CC BY
55
УДК 616.986.7-036.22:599.323(571.63)
Е.А.Зайцева1, С.А. Ермолаева2, Г.П.Сомов1
1 НИИ эпидемиологии и микробиологии СО РАМН (г. Владивосток), 2 НИИ эпидемиологии и микробиологии им. Н.Ф. Гамалеи РАМН (г. Москва)
РАСПРОСТРАНЕНИЕ LISTERIA MONOCYTOGENES СРЕДИ МЫШЕВИДНЫХ ГРЫЗУНОВ НА ТЕРРИТОРИИ ПРИМОРСКОГО КРАЯ
Ключевые слова: листерии, мышевидные грызуны, факторы патогенности, интерналины.
Изучено распространение бактерий рода Listeria среди мышевидных грызунов, отловленных на территории Приморского края, и выявлены отдельные факторы патогенности возбудителя, необходимые на определенных этапах инфекции и приводящие к персистенции его в организме грызунов. Отмечено, что среди обследованных особей листерии были обнаружены у полевой мыши, красно-серой полевки, восточно-азиатской мыши, красной полевки. В группе животных по показателю инфицированности листериями доминировала полевая мышь (Apodemus agrarius), обитающая на равнинной территории Приморского края, от которой чаще всего выделялся патогенный для человека и животных вид L. monocytogenes. Исследования показали существование эпизоотического процесса листериоза в популяции мышевидных грызунов на территории Приморского края, которые при определенных условиях могут явиться источником инфекции.
Грамположительная бактерия Listeria monocytogenes, возбудитель листериоза, широко распространена в окружающей среде и выделена более чем у 100 видов различных животных (сельскохозяйственных, домашних, диких). В настоящее время доказано, что одним из источников листериозной инфекции для человека служат дикие грызуны и сельскохозяйственные животные. При попадании в макроорганизм эти бактерии вызывают развитие заболевания, которое обусловлено продукцией ими белковых факторов патогенности, позволяющих листериям проникать и паразитировать в эукариотических клетках (белки-интерналины InlA, InlB, Auto, ActA, листериолизин и др.) [12, 14].
Многие ученые проводят исследования на зараженность листериями грызунов и других диких животных, которым отводится важная роль в инфицировании окружающей среды и формировании природных очагов инфекции [2, 3, 7, 8, 11]. Известно, что как у людей, так и у животных может иметь место бессимптомное листериозное носительство [12, 13, 14]. При исследовании мышевидных грызунов, отловленных на Европейской территории России (домовые мыши, серые крысы, полевые мыши, рыжие полевки), были получены положительные результаты на листериоз в 0,14% случаях, а пробы, взятые на плодовоовощных базах (смывы, погрызенные овощи), были положительными в 3,3% случаях [8]. В Читинской области в естественных условиях заражение листериями найдено у многих видов мелких млекопитающих (тарбаган, суслик даурский, полевки разных видов — Брандта, стадная, восточная, красносерая, унгурская и монгольская, мышь домовая) и
насекомых (блохи), а также субстрата и почвы гнезд грызунов, погадок хищных птиц [11]. Общая инфи-цированность L. monocytogenes грызунов колеблется, по данным этих авторов, от 0,001 до 0,1%. Отмечено, что чаще эпизоотии протекают среди полевок [11]. Имеются сообщения о выделении L. monocytogenes от грызунов в г. Новороссийске [2].
Вопрос о циркуляции этого возбудителя среди грызунов на Дальнем Востоке до сих пор изучен недостаточно. В то же время известно, что территория Приморского края является эндемичной по ряду природно-очаговых инфекций, в том числе по геморрагической лихорадке с почечным синдромом, туляремии, лептоспирозу, а основными носителями этих патогенов являются мышевидные грызуны [1, 9].
Цель исследования — изучить распространение бактерий рода Listeria среди мышевидных грызунов на территории Приморского края и выявить отдельные факторы патогенности, необходимые на определенных этапах инфекции и приводящие к персистен-ции возбудителя в организме у грызунов.
