CC BY
74
DOI: 10.24412/2074-5036-2022-3-15-23 УДК 579.887.111
Ключевые слова: инфекционная плевропневмония коз, полимеразная цепная реакция, полимеразная цепная реакция в реальном времени, эпизоотия.
Key words: infectious caprine pleuropneumonia, polymerase chain reaction, real-time polymerase chain reaction, epizootic.
Кошеметов Ж. К., Нурабаев С. Ш., Наханова Г. Д., Оразымбетова Н. К., Умуралиев Б. К., Кондибаева Ж. Б., Абдураимов Е. О., Закарья К. Д.
ПРИЧИНА БОЛЕЗНИ И ПАДЕЖА КОЗ НА ТЕРРИТОРИИ ЖАМБЫЛСКОЙ ОБЛАСТИ
THE CAUSE OF THE DISEASE AND THE DEATH OF GOATS IN THE TERRITORY
OF THE ZHAMBYL REGION
«Научно-исследовательский институт проблем биологической безопасности» Министерства здравоохранения Республики Казахстан. Адрес: 080409, Республика Казахстан, Жамбылская область, Кордайский район,
пгт. Гвардейский, ул. Б. Момышулы, 15 "Research Institute of Biological Safety Problems" of the Ministry of Health of the Republic of Kazakhstan Address: 080409, 15, B. Momyshuly str., Gvardeyskiy, Korday District, Zhambyl Region, Republic of Kazakhstan
Кошеметов Жумагали Каукарбаевич, д. б. н., профессор, главный научный сотрудник лаборатории диагностики
инфекционных заболеваний. E-mail: koshemetov2008@mail.ru Koshemetov Zhumagali Kaukarbayevich, Doctor of Biological Sciences, Professor, Chief Researcher of the Laboratory of Diagnosis of Infectious Diseases. Е-mail: koshemetov2008@mail.ru Нурабаев Сергазы Шуратбаевич, PhD, заведующий лабораторией диагностики инфекционных заболеваний.
E-mail: sergazy-75@mail.ru Nurabaev Sergazy Shuratbayevich, PhD, Head of the Laboratory of Diagnosis of Infectious Diseases.
Е-mail: sergazy-75@mail.ru Наханова Гульнур Джолдасбековна, магистр биологии, научный сотрудник лаборатории диагностики инфекционных заболеваний. E-mail: gal.gulnur@mail.ru Nakhanova Gulnur Dzholdasbekovna, Master of Biology, Researcher of Laboratory of Diagnosis of Infectious Diseases.
Е-mail: gal.gulnur@mail.ru Оразымбетова Нуркуль Калдыбайкызы, магистр биологии, научный сотрудник Лаборатории диагностики инфекционных заболеваний. E-mail: niki_taraz1991@mail.ru Orazymbetova Nurkul Kaldybaykyzy, Master of Biology, Researcher of Laboratory of Diagnosis of Infectious Diseases.
Е-mail: niki_taraz1991@mail.ru Умуралиев Бакыт Кудайбергенович, младший научный сотрудник Лаборатории диагностики инфекционных
заболеваний. E-mail: baha_umuraliev@mail.ru Umuraliyev Bakyt Kudaibergenovich, Junior Researcher, of Laboratory of Diagnostis of Infectious Diseases.
Е-mail: baha_umuraliev@mail.ru Кондибаева Жанат Буркитбаевна, PhD, ведущий научный сотрудник Лаборатории технологии культивирования
микрорганизмов. E-mail: zhanat.kondybaeva@mail.ru Kondibayeva Zhanat Burkitbaevna, PhD, Leading Researcher, Microorganism Cultivation Technology Laboratory.
Е-mail: zhanat.kondybaeva@mail.ru Абдураимов Eргали Оринбасарович, главный научный сотрудник Лаборатории особо опасных инфекционных
заболеваний. E-mail: abduraimov_72@mail.ru Abduraimov Yergali Orinbasarovich, Chief Researcher of the Laboratory for Particularly Dangerous Infectious
Diseases. Е-mail: abduraimov_72@mail.ru Закарья Кунсулу Дальтоновна, главный научный сотрудник Лаборатории особо опасных инфекционных
заболеваний. E-mail: rkm_kz@mail.ru Zakarya Kunsulu Daltonovna, Chief Researcher of the Laboratory for Particularly Dangerous Infectious Diseases.
