CC BY
145
ФУНДАМЕНТАЛЬНЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ И МЕЖДИСЦИПЛИНАРНЫЕ ТЕХНОЛОГИИ ■
ПРОТЕЗИРУЮЩАЯ ГЕРНИОПЛАСТИКА С ИСПОЛЬЗОВАНИЕМ БАКТЕРИАЛЬНОЙ НАНОЦЕЛЛЮЛОЗЫ: ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНОЕ ИССЛЕДОВАНИЕ
Жариков А.Н.1, Лубянский В.Г.1, Гладышева Е.К.2, Скиба Е.А.2, Будаева В.В. Семенова Е.Н.3, Мотин Ю.Г.3, Жариков А.А.1
1 ФГБОУ ВО «Алтайский государственный медицинский университет» Минздрава России, Барнаул
2 ФГБУ «Институт проблем химико-энергетических технологий» Сибирского отделения Российской академии наук, Бийск
3 КГБУЗ «Краевая клиническая больница», патологоанатомическое отделение, Барнаул
Цель - оценить возможность использования бактериальной целлюлозы в качестве материала для протезирующей герниопластики грыж передней брюшной стенки.
Материал и методы. В экспериментальных исследованиях на собаках изучена возможность протезирования дефекта передней брюшной стенки с использованием новых материалов. В качестве протезирующего материала были использованы пластины влажной (99,9%) бактериальной наноцеллюлозы (БНЦ), полученной путем биосинтеза с помощью симбиотической культуры МеёизотусеБ д1$еуИ Бэ-12. Биосинтез БНЦ осуществлен на питательной среде, в основе своей состоящей из ферментативного гидролизата технической целлюлозы из плодовых оболочек овса. Все технологические стадии получения БНЦ из плодовых оболочек овса проведены согласно авторскому запатентованному способу. Полученная бактериальная целлюлоза представляет собой химически чистую целлюлозу, имеет степень кристалличности 88% и на 99% состоит из триклинной фазы 1а. Грыжу передней брюшной стенки моделировали путем выполнения среднесрединной лапаротомии. В дальнейшем к несомкнутым краям апоневроза фиксировали пластину бактериальной целлюлозы. Наряду с этим проведено сравнительное исследование укрепления дефекта апоневроза как пластиной БНЦ, так и отрезком полипропиленовой сетки «Ульрапро» (Этикон). На 14-е и 60-е сутки проводили забор материала с визуальной оценкой его расположения в тканях передней брюшной стенки и последующим гистологическим исследованием. Дополнительно проведена микроскопия полученных образцов БНЦ. Результаты. Установлена хорошая фиксация материала БНЦ в тканях передней брюшной стенки с формированием на 14-е сутки вокруг нее капсулы из мягких тканей, показана последующая деградация БНЦ на 60-е сутки послеоперационного периода с развитием в области размещения материала активных репаративных процессов и замещением его устойчивыми новообразованными соединительнотканными элементами (фибробласты, фибрин), менее выраженными по сравнению с фиксацией полипропиленовой сетки, не обнаружено гнойных осложнений на протяжении всего послеоперационного периода.
Заключение. Полученные результаты показывают возможность применения БЦН для протезирующей герниопластики.
Клин. и эксперимент. хир. Журн. им. акад. Б.В. Петровского. 2018. Т. 6, № 2. С. 59-66.
10.24411/2308-1198-2018-12008. Статья поступила в редакцию: 04.04.2018. Принята в печать: 20.04.2018.
ДЛЯ КОРРЕСПОНДЕНЦИИ
Жариков Андрей Николаевич -доктор медицинских наук, доцент кафедры факультетской хирургии им. И.И. Неймарка, госпитальной хирургии с курсом хирургии ДПО ФГБОУ ВО «Алтайский государственный медицинский университет» Минздрава России (Барнаул) E-mail: [email protected] https://orcid.org/0000-0003-4292-4781
Ключевые слова:
грыжа передней брюшной стенки, протезирующая герниопластика, бактериальная наноцеллюлоза
2
Prosthetic hernioplasty using bacterial nanocellulose: an experimental study
CORRESPONDENCE
Zharikov Andrey N. - MD, Associate Professor of the Department of Faculty Surgery named after I.I. Neimark, Hospital Surgery, Altai State Medical University (Barnaul) E-mail: [email protected] https://orcid.org/0000-0003-4292-4781
Keywords:
hernia of the anterior abdominal wall, prosthetic hernioplasty, bacterial nanocellulose
Zharikov A.N.1, Lubyansky V.G.1, Gladysheva E.K.2, Skiba E.A.2, Budaeva V.V.2, Semenova E.N.3, Motin Yu.G.3, Zharikov A.A.3
1 Altai State Medical University, Barnaul
2 Institute for Problems of Chemical and Energetic Technologies of the Siberian Branch of the Russian Academy of Sciences, Biysk
3 Regional Hospital, Barnaul
The aim is to evaluate the possibility of using bacterial cellulose as a material for a hernioplasty of prosthetic hernia of the anterior abdominal wall.