Исследованы пробы органов (печень, селезенка, лимфатические узлы, кишечник) от 654 грызунов, которые были отловлены в течение 2004—2005 гг. в различных биотопах (хвойно-широколиственных и смешанных лесах в долинах ручьев и речек, прирусловых комплексах, вейнико-полынных разнотравных лугах и т.д.) на территории трех районов (Спасского, Надеждинского и Шкотовского) Приморского края. Микробиологические исследования проводились на средах с использованием методов, рекомендованных ГОСТ Р 51921-2002 и МУК 4.2.1122-02 для выявления листерий, а также с использованием питательных сред в авторской разработке [5].
Антигенные свойства культур определяли в линейной реакции агглютинации с помощью типовой поливалентной и моновалентных (I и IV серотипов) листе-риозных сывороток, изготовленных во ВНИИВВиМ (г. Покров). Для фаготипирования L. monocytogenes использовали набор бактериофагов, включающий фаги L-2A и L-4A (ВНИИВВиМ, г. Покров).
Антибиотикорезистентность штаммов определяли методом дискодиффузии в агар с применением стандартных бумажных дисков с антибиотиками, производства Научно-исследовательского центра фармакотерапии (г. Санкт-Петербург), согласно МУК 4.2.1890-04. В качестве питательной среды для определения чувствительности микроорганизмов
Виды грызунов — носителей бактерий рода Listeria на территории Приморского края
Таблица 1
№ штамма Вид листерий Год выделения Вид грызуна Латинское название Место выделения
VIMVR062 L. monocytogenes 2004 Полевая мышь Apodemus agrarius Спасский р-н
VIMVR063 L. monocytogenes 2004 Полевая мышь Apodemus agrarius Спасский р-н
VIMVR079 L. innocua 2004 Полевая мышь Apodemus agrarius Надеждинский р-н
VIMVR081 L. monocytogenes 2005 Красно-серая полевка Myodes rufocanus Шкотовский р-н
VIMVR082 L. monocytogenes 2005 Красно-серая полевка Myodes rufocanus Шкотовский р-н
VIMVR083 L. monocytogenes 2005 Красно-серая полевка Myodes rufocanus Шкотовский р-н
VIMVR084 L. monocytogenes 2005 Полевая мышь Apodemus agrarius Шкотовский р-н
VIMVR085 L. monocytogenes 2005 Полевая мышь Apodemus agrarius Шкотовский р-н
VIMVR086 L. monocytogenes 2005 Полевая мышь Apodemus agrarius Шкотовский р-н
VIMVR087 L. monocytogenes 2005 Полевая мышь Apodemus agrarius Шкотовский р-н
VIMVR088 L. monocytogenes 2005 Красно-серая полевка Myodes rufocanus Шкотовский р-н
VIMVR089 L. monocytogenes 2005 Красно-серая полевка Myodes rufocanus Шкотовский р-н
VIMVR090 L. monocytogenes 2005 Полевая мышь Apodemus agrarius Шкотовский р-н
VIMVR091 L. monocytogenes 2005 Полевая мышь Apodemus agrarius Шкотовский р-н
VIMVR092 L. monocytogenes 2005 Восточно-азиатская мышь Apodemus peninsulae Шкотовский р-н
VIMVR093 L. monocytogenes 2005 Восточно-азиатская мышь Apodemus peninsulae Шкотовский р-н
VIMVR094 L. monocytogenes 2005 Красно-серая полевка Myodes rufocanus Шкотовский р-н
VIMVR095 L. monocytogenes 2005 Красно-серая полевка Myodes rufocanus Шкотовский р-н
VIMVR096 L. monocytogenes 2005 Красно-серая полевка Myodes rufocanus Шкотовский р-н
VIMVR097 L. monocytogenes 2005 Красно-серая полевка Myodes rufocanus Шкотовский р-н
VIMVR172 L. ivanovii 2006 Красная полевка Myodes rutilus Спасский р-н
к антибиотикам использовали агар Мюллера-Хинтон (BioMerieux, Франция).
