CC BY
69
© Группа авторов, 2003
Результаты хроматографического и электрофоретического разделения гликозаминогликанов сыворотки крови, суставного хряща и костной ткани
The results of chromatographic and electrophoretic separation of glycosaminoglycanes from blood serum, articular cartilage
and bone tissue
Государственное учреждение науки Российский научный центр "Восстановительная травматология и ортопедия" им. академика Г. А. Илизарова, г. Курган (генеральный директор — заслуженный деятель науки РФ, член-корреспондент РАМН, д.м.н., профессор В.И. Шевцов)
В работе представлены результаты хроматографического и электрофоретического разделения гликозаминогликанов сыворотки крови здоровых доноров, костной ткани сельхозживотных и суставного хряща интактных собак. Поскольку химические свойства гликозаминогликанов, являющихся тканеспецифичными, но видонеспецифичными соединениями, определяют функциональные потенции тканей, естественно полагать, что первые реактивные изменения, а в дальнейшем развитие патологического процесса, локализуются в системе протеин-полисахаридных комплексов.
Ключевые слова: ионообменная хроматография, электрофорез, гликозаминогликаны, костная ткань, суставной хрящ.
The results of chromatographic and electrophoretic seperation of glycosaminoglycanes from blood serum of normal donors, those from bone tissue of farm animals and from articular cartilage of intact dogs are given in the work. Due to the fact, that chemical properties of glycosaminoglycanes, which are tissue-specific but species-nonspecific compounds, determine functional potentials of tissues, it is naturally to suppose that early reactive changes and subsequently pathologic process development are localized in the system of protein-polysaccharide complexes.
Keywords: ion-exchange chromatography, electrophoresis, glycosaminoglycanes, bone tissue, articular cartilage.
Е.Л. Матвеева, С.Н. Лунева, И.А. Талашова
E.L. Matveyeva, S.N. Luniova, I.A. Talashova
ВВЕДЕНИЕ
Исследование спектра гликозаминогликанов (ГАГ) соединительной ткани представляет большой интерес как в теоретическом, так и в практическом плане. В ряде литературных источников подтверждено предположение о том, что продукты деградации протеогликанов (ПГ) соединительной ткани поступают в кровоток и увеличивают содержание ГАГ в сыворотке крови при некоторых патологиях опорно-двигательной системы [1, 2] пропорционально тяжести заболевания и распространенности патологического процесса. Качественный анализ
ГАГ сыворотки крови показал увеличение концентрации кератансульфата и гиалуроновой кислоты [3]. Однако нам представляется интересным сравнение пула ГАГ сыворотки крови, суставного хряща и костной ткани в норме для получения сравнительных характеристик при исследовании патологического процесса. Целью проведенного нами исследования являлось выделение и хроматографическое разделение ГАГ сыворотки крови, суставного хряща и костной ткани интактных собак в возрасте 1,5-3 года.
МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ
Для выделения ГАГ из костной ткани жи- ченный так, как было описано ранее [4]. Надо-
вотных мы использовали диссоциативно экстра- садочную жидкость, оставшуюся после осажде-
гированный костный матрикс, оставшийся по- ния коллагена, диализовали и лиофильно высу-
сле выделения неколлагеновых белков, полу- шивали. Высушенные ГАГ подвергали легкому
гидролизу HCl в течение 8 часов в соотношении 10 г : 300 мл 0,1 М HCl, нагревая под вакуумом. Гидролизат нейтрализовали 6 N NaOH до рН 7,0. Затем определяли уроновые кислоты (УК), гексозы и общий азот, по соотношению УК/гексозы рассчитывали концентрацию ГАГ в растворе. Кроме того, нами оформлена заявка на изобретение (получена приоритетная справка № 2002 129 089 от 5.11.02) "Способ выделения гликозаминогликанов из неминерализованной соединительной ткани".
Выделение гликозаминогликанов из суставного хряща интактных собак для исследования их качественного состава проводили в соответствии с описанным модифицированным методом [1,2]. Суставной хрящ подвергали папаино-вому протеолизу в присутствии фермента в 0,1 М ацетатном буфере рН 5,5 с 0,005М ЭДТА и 0,001М цистеина. Папаин брался из расчета 2-3 мг на 100 мг ткани. За 5 часов инкубации при 65°С ткань разрушалась полностью, в частности, происходила деструкция протеогликанов до ГАГ. Последнее подтвердили контрольные исследования надосадочной жидкости, полученной после осаждения ГАГ, показавшие отсутствие в ней уроновых кислот. Белки, РНК, глико-протеины осаждали из раствора протеолизата добавлением хлорной кислоты до 0,5N конечной концентрации. Осадок формировался в течение 30 мин при 0°С, после чего его отделяли центрифугированием (10мин,40.000 хg). Полученный супернатант медленно нейтрализовали 1М №ОН на холоду, затем проводили осаждение ГАГ 4%-ным ацетатом калия в 96% этаноле. Осадок ГАГ, собранный центрифугированием, переосаждали этанолом, снова собирали, высу-
шивали и растворяли в 0,5 мл воды, из которых отбирали аликвоту для количественной оценки ГАГ и электрофореза. Фракционирование ГАГ проводили методом горизонтального электрофореза в пластинах (9x12см) в 0,9% агарозном геле толщиной 1мм. Электрофорез вели на холоду в 0,1 М Ва(СН3СООН)2, рН 8,0 (30 мА; 1,5 часа), в 0,1 М Lia-Ha, рН 4,1 (20 мА, 40мин). После электрофореза гели окрашивали 0,1% толуидиновым синим в 1% уксусной кислоте в течение 30 мин, затем отмывали от избытка красителя в 1 % уксусной кислоте до прозрачного фона и сушили на стекле.
