Получение резорбируемых микрочастиц, содержащих цитостатический препарат, методом распылительного высушивания и исследование их свойств Текст научной статьи по специальности «Фундаментальная медицина»

Journal of Siberian Federal University. Biology 1 (2016 9) 75-87

УДК 615 462, 547-32

Production of Resorbable Microparticles Loaded with a Cytostatic Drug Using the Spray-Drying Method and Investigation of Their Properties

Anastasiya V. Murueva* and Anna M. Shershneva

Institute of Biophysics of SB RAS 50/50 Akademgorodok, Krasnoyarsk, 660036, Russia

Received 18.12.2015, received in revised form 014.01.2016, accepted 21.02.2016

Microparticles of resorbable poly-3-hydroxybutyrate loaded with a cytostatic drug (5-fluorouracil) were prepared by using the spray-drying method. The increase in the level of drug loading from 1 to 10 % of the polymer mass did not significantly effect the average diameter of microparticles (2.4 -2.6 nm) but increased their g-potential (from 106 to 86 mV). Encapsulation efficiency of 5-fluorouracil increased with the increase in the level of drug loading. Investigation of the in vitro drug release behavior showed that the total drug release from the microparticles into the medium increased with the growth of mass concentration of the drug (55, 63 and 75 % of the initial drug content and 1, 5 and 10 % of the polymer mass, respectively). The cytotoxic effect of encapsulated 5-fluorouracil was proved in the HeLa tumor cell culture.

Keywords: drug delivery systems, polyhydroxyalkanoates, spray drying, microparticles, 5-fluorouracil, cytotoxicity.

DOI: 10.17516/1997-1389-2015-9-1-75-87.

© Siberian Federal University. All rights reserved

* Corresponding author E-mail address: [email protected]

Получение резорбируемых микрочастиц, содержащих цитостатический препарат, методом распылительного высушивания и исследование их свойств

А.В. Муруева, А.М. Шершнева

Институт биофизики СО РАН Россия, 660036, Красноярск, Академгородок, 50

С применением метода распылительного высушивания получены микрочастицы из резорбируемого поли-3-гидроксибутирата П(3ГБ), содержащие противоопухолевый препарат 5-фторурацил. Показано, что увеличение содержания лекарственного препарата от 1 до 10 % от массы полимерного матрикса не оказывало существенного влияния на средний диаметр микрочастиц (2,4 - 2,6 мкм), однако привело к незначительному увеличению £-потенциала (от -106 до -86 мВ). Эффективность инкапсулирования 5-фторурацила возрастала с увеличением содержания препарата в матриксе микрочастиц. Выход 5-фторурацила в фосфатный буфер возрастал с увеличением содержания препарата в матриксе микрочастиц и составил 55, 63 и 75 % при исходном содержании препарата, равном 1, 5 и 10 % соответственно. Антипролиферативное действие депонированного 5-фторурацила доказано в культуре опухолевых клеток ИвЬа.

Ключевые слова: системы доставки лекарственных средств, полигидроксиалканоаты, распылительное высушивание, микрочастицы, 5-фторурацил, цитотоксичность.

Введение

В настоящее время фармацевтическая индустрия разрабатывает полимерные системы для доставки лекарств, используемых при лечении различных заболеваний. Использование новых лекарственных форм позволяет устранить многие недостатки традиционных лекарственных форм. Системы доставки лекарств на основе полимерных микрочастиц способствуют повышению терапевтического эффекта и снижению токсичности лекарственного препарата по сравнению с его свободной формой (АшЬгиоБ! Й а1., 2006).

Разработка полимерных лекарственных форм ведется в основном с применением био-резорбируемых полимеров - полилактидов,

полигликолидов и их сополимеров, а также полиэфиров алкановых кислот микробиологического происхождения - полигидроксиал-каноатов (ПГА).