Е-mail: rkm_kz@mail.ru
Аннотация. Инфекционная плевропневмония коз (ИППК) - чрезвычайно контагиозная микоплазменная болезнь коз, характеризующаяся лихорадкой, быстрым развитием экссудативно-некротической (крупозной) пневмонии и серозно-фибринозного плеврита. Возбудитель Mycoplasma mycoides var. capri. В естественных условиях ИППК болеют козы всех пород и возрастов. Козлята сравнительно устойчивее к плевропневмонии, заболевают в основном в возрасте от 5 до 8 мес. Источниками возбудителя инфекции являются больные и переболевшие животные, а
также клинически здоровые овцы - бактерионосители. В статье представлены данные по установлению причины заболевания и падежа коз от неизвестных болезней на территории Жамбылской области Республики Казахстан. В результате были проведены клинические осмотры больных животных, были проведены патолого-анатомиче-ские вскрытия трупов павших животных и отобраны пробы паренхиматозных органов, а также крови и жидкости из грудной полости для лабораторного исследования. В лабораторных условиях отобранные биологические материалы исследованы молекулярными методами на выявление вируса чумы мелких жвачных животных (ЧМЖЖ), бактерии возбудителя Pasteurella multocida и микоплазмы ИППК. В результате в исследованных 13 пробах биологического материала с двумя праймерами в 8 и 9 соответственно пробах был выявлен возбудитель ИППК. Summary. Infectious caprine pleuropneumonia (ICPP) is an extremely contagious mycoplasmal disease of goats, characterized by fever, rapid development of exudative-necrotic (croupous) pneumonia and serous-fibrinous pleurisy. The causative agent is Mycoplasma mycoides var. capri. Under natural conditions, goats of all breeds and ages are affected with ICPP. Kids are comparatively more resistant to pleuropneumonia, they are affected mainly at the age of 5 to 8 months. Sources of the causative agent of infection are sick and recovered animals, as well as clinically healthy sheep - bacteria carriers. The article presents data on establishing the cause of the disease and the death of goats from unknown diseases in the Zhambyl region, the Republic of Kazakhstan. As a result, clinical examinations of sick animals, pathological and anatomical autopsies of the corpses of dead animals were carried out, and samples of parenchymal organs, as well as blood and fluid from the chest cavity, were taken for laboratory research. Under laboratory conditions, the selected biological materials were examined by molecular methods for the detection of the peste des petits ruminants (PPR), the bacterium of the pathogen Pasteurella multocida and mycoplasma ICPP. As a result, in the studied 13 samples of biological material with two primers in 8th and 9-th samples, respectively, the causative agent of ICPP was identified.
Введение
ИППК - чрезвычайно контагиозная ми-коплазменная болезнь коз, характеризующаяся лихорадкой, быстрым развитием экссудативно-некротической (крупозной) пневмонии и серозно-фибринозного плеврита [3, 4, 6, 8, 15].
ИППК издавна известна в арабских странах. Впервые описана в Алжире в 1873 г. В России эту болезнь наблюдали В. Я. Бен-кевич (1895) и В. Н. Матвеев (1896). Выделенные в дальнейшем из различного патологического материала возбудители отнесены к самостоятельному виду [3, 4, 6, 8, 15].
Возбудитель Mycoplasma mycoides var. capri по морфологическим и культуральным свойствам сходен с возбудителем контагиозной плевропневмонии крупного рогатого скота, но по антигенной структуре отличается от него (в РСК регистрируют неполную перекрестную реакцию). Морфологически имеет форму кокков, палочек, нитей. Окрашивается неравномерно [3, 4, 6, 8, 15].
Культивировать возбудитель плевропневмонии удается с трудом. Его выращивают на специальных обогащенных питательных средах в течение 4-10 сут, в мышах и развивающихся куриных эмбрионах. Посевы делают из сердца, легких, экссудата грудной полости и др. [3, 4, 6, 8, 15].