Material and methods. In experimental studies on dogs, the possibility of prosthetics of a defect in the anterior abdominal wall was studied using new materials. The plates of moist (99.9%) bacterial nanocellulose (BNC), obtained by biosynthesis with the symbiotic culture of Medusomyces gisevii Sa-12, were used as the prosthetic material. Biological synthesis of BNC was carried out on nutrient medium, basically consisting of enzymatic hydrolyzate of cellulose from fruit shells of oats. All technological stages of obtaining BNC from fruit shells of oats are carried out according to the author's patented method. The resulting bacterial cellulose is chemically pure cellulose, has a crystallinity of 88%, and consists of a triclinic phase Ia of 99%. Hernia of the anterior abdominal wall was modeled by performing a mid-median laparotomy. In the future, the plate of bacterial cellulose was fixed to the unclosed edges of the aponeurosis. Along with this, a comparative study of the strengthening of the aponeurosis defect, both with the BNC plate, and with a piece of polypropylene mesh "Ulrapro" (Ethikon) was carried out. On 14th and 60th days a material was taken with a visual assessment of its location in the tissues of the anterior abdominal wall and subsequent histological examination. The microscopy of the obtained BNC samples was additionally performed.
Results. A good fixation of the BNC material in the tissues of the anterior abdominal wall was established with the formation of a capsule of soft tissues on the 14th day around it, the subsequent degradation of the BNC on the 60th day of the postoperative period was shown, with the development of active repair processes in the area of material placement and replacement by its stable newly formed connective tissue elements (fibroblasts, fibrin), less pronounced in comparison with the fixation of the polypropylene mesh, no purulent complications were found during the entire postoperative period. Conclusion. The obtained results show the possibility of using bacterial nanocellulose for prosthetic hernioplasty.
Clin. Experiment. Surg. Petrovsky J. 2018; 6 (2): 59-66.
doi: 10.24411/2308-1198-2018-12008. Received: 04.04.2018. Accepted: 20.04.2018.
В настоящее время основной способ хирургического лечения паховых грыж и послеоперационных вентральных грыж передней брюшной стенки включает протезирующую герниопластику с использованием синтетических сеток, являющихся матриксом для образования соединительной ткани с формированием комплекса, состоящего из нерассасывающихся или рассасывающихся нитей сетки как основы с интегрированной в нее богатой коллагеном рубцовой ткани [1, 2]. Несмотря на широкий ассортимент материалов эндопроте-зов для герниопластики, наиболее используемым остается полипропилен [3, 4]. Однако, говоря о его положительных свойствах, необходимо отметить и ряд недостатков: хронический болевой синдром при избыточном образовании фиброзной ткани на фоне воспаления, которое сетка вызывает в окру-
жающих тканях; ограничение подвижности передней брюшной стенки вследствие плотного фиброза; ощущение инородного тела в зоне имплантации; адгезия с подлежащими петлями тонкого и толстого кишечника при отсутствии отграничения (брюшина, сальник) при ненатяжной герниопластике (in lay, sub lay); спаечная кишечная непроходимость; высокая стоимость композитных рассасывающихся синтетических протезов с противоадгезивным покрытием (Ргосеес! и Sofradim). В этой связи важное значение придается поиску и использованию новых материалов в герниологии, и одним из них может стать бактериальная целлюлоза [5].
Бактериальная наноцеллюлоза (БНЦ) - органический материал, синтезируемый внеклеточно микроорганизмами. Молекулярная формула и наноструктура БНЦ соответствуют целлюлозе, вы-
деленной из растительного сырья, но при этом БНЦ за счет трехмерной структуры, образованной микрофибриллами, обладает более высокой кристалличностью, модулем прочности на разрыв, во-допоглащающей способностью, пластичностью [б]. Она широко используется в текстильной, бумажной и пищевой промышленности [7-9].
Некоторые свойства БНЦ - пористость, влажность, нетоксичность, биосовместимость, высокая прочность - позволяют применять этот материал в биомедицине, включая инженерию костной ткани [10], формирование кровеносных сосудов в микрохирургии [11-13], сердечнососудистой хирургии (при дефектах сонных артерий) [14], разработку сосудистых стентов [15], лечение ожогов [16] и восстановление кожи [17], замену хрящевой ткани уха [18], регенерацию нервов [19], лечение трофических язв [20], в том числе при синдроме диабетической стопы [21], замену твердой мозговой оболочки [22], лечение заболеваний парадонта [23], восстановления костей носа [24], в качестве матрицы для роста роговицы [25]. Переплетение волокон БНЦ образует пористую структуру, что позволяет ей сорбировать практически любые лекарственные препараты, различные вещества технического назначения, включать в свой состав природные и синтетические полимеры, минеральные вещества, кластеры металлов, т.е. бактериальная целлюлоза (БЦ) является перспективной матрицей для получения композиций с заранее заданными свойствами. В последние годы на основе наноцеллюлозного материала разрабатываются некоторые биосистемы для различных фармацевтических приложений с контролируемым высвобождением веществ, им-прегнированных в его состав: тетрациклина [2б], лидокаина [27], аминокислот с сывороточным альбумином [28], серебра [29].
