирования и потери жидкости [11], а при глубоких ожогах (II и Ша степени) способствуют удалению некротизированных тканей из раны и стимулируют ангиогенез [12]. Особым преимуществом этого материала является то, что в качестве повязки влажные мембраны БЦ могут хорошо адаптироваться к контурам раневой поверхности за счет конгруэнтности и плотного прилегания к ране, они более растяжимы, хорошо моделируют стерильный защитный барьер между ожоговой раной и внешней средой, что ускоряет заживление [13, 14, 15, 16]. Различные экспериментальные
исследования подтверждают отсутствие токсического воздействия БЦ на организм животных [17]. Благодаря влажной среде БЦ повышает стадию регенерации тканей кожи за счет улучшения адгезии, пролиферации и дифференцировки клеток, а также защиты их от механических повреждений [18, 19]. Все эти свойства БЦ подчеркивают ее перспективность в хирургии ран. Однако сама по себе БЦ не оказывает антибактериального действия [20], что, несомненно, повышает риск инфицирования раны, хотя имеются исследования, где установлено более раннее изменение соотношения грамотрицательных и грамположительных штаммов в ожоговой ране при использовании БЦ [21, 22]. Поэтому постепенно начинают разрабатываться композитные повязки на основе БЦ с антисептическим, антибактериальным ра-нозаживляющим действием [23, 24, 25]. Так, модифицированные нанокомпозиты БЦ могут быть использованы в качестве нового искусственного заменителя кожи для ожоговых больных и матрицей для инженерии тканей кожи [26], а испытания in vivo показывают, что раневая повязка БЦ в сочетании с коллагеном, хитозаном значительно улучшает процесс заживления ран при ожогах второй и третьей степени [27].
Таким образом, учитывая положительные свойства БЦ, необходимо проведение дальнейших исследований для комплексной оценки регенеративных способностей ожоговых ран с использованием покрытий на основе БЦ, в том числе при сочетании с антисептиком.
Цель исследования: в экспериментальных исследованиях изучить эффективность заживления глубоких ожоговых ран с помощью раневых покрытий на основе бактериальной целлюлозы.
Материалы и методы
В качестве раневых покрытий для лечения экспериментальных ожоговых ран использовались пластины влажной БЦ (лаборатория биоконверсии ИПХЭТ СО РАН, г. Бийск) размером 2,0х2,0 см и толщиной 2-3 мм. Образцы БЦ были тиражированы, расфасованы в стеклянные флаконы / пакеты из полимерной пленки, содержащие физиологический раствор / 1% раствор хлоргексидина и простерилизованы термическим методом (рис. 1).
Рисунок 1. Стеклянные и пластиковые упаковки для хранения раневых покрытий на основе БЦ во влажной среде (физиологический раствор и 1% раствор хлоргексидина)
Экспериментальное исследование проводилось в соответствии с Хельсинской декларацией о гуманном отношении к животным, согласно принципам биоэтики и правилам лабораторной практики, Европейской конвенцией по защите позвоночных животных, используемых в эксперименте и в других научных целях (Страсбург, 1986 г.) ETS № 123, Международным рекомендациям по проведению медико-биологических исследований с использованием животных (ВОЗ, Женева, 1985), ГОСТ 33216-2014 «Руководство по содержанию и уходу за лабораторными животными. Правила содержания и ухода за лабораторными грызунами и кроликами». Протокол исследования одобрен локальным этическим комитетом ФГБОУ ВО АГМУ Минздрава России (протокол №6 от 26.04.2023 г.). Были определены 3 группы животных (всего 60 беспородных крыс обоих полов линии Wistar, массой 200-240 гр.), по 20 особей в каждой:
1 группа (основная, п=20) - лечение с помощью раневых покрытий на основе пластин влажной БЦ, находящихся в физиологическом растворе; 2 группа (основная, п=20) - лечение с помощью раневых покрытий на основе влажной БЦ с адсорбцией антисептика (экспозиция в 1% растворе хлоргексидина); 3 группа (группа сравнения, п=20) - традиционное лечение экспериментальных ожоговых ран с использованием мази Левомеколь. Для воспроизведения модели глубокой термической травмы (ожог 2-3 степени) у животных выстригали шерсть на спинке, в зоне нанесения ожога. Термический ожог наносился контактным способом под наркозом (внутрибрюшинно раствор Телазола в концентрации 1 мг/кг) в течение нескольких секунд. Через 3 суток выполнялась некрэкто-мия ожогового струпа, с последующей аппликацией исследуемых материалов и фиксацией их марлевой повязкой (рис. 2, а, б).
Рисунок 2. Формирование и лечение экспериментальной ожоговой раны: а - вид ожоговой раны после удаления некротического детрита, б - на ожоговую поверхность нанесено раневое покрытие
на основе влажной БЦ
Перевязки в основных группах проводились 1 раз в 5, 10 дней, в группе сравнения ежедневно. Критериями эффективности заживления раны служили: размеры раны и скорость заживления, сроки полной эпите-лизации, микробный пейзаж, лабораторные показатели, макроскопическая картина ран, морфологические свойства в указанные сутки лечения. Оценку динамики заживления ожогового дефекта осуществляли планиметрическим методом. Начиная с пятых суток после нанесения повреждения ежедневно на прозрачную пленку переносили контуры каждого
дефекта, затем подсчитывали его площадь с помощью миллиметровой бумаги. Абсолютную площадь мм2) поверхностного дефекта кожи рассчитывали по формуле [28]: Б= п+1/2к х С, где п - количество квадратов размером 2,0x2,0 мм2, полностью находящихся в пределах контура раны; к - количество квадратов размером 2,0x2,0 мм2, частично находящихся в пределах контура раны; С - площадь одного квадрата размером 2,0x2,0 мм2. Динамику репарации и регенерации оценивали по индексу заживления, расчет которого осуществлялся по формуле: Б^п х 100/ Б х Т, где: S - площадь
раны при предыдущем измерении, мм2; Sn -площадь раны при данном измерении, мм2; T - интервал между измерениями, сутки. На 5, 10, 20, 28-е сутки лечения оценивается характер течения раневого процесса. Указанные сроки были выбраны с учетом продолжительности фазы раневого процесса. Дополнительно проводилась макроскопическая оценка (гиперемия, отек, инфильтрация, отделяемое из раны, наличие фибрина и отграниченных скоплений гноя), проводились двукратные микробиологические и гистологические исследования ран и БЦ, забор и оценка клинического и биохимического анализа крови. На всем протяжении экспериментальной работы выполнялась фотосъемка, включая фотографии результатов гистологического исследования. Статистическая обработка данных проведена на основе непараметрической статистики с использованием ^критерия Стьюдента, где значимость различий определялась при уровне значимости p<0,05.