В естественных условиях ИППК болеют козы всех пород и возрастов. Козлята не-
16
сколько устойчивее к плевропневмонии, заболевают в основном в возрасте 5-8 мес. Экспериментально удается воспроизвести болезнь у овец, хотя спонтанно они не заболевают. Крупный рогатый скот, буйволы, кролики, морские свинки и белые мыши устойчивы к заражению.
Источниками возбудителя инфекции служат больные и переболевшие животные, а также клинически здоровые овцы-бактерионосители. Резервуаром возбудителя могут быть дикие козы, косули и другие дикие парнокопытные. Возбудитель выделяется из легких с носовым истечением и при кашле. В естественных условиях животные обычно заражаются аэрогенным путем при совместном содержании и тесном контакте с больными. В эксперименте болезнь с высоким постоянством воспроизводят у здоровых коз при подкожном, интратрахеальном и интраназальном заражении патологическим материалом (экссудат грудной полости, суспензия пораженных легких) и свежевыде-ленными культурами.
В эпизоотическом очаге заболевает почти все поголовье коз. Летальность достигает 90-100 % [3, 4, 6, 8, 15].
В течение длительного времени во многих странах мира, в том числе и в Казахстане, была широко распространена ИППК, которая наносила огромный экономический ущерб козоводству [5, 12, 13].
Рис.1. Клинические картины больных и павших коз.
в
Рис. 2. Изменение в грудной полости павших животных.
г
Актуальные вопросы ветеринарной биологии № 3 (55), 2022 17
По данным Всемирной организации здравоохранения животных многие страны до сих пор являются неблагополучными по ИППК.
Контагиозная плевропневмония коз имеет важное экономическое и социальное значение для многих стран Африки и Азии из-за массового падежа животных, расходов, связанных с карантинными мероприятиями и ограничением международной торговли [14, 20, 21, 25].
В настоящее время ИППК получила широкое распространение в азиатских странах и наносит огромный экономический ущерб, оказывая большое влияние на численность поголовья коз и на уровень жизни населения [24, 26].
На территории нынешнего СНГ контагиозная плевропневмония коз была зарегистрирована в 1885 году в Казахстане [7], в 1935 году на Урале [16] и Узбекистане [10] и в 1936 году - в Дагестане [18].
Последние годы распространение ИППК среди диких винторогих и домашних коз на территории Республики Таджикистан участилось. Республика Казахстан близко расположена к Республике Таджикистан, и в связи с этим возникает опасность распространения в данном регионе ИППК. Кроме того на территории Республики Таджикистан и других азиатских стран данная болезнь регистрировалась в прошлом столетии.
Например, по сообщениям С. А. Мурва-туллоева [16], в Таджикистане контагиозную плевропневмонию коз начали изучать в 30-е
18
годы прошлого столетия под местным названием «Вабои буз» или «Мааки буз», поэтому ИППК для Таджикистана не является экзотической болезнью.
О распространении ИППК в Таджикистане впервые сообщили И. Е. Сокольский и П. В. Сипоновский в 1946 году [16].
В изучение болезни в Таджикистане значительный вклад внесли Е. Н. Павловский, Б. В. Лотоцкий, З. В. Попова, И. Е. Сокольский, Е. Е. Фалеева, С. А. Покровский и др. [9, 18, 19].
По данным Б. В. Лотоцкого [9], в 19391942 гг. эпизоотией КППК был охвачен 31 район Таджикистана.
С тех времен вплоть до середины восьмидесятых годов прошлого века, болезнь с разной степенью эпизоотологической экстенсивности и интенсивности, периодически регистрировали в подворьях и козоводческих хозяйствах республики [17].
Затем, благодаря массовым вакцинациям и строгим мерам борьбы, до середины 2009 года ИППК на территории Таджикистана не наблюдалась.
На протяжении более 28 лет Таджикистан был страной, свободной от ИППК.