Таким образом, БНЦ с ее стабильностью, относительно низкой скоростью деградации, биосовместимостью, возможностью сорбции и адсорбции представляется перспективным материалом: она может способствовать повышению эффективности лечения больных с грыжами передней брюшной стенки, особенно при послеоперационных вентральных грыжах путем применения ненатяжной протезирующей герниопластики с защитой дефекта от сращений с органами брюшной полости.
Цель исследования - в эксперименте изучить возможности применения БНЦ в качестве материала для протезирующей герниопластики дефектов передней брюшной стенки.
Материал и методы
В качестве материала для экспериментальных исследований были использованы пластины БНЦ,
полученной путем биосинтеза с помощью симбиоти-ческой культуры Меёизошусез д!$еуИ Ба-12. Биосинтез БНЦ осуществлен на питательной среде, в основе своей состоящей из ферментативного гидролизата технической целлюлозы из плодовых оболочек овса. Все технологические стадии получения БНЦ из плодовых оболочек овса проведены согласно авторскому запатентованному способу [30]. Полученная БЦ представляет собой химически чистую целлюлозу, имеет степень кристалличности 88% и на 99% состоит из триклинной фазы 1а [31].
Экспериментальное исследование было выполнено на 5 собаках, содержащихся в стандартных условиях вивария. Под общей анестезий с соблюдением международных норм гуманного обращения с животными и уходу за ними (Европейская конвенция «О защите позвоночных животных, используемых для экспериментов или в иных научных целях», Страсбург, 198б г.), а также с одобрения этического комитета ФГБОУ ВО «Алтайский государственный медицинский университет» Минздрава России в стерильных условиях операционного блока кафедры общей хирургии, оперативной хирургии и топографической анатомии на собаках выполнялась ненатяжная герниопластика с использованием различных протезирующих материалов. В начале исследования были изучены изменения в тканях передней брюшной стенки при имплантации в нее пластины БЦ сроком на 2 нед. Для этого во время первой операции после выполнения под средне-срединной лапаротомии длиной до 7 см к краям апоневроза непрерывным атравматическим швом фиксировался отрезок БНЦ размером 6,0x1,5 см.
Визуальную оценку фиксации и забор материала для гистологического исследования с целью изучения реакции мягких тканей выполняли в процессе релапаротомии в ближайшем послеоперационном периоде, в основном на 14-е сутки.
Второй этап нашего экспериментального исследования был сравнительный. Моделировали грыжевой дефект передней брюшной стенки путем послойного рассечения тканей передней брюшной стенки с выполнением срединной лапарото-мии до 10 см в длину. В углах образованной раны формировали 2 участка: верхний и нижний. Далее выполняли ненатяжную герниопластику с использованием в качестве протезирующих устройств различных материалов. В верхнем участке срединной раны к несомкнутым краям апоневроза непрерывным швом фиксировали отрезок из БНЦ размером 4,0x1,5 см.
Для сравнения в нижнем участке этой срединной раны по периметру к несомкнутым краям апоневроза передней брюшной стенки непрерывным швом фиксировали аналогичный отрезок полипропиленовой сетки «Ультрапро» (производитель ЕЙкоп, Бельгия, США).
Рис. 1. Морфология пластины бактериальной наноцеллюлозы (БНЦ) и тканей передней брюшной стенки (ПБС) через 14 сут после имплантации. Лейкоцитарная инфильтрация, больше выраженная по краю БНЦ (показано стрелкой). Окраска - гематоксилин-эозин, х4
ПБС
БНЦ
После окончательной фиксации БНЦ и полипропиленовой сетки послойно накладывали швы на подкожно-жировую клетчатку и кожу. Сравнительную визуальную и гистологическую оценку результатов фиксации БНЦ и полипропиленовой сетки к апоневрозу передней брюшной стенки проводили через 60 сут после операции. Для морфологического исследования иссекали небольшие лоскуты тканей передней брюшной стенки с обоими эндо-протезами. Гистологические препараты окрашивали гематоксилином и эозином, а также окраской на фибрин по Пикро-Маллори.
Рис. 2. Морфология пластины бактериальной наноцеллюлозы и тканей передней брюшной стенки через 14 сут после имплантации.