Результаты и обсуждение
Клинические наблюдения показали, что в течение первых суток после ожоговой травмы у всех лабораторных животных отмечалось
нарушение координации движений, вялость, в первые сутки после нанесения ожога во всех группах снижалось потребление корма при повышенном потреблении воды. При визуальном осмотре было установлено, что во всех группах животных на месте термического ожога 2-3 степени в течение первых суток после его нанесения формировался участок сухого коагуляционного некроза. После его удаления на фоне индукции новой анестезии ожоговые раны в 1 и 2 группе были хорошо изолированы от внешней среды с помощью пластин влажной БЦ, а в группе сравнения накладывались ежедневные повязки с мазью Левомеколь. Благодаря уникальной 3D наноструктуре и влажности мембраны БЦ практически полностью выравнивали и воспроизводили раневую поверхность по площади, создавая оптимальную закрытую среду для заживления ран и регенерации кожи. Спустя 3 суток после нанесения на рану БЦ, материал в 1 и 2 группе высыхал, плотно фиксируясь на ожоговой поверхности и кожных краях в виде струпа коричневого цвета (рис.3, а, б), что препятствовало прилипанию марли вторичной повязки к ране. Струп во время перевязок не убирали, что позволяло ему находиться на поверхности раны до 5-10 суток.
Рисунок 3. Пластины фиксированной к ожоговой ране БЦ в виде сухого струпа на 5 сутки (а)
и 10 сутки (б)
Благодаря ускоренному метаболизму фазы заживления ран у крыс короче, чем у людей, что позволяло быстрее получать результаты. Так, в исследовании уже через 10 дней наблюдения ожоговые раны в трех группах подвергались заживлению. Однако при макроскопической оценке бактериальные целлюлозные мембраны оказались более эффективными в скорости заживления ожоговых ран. Так, на 5 сутки сухие пластины БЦ (группа с физиологическим раствором и группа с раствором хлоргексидина) были уже хорошо фиксированы к ране, однако под ними имелся небольшой серозный экссудат и эпителизации раны еще не отмечалось (рис. 4а), тогда как на 10
сутки после удаления пластины отмечалось заживление раны почти наполовину (рис. 4б), а к 20 суткам практически более чем на 2/3 площади раны (рис. 4в). У животных 1-й и 2-й групп (БЦ в физиологическом растворе и с антисептиком) высохшие пластины БЦ снимались легко, без кровотечения и без удаления рыхлой грануляционной ткани. В обеих группах животных, где лечение термических кожных ран проводилось с помощью целлюлозных пластин (физиологический раствор и 1% раствор хлоргексидина), не было признаков инфекции, скопления гнойного экссудата или образования абсцессов.
Ш ' Щ
Bh - ;
■■Ii Fl, ■ 0-11 • il
.. «Äi ■ WM/,' -
: ,
li . i Ji I ; .. . . 4
• ffllii;^!: ■
i mm,
Ж Ш
'ШЗ*
f Л/ I
Jg '
/я /7- у в
, 4 X Ile
'Л л *
Рисунок 4. Фото ожоговых ран после удаления сухих пластин бактериальной целлюлозы у животных 1 и 2 группы: а - 5 сутки после нанесения БЦ, б - 10 сутки после нанесения БЦ,
в - 20 сутки после нанесения БЦ
На 5 сутки в группе животных, где использовались перевязки с мазью Левомеколь (3 группа, сравнения) марля была приклеена непосредственно к ложу ожоговой поверхности, где имелся мокнущий раневой детрит с признаками воспаления, наличием серозно-геморраги-
• л
te * ' — :■■„
ческого экссудата. Ежедневное снятие марли в 3 группе приводило к небольшому повреждению и легкому эрозивному кровотечению из ран, а также к дискомфорту у крыс. Сокращение размеров термической раны и ее эпителизация на 5 и 10 сутки шли в этой группе медленно (рис. 5).
.111Щ £
ш-é
Г.'-
ш
Ч ЛАШШ
а
Рисунок 5. Фото ожоговой раны крысы на 5 (а) и 10 (б) сутки, лечение которой осуществлялось
перевязками с мазью Левомеколь
Уменьшение площади ожоговых ран у крыс в исследуемых группах происходило по-разному, что отражено в таблице 1.
В результате проведенных исследований установлено, что достоверное (р<0,001) снижение площади ожоговой поверхности к 15 суткам наблюдений происходило во всех трех группах крыс, однако более эффективно оно
наблюдалось при применении раневых покрытий из БЦ в 1 группе - на 47,3±1,8% и во 2 группе - на 44,5±2,1%, тогда как в 3 группе - на 38,0±1,2% (р<0,05). В дальнейшем улучшение заживления ожоговых ран во всех группах сохранялось, однако в 1 и 2 группе оно имело более интенсивную динамику (рис. 6, а, б).