Наиболее популярным методом получения микрочастиц из ПГА является микроэмульсионный метод (или метод испарения/ экстракции растворителя) (ЕшЫеШоп ег а1., 1992; ЬазБаИе ег а1., 2007; Бге^ ег а1., 2005; Ба770 ег а1., 2009). Представительная серия публикаций по конструированию и исследованию свойств микрочастиц из ПГА принадлежит коллективу сотрудников Института биофизики СО РАН и Сибирского федерального университета. К настоящему моменту с применением микроэмульсион-76 -

ного метода получено и всесторонне исследовано семейство микрочастиц от 0,3 до 100 мкм; показана возможность нагружения антибактериальными и цитостатическими препаратами и длительной кинетики оттока препаратов in vitro. Доказана биологическая безопасность и лекарственная эффективность микрочастиц из ПГА в культурах клеток и в экспериментах на животных (Shishatskaya et al., 2011, 2013; Goreva et al., 2012; Murueva et al., 2013).

Полимерные микроносители в виде микро- и наночастиц, содержащих различные лекарственные препараты, могут быть получены с помощью метода фазового разделения (коацервация), полимеризации мономеров, гранулирования. По сравнению с вышеперечисленными методами распылительная сушка является наиболее простым, недорогим и производительным способом получения микрочастиц (Daugherty et al., 2006; Vehring, 2008; Ramezani et al., 2013; Anchordoquy et al., 2000). В настоящее время методом распылительного высушивания получены и исследованы микрочастицы из различных материалов - сахаров дигидрата трегалозы и D(-)маннита (Lebrun et al., 2012); иммуноглобулина (IgG) человека (Mw 15 кДа), стабилизированного дигидратом трегалозы и D(-)маннитом (Ramezani et al., 2013); сополимера молочной и гликолевой кислот (ПМГК) (Jensen et al., 2010); гибридов ПМГК с соевым лецитином (Wang et al., 2012); микро-фибриллированной целлюлозы (Kolakovic et al., 2012); низкомолекулярного хитозана (Mohajel et al., 2012). С применением метода распылительного высушивания получены микрочастицы из полилактида и сополимера полилактид-гликолид, содержащие противоопухолевый препарат 5-фторурацил, антибиотики рифампицин, офлоксацин (Blanco et al., 2005; Ohashi et al., 2009; Palazzo et al.,

2013); хитозановые микрочастицы с мето-трексатом, ацикловиром (8Ш^ег й а1., 2009); лактозные микрочастицы с флюрбипрофе-ном и этензамидом.

В современной литературе не представлено работ по изучению возможности применения метода распылительной сушки для конструирования микро- и наночастиц из ПГА, содержащих лекарственные препараты. Ранее нами было показано, что этот метод может быть успешно применен для конструирования микрочастиц на основе поли-3-гидроксибутирата (П(3ГБ)). Установлены зависимости характеристик микрочастиц (выход, средний диаметр, дзета-потенциал) от параметров процесса получения (температура на входе в систему, скорость подачи полимерного раствора и концентрация раствора полимера) (Шерш-нева и др., 2014).

Цель настоящей работы - конструирование микрочастиц из ПГА, содержащих противоопухолевый препарат 5-фторурацил, методом распылительного высушивания и исследование их свойств, включая кинетику выхода и цитотоксического действия препарата в культуре клеток карциномы шейки матки человека (ИвЬа), в сравнении с традиционной лекарственной формой.

Материалы и методы

Для получения микрочастиц использованы высокоочищенные образцы поли-3-гидроксибутирата (П(3ГБ)), синтезированного по разработанной технологии (Волова и др., 2001). С применением набора деполи-меризующих реагентов были получены образцы П(3ГБ) с молекулярной массой 6 кДа. Средневесовую (М,) и среднечисловую молекулярную массу (Мп) и молекулярно-массовое распределение ПГА исследовали с использованием хроматографа для гель-77 -

проникающей хроматографии 1260 Infinity (Agilent Technologies, США).

Микрочастицы из П(3ГБ) получены в установке Mini Spray Dryer B-290 (BUCHI Laboratory Equipment, Швейцария), оснащенной соплом распылителя (отверстие диаметром 0,7 мм), через которое подается инертный газ (аргон) и с током газа под действием центробежных сил сухие частицы осаждаются в высокопроизводительные циклоны. Температура на входе в систему составила 95 °С, скорость подачи полимерного раствора - 1,5 мл/мин, величина аспиратора (ток газа) имела максимальный расход газа и составляла 35 м3/ч.