Формирование сосудистых капилляров с эритроцитами(обведено кругом). Обрывки ядер нейтрофилов. Появление фибробластов. Окраска -гематоксилин-эозин, х40
Рис. 3. Морфология пластины бактериальной наноцеллюлозы и тканей передней брюшной стенки через 14 сут после имплантации. Две волны формирования молодого фибрина (двойная стрелка). Окраска по Пикро-Маллори на фибрин, х10
Рис. 4. Интеграция протезирующих материалов в тканях передней брюшной стенки через 60 сут после операции: ППС -полипропиленовая сетка; БНЦ - бактериальная наноцеллюлоза
Результаты и обсуждение
При обьективном исследовании оказалось, что через 14 сут после фиксации БНЦ в тканях передней брюшной стенки используемая пластина была окутана мягкими тканями, которые погрузили ее в капсулу без прорастания основного слоя. БНЦ изменила цвет с матово-белого на желтый, структура ее стала более плотной. Жидкостных скоплений, признаков нагноения не было. Между пластиной БНЦ и подлежащими тканями имелись рыхлые сращения, которые легко удалялись при мобилизации материала, под ним была заметна незрелая грануляционная ткань белесоватого цвета.
При микроскопическом исследовании гистологических образцов на 14-е сутки было установлено, что на границе БНЦ и тканей передней брюшной стенки идет нарастание мигрирующих в эту область клеточных элементов, представленных нейтрофилами, лимфоцитами (умеренная лейкоцитарная инфильтрация), которые располагались большими скоплениями (рис. 1). Кроме того, у края БНЦ имело место накопление форменных элементов крови с образованием неокапилляров (рис. 2) с эритроцитами на границе.
При исследовании материала с использованием окраски на фибрин (по Пикро-Маллори) на границе БНЦ и тканей передней брюшной стенки наблюдалось формирование молодого (рис. 3) и зрелого фибрина, который образовывался в форме глыбок, что указывало на происходящие в этой области репаративные процессы.
При посеве ткани передней брюшной стенки на среды бактериального роста не выявлено. Через 60 сут после имплантации БНЦ и полипропиленовой сетки при визуальной оценке реакции мягких тканей передней брюшной стенки мы также не отметили признаков инфицирования или формирования жидкостных скоплений. Материал был укрыт и хорошо фиксирован к краям апоневроза (рис. 4). Стоит отметить, что полноценный рубец в это время окончательно не был сформирован в обоих случаях.
При рассечении верхнего участка раны мы не обнаружили четко выраженного материала БНЦ. Вместо него имелась умеренно выраженная соединительная ткань. Наоборот, в области фиксации полипропиленовой стеки в нижнем углу раны наблюдались более грубые рубцовые структуры, к которым со стороны брюшной полости фиксировались сальник и петля тонкой кишки, что не отмечалось в отрезке с БНЦ, где были лишь небольшие сращения с сальником. При гистологическом исследовании препаратов через 60 сут после имплантации БНЦ в поле зрения почти не видна (рис. 5).
В тканях передней брюшной стенки наблюдалась выраженная функциональная активность макрофагов, заключающаяся в увеличении их количества в препарате по сравнению с тканями, содержащими полипропиленовую сетку. Диаметр ядер макрофагов на препарате с БНЦ был увеличен почти в 2 раза по сравнению с предыдущим сроком наблюдения, а также возросло количество вакуолей и фагоцитированных частиц в их цитоплазме. Все это указывало на поглощение (биодеградацию) БНЦ. Параллельно отмечалось появление фибробластов на фоне снижения интенсивности лейкоцитарной инфильтрации с формированием в этой области ровных фибриновых слоев (рис. 6).
При анализе гистологической картины препаратов ткани передней брюшной стенки с полипропиленовой сеткой было отмечено, что волокна последней (рис. 7) были погружены в полости элипсовидной формы с умеренной лейкоцитарной инфильтрацией и плотными слоями фибрина вокруг (рис. 8).
Таким образом, нами изучены краткосрочные результаты экспериментального применения БНЦ в качестве протезирующего материала при грыжах передней брюшной стенки. В дальнейшем формирование карскаса передней брюшной стенки из соединительной ткани на основе матрицы из БНЦ планируется отследить в течение 1 года.
Выводы
1. В экспериментальных исследованиях после имплантации пластин БНЦ в ткани передней брюшной стенки на 14-е и на 60-е сутки послеоперационного периода инфицирования материала не выявлено.
2. Через 14 сут после имплантации БНЦ вокруг нее образуется рыхлая мягкотканная капсула с элементами асептического воспаления с формированием молодого фибрина на границе с материалом.
Рис. 5. Морфология тканей передней брюшной стенки через 60 сут после имплантации бактериальной наноцеллюлозы (БНЦ): 1 - макрофаги с фагоцитированными частицами БНЦ;
2 - гигантские клетки по типу инородных тел;
3 - фибробласты. Окраска - гематоксилин-эозин, х20
Рис. 6. Морфология тканей передней брюшной стенки через 60 сут имплантации бактериальной наноцеллюлозы. Формирование равномерного зрелого фибрина
в месте расположения пластины бактериальной наноцеллюлозы. Окраска по Пикро-Маллори, х20
Рис. 7. Морфология полипропиленовой сетки и тканей передней брюшной стенки через 60 сут после имплатнации:
1 - окрашенные волокна полипропиленовой сетки;
2 - волокна полипропиленовой сетки, окруженные соединительнотканными элементами с умеренной лейкоцитарной инфильтрацией.