Таблица 1
Результаты заживления экспериментальных ожоговых ран в группах
Показатель Группа 1 (П = 20) Группа 2 (П = 20) Группа 3 (П = 20) Кг Р2-3
Абсолютная площадь раны после некрэктомии на 3 сутки, см2 36,4±0,8 35,8±0,6 37,1±0,5 Р>0,1 Р>0,1 Р>0,1
5 сутки 34,1±0,6 33,9±0,4 35,3±0,6 Р>0,1 Р>0,1 Р>0,1
10 сутки 26,4±0,8 27,6±0,6 31,2±0,6 Р>0,1 Р<0,001 Р<0,001
15 сутки 18,8±0,5 19,6±0,6 23,1±0,9 Р>0,05 Р<0,001 Р<0,01
20 сутки 8,1±0,8 10,4±0,9 15,2±0,5 Р>0,1 Р<0,001 Р<0,01
28 сутки 0,8±0,5 1,1±0,6 7,8±0,7 Р>0,1 Р<0,001 Р<0,001
% эпителизации раны (28 суток) 97,8±1,4 97,0±1,2 79,0±1,8 Р>0,1 Р<0,05 Р<0,05
Примечание: р - значимость различий площади ожоговых ран при сравнении между группами на фоне лечения
Рисунок 6. Фото заживления ожоговой раны крысы на 20 сутки: а - лечение с помощью раневых покрытий на основе БЦ, б - лечение с помощью повязок с мазью Левомеколь
Так, в 1 группе площадь ожоговой раны на 28-е сутки по сравнению с 15-ми сутками уменьшилась на 95,8%, во 2 группе на 94,5%, тогда как в 3 группе это снижение произошло на 66,1%. Большинство ожоговых ран в 1 и 2 группе к окончанию лечения эпителизировались. В целом за 28 суток наблюдений площадь ожоговой раны у крыс 1 группы сократилась на 97,8±1,4%, 2 группы на 97,0±1,2% и 3 группы на 79,0±1,8%.
По-видимому, формирующийся и хорошо фиксированный сухой струп в ожоговой ране после высыхания БЦ способствует ее заживле-
нию в закрытой среде и это обеспечивает более быстрый рост эпидермиса. В этом случае БЦ действует как физический барьер между раной и окружающей средой и, следовательно, предотвращает травматизацию раневой поверхности при контакте с перевязочным материалом и ее микробную контаминацию. На протяжении 10 суток демаркации струпа инфицирования раны не отмечалось. Результаты динамики микробиологического спектра ожоговых ран в группах экспериментальных животных на протяжении 28 суток исследования представлены в таблице 2.
Таблица 2
Изменения микробиологического спектра ожоговых ран в группах животных
в процессе лечения
Сутки 1 группа (БЦ+физраствор) 2 группа (БЦ + хлоргексидин) 3 группа (мазь Левомеколь)
St. epidermidis 104 St. epidermidis 104 Escherichia coli 104
St. epidermidis 104 Escherichia coli 104 St. epidermidis 104 St. epidermidis 104 Corynebacterium spp. 102
5 сутки St. epidermidis 104 St. epidermidis 104 Escherichia coli 104
St. epidermidis 104 Escherichia coli 104 Acinetobacter spp. 104 St. epidermidis 104 Corynebacterium spp. 104 Escherichia coli 104
St. epidermidis 104 Acinetobacter spp. 104 St. epidermidis 104 Proteus mirabilis 104
St. epidermidis 103 St. epidermidis 104 St.epidermidis 102
St. epidermidis 104 St. epidermidis 104 St.epidermidis 104 Proteus mirabilis 104 Escherichia coli 103
10 сутки St. epidermidis 104 St. epidermidis 104 Corynebacterium spp. 104
St. epidermidis 104 St. epidermidis 104 Corynebacterium spp. 104 St. epidermidis 104 Escherichia coli 104
St. epidermidis 104 St. epidermidis 102 Escherichia coli 104
Нет роста микрофлоры St. epidermidis 104 St. epidermidis 103
Нет роста микрофлоры St. epidermidis 102 St. epidermidis 104
20 сутки Нет роста микрофлоры St. epidermidis 104 St. epidermidis 104 Corynebacterium spp. 104
Нет роста микрофлоры Escherichia coli 104 St. epidermidis 104 St. epidermidis 104 Corynebacterium spp. 104
St. epidermidis 102 St. epidermidis 102 Escherichia coli 104
St. epidermidis 103 Corynebacterium spp. 102 St. epidermidis 103 Escherichia coli 102 St. epidermidis 104 Corynebacterium spp. 103
St. epidermidis 102 Escherichia coli 102 St. epidermidis 103 St. epidermidis 104 Corynebacterium spp. 103
28 сутки St. epidermidis 104 Corynebacterium spp. 103 St. epidermidis 103 St. epidermidis 104 Corynebacterium spp. 103
St. epidermidis 103 St. epidermidis 103 St. epidermidis 104
St. epidermidis 104 Escherichia coli 102 St. epidermidis 104
При оценке микробиологического спектра ожоговых ран установлено, что в начале лечения в большинстве случаев в посевах из ожоговых ран животных всех групп регистрировалась условно-патогенная флора в виде Staphylococcus epidermidis в концентрации 104 колониеобра-зующих единиц (КОЕ). Начиная с 5 суток, в группах появляются штаммы Escherichia coli, Corynebacterium spp., Proteus mirabilis в концентрации 104 КОЕ в виде монокультур, а также в ассоциациях St. epidermidis 104. Однако эти изменения более выражены в 3 группе. На 20 сутки в 1 группе с использованием раневых чистых покрытий БЦ (физиологический раствор) почти во всех случаях отмечено отсутствие роста микрофлоры в посевах. В дальнейшем, на 28 сутки в 1 и во 2 группе наблюдается снижение микробной обсемененности ран с 104 до 103, 102
КОЕ, тогда как в 3 группе концентрация штаммов возбудителей сохраняется практически на уровне 104 КОЕ.