Выделение ГАГ из сыворотки крови собак производили по описанной в литературе [5] схеме, включающей в себя последовательные этапы ферментативного протеолиза, депротеи-низации и осаждения гликозаминогликанов специфическими осадителями - четвертичными аммониевыми основаниями.
Для хроматографического разделения препаратов ГАГ их растворяли в 5 мл 0,02 М трис-НС1 буфере (рН 7,2), наносили на колонку 2,5x2,0 см (был использован комплект оборудования для хроматографии низкого и среднего давления фирмы "LKB", Швеция), содержащую ДЕАЕ-сефадекс А-25 (ионообменная емкость 3,5+0,5 meg/g, размер гранул 40-120 мкм). Линейный градиент концентрации элюирующего раствора создавали использованием 0,00-2,5 М хлористого натрия в 0,02 М трис-HQ буфере (рН 7,0). Фракции денситометрировали при длине волны 226 нм и отбирали по 3 мл, объединяли в пределах одного пика и определяли в них количество УК, гексоз, общего азота и сульфатов.
РЕЗУЛЬТАТЫ И ОБСУЖДЕНИЕ
Ионообменная хроматография препарата ГАГ костной ткани показала, что он содержит один тип ГАГ, выходящих одним пиком и относящихся к хондроитинсульфату (рис. 1).
Гели, полученные при электорофорезе ГАГ суставного хряща и окрашенные метахромати-ческим красителем толуидиновым синим, который позволяет получить дифференцированное окрашивание полианионов разной структуры, имели следующие тона: синий цвет, что соответствует гиалуроновой кислоте, и фиолетовые тона различных оттенков, что характерно для сульфатированных ГАГ. Использованный метод показал, что препараты ГАГ хряща содержат 3 фракции (рис. 3), обозначенные А, В, С начиная от старта. Фракция А окрашивалась в синий цвет и имела вид, характерный для гиалуроно-вой кислоты, т.е. поперечную исчерченность. Фракции В и С окрашивались в фиолетовые тона. По полученным нами данным, фракция А представляет собой гиалуроновую кислоту,
фракции В и С, идентифицированные по пробегу стандартов, соответственно - кератансульфат и хондроитинсульфат.
Рис. 1. Хроматографический профиль протеолизата ГАГ внеклеточного матрикса костной ткани на анионообменнике
Е, 226 нм 300
150
NaCl моль/л 2,5
1,25
Рис. 2. Хроматографический профиль протеолизата
ГАГ сыворотки крови на анионообменнике
На основании полученных результатов был сделан вывод о том, что в препарате ГАГ из матрикса суставного хряща коленных суставов собак присутствуют гиалуроновая кислота, хон-дроитинсульфат и кератансульфат.
При проведении ионообменной хроматографии ГАГ сыворотки крови (рис. 1) мы получили три пика, которые идентифицировали, определяя показатели обмена ГАГ (табл. 1). Принимая во внимание отсутствие сульфатных групп в первом пике, этот пик был идентифицирован
нами как гиалуроновая кислота, что согласуется с данными литературы. Второй и третий пик были идентифицированы нами как хондроитин-сульфат и кератансульфат соответственно.
Поскольку химические свойства гликозами-ногликанов (являющихся тканеспецифичными, но видонеспецифичными соединениями [6]) определяют функциональные потенции тканей, естественно полагать, что первые реактивные изменения, а в дальнейшем развитие патологического процесса, локализуются в лабильной, но в целом устойчивой системе протеин-полисахаридных комплексов.
Таблица 1
Состав фракций ГАГ сыворотки крови здоровых людей
Показатель Фракции ПГ
I II III
УК мМ/л 0,82 1,51 1,33
Сульфаты мМ/л 0,13 2,48 1,46
ГА мМ/л 0,58 0,31 0,33
Сульфаты/УК 0,16 1,64 1,10
Рис. 3. Электрофореграмма ГАГ суставного хряща коленных суставов интактных собак в 1% агарозном геле, 0,1 М Ва(Ас)2 буфер, рН 8,0: А - ХС, В - КС, С - ГК. 1, 2 - экстракт ГАГ суставного хряща, 3 - ХС
ЛИТЕРАТУРА
0
0
1. Фильчагин Н.М., Косягин Д.В., Астапенко М.Г. Изменение концентрации гликозаминогликанов в сыворотке крови и хрящевой ткани у больных деформирующим остеоартрозом // Вопр. ревматизма. - 1982. - N4. - С. 34-36.
2. Косягин Д.В., Карякина Е.В. Гликозаминогликаны сыворотки крови при деформирующем артрозе и ревматоидном артрите // Тер. арх. - 1983. - N.7. - С.74-77.
3. Serum keratan sulfate levels rise in reumatoid arthritis compared with normal controls / B. Will, J. Elswood, L. Edmunds, A. Calin // Biochemist. - 1990. - Vol. 12, N 1. - P. 53.
4. Получение нативного коллагена из костной и идентификация коллагенов типа I и II хрящевой тканей / К.С. Десятниченко, Ю.М. Ирьянов, О.Л. Гребнева и др. // Материалы XXVII научно-практической конференции врачей Курганской обл. - Курган, 1995.- С. 143-144.
5. Карякина Е.В., Косягин Д.В. Определение гликозаминогликанов сыворотки крови // Лаб. дело. - 1982. - №10. - С.15-17.
6. Зимина Н.П., Рыкова В.И., Архипов В.А. Протеогликаны животных тканей как нерегулярные биополимеры: информативность структуры и контроль биосинтеза // Усп. совр. биол. -1992. - Т.112, вып.4. - С. 571-590.
Рукопись поступила 05.01.03.