При проведении работ с экспериментальными животными выполнялись все правила, предусмотренные приказом МЗ СССР № 755 от 12.08.1977 г.
Для постановки полимеразной цепной реакции (ПЦР) использовали бактериальные лизаты, приготовленные, как описано Е.А. Зайцевой и др. [6]. Молекулярно-генетическое типирование штаммов проводили с помощью тест-системы Ампли-Сенс Listeria monocytogenes (г. Москва) по программе фирмы-изготовителя. Определение генов, кодирующих белки-интерналины А, В и С, осуществляли с использованием праймеров, указанных Е.А. Зайцевой и др. [4], а гена auto — с праймерами autoF-5’ -AAGTTGCGCGTGAAGAAATGC; autoR-5’ -GTGTTGACGTACCTACCTGTT; гена actA - с праймерами actAF-5’-AGGAAGGCGACTGGGGCGGAG, actAR-5’ -TGGAAATTCGAATGAGCTCGG. Нуклеотидные последовательности открытых рамок считывания генов, кодирующих интерналины, а также белки ActA, Auto были получены из базы данных ListiList (http://www.pasteur.fr), содержащей последовательность генома штамма EGDe, который был использован в данной работе как положительный контроль. Праймеры были выбраны в 5’ и 3’ областях открытых рамок считывания с помощью программы Oligo 38. ПЦР осуществляли на амплификаторе «Терцик» (ДНК-технология, Москва) по следующей программе:
1) для пар праймеров inlAF-inlAR, inlВF—inlВR, inlСF—inlСR, как указано Е.А. Зайцевой и др. [4];
2) для пары праймеров autoF-autoR — 1-й цикл — 94°С, 2 мин; 5 циклов - 94°С, 20 с, 50°С, 20 с, 72°С, 20 с; 25 циклов - 94°С, 5 с, 50°С, 5 с, 72°С, 5 с;
3) для пары праймеров actAF-actAR - 1-й цикл -94°С, 2 мин; 5 циклов - 94°С, 20 с, 55°С, 20 с, 72°С, 20 с; 25 циклов - 94°С, 5 с, 55°С, 5 с, 72°С, 5 с.
Продукты реакции разделяли на 1% агарозном геле в буфере ТАЕ и окрашивали бромистым этидием.
Микробиологическим методом была выделена 21 культура бактерий, относящихся к роду Listeria, 19 из которых были идентифицированы как L. monocytogenes и по одной культуре - как L. innocua и L. ivanovii (табл. 1). Среди обследованных грызунов, отловленных на территории Приморского края, листерии были обнаружены у полевой мыши, красно-серой полевки, восточно-азиатской мыши, красной полевки. От полевой мыши выделено два вида листерий - L. monocytogenes и L. innocua, от красной полевки - только один вид L. ivanovii. Носителями патогенного вида L. monocytogenes оказались мышевидные грызуны рода Apodemus (полевая и восточно-азиатская мыши) и лесные полевки рода Myodes (красно-серые полевки).
Известно, что существование микроба в определенной экологической нише (хозяине) и при определенной температуре влияет на его биологические свойства, что может сказываться на морфологии колоний, особенностях роста, активности ряда ферментов, антигенной структуре и вирулентности возбудителя [10]. С этой целью у всех штаммов L. monocytogenes, выделенных из органов грызунов, изучались биологические свойства. По морфологии среди культур чаще встречались кокки, палочки и реже - овоидные формы бактерий, которые окрашивались по Граму положительно. Все штаммы L. monocytogenes, изолированные от грызунов, были подвижны при 20-22°С, а 42% культур - неподвижны при 37°С. Все изоляты L. monocytogenes были оксидазоотрицательными. На
100
80
60
40
20
О
II I I I I
2 3 4 5 6 7 8 9 10 И 12 13 14 15 16 17 18
Рис. Резистентность к антимикробным препаратам штаммов L. monocytogenes, изолированных от грызунов в Приморском крае. 1 — эритромицин, 2 — азитромицин, 3 — амикацин, 4 — цефалежин, 5 — цефурожим, 6 — цефотажим, 7 — цефтазидим, 8 — цефаперазон, 9 — цефтриажон, 10 — налидижовая кжлота, 11 — офложацин, 12 — норфложацин, 13 — пефложацин, 14 — ципрофложацин, 15 — ломефлок-cацин, 16 — левофложацин, 17 — хлорамфеникол, 18 — полимижин.