Таким образом, на основании проведенных исследований было доказано достоверное увеличение скорости заживления ожоговых ран в основных группах с использованием раневых покрытий на основе БЦ (группа 1 и 2), проявляющееся полноценной эпителизацией площади ожогового дефекта у большинства животных к 28 суткам, отсутствием признаков воспаления по отношению к группе сравнения [30]. Установлено, что при глубоком ожоге 2-3 степени у крыс достаточно двух-, трехкратного применения раневого покрытия на основе БЦ, формирующего плотный ожоговый струп, который отторгается в ряде случаев в среднем через 10 суток или после полной эпителизации раны
[29]. На модели экспериментальных термических ожогов были выявлены положительные свойства раневых покрытий из БЦ: формирование закрытой среды, обеспечение барьера между раной и окружающей средой, защита раны от механических воздействий и травматизации раневой поверхности, уменьшение экссудации, отсутствие инфицирования ран по данным бактериологического мониторинга.
Выводы
1. На основе экспериментальных клинических наблюдений установлено, что БЦ является безопасным материалом для лечения глубоких ожогов 2-3 степени у крыс. 2. Динамика заживления ожоговых ран в группах с использованием раневых покрытий на основе БЦ (физиологический раствор или 1% раствор хлоргексидина) была сходной и к окончанию исследований достоверно превосходила по скорости эпителизации раны группы сравнения в среднем на 18%, где лечение осуществлялось с использованием мази Левомеколь. 3. Формирующийся сухой струп вследствие высыхания пластин БЦ хорошо фиксируется к краям раны, формирует над ней механический барьер, который препятствует микробной контаминации, что может способствовать еще более быстрому ее заживлению в закрытой среде.
Конфликт интересов. Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.
Список литературы:
1. Schwacha M.G., Thobe B.M., Daniel T., Hubbard W.J. Impact of thermal injury on wound infiltration and the dermal inflammatory response. Journal of Surgical Research. 2010; 158(1): 112-120. https://doi.org/10.1016/j.jss.2008.07.034
2. Sun G., Zhang X., Shen Y.-I., Sebastian R., Dickinson L.E., Fox-Talbot K., Reinblatt M., Steen-bergen C., Harmon J.W., Gerecht S. Dextran hy-drogel scaffolds enhance angiogenic responses and promote complete skin regeneration during burn wound healing, Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 2011; 108(52): 20976-20981. https://doi.org/10.1073/ pnas.1115973108
3. Schulte G.S., Wysocki A. Interations between extracellular matrix and growth factors in wound healing, Wound Repair and Regeneration. 2009; 17(2), 153-162. https://doi.org/10.1111/j.1524-475X.2009.00466.x
4. Soto-Pantoja D.R., Shih H.B., Maxhimer J.B., Cook K.L., Ghosh A., Isenberg J.S., Roberts D.D. Thrombospondin-1 and CD47 signaling regulate healing of thermal injury in mice. Matrix Biology. 2014; 37: 25-34. https://doi.org/10.1016/j.mat-bio.2014.05.003
5. Phelan H.A., Bernal E. Treatment of deep burns. Uptodate literature review current through, 2019. This topic last updated: apr 27, 2018
6. Baxter R.M., Dai T., Kimball J., Wang E., Ham-blin M.R., Wiesmann W.P., McCarthy S.J., Baker S.M. Chitosan dressing promotes healing in third degree burns in mice: Gene expression analysis shows biphasic effects for rapid tissue regenera-
tion and decreased fibrotic signaling. Journal of Biomedical Materials Research Part A. 2013; 101(2): 340-348. https://doi.org/10.1002/jbm.a.34328
7. Balasubramani M., Kumar T.R., Babu M. Skin substitutes: a review. Burns. 2001; 27(5): 534-544. https://doi.org/10.1016/s0305-4179(01)00018-3
8. Picheth G.F., Pirich C.L., Sierakowski M.R., Woehl M.A., Sakakibara C.N., de Souza C.F., Martin A.A., da Silva R., de Freitas R.A. Bacterial cellulose in biomedical applications: A review. Int J Biol Macromol. 2017; 104: 97-106. https://doi. org/10.1016/j.ijbiomac.2017.05.171
9. Czaja W., Krystynowicz A., Kawecki M., Wys-ota K., Sakiel S., Wroblewski P., Glik J., Nowak M., Bielecki S. Biomedical Applications of Microbial Cellulose in Burn Wound Recovery. Cellulose: Molecular and Structural Biology. Chapter 17. 2007: 307-321. https://doi.org/10.1007/978-1-4020-5380-1_17
10. Aboelnaga A., Elmasry M., Adly O.A., Elbad-awy M.A., Abbas A.H., Abdelrahman I., Salah O., Steinvall I. Microbial cellulose dressing compared with silver sulphadiazine for the treatment of partial thickness burns: A prospective, randomised, clinical trial. Burns. 2018; 44(8): 1982-1988. https:// doi.org/10.1016/j.burns.2018.06.007
11. Coelho G.A., Magalhaes M.A.B., Matioski A., Ribas-Filho J.M., Magalhaes W.L.E., Claro F.C., Ramos R.K. de Camargo T.M.S., Malafaia O. Pine nanocellulose and bacterial nanocellulose dressings are similar in the treatment of second-degree burn? Experimental study in rats. ABCD. Arquivos Bra-sileiros de Cirurgia Digestiva. 2020; 32(02): e1533. https://doi.org/10.1590/0102-672020200002e1533