После распада Советского Союза социально-экономические, хозяйственные и политические условия Таджикистана резко изменились. Вместо крупных специализированных козоводческих хозяйств образовались множества мелких смешанного характера дехканских хозяйств. Резко увеличилось количество коз в
частном пользовании у населения Таджикистана [1].
Сформировались новые торгово-экономические связи Таджикистана с Афганистаном, Индией, Ираном, Пакистаном, Турцией и другими странами. Увеличилась неофициальная миграция животных с соседними странами, особенно с Афганистаном и Пакистаном.
Эти факторы способствовали вспышкам экзотичных для Таджикистана болезней, в т. ч. чумы мелких жвачных животных, а также возврату контагиозной плевропневмонии коз [11].
ИППК широко распространена на территории Республики Таджикистан и на протяжении последних лет наносит огромный экономический ущерб козоводству, а также является наиболее неблагоприятным обстоятельном в развитии козоводства Таджикистана [2, 5, 11].
В мировой литературе обобщен ряд объективных и субъективных факторов, способствующих распространению возбудителя болезни на большие расстояния [19, 22, 23].
В последнее годы в южных регионах Республики Казахстан были выявлены случаи заболевания и падежа среди коз и овец от болезни неизвестной этиологии. Одна из таких эпизоотий среди коз выявлена в частном дворе в сельском округе Отар Кордайского района Жамбылской области.
Целью исследования было выявление причины заболеваний и падежа коз на территории Жамбылской области.
Материалы и методы
Трупы павших коз. Биологические материалы в количестве 13 проб, отобранных от павших коз. Наборы полимеразной цепной реакции (ПЦР) для диагностики ИППК, ЧМЖЖ, ПЦР в реальном времени (ПЦР-РВ) для выявления возбудителя Pasteurella multocida.
Из биологических материалов были приготовлены 20 % суспензий на стерильном физиологическом растворе.
Постановку молекулярных методов проводили согласно инструкции.
Результаты исследований
В первую очередь обследованы свежие трупы павших коз в очаге эпизотий, далее проведено патолого-анатомические вскрытие с последующем отбором биоматериала для лабораторного исследования.
При осмотре выявлены угнетенное состояние больных животных, вялое передвижение, потеря аппетита, кашель сухой и громкий, у некоторых влажный, замечены слизисто-гнойные истечения из носа.
При патолого-анатомическом вскрытии трупов павших коз выявлено, что пораженные участки легких увеличены (а), междоль-ковые перегородки утолщены и отечны (б). Пораженные участки в стадии красной, серой, желтой гепатизации; на разрезе плотные, ломкие, зернисто-мраморного рисунка
(в). Легочная плевра местами сращена с реберной и покрыта толстым слоем фибрина
(г) (рис. 2).
Печень несколько увеличена, дряблой консистенции (а). Сердечная мышца дряблая (б) (рис. 3).
Для лабораторного исследования были отобраны 13 проб биологического материала от павших коз.
С целью исключения бактериальных, вирусных и микоплазменных возбудителей биоматериалы исследованы с помощью ПЦР и ПЦР в реальном времени для выявления нуклеиновых кислот возбудителей ЧМЖЖ, ИППК и Pasteurella multocida.
Результаты исследований 13 проб биологических материалов на наличие возбудителей ИППК и ЧМЖЖ представлены ниже.
Для постановки были использованы прай-меры rpoB (PG3) (359 п.о.) и rpoB (LC105) (319 п.о.) для ИППК, а для ЧМЖЖ PPVR 3-RF (270 п.о.). Для ЧМЖЖ использован набор Qiagen OneStep PCR Kit.
ПЦР смесь для ЧМЖЖ: общий объем - 25
мкл.
5x Buffer 5 мкл
Dntp 1 мкл
PPRV 3-R 1 мкл
PPRV 3-F 1 мкл
Nuclease-free Water 14 мкл
Enzyme 1 мкл
RNA 2 мкл
19
температурно-временные режимы: пре-денатурация: 94 оС - 3 мин. денатурация: 94 оС - 30 сек. отжиг: 60 оС - 30 сек.
элонгация: 72 оС - 30 сек.