^ Окраска - гематоксилин-этЗН эозин, х10
Рис. 8. Морфология полипропиленовой сетки и тканей передней брюшной стенки через 60 сут после имплантации:
1 - полости, в которых находятся волокна полипропиленовой сетки;
2 - зрелый плотный фибрин, окружающий волокна сетки. Окраска по Пикро-Маллори, х10
3. При сравнительном анализе фиксации в тканях передней брюшной стенки БНЦ и полипропиленовой сетки «Ультрапро» на 60-е сутки отмечены признаки биодеградации БНЦ, доказываемые функциональной активностью макрофагов и замещением материала новообразованной соединительной тканью, плотность структурных элементов (фибробласты, фибрин) которой была
несколько менее выражена по сравнению с регенератом, сформированным на основе полипропиленовой сетки.
Работа по биосинтезу бактериальной наноцеллюлозы выполнена при поддержке гранта Российского научного фонда (проект № 17-19-01054).
Литература
1. Егиев В.Н., Воскресенский П.К., Емельянов С.И. Ненатяжная герниопластика. М. : Медпрактика-М, 2002. 147 с.
2. Седов М.В., Тарбаев С.Д., Гостевский А.А. Эффективность герниопластики с использованием полипропиленового сетчатого имплантата в лечении послеоперационных вентральных грыж // Вестн. хир. 2005. № 3. С. 85-87.
3. Coda A., Lamberti R., Martorana S. Classification of prosthetics used in hernia repair based on weight and biomaterial // Hernia. 2012. Vol. 16. P. 9-20. doi: 10.1007/s10029-011-0868-z.
4. Todros S., Pavan P.G., Pachera P., Natali A.N. Synthetic surgical meshes used in abdominal wall surgery: Part I - materials and structural conformation // J. Biomed. Mater. Res. B Appl. Biomater. 2017. Vol. 105, N 4. P. 892-903. doi: 10.1002/jbm.b.33586.
5. Falcao S.C., Coelho A.R., Evencio Neto J. Biomechani-cal evaluation of microbial cellulose (Zoogloea sp.) and expanded polytetrafluoroethylene membranes as implants in repair of produced abdominal wall defects in rats // Acta Cir. Bras. 2008. Vol. 23, N 3. P. 184-191. URL: http://dx.doi.org/10.1590/S0102-86502008000200012.
6. Dahman Y. Nanostructured biomaterials and biocomposites from bacterial cellulose nanofibers // J. Nanosci. Nanotechnol. 2009. Vol. 9, N 9. P. 5105-5122. URL: https://www.ncbi.nlm.nih. gov/pubmed/19928189.
7. Громовых Т.И., Фан Ми Хань, Бирюков Е. Г., Данильчук Т.Н., Абдрашитова Г.Г. Перспективы применения бактериальной целлюлозы в мясопродуктах // Мясная индустрия. 2013. № 4. C. 32-35.
8. Hioki N., Hori Y., Watanabe K., Morinaga Y. et al. Bacterial cellulose as a new material for papermaking // Jpn. TAPPI J. 1995. Vol. 49. P. 718-723.
9. Iguchi M., Yamanaka S., Budhiono A. Bacterial cellulose -a masterpiece of nature's arts // J. Mater. Sci. 2000. Vol. 35. P. 261270. URL: https://doi.org/10.1023/A:1004775229149.
10. Saska S., Barud H.S., Gaspar A.M.M., Marchetto R. et al. Bacterial cellulose-hydroxyapatite nanocomposites for bone regeneration // Int. J. Biomater. 2011. Vol. 2011. Article ID 175362. P. 1-8. URL: http://dx.doi.org/10.1155/2011/175362.
11. Klemm D., Schumann D., Udhard U., Marsch S. Bacterial synthesized cellulose: artificial blood vessels for microsurgery // Prog. Polym. Sci. 2001. Vol. 26, N 9. P. 1561-1603. doi: 10.1016/S0079-6700(01)00021-1.
12. Brown E.E., Laborie M.-P.G., Zhang J. Glutaraldehyde treatment of bacterial cellulose/fibrin composites: impact on morphology, tensile and viscoelastic properties // Cellulose. 2012. Vol. 19. P. 127-137. URL: https://doi.org/10.1007/s10570-011-9617-9.
13. Wippermann J., Schumann D., Klemm D., Kosmehl H. et al. Preliminary results of small arterial substitute performed with a new cylindrical biomaterial composed of bacterial cellulose // Eur. J. Vasc. Endovasc. 2009. Vol. 37, N 5. P. 592-596. URL: https:// doi.org/10.1016/j.ejvs.2009.01.007.