12. Brassolatti P., Bossini P.S., Kido H.W., Der-encio Oliveira M.C., Almeida-Lopes L., Zanardi L.M., Napolitano M.A., Retto da Silva de Avo L., Araujo-Moreira F.M., Parizotto N.A.. Photobiomodulation and bacterial cellulose membrane in the treatment of third-degree burns in rats. J Tissue Viability. 2018; 27(4): 249-256. https://doi. org/10.1016/j.jtv.2018.10.001
13. De Oliveira Barud H.G., da Silva R.R., da Silva Barud H., Tercjak A., Gutierrez J., Lustri W.R., de Oliveira Junior O.B., Ribeiro S.J.L. A multipurpose natural and renewable polymer in medical applications: bacterial celulose. Carbohydr Polymers. 2016; 153: 406-420. https://doi.org/10.1016/j. carbpol.2016.07.059
14. Muangman P., Opasanon S., Suwanchot S., O. Thangthed O. Efficiency of microbial cellulose dressing in partial-thickness burn wounds. J. Am. College Certified Wound Specialists. 2011; 3(1): 161. https://doi.org/10.1016/j.jcws.2011.04.001
15. Anton-Sales I., Roig-Sanchez S., Traeger K., Weis C., Laromaine A., Turon P., Roig A. In vivo soft tissue reinforcement with bacterial nanocellu-lose. Biomater. Sci. 2021; 9: 3040-3050. https://doi. org/10.1039/D1BM00025J
16. Rajwade J.M., Paknikar K.M., Kumbhar J.V. Applications of bacterial cellulose and its composites in biomedicine. Applmicrobiolbiotechnol. 2015; 99(6): 2491-2511. https://doi.org/10.1007/ s00253-015-6426-3
17. Hakkarainen T., Koivuniemi R., Kosonen M., Escobedo-Iucea C., Sanz-Garcia A., Vuola J., Valtonen J., Tammela P., Makitie A., Luukko K.,
Yliperttula M., Kavola H. Nanofibrillar cellulose wound dressing in skin graft donor site treatment. J Control Release. 2016; 244(Pt b): 292-301. https:// doi.org/10.1016/j.jconrel.2016.07.053
18. Emre Oz Y. Keskin-Erdogan Z., Safa N., Esin Hames Tuna E. A review of functionalised bacterial cellulose for targeted biomedical fields. J Biomater Appl. 2021; 36(4): 648-681. https://doi. org/10.1177/0885328221998033
19. Takejima M.L., Magalhaes MAB, Ribas-Filho J.M., Tabushi F.I., Bufon C.C.B., Camargo T.M.S., Maluf I.C., Malafaia O. Vegetable cellulose nanofiber dressing aids in the healing process of third-degreedurns? On rats. Arq Bras Cir Dig. 2021; 34(2): e1586. https://doi.org/10.1590/0102-672020210002e1586
20. Liu W., Du H., Zhang M., Liu K., Liu H., Xie H., Zhang X., Si C. Bacterial Cellulose-Based Composite Scaffolds for Biomedical Applications: A Review. ACS Sustainable Chem. Eng. 2020; 8(20): 7536-7562. https://doi.org/10.1021/jacsau.2c00436
21. Brassolatti P., Kido H.W., Bossini P.S., Gab-bai-Armelin P.R., Ottergo A.N., Almeida-Lopes L, Zanardi L.M., Napolitano M.A., de Avó L.R.D.S., Forato L.A., Araújo-Moreira F.M., Parizotto N.A. Bacterial cellulose membrane used as biological dressings on third-degree burns in rats. Biomed Mater Eng. 2018; 29(1): 29-42. https://doi. org/10.3233/BME-171710
22. Powell L.C., Khan S., Chinga-Carrasco G., Wright C.J., Hill K.E., Thomas D.W. An investigation of pseudomonas aeruginosa biofilm growth on novel nanocellulosefibre dressings. Carbohydr Polym. 2016; 137: 191-197. https://doi.org/10.1016/j. carbpol.2015.10.024
23. Yang Z., Huang R., Zheng B., Guo W., Li C., He W., Wei Y., Du Y., Wang H., Wu D., Wang
H. Highly Stretchable, Adhesive, Biocompatible, and Antibacterial Hydrogel Dressings for Wound Healing Adv. Sci. 2021; 8: 2003627. https://doi. org/10.1002/advs.202003627
24. Khalid A., Khan R., Ul-Islam M., Khan T., Wahid F. Bacterial cellulose-zinc oxide nanocom-posites as a novel dressing system for burn wounds. Carbohydr Polym. 2017; 164: 214-221. https://doi. org/10.1016/j.carbpol.2017.01.061
25. Cacicedo M.L., Castro M.C., Servetas I., Bos-nea L., Boura K., Tsafrakidou P., Dima A., Terpou A., Koutinas A., Castro G.R. Progress in bacterial cellulose matrices for biotechnological applications. Bioresour Technol. 2016; 213: 172-180. https:// doi.org/10.1016/j.biortech.2016.02.071
26. Sajjad W., Khan T., Ul-Islam M., Khan R., Hussain Z., Khalid A., Wahid F. Development of modified montmorillonite-bacterial cellulose nanocomposites as a novel substitute for burn skin and tissue regeneration. Carbohydr Polym. 2019; 206:548-556. https://doi.org/10.1016/j.carb-pol.2018.11.023
27. Pasaribu K.M., Ilyas S., Tamrin T., Radecka
I., Swingler S., Gupta A., Stamboulis A.G., Gea S. Bioactive bacterial cellulose wound dressings for burns with collagen in-situ and chitosan ex-situ impregnation. Int J Biol Macromol. 2023; 230:123118. https://doi.org/10.1016/j.ijbiomac.2022.123118
28. Пахомова А.Е., Пахомова Ю.В., Пахомова Е.Е. Новый способ экспериментального моде-
лирования термических ожогов кожи у лабораторных животных, отвечающий принципам Good Laboratory Practice (надлежащей лабораторной практики). Медицина и образование в Сибири. 2015; (3): 97.