пост-репликация: 72 оС - 5 мин. 4 оС - да
В результате исследований в пробах биологических материалов, отобранных от павших животных с помощью ПЦР не были выявлены РНК вируса ЧМЖЖ.
Далее пробы были исследованы на наличие возбудителя ИППК. Для этого использованы набор 1пуйго§еп и два праймера гроВ (РО3) (359 п.о.) и гроВ (ЬС105) (319 п.о.).
Для обоих праймеров использованы одинаковые параметры температурно-временно-го режима.
М 1 2 3 4 5 6 7 8 9 ПК OK М
М 10 IX 12 13
ПК ОК М
Рис. 4. Результаты ПЦР для выявления возбудителя вируса ЧМЖЖ в исследуемых пробах.
Рис. 5. Результаты ПЦР для выявления возбудителя ИППК в исследуемых пробах гроВ (РО3) (359 п.о.).
9 10 11 12 13 14 15 м
Температурно-временной режим: пре-денатурация: 94 °С - 2 мин. денатурация: 94 °С отжиг: 55 °С элонгация: 72 °С пост-репликация: 72 °С 4 °С
- 20 сек.
- 20 сек.
- 30 сек.
- 5 мин.
- да
25 мкл 17 мкл 0,5 мкл 1 мкл
1 мкл 15 мкл 0,5 мкл
2 мкл использо-
праймер rpoB (PG3) (359 п.о.) ПЦР смесь: общий объем -10Xbuffer dNTP
rpoB (PG3) -F rpoB (PG3) -R Nuclease-free Water TaqDNA polymerase DNA
В результате исследований с ванием праймера rpoB (PG3) (359 п.о.) в ПЦР из 13 проб на 8-ми пробах были получены положительные результаты на ИППК, № проб 2, 4, 5, 7, 9, 10, 11 и 13. праймер rpoB (LC105) (319 п.о.) ПЦР смесь: общий объем - 25 мкл 10Xbuffer 17 мкл
dNTP 0,5 мкл
rpoB (LC105) -F 1,5 мкл
rpoB (LC105) -R 1,5 мкл
Nuclease-free Water 14 мкл
TaqDNA polymerase 0,5 мкл
DNA 2 мкл
Результаты ПЦР rpoB (LC105) (319 п.о.) показывают, что в 9-ти пробах доказано наличие возбудителя ИППК, № проб 2, 3, 4, 5, 6, 7, 9, 10, 11.
Биологические материалы также были исследованы ПЦР в реальном времени для выявления возбудителя Pasteurella multocida. Для постановки ПЦР-РВ использованы следующие параметры.
Рис. 6. Результаты ПЦР для выявления возбудителя ИППК в исследуемых пробах гроВ (ЬС105) (319 п.о.).
ПЦР смесь: общий объем - 20 мкл
10хбуфер (MgCl2) 2 мкл
dNTP 2 0,5 мкл
Праймер PF 0,5 мкл
Праймер PR 0,5 мкл
Проба 23 0,5 мкл
TaqDNA polymerase 0,5 мкл
Вода бидистилированная 13,5 мкл
ДНК 2 мкл
20
Температурно-временной режим:
95 °С - 2 мин.
95 °С - 5 сек.
55 °С - 5 сек.
детекция на канале green
72 °С - 5 сек.
Результаты РТ-ПЦР показывают отсутствие наличие возбудителя Pasteurella multocida в исследованных 13-ти пробах. Составлена сводная таблица проведенных исследований биологических проб, отобранных от павших животных.
Возбудитель ИППК в основном был выявлен в паренхиматозных органах (легкие, сердце, межлегочные лимфатические узлы)
и грудной жидкости, в единичных случаях в печени, почке.