кровяном агаре у 94,7% культур L. monocytogenes отмечалась зона Р-гемолиза.
При изучении биохимических свойств 100% культур L. monocytogenes разлагали до кислоты без газа эскулин, глюкозу, фруктозу, рамнозу, маннозу, лактозу, мальтозу, галактозу, салицин, мелецитозу и не разлагали ксилозу, маннит, мелибиозу, раффинозу, мочевину, дульцит, адонит и крахмал. По отношению к двум сахарам (арабинозе и сахарозе) они показали вариабильные результаты: 10,5% культур ферментировали арабинозу, 52,6% — сахарозу. У всех изучаемых культур листерий отмечалась отрицательная метил-рот-реакция и реакция Фогес-Проскауэра на полужидком агаре (0,3%).
Таким образом, анализ ферментации углеводов и спиртов у штаммов L. monocytogenes, изолированных из органов грызунов, подтвердил относительную стабильность и однородность биохимических свойств этих бактерий, что, возможно, объясняется их хорошо выраженной адаптационной способностью к существованию в данных видах макроорганизмов.
Для более четкой идентификации и биологической характеристики выделенных из органов грызунов культур проведено фаготипирование штаммов L. monocytogenes. Чувствительными к бактериофагам L-2A и L-4A оказались 78,9% штаммов, из них 21% культур типировались фагом L-2A, а 57,9% — фагом L-4A.
L. monocytogenes в 100% случаев агглютинировались поливалентной листериозной сывороткой. Все штаммы типировались моноспецифическими листериоз-ными сывороткам и по антигенной структуре 40,7% из них относились к серотипу I и 59,3% — к серотипу IV
В процессе адаптации бактерий к определенным условиям существования немаловажное значение отводится их резистентности к антибиотикам [3]. В настоящее время установлено, что в связи с усилением генетического обмена плазмидами полиантибиотико-резистентности между циркулирующими штаммами различные виды бактерий могут приобретать и новые признаки, ранее не характерные для той или иной таксономической группы. Используя дискодиффузионный метод, нами был проведен анализ антибиоти-корезистентности изолятов L. monocytogenes, который показал, что все штаммы оказались резистентными к
цефалоспоринам II и III поколения (цефуроксиму и цефтазидиму, цефотаксиму, цефтриаксону соответственно), налидиксовой кислоте и полимиксину. Высокий уровень резистентности L. monocytogenes был обнаружен к цефалоспоринам I (цефалексину) и III поколений (цефаперазон), а также фторхинолонам — пефлоксацину, ломефлоксацину, ципрофлоксацину (рис.). Все исследуемые культуры обладали полиан-тибиотикорезистентностью: 26,3% изолятов были резистентны к 10, 26,3% — к 11, 21% — к 9, 10,5% — к 13 препаратам, по 5,3% изолятов листерий — к 8, 12 и 15 антимикробным препаратам соответственно.
В последние годы достигнут существенный прогресс в изучении факторов патогенности листерий, их роли на различных этапах инфекционного процесса, наличия генов, определяющих их синтез, а также механизмов регуляции их экспрессии [12, 14].