14. Schumann D., Wippermann J., Klemm D. et al. Artificial vascular implants from bacterial cellulose: preliminary results of small arterial substitutes // Cellulose. 2009. Vol. 16. P. 877-885. URL: https://doi.org/10.1007/s10570-008-9264-y.
15. Fink H., Faxalv L., Molnar G.F., Drotz K. et al. Real-time measurements of coagulation on bacterial cellulose and conventional vascular graft materials // Acta Biomater. 2010. Vol. 6. P. 11251130. URL: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/19800035.
16. Czaja W., Krystynowicz A., Kawecki M., Wysota K. et al. Biomedical applications of microbial cellulose in burn wound recovery // Cellulose: Molecular and Structural Biology. Dordrecht : Springer, 2007. P. 307-321. URL: https://doi.org/10.1007/978-1-4020-5380-1_17.
17. Fu L., Zhang J., Yang G. Present status and applications of bacterial cellulose-based materials for skin tissue repair// Carbohydr. Polym. 2013. Vol. 92. P. 1432-1442. doi: 10.1016/j.carbpol.2012.10.071. URL: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/23399174.
18. Nimeskern L., Avila HM., Sundberg J. et al. Mechanical evaluation of bacterial nanocellulose as an implant material for ear cartilage replacement // J. Mech. Behav. Biomed. Mater. 2013. Vol. 22. P. 12-21. URL: https://doi.org/10.1016/j.jmbbm.2013.03.005.
19. Kowalska-Ludwicka K., Cala J., Grobelski B., Sygut D. et al. Modified bacterial cellulose tubes for regeneration of damaged peripheral nerves // Arch. Med. Sci. 2013. Vol. 9. P. 527-534. URL: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC3701969.
20. Portal O., Clark W.A., Levinson D.J. Microbial cellulose wound dressing in the treatment of nonhealing lower extremity ulcers // Wounds. 2009. Vol. 21, N 1. P. 1-3. URL: https://www.ncbi. nlm.nih.gov/pubmed/25904579.
21. Solway D.R., Clark W.A., Levinson D.J. A parallel open-label trial to evaluate microbial cellulose wound dressing in the treatment of diabetic foot ulcers // Int. Wound J. 2011. Vol. 8, N 1. P. 69-73. URL: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/21159127.
22. Rosen C.L., Steinberg G.K., DeMonte F., Delashaw J.B. Jr et al. Results of the prospective, randomized, multicenter clinical trial evaluating a biosynthesized cellulose graft for repair of dural defects // Neurosurgery. 2011. Vol. 69, N 5. P. 1093-1103. URL: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/21670715.
23. Melo da Fonte J.B., Valido D.P., Filho L.X. et al. Otoliths/ bacterial cellulose nanocomposite as a potential dental pulp cap-
ping biomaterial in canine model // Oral Surg. Oral Med. Oral Pathol. Oral Radiol. 2015. Vol. 120. P. 105. URL: http://dx.doi.org/10.1016/ j.oooo.2015.02.469.
24. Amorim W.L., Costa H.O., de Souza F.C. et al. Estudo experimental da resposta tecidual a presenca de celulose produzida por Acetobacter xylinum no dorso nasal de coelhos // Braz. J. Otorhino-laryngol. 2009. Vol. 75. P. 200-207. URL: http://www.redalyc.org/ html/3924/392437883008.
25. Hui Jia, Yuanyuan Jia, Jiao Wang, Yuan Hu et al. Potentiality of bacterial cellulose as the scaffold of tissue engineering of cornea // Proceedings of the 2nd International Conference on Biomedical Engineering and Informatics (BMEI 2009). Tianjin, China, 2009. doi: 10.1109/BMEI.2009.5305657.
26. Stoica-Guzun A., Stroescu M., Tache F., Zaharescu T. et al. Effect of electron beam irradiation on bacterial cellulose membranes used as transdermal drug delivery systems // Nucl. Instrum. Methods Phys. Res. B. 2007. Vol. 265. P. 434-438. URL: http:// dx.doi.org/10.1016/j.nimb.2007.09.036.
27. Trovatti E., Silva N.H., Duarte I.F., Rosado C.F. et al. Biocellulose membranes as supports for dermal release of lidocaine //
Biomacromol. 2011. Vol. 12. P. 4162-4168. URL: https://www.ncbi. nlm.nih.gov/pubmed/21999108.
28. Muller A., Ni Z., Hessler N., Wesarg F. et al. The biopolymer bacterial nanocellulose as drug delivery system: investigation of drug loading and release using the model protein albumin // J. Pharm. Sci. 2013. Vol. 102, N 2. P. 579-592. URL: https:// www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/23192666.