Заключение
В последние годы на территории Республики Казахстан участились случаи ранее забытых болезней животных, таких как нодулярный дерматит крупного рогатого скота, ИППК и др. Данная эпизоотическая ситуация связана скорее всего с бесконтрольным передвижением домашних и диких животных внутри страны и в близлежащих территориях азиатских стран, таких как Республика Таджикистан, Республика Узбекистан и Кыргызская Республика. В связи с этим растущее число очагов эпи-зоотий опасных и особо опасных болезней животных требует пристального внимания со стороны ветеринарных служб республики в целом. Очередной очаг эпизоотий выявлен на территории Жамбылской области в мае 2022 года. Были выявлены заболевания и падеж среди коз от неизвестной болезни. В ходе клинического осмотра, патолого-анатомического вскрытия и лабораторного
Таблица 1
Сводные данные лабораторного исследования на наличие в исследуемых пробах возбудителей ЧМЖЖ, ИППК и РШеиге11а тиШсМа
№ п/п Наименования биологических материалов в виде 20 % суспензий ЧМЖЖ (PPVR 3-RF) Пастереллез (P4R) ИППК rpoB (PG3) ИППК rpoB (LC105)
1 Предлопаточные лимфатические узлы - - - -
2 Межлегочные лимфатические узлы - - + +
3 Почки - - - +
4 Селезенка - - + +
5 Сердце - - + +
6 Печень - - - +
7 Легкие №1 - - + +
8 Грудная жидкость №2 - - - -
9 Экстракт легких (белые) - - + +
10 Грудная жидкость №1 - - + +
11 Легкие №2 - - + +
12 Кровь (сердца №1) - - - -
13 Кровь (сердца №2) - - + -
14 Негатив - - - -
15 Позитив + + + +
исследования установлено, что причиной заболевания и падежа среди коз является возбудитель инфекционной плевропневмонии коз. Это еще раз доказывает, что ранее забытые инфекции появляются снова и снова, последняя регистрация данной болезни среди коз на территории Республики Казахстан зафиксирована в 1885 году.
Список литературы
1. Амирбеков М. Эпизоотическая ситуация по инфекционной плевропневмонии коз в Таджикистане / М. Амирбеков, М. Аноятбеков, Д. Вахобов, О. Зиёев // Международная научно-практическая конференция, посвященная 80-летию заслуженного ученого, профессора В. Л. Зайцева «Актуальные проблемы биологии, биотехнологии, экологии и биобезопасности». Казахстан, п. Гвардейский, 2015. С. 35-41.
2. Амирбеков М. Распространение контагиозной плевропневмонии коз в Таджикистане / М. Амирбе-ков, М. Аноятбеков, Д. Вахобов // Научно-практический журнал «Ветеринария», Душанбе. 2010. № 10-12 (29). С. 22-24.
3. Бакулов И. А. Эпизоотология с микробиологией. / И. А. Бакулов. М.: Агропромиздат, 1987. 415 с.
4. Бессарабов Б. Ф. Инфекционные болезни животных. / Б. Ф. Бессарабов, Е. С. Воронин и др. [Под ред. А. А. Сидорчука]. М.: Колос, 2007. 671 с.
5. Вахобов Д. С. Серологический скрининг инфекционной плевропневмонии коз в Таджикистане. / Д. С. Вахобов, С. А. Мурватуллоев, Н. А. Ахмадов // Сборник статей Международного научно-практического семинара, посвященного 90-летию академика Р. Г. Мустакимова «Обеспечение национальной системы биологической безопасности, практик, концепция, программы», Душанбе: ТАСХН, 2014. С. 48-50.
6. Гавриш В. Г. Справочник ветеринарного врача / В. Г. Гавриш. 4 изд. Ростов-на-Дону: Феникс, 2003. 576 с.
7. Дербеденев И. С. Инфекционная плевропневмонии коз в Казахстане. / И. С. Дербеденев // Сов. ветеринария. 1939. № 2. С. 6-7.
8. Кузнецов А. Ф. Справочник ветеринарного врача. / А. Ф. Кузнецов. М.: Лань, 2002. 896 с.
9. Лотоцкий Б. В. Значение пола, возраста и породности коз в заболевании ими инфекционной плевропневмонией. / Б. В. Лотоцкий // Труды института зоологии и паразитологии, 1946. выпуск 22. С. 29-33.