У всех культур in vitro изучен ряд ферментов, которые могут участвовать в развитии инфекционного процесса — каталаза, гиалуронидаза, ДНКаза, ле-цитиназа, липолитическая активность (табл. 2). Все штаммы L. monocytogenes были каталазоположитель-ными, показали липолитическую активность на средах, содержащих твин 20, 60, 80, лецитиназу на среде ГРМ № 1 с активированным углем, ДНКазу. Гиалуронидаза была отмечена у 89,5% культур.
Выделенные из органов грызунов культуры L. monocytogenes были проанализированы с помощью полимеразной цепной реакции на присутствие генов, кодирующих факторы адгезии и инвазии, относящиеся к семейству интерналинов, а также генов actA и auto. На ДНК всех исследованных штаммов L. monocytogenes был получен продукт предсказанного размера. Сравнительный анализ по выявлению генов inlA, inlB, inlC у L. monocytogenes от грызунов, циркулирующих в данном географическом регионе, показал, что все изучаемые культуры обладали этими генами. Интересные результаты получены при выявлении генов, кодирующих белки ActA и Auto. У всех без исключения штаммов L. monocytogenes был обнаружен ген, кодирующий белок ActA, тогда как ген, кодирующий белок Auto, не выявлялся.
У штаммов, выделенных из органов грызунов на территории Приморского края, исследовалась in vivo
Факторы патогенности у культур L. monocytogenes, изолированных от грызунов в Приморском крае
Таблица 2
№ штамма Ферменты Гемолиз Гены, кодирующие белки Вирулентность для животных
а з а 5 £ а аза к а з н он ур (3 Липаза Лецитиназа (на среде ГРМ №1) 3 я g о g 3 д м О Q° hJ к/к проба, дни
твин 20 твин 60 твин 80 без угля с углем
VIMVR062 + + + + + + - + в + + + + - 6,3x106 + (10)
VIMVR063 + + + + + + - + в + + + + - 1,0x104 +
VIMVR081 + + + + + + - + в + + + + - но но
VIMVR082 + + + + + + - + в + + + + - 1,58x107 + (11)
VIMVR083 + + + + + + - + в + + + + - но но
VIMVR084 + + + + + + - + в + + + + - но но
VIMVR085 + + + + + + - + в + + + + - 6,3x106 -
VIMVR086 + + + + + + - + в + + + + - но но
VIMVR087 + + + + + + - + в + + + + - 3,98x105 + (9)
VIMVR088 + + + + + + - + в + + + + - но но
VIMVR089 + + + + + + - + в + + + + - 1,58x107 но
VIMVR090 + + + + + + - + в + + + + - 6,3x106 но
VIMVR091 + + + + + + - + в + + + + - но но
VIMVR092 + + + + + + - + в + + + + - 2,51x104 но
VIMVR093 + + + + + + - + в + + + + - но но
VIMVR094 + + + + + + - + - + + + + - но но
VIMVR095 + + - + + + - + в + + + + - но но
VIMVR096 + + - + + + - + в + + + + - но но
VIMVR097 + + + + + + - + в + + + + - но но
Примечание: к/к - кератоконъюнктивальная проба; но - не определяли.
вирулентность с определением LD50 в биопробах на неинбредных белых мышах и проводилась кератоко-нъюнктивальная проба на морских свинках (табл. 2). Отмечено, что исследуемые штаммы L. monocytogenes обладали довольно высокой вирулентностью по отношению к белым мышам, вызывая их гибель или развитие параличей. У морских свинок при инфицировании конъюнктивы глаз наблюдалось развитие гнойного кератоконъюнктивита или кератита.
Таким образом, в группе животных, отловленных в естественных биотопах, по числу инфицированных доминировала полевая мышь (Apodemus agrarius), обитающая на равнинной территории Приморского края, от которой чаще всего выделялся патогенный для человека и животных вид L. monocytogenes.