29. Зиновьев Е.В., Лукьянов С.А., Цыган В.Н., Кульминская А.А., Лапина И.М., Журишкина Е.В., Лопатин И.М., Асадулаев М.С., Арцимо-вич И.В., Костяков Д.В., Панеях М.Б., Шабу-нин А.С., Зубов В.В., Жилин А.А., Давлетова Л.А., Стекольщикова Е.А. Оценка эффективности раневых покрытий на основе бактериальной целлюлозы с фукоиданом при ожогах кожи. Вестник Российской военно-медицинской академии. 2019; 1(65): 148-152. https://doi. org/10.17816/brmma12319
30. Pan X., Han C., Chen G., Fan Y. Evaluation of Bacterial Cellulose Dressing versus Vaseline Gauze in Partial Thickness Burn Wounds and Skin Graft Donor Sites: A Two-Center Randomized Controlled Clinical Study. Evid Based Complement Alternat Med. 2022; 2022: 5217617. https:// doi.org/10.1155/2022/5217617
References
1. Schwacha M.G., Thobe B.M., Daniel T., Hub-bard W.J. Impact of thermal injury on wound infiltration and the dermal inflammatory response. Journal of Surgical Research. 2010; 158(1): 112-120. https://doi.org/10.1016/j.jss.2008.07.034
2. Sun G., Zhang X., Shen Y.-I., Sebastian R., Dickinson L.E., Fox-Talbot K., Reinblatt M., Steen-bergen C., Harmon J.W., Gerecht S. Dextran hy-drogel scaffolds enhance angiogenic responses and promote complete skin regeneration during burn wound healing, Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 2011; 108(52): 20976-20981. https://doi.org/10.1073/ pnas.1115973108
3. Schulte G.S., Wysocki A. Interations between extracellular matrix and growth factors in wound healing, Wound Repair and Regeneration. 2009; 17(2), 153-162. https://doi.org/10.1111/j.1524-475X.2009.00466.x
4. Soto-Pantoja D.R., Shih H.B., Maxhimer J.B., Cook K.L., Ghosh A., Isenberg J.S., Roberts D.D. Thrombospondin-1 and CD47 signaling regulate healing of thermal injury in mice. Matrix Biology. 2014; 37: 25-34. https://doi.org/10.1016/j.mat-bio.2014.05.003
5. Phelan H.A., Bernal E. Treatment of deep burns. Uptodate literature review current through, 2019. This topic last updated: apr 27, 2018
6. Baxter R.M., Dai T., Kimball J., Wang E., Ham-blin M.R., Wiesmann W.P., McCarthy S.J., Baker S.M. Chitosan dressing promotes healing in third degree burns in mice: Gene expression analysis shows biphasic effects for rapid tissue regeneration and decreased fibrotic signaling. Journal of Biomedical Materials Research Part A. 2013; 101(2): 340-348. https://doi.org/10.1002/jbm.a.34328
7. Balasubramani M., Kumar T.R., Babu M. Skin substitutes: a review. Burns. 2001; 27(5): 534-544. https://doi.org/10.1016/s0305-4179(01)00018-3
8. Picheth G.F., Pirich C.L., Sierakowski M.R., Woehl M.A., Sakakibara C.N., de Souza C.F., Martin A.A., da Silva R., de Freitas R.A. Bacteri-
al cellulose in biomedical applications: A review. Int J Biol Macromol. 2017; 104: 97-106. https://doi. org/10.1016/j.ijbiomac.2017.05.171
9. Czaja W., Krystynowicz A., Kawecki M., Wys-ota K., Sakiel S., Wroblewski P., Glik J., Nowak M., Bielecki S. Biomedical Applications of Microbial Cellulose in Burn Wound Recovery. Cellulose: Molecular and Structural Biology. Chapter 17. 2007: 307-321. https://doi.org/10.1007/978-1-4020-5380-1_17
10. Aboelnaga A., Elmasry M., Adly O.A., Elbad-awy M.A., Abbas A.H., Abdelrahman I., Salah O., Steinvall I. Microbial cellulose dressing compared with silver sulphadiazine for the treatment of partial thickness burns: A prospective, randomised, clinical trial. Burns. 2018; 44(8): 1982-1988. https:// doi.org/10.1016/j.burns.2018.06.007
11. Coelho G.A., Magalhaes M.A.B., Matioski A., Ribas-Filho J.M., Magalhaes W.L.E., Claro F.C., Ramos R.K. de Camargo T.M.S., Malafaia O. Pine nanocellulose and bacterial nanocellulose dressings are similar in the treatment of second-degree burn? Experimental study in rats. ABCD. Arquivos Bra-sileiros de Cirurgia Digestiva. 2020; 32(02): e1533. https://doi.org/10.1590/0102-672020200002e1533
12. Brassolatti P., Bossini P.S., Kido H.W., Der-encio Oliveira M.C., Almeida-Lopes L., Zanardi L.M., Napolitano M.A., Retto da Silva de Avo L., Araüjo-Moreira F.M., Parizotto N.A.. Photobiomodulation and bacterial cellulose membrane in the treatment of third-degree burns in rats. J Tissue Viability. 2018; 27(4): 249-256. https://doi. org/10.1016/j.jtv.2018.10.001