29. Maria L.C.S., Santos A.L.C., Oliveira P.C., Valle A.S.S. et al. Preparation and antibacterial activity of silver nanoparticles impregnated in bacterial cellulose // Polimeros Ciencia Tecnologia. 2010. Vol. 20, N 1. P. 72-77. URL: http://dx.doi.org/10.1590/S0104-14282010005000001.
30. Пат. РФ № 2597291, МПК C12N 1/22, C12P 19/04. Способ получения бактериальной целлюлозы / Будаева В.В., Гладышева Е.К., Скиба Е.А., Сакович Г.В. № 2015129304/10 ; заявл. 16.07.2015 ; опубл. 10.09.2016, Бюл. № 25. 9 с.
31. Сакович Г.В., Скиба Е.А., Будаева В.В., Гладышева Е.К. и др. Технологические основы получения бактериальной наноцеллюлозы из сырья с нулевой себестоимостью // Докл. АН. 2017. Т. 477, № 1. С. 109-112.
References
1. Egiev V.N., Voskresenskiy P.K., Emel'yanov S.I. Non-stretching hernioplasty. Moscow: Medpraktika-M, 2002: 147. (in Russian)
2. Sedov M.V., Tarbaev S.D., Gostevskiy A.A. Effectiveness of hernioplasty using a polypropylene mesh implant in the treatment of postoperative ventral hernias. Vestnik khirurgii [Bulletin of Surgery]. 2005; (3): 85-7. (in Russian)
3. Coda A., Lamberti R., Martorana S. Classification of prosthetics used in hernia repair based on weight and biomaterial. Hernia. 2012; 16: 9-20. doi: 10.1007/s10029-011-0868-z.
4. Todros S., Pavan P.G., Pachera P., Natali A.N. Synthetic surgical meshes used in abdominal wall surgery: Part I - materials and structural conformation. J Biomed Mater Res B Appl Biomater. 2017; 105 (4): 892-903. doi: 10.1002/jbm.b.33586.
5. Falcao S.C., Coelho A.R., Evencio Neto J. Biomechanical evaluation of microbial cellulose (Zoogloea sp.) and expanded polytet-rafluoroethylene membranes as implants in repair of produced abdominal wall defects in rats. Acta Cir Bras. 2008; 23 (3): 184-91. URL: http://dx.doi.org/10.1590/S0102-86502008000200012.
6. Dahman Y. Nanostructured biomaterials and biocomposites from bacterial cellulose nanofibers. J Nanosci Nanotech-nol. 2009; 9 (9): 5105-22. URL: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/ pubmed/19928189.
7. Gromovyh T.I., Fan Mi Han', Birjukov E.G., Danil'chuk T.N., et al. Prospects for the use of bacterial cellulose in meat products. M'asnaya industriya [Meat Industry]. 2013; (4): 32-5. (in Russian)
8. Hioki N., Hori Y., Watanabe K., Morinaga Y., et al. Bacterial cellulose as a new material for papermaking. Jpn TAPPI J. 1995; 49: 718-23.
9. Iguchi M., Yamanaka S., Budhiono A. Bacterial cellulose -a masterpiece of nature's arts. J Mater Sci. 2000; 35: 261-70. URL: https://doi.org/10.1023/A:1004775229149.
10. Saska S., Barud H.S., Gaspar A.M.M., Marchetto R., et al. Bacterial cellulose-hydroxyapatite nanocomposites for bone re-
generation. Int J Biomater. 2011; 2011: 175362: 1-8. URL: http:// dx.doi.org/10.1155/2011/175362.
11. Klemm D., Schumann D., Udhard U., Marsch S. Bacterial synthesized cellulose: artificial blood vessels for microsurgery. Prog Polym Sci. 2001; 26 (9): 1561-603. doi: 10.1016/S0079-6700(01)00021-1.
12. Brown E.E., Laborie M.-P.G., Zhang J. Glutaraldehyde treatment of bacterial cellulose/fibrin composites: impact on morphology, tensile and viscoelastic properties. Cellulose. 2012; 19: 127-37. URL: https://doi.org/10.1007/s10570-011-9617-9.
13. Wippermann J., Schumann D., Klemm D., Kosmehl H., et al. Preliminary results of small arterial substitute performed with a new cylindrical biomaterial composed of bacterial cellulose. Eur J Vasc Endovasc. 2009; 37 (5): 592-6. URL: https://doi.org/10.1016/ j.ejvs.2009.01.007.
14. Schumann D., Wippermann J., Klemm D., et al. Artificial vascular implants from bacterial cellulose: preliminary results of small arterial substitutes. Cellulose. 2009; 16: 877-85. URL: https://doi.org/10.1007/s10570-008-9264-y.
15. Fink H., Faxalv L., Molnar G.F., Drotz K., et al. Real-time measurements of coagulation on bacterial cellulose and conven-t'onal vascular graft materials. Acta Biomater. 2010; 6: 1125-30. URL: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/19800035.