Результаты, полученные при изучении биологических свойств и молекулярно-генетических особенностей штаммов L. monocytogenes, показывают, что наличие или отсутствие факторов адгезии и инвазии является необходимым условием для персистирова-ния этих бактерий внутри организма диких грызунов. В то же время результаты исследований предполагают существование постоянного эпизоотического процесса листериоза в популяции грызунов, которые при определенных условиях могут явиться источником инфекции. Поэтому с целью мониторинга за листериями необходимы дальнейшие наблюдения, направленные на обследование природных очагов
в разные фазы популяционной численности грызунов — носителей патогенных микроорганизмов.
Литература
1. Боровская Н.А. Иммунологическая характеристика природных и антропургических очагов лептоспироза на территории Приморского края в современный период : дис. ... канд. мед. наук. — Владивосток, 2002.
2. Джупина С.И., Фомин В.М. // Науч.-производств. конф. «Медико-ветеринарные аспекты листерио-за». — Покров, 1993. — С. 15—16.
3. Домарадский И.В. // Журн. микробиол. — 1997. — № 4. — С. 31-35.
4. Зайцева Е.А., Ермолаева С.А., Сомов Т.П. // Журн. микробиол., эпидемиол и иммунобиол. — 2006. — № 4. — С. 42—45.
5. Зайцева Е.А., Сомов Т.П. //Журн. микробиол., эпидемиол и иммунобиол. — 2006. — № 2. — С. 3—6.
6. Зайцева Е.А., Пуховская Н.М., Мусатов Ю.С. и др. // Клин. микробиол. антимикроб. химиотер. — 2007. — Т. 9, № 1. — С. 81—89.
7. Котляров В.М. // Листериоз на рубеже тысячелетий : мат. симп. — Покров, 1999. — С. 48—52.
8. Маненкова Г.М., Цвиль Л.А. //Мед.-ветеринарн. асп. листериоза : мат. конф. — Покров, 1993. — С. 19—20.
9. Слонова Р.А., Астахова Т.И., Компанец Г.Г. //Журн. микробиол., эпидемиол и иммунобиол. — 1997. — № 5. — С. 97—101.
10. Сомов Т.П., Покровский В.И., Беседнова Н.Н. Псевдотуберкулез. - М.: Медицина, 1990.
11. Юзвик Л.Н., Агатв В.А., Ежинов И.П. // Науч.-производств. конф. «Медико-ветеринарные атек-ты листериоза». - Покров, 1993. - С. 23—25.
12. Тартаковский И.С., Малеев В.В., Ермолаева С.А. Листерии: роль в инфекционной штологии человека и лабораторная диагностика. - М. : Медицина, 2002.
13. Farber J.M., Peterkin P.I. // Microbiol. Rev. - 1991. -Vol. 55, No. 3. - P. 476-511.
14. Vazquez-Boland J.A., Kuhn M., Berche P. et al. // Clin. Microbiol. Rev. - 2001. - Vol. 14. - P. 5S4-640.
Постуnила в редакцию 14.05.200S.
DISTRIBUTION OF THE LISTERIA MONOCYTOGENES
IN MICE IN TERRITORY OF PRIMORSKI KRAI
E.A. Zajtseva1, S.A. Ermolaeva2, G.P. Somov1
1 Scientific research institute of epidemiology and microbiology of the Siberian branch of the Russian Academy of Medical Science (Vladivostok), 2 Scientific research institute of epidemiology and microbiology named by N.F.Gamalei, RAMS (Moscow)
Summary — Distribution of bacteria Listeria among mice rodents caught in territory of Primorsky Krai is investigated, and separate factors of pathogenicity of the activator, necessary infections at the certain stages and resulting in persisting it in an organism of rodents are revealed. It is marked, that among the surveyed rodents Listeria have been found out in the field mouse, it is East-Asian mice, red mice. Over the group of animals on a parameter of Listeria infection was dominated with the field mouse (Apodemus agrarius), living on flat territory of Primorsky Krai and among it — L. monocytogenes which is pathogenic for the human and animals was allocated. Researches have shown existence of epizootic process of Listeria in a population of mice rodents in territory of Primorsky Krai which under certain conditions can be a source of an infection.
Key words: Listeria, rodents, factors of pathogenicity, internalin.