13. De Oliveira Barud H.G., da Silva R.R., da Silva Barud H., Tercjak A., Gutierrez J., Lustri W.R., de Oliveira Junior O.B., Ribeiro S.J.L. A multipurpose natural and renewable polymer in medical applications: bacterial celulose. Carbohydr Polymers. 2016; 153: 406-420. https://doi.org/10.1016/j. carbpol.2016.07.059
14. Muangman P., Opasanon S., Suwanchot S., O. Thangthed O. Efficiency of microbial cellulose dressing in partial-thickness burn wounds. J. Am. College Certified Wound Specialists. 2011; 3(1): 161. https://doi.org/10.1016/j.jcws.2011.04.001
15. Anton-Sales I., Roig-Sanchez S., Traeger K., Weis C., Laromaine A., Turon P., Roig A. In vivo soft tissue reinforcement with bacterial nanocellu-lose. Biomater. Sci. 2021; 9: 3040-3050. https://doi. org/10.1039/D1BM00025J
16. Rajwade J.M., Paknikar K.M., Kumbhar J.V. Applications of bacterial cellulose and its composites in biomedicine. Applmicrobiolbiotechnol. 2015; 99(6): 2491-2511. https://doi.org/10.1007/ s00253-015-6426-3
17. Hakkarainen T., Koivuniemi R., Kosonen M., Escobedo-Iucea C., Sanz-Garcia A., Vuola J., Valtonen J., Tammela P., Mäkitie A., Luukko K., Yliperttula M., Kavola H. Nanofibrillar cellulose wound dressing in skin graft donor site treatment. J Control Release. 2016; 244(Pt b): 292-301. https:// doi.org/10.1016/j.jconrel.2016.07.053
18. Emre Oz Y. Keskin-Erdogan Z., Safa N., Esin Hames Tuna E. A review of functionalised bacterial cellulose for targeted biomedical fields. J Biomater Appl. 2021; 36(4): 648-681. https://doi. org/10.1177/0885328221998033
19. Takejima M.L., Magalhaes MAB, Ribas-Filho J.M., Tabushi F.I., Bufon C.C.B., Camargo T.M.S., Maluf I.C., Malafaia O. Vegetable cellulose nanofiber dressing aids in the healing process of third-degreedurns? On rats. Arq Bras Cir Dig. 2021; 34(2): e1586. https://doi.org/10.1590/0102-672020210002e1586
20. Liu W., Du H., Zhang M., Liu K., Liu H., Xie H., Zhang X., Si C. Bacterial Cellulose-Based Composite Scaffolds for Biomedical Applications: A Review. ACS Sustainable Chem. Eng. 2020; 8(20): 7536-7562. https://doi.org/10.1021/jacsau.2c00436
21. Brassolatti P., Kido H.W., Bossini P.S., Gab-bai-Armelin P.R., Otterço A.N., Almeida-Lopes L, Zanardi L.M., Napolitano M.A., de Avó L.R.D.S., Forato L.A., Araújo-Moreira F.M., Parizotto N.A. Bacterial cellulose membrane used as biological dressings on third-degree burns in rats. Biomed Mater Eng. 2018; 29(1): 29-42. https://doi. org/10.3233/BME-171710
22. Powell L.C., Khan S., Chinga-Carrasco G., Wright C.J., Hill K.E., Thomas D.W. An investigation of pseudomonas aeruginosa biofilm growth on novel nanocellulosefibre dressings. Carbohydr Polym. 2016; 137: 191-197. https://doi.org/10.1016/j. carbpol.2015.10.024
23. Yang Z., Huang R., Zheng B., Guo W., Li C., He W., Wei Y., Du Y., Wang H., Wu D., Wang
H. Highly Stretchable, Adhesive, Biocompatible, and Antibacterial Hydrogel Dressings for Wound Healing Adv. Sci. 2021; 8: 2003627. https://doi. org/10.1002/advs.202003627
24. Khalid A., Khan R., Ul-Islam M., Khan T., Wahid F. Bacterial cellulose-zinc oxide nanocom-posites as a novel dressing system for burn wounds. Carbohydr Polym. 2017; 164: 214-221. https://doi. org/10.1016/j.carbpol.2017.01.061
25. Cacicedo M.L., Castro M.C., Servetas I., Bos-nea L., Boura K., Tsafrakidou P., Dima A., Terpou A., Koutinas A., Castro G.R. Progress in bacterial cellulose matrices for biotechnological applications. Bioresour Technol. 2016; 213: 172-180. https:// doi.org/10.1016/j.biortech.2016.02.071
26. Sajjad W., Khan T., Ul-Islam M., Khan R., Hussain Z., Khalid A., Wahid F. Development of modified montmorillonite-bacterial cellulose nanocomposites as a novel substitute for burn skin and tissue regeneration. Carbohydr Polym. 2019; 206:548-556. https://doi.org/10.1016/j.carb-pol.2018.11.023
27. Pasaribu K.M., Ilyas S., Tamrin T., Radecka
I., Swingler S., Gupta A., Stamboulis A.G., Gea S. Bioactive bacterial cellulose wound dressings for burns with collagen in-situ and chitosan ex-situ impregnation. Int J Biol Macromol. 2023; 230:123118. https://doi.org/10.1016/j.ijbiomac.2022.123118
28. Pakhomova A.E., Pakhomova Y.V., Pakho-mova E.E. A new method of experimental modeling of thermal skin burns in laboratory animals that meets the principles of Good Laboratory Practice. Medicine and Education in Siberia. 2015; (3): 97. (In Russ.)