16. Czaja W., Krystynowicz A., Kawecki M., Wysota K., et al. Biomedical applications of microbial cellulose in burn wound recovery. In: Cellulose: Molecular and Structural Biology. Dordrecht: Springer, 2007: 307-21. URL: https://doi.org/10.1007/978-1-4020-5380-1_17.
17. Fu L., Zhang J., Yang G. Present status and applications of bacterial cellulose-based materials for skin tissue repair. Carbohy-dr Polym. 2013; 92: 1432-42. doi: 10.1016/j.carbpol.2012.10.071. URL: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/23399174.
18. Nimeskern L., Avila HM., Sundberg J., et al. Mechanical evaluation of bacterial nanocellulose as an implant material for
ear cartilage replacement. J Mech Behav Biomed Mater. 2013; 22: 12-21. URL: https://doi.org/10.1016/jjmbbm.2013.03.005.
19. Kowalska-Ludwicka K., Cala J., Grobelski B., Sygut D., et al. Modified bacterial cellulose tubes for regeneration of damaged peripheral nerves. Arch Med Sci. 2013; 9: 527-34. URL: https:// www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/arfcles/PMC3701969.
20. Portal O., Clark W.A., Levinson D.J. Microbial cellulose wound dressing in the treatment of nonhealing lower extremity ulcers. Wounds. 2009; 21 (1): 1-3. URL: https://www.ncbi.nlm.nih. gov/pubmed/25904579.
21. Solway D.R., Clark W.A., Levinson D.J. A parallel open-label trial to evaluate microbial cellulose wound dressing in the treatment of diabetic foot ulcers. Int Wound J. 2011; 8 (1): 69-73. URL: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/21159127.
22. Rosen C.L., Steinberg G.K., DeMonte F., Delashaw J.B. Jr, et al. Results of the prospective, randomized, multicenter clinical trial evaluating a biosynthesized cellulose graft for repair of dural defects. Neurosurgery. 2011; 69 (5): 1093-103. URL: https://www. ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/21670715.
23. Melo da Fonte J.B., Valido D.P., Filho L.X., et al. Otoliths/ bacterial cellulose nanocomposite as a potential dental pulp capping biomaterial in canine model. Oral Surg Oral Med Oral Pathol Oral Radiol. 2015; 120: 105. URL: http://dx.doi.org/10.1016/ j.oooo.2015.02.469.
24. Amorim W.L., Costa H.O., de Souza F.C., et al. Estudo experimental da resposta tecidual a presenca de celulose produzida por Acetobacter xylinum no dorso nasal de coelhos. Braz J Oto-rhinolaryngol. 2009; 75: 200-7. URL: http://www.redalyc.org/ html/3924/392437883008.
25. Hui Jia, Yuanyuan Jia, Jiao Wang, Yuan Hu, et al. Potentiality of bacterial cellulose as the scaffold of tissue engineering
of cornea. In: Proceedings of the 2nd International Conference on Biomedical Engineering and Informatics (BMEI 2009). Tianjin, China, 2009. doi: 10.1109/BMEI.2009.5305657.
26. Stoica-Guzun A., Stroescu M., Tache F., Zaharescu T., et al. Effect of electron beam irradiation on bacterial cellulose membranes used as transdermal drug delivery systems. Nucl Instrum Methods Phys Res B. 2007; 265: 434-8. URL: http://dx.doi. org/10.1016/j.nimb.2007.09.036.
27. Trovatti E., Silva N.H., Duarte I.F., Rosado C.F., et al. Biocellulose membranes as supports for dermal release of lidocaine. Bio-macromol. 2011; 12: 4162-8. URL: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/ pubmed/21999108.
28. M ller A., Ni Z., Hessler N., Wesarg F., et al. The biopolymer bacterial nanocellulose as drug delivery system: investigation of drug loading and release using the model protein albumin. J Pharm Sci. 2013; 102 (2): 579-92. URL: https://www.ncbi.nlm.nih. gov/pubmed/23192666.
29. Maria L.C.S., Santos A.L.C., Oliveira P.C., Valle A.S.S., et al. Preparation and antibacterial activity of silver nanoparticles impregnated in bacterial cellulose. Polimeros Cienria Tecnologia. 2010; 20 (1): 72-7. URL: http://dx.doi.org/10.1590/S0104-14282010005000001.
30. Patent RF N 2597291, MPK S12N 1/22, C12P 19/04. Method for producing bacterial cellulose / Budaeva V.V., Gladysheva E.K., Ski-ba E.A., Sakovich G.V. N 2015129304/10; zayavl. 16.07.2015; opubl. 10.09.2016, Byul. N 25. P. 9. (in Russian)
31. Sakovich G.V., Skiba E.A., Budaeva V.V., Gladysheva E.K., et al. Technological basis for obtaining bacterial nanocellulose from raw materials with zero cost. Doklady Akademii nauk [Reports of the Academy of Sciences]. 2017; 477 (1): 109-12. (in Russian)