Pacific Medical Journal, 2008, No. 2, p. 65—69.
УДК 616.61-008.6-085:[616.98:578.833.29
Ю.Г. Образцов1, А.Ф. Попов2, В.А. Иванис2, Т.В. Кушнарева3
1 Военно-морской клинический госпиталь ТОФ (г. Владивосток), 2 Владивостокский государственный медицинский университет, 3 НИИ эпидемиологии и микробиологии СО РАМН (г. Владивосток)
ЭТИОТРОПНАЯ ТЕРАПИЯ ГЕМОРРАГИЧЕСКОЙ ЛИХОРАДКИ С ПОЧЕЧНЫМ СИНДРОМОМ
Ключевые слова: геморрагическая лихорадка с почечным синдромом, рибавирин, лечение.
У 20 больных с геморрагической лихорадкой с почечным синдромом применена ступенчатая методика терапии ви-разолом (внутривенное введение 16 мг/кг 4 раза в сутки) в течение 3 дней с последующим приемом верорибавирина внутрь (1000 мг в сутки — 5 дней). Начало терапии у всех больных приходилось на 4-5-й дни болезни. У пациентов, получавших виразол, быстрее нормализовалась температура тела, исчезали боли в животе и области поясницы, меньше была продолжительность олигурии, отсутствовал геморрагический синдром. Продолжительность обнаружения РНК хантавируса в крови 20 пациентов, получавших виразол и рибавирин, была меньше, чем у пациентов, не получавших противовирусные препараты. Установлено положительное влияние виразола на иммунопатогенез инфекции, что подтверждено данными уровня цитокинов.
В последние годы все большее признание завоевывает этиотропная терапия вирусных инфекций. Известный противовирусный препарат рибавирин, обладающий широким спектром активности против РНК-и ДНК-содержащих вирусов, используется в терапии острых и хронических рецидивирующих инфекций. Опыт применения рибавирина и его аналогов (вира-зол, рибамидил) у больных геморрагической лихорадкой с почечным синдромом (ГЛПС), ассоциированной с серотипами Хантаан в Китае (1991—1994), Пуумала — в России (1991, 1993, 2000), и хантавирус-ным легочным синдромом, вызванным вирусом Син Номбре в США (1994), показал его эффективность в ранние сроки болезни. Высокую оценку получило рандомизированное плацебоконтролируемое лечение ГЛПС рибавирином в Китае в 1988—1994 гг., когда впервые было установлено быстрое снижение
вирусной нагрузки у 242 больных. Главным показателем эффективности в этом исследовании было статистически значимое снижение летальности (в 7 раз по сравнению с плацебо). Изучена клиническая эффективность препарата: на фоне приема рибавирина отмечалось уменьшение продолжительности лихорадки, олигурии, снижение риска развития геморрагического синдрома. Авторы показали более высокую эффективность при парентеральном введении риба-вирина. J.W. Huggins et al. (1988), Y Zhang et al. (1992), Z.O. Yang et al. (1992), участвуя в этой серии клинических испытаний, проанализировали динамику виремии методами изоляции вируса и определения иммуноглобулин M в непрямом методе флюоресцирующих антител и ELISA [4, 6, 7]. Терапевтический эффект рибавирина заключался в быстром прерывании репликации хантавируса при достижении нагрузочной дозы препарата (33 мг/кг). Подтверждение противовирусной эффективности рибавирина нашло отражение и в результатах недавних исследований W. Severson et al. [5], изучавших механизмы прекращения репликации хантавируса.
В отечественной клинической практике этиотроп-ная терапия ГЛПС не укрепилась, учитывая неэффективность противовирусных препаратов в более поздние сроки болезни, когда госпитализируется большая часть пациентов с тяжелыми формами инфекции и ее исход определяет не вирусная нагрузка, а поли-органная недостаточность и неотложные состояния. Отрицательное отношение к этиотропной терапии подкреплялось мнением о коротком периоде виремии