10. Лукашенко Ф. Д. Вакцины при инфекционной плевропневмонии коз: Автореферат дисс. ... канд. вет. наук / Ф. Д. Лукашенко. Ташкент: Узб. науч.-исслед. ветеринар. ин-т М-ва сельского хозяйства Узб. ССР, 1953. 16 с.
11. Муминов А. Усулхои ташхиси касалии плев-ропневмонияи сироятии бузхо дар институти илмию тадкикоти ва назоратии ветеринарии ш. Истам-були Туркия / А. Муминов, Д. Вахобов // Журнал «Ветеринария», Душанбе. 2011. № 4-6 (31). С. 25-28.
22
12. Мурватуллоев С. А. Инфекционная плевропневмония коз в экосистеме Памира. / С. А. Мурватуллоев, М. А. Аноятбеков, М. А. Амирбеков и др. // Доклады ТАСХН, 2013. №1. С. 45-49.
13. Мурватуллоев С. А. Распространение инфекционной плевропневмонии коз в Таджикистане. / С. А. Мурватуллоев, М. Амирбеков, М. Аноятбеков, Д. Вахобов // Научно-практический журнал «Ветеринария», Душанбе, 2010. № 10-12 (29). С. 22-24.
14. Мурватуллоев С. А. Плевропневмонияи си-роятиибузхо дар Точикистон. / С. А. Мурватуллоев, М. Амирбеков, М. Аноятбеков и др. // Научно-практический журнал «Ветеринария», Душанбе, 2010. № 7-9. С. 18-22.
15. Пискунов А. В. Проблема контагиозной плевропневмонии крупного рогатого скота. / А. В. Пискунов, А. В. Кононов, А. В. Мищенко // Ветеринария сегодня. 2016;(3):27-36.
16. Покровский С. А. Заражаемость животных инфекционной плевропневмонии (ИПП) коз / С. А. Покровский // Труды Инст. Зоол. Паразит., 1946. Т. 22. С. 18-29.
17. Сипоновский П. В. Патологоанатомическая картина инфекционной плевропневмонии (ИПП) коз. / П. В. Сипоновский, Б. В. Лотоцкий // Сборн. работ Института зоологии и паразитологии ТФАН СССР и Таджик. НИВИС, Труды ТФАН, 2001. Т. 22.
18. Фалеева Е. Е. Опыт применения реакции связывания комплемента при инфекционной плевропневмонии коз. / Е. Е. Фалеева // Труды инст. Зоол. и паразит, 1946. выпуск 22. С. 24-26.
19. Amirbekov M. Contagious caprine pleuropneumonia detected for the first time in Tajikistan. EMPRES transboundary / M. Amirbekov, S. Murvatulloev, G. Ferrari. // Animal Diseases Bulletin, 2010, No. 35. Р. 20-22.
20. Awan M. A. Isolation and identification of Mycoplasmas from pneumonic lungs of goats. / M. A. Awan // J. App. Em, 2004. Р. 45-50.
21. Bonnet F. DNA relatedness between field isolates of Mycoplasma F38 group, the agent of contagious caprine pleuropneumonia, and strains of Mycoplasma capricolum. / F. Bonnet // Int. Journal of Systematic Bacteriology, 1993. No. 43. P. 597-602.
22. Bradbury J. M. Phosphate activity. / J. M. Bradbury // Methods in Mycoplasmology, Vol. 1, Razin S. & Tully J.G., eds. Academic Press, New York, USA. 1983. Р. 363366.
23. Brogdon K. A. Isolation and identification of mycoplasmas from the nasal cavity of sheep. / K. A. Brogdon // American Journal of Veterinary Research, 1988. No. 49. Р. 1669-1675.
24. Leach R. H. Proposal for designation of F38-type caprine mycoplasmas as Mycoplasma capricolum subsp. capripneumoniae subsp. nov. and consequent obligatory relegation of strains currently classified as M. capricolum (Tully, Garile, Edward, Theodore & Erno, 1974) to an additional new subspecies, M. capricolum subsp. capricolum subsp. nov. / R. H. Leach // Int. J. Syst. Bacteriol, 1993. No. 43m P. 603-605.