29. Zinoviev E.V., Lukyanov S.A., Tsygan V.N., Kulminskaya A.A., Lapina I.M., Zhurishkina E.V., Lopatin I.M., Asadulaev M.S., Artsimovich I.V., Kostyakov D.V., Paneyakh M.B., Shabunin A.S., Zubov V.V., Zhilin A.A., Davletova L.A., Stekol-
shchikova E.A. Evaluation of the effectiveness of wound coatings based on bacterial cellulose with fucoidan for skin burns. Bulletin of the Russian Military Medical Academy. 2019; 1(65): 148-152. (In Russ.) https://doi.org/10.17816/brmma12319
30. Pan X., Han C., Chen G., Fan Y. Evaluation of Bacterial Cellulose Dressing versus Vaseline Gauze in Partial Thickness Burn Wounds and Skin Graft Donor Sites: A Two-Center Randomized Controlled Clinical Study. Evid Based Complement Alternat Med. 2022; 2022: 5217617. https:// doi.org/10.1155/2022/5217617
Контактные данные
Автор, ответственный за переписку: Жариков Андрей Николаевич, д.м.н., доцент, заведующий кафедрой госпитальной хирургии, Алтайский государственный медицинский университет, г. Барнаул.
656024, Алтайский край, г. Барнаул, ул. Ляпидевского, 1.
E-mail: zhar67@mail.ru Тел: +79039485509 https://orcid.org/0000-0003-4292-4781
Информация об авторах
Алиев Александр Руштиевич, к.м.н., доцент кафедры госпитальной хирургии, Алтайский государственный медицинский университет, г. Барнаул. E-mail: alievar10@mail.ru https://orcid.org/0000-0002-4506-3799
Орлова Ольга Владимировна, старший преподаватель кафедры анатомии, Алтайский государственный медицинский университет, г. Барнаул.
E-mail: olgavin209@gmail.com
Дворникова Любовь Габдулбариевна, к.фарм.н., доцент кафедры фармации, Алтайский государственный медицинский университет, г. Барнаул.
E-mail: lioubov.dv@mail.ru
Мазко Олеся Николаевна, к.биол.н., доцент кафедры фармакологии им. профессора В.М. Брюханова, Алтайский государственный медицинский университет, г. Барнаул. E-mail: olesia.mazko@yandex.ru https://orcid.org/0000-0001-7299-4516
Макарова Олеся Геннадьевна, к.фарм.н., доцент кафедры фармации, Алтайский государственный медицинский университет, г. Барнаул. E-mail: olesia552@mail.ru
Прокопьев Василий Валерьевич, к.биол.н., доцент кафедры эпидемиологии, микробиологии и вирусологии, Алтайский государственный медицинский университет, г. Барнаул. E-mail: mikrob2b@mail.ru
Семенихина Наталья Михайловна, к.вет.н., доцент кафедры анатомии, Алтайский государственный медицинский университет, г. Барнаул.
E-mail: semenihina85@list.ru
Contact information Corresponding author: Andrey N. Zharikov, Dr. Sci. (Med.), Associate Professor, Head of the Department of Hospital Surgery, Altai State Medical University, Barnaul. 656024, Altai Krai, Barnaul, Lyapidevskogo Str. 1. E-mail: zhar67@mail.ru https://orcid.org/0000-0003-4292-4781
Author information
Alexander R. Aliev, Cand. Sci. (Med.), Associate Professor, Department of Hospital Surgery, Altai State Medical University, Barnaul. E-mail: alievar10@mail.ru https://orcid.org/0000-0002-4506-3799
Olga V. Orlova, Senior Lecturer, Department of Anatomy, Altai State Medical University, Barnaul. E-mail: olgavin209@gmail.com
Lyubov G. Dvornikova, Cand. Sci. (Pharm.), Associate Professor, Department of Pharmacy, Altai State Medical University, Barnaul. E-mail: lioubov.dv@mail.ru
Olesya N. Mazko, Cand. Sci. (Biol.), Associate Professor of the Department of Pharmacology named after Professor V.M. Brukhanov, Altai State Medical University, Barnaul. E-mail: olesia.mazko@yandex.ru https://orcid.org/0000-0001-7299-4516
Olesya G. Makarova, Cand. Sci. (Pharm.), Associate Professor, Department of Pharmacy, Altai State Medical University, Barnaul. E-mail: olesia552@mail.ru
Vasily V. Prokopiev, Cand. Sci. (Biol.), Associate Professor, Department of Epidemiology, Microbiology and Virology, Altai State Medical University, Barnaul.
E-mail: mikrob2b@mail.ru
Natalya M. Semenikhina, Cand. Sci. (Vet.), Associate Professor, Department of Anatomy, Altai State Medical University, Barnaul. E-mail: semenihina85@list.ru
Поступила в редакцию 20.07.2023 Принята к публикации 12.08.2023 Для цитирования: Жариков А.Н., Алиев А.Р., Орлова О.В., Дворникова Л.Г., Мазко О.Н., Макарова О.Г., Прокопьев В.В., Семени-хина Н.М. Результаты заживления ожоговых ран с помощью раневых покрытий на основе бактериальной целлюлозы в эксперименте. Бюллетень медицинской науки. 2023; 3(31): 19-29. https://doi.org/10.31684/25418475-2023-3-19
Citation: Zharikov A.N., Aliev A.R., Orlova O.V., Dvornikova L.G., Mazko O.N., Makarova O.G., Prokopiev V.V., Semenikhina N.M. Results of healing burn wounds using wound dressings based on bacterial cellulose in the experiment. Bulletin of Medical Science. 2023; 3(31): 19-29. https:// doi.org/10.31684/25418475-2023-3-19 (In Russ.)