Для отработки техники депонирования препарата в полимерные микрочастицы с использованием метода распылительного высушивания был взят противоопухолевый препарат 5-фторурацил (Sigma-Aldrich). Выбор данного лекарственного препарата обусловлен его востребованностью в клинической практике, стабильностью в растворах и возможностью смешения с неполярными растворителями без изменения свойств.

Для нагружения микрочастиц 5-фтору-рацилом использовали 1,5%-й раствор П(3ГБ) в хлороформе. К полученному раствору добавляли определенное количество 5-фтору-рацила (из расчета 1, 5 и 10 % от массы полимерного носителя) и гомогенизировали с помощью ультразвука при мощности 5 Вт в течение 1 мин. Для предотвращения выпадения в осадок 5-фторурацила полученную гомогенную суспензию поддерживали при непрерывном перемешивании на магнитной мешалке (700 об/мин) и распыляли через сопло распылителя при вышеописанных параметрах установки.

Выход микрочастиц рассчитывали в процентах от массы использованного для их получения полимера:

B =

Мм х 100% Mn '

(1)

где Мм - масса полученных микрочастиц, мг; Мп - масса использованного полимера, мг.

Морфологию микрочастиц изучали с применением сканирующего электронного микроскопа TM-3000 (Hitachi, Япония). Напыление образцов платиной проводили в установке K575XD Turbo (Emitech, Англия).

Размеры и размерное распределение микрочастиц измеряли на анализаторе частиц Zetasizer Nano ZS (Malvern, Великобритания) с использованием метода динамического светорассеивания. Поверхностный заряд микрочастиц был охарактеризован величиной электрокинетического потенциала (дзета-потенциала), которая определяется электрофоретической подвижностью частиц в суспензии с применением уравнения Генри на анализаторе частиц Zetasizer Nano ZS. Измерения проводили в автоматическом режиме по стандартной методике, рекомендуемой производителем.

Величину включения 5-фторурацила в полимерную матрицу определяли по его исходной и остаточной концентрации в эмульсии, которую находили спектрофотометри-чески при излучении на длине волны 265 нм (спектрофотометр Cary 60 UV-Vis, Agilent Technologies, США).

Эффективность инкапсулирования (Эй) препарата в полимерной матрице рассчитывали по формуле

Минк х 100%

Мисх

(2)

где Минк - масса инкапсулированного препарата, мг; Мисх - исходная масса препарата, мг.

Полученные из П(3ГБ) микрочастицы, нагруженные 5-фторурацилом (навеска микро-

частиц 15 мг), стерилизовали УФ-излучением в течение 40 мин и помещали в стерильные центрифужные пробирки с крышкой (n=3) в 7 мл сбалансированного фосфатного буфера (СФБ); пробирки экспонировали в термостате при 37 °С в течение 15 сут. Для определения количества препарата, вышедшего в среду, из пробирок отбирали пробы, в которых, предварительно осадив микрочастицы центрифугированием (10 000 об/мин, 5 мин), спек-трофотометрически измеряли концентрацию 5-фторурацила.

Выход препарата в СФБ определяли так:

r

DR =-• 100 %, (3)

e

где e - количество инкапсулированного в полимерной матрице препарата, мг/мл; r - выход препарата, мг/мл.

Анализ полученных экспериментальных данных по выходу лекарственного препарата в среду и определение значений коэффициента диффузии в полимерной фазе выполнен путем графического решения уравнений, предложенных ранее в работах (Livshits et al., 2009; Goreva et al., 2012).

Эффективность действия разработанных препаратов оценена в культуре опухолевых клеток карциномы шейки матки человека HeLa. Клетки HeLa помещали в культураль-ные планшеты из расчета 5-10 х 104 клеток/ мл в каждую лунку. В качестве среды использовали DMEM, содержащую 10%-й раствор эмбриональной бычьей сыворотки и раствор антибиотиков (стрептомицин 100 мкг/мл, пенициллин 100 ЕД/мл). Для эксперимента были приготовлены полимерные микрочастицы из П(3ГБ) с различной нагрузкой ци-тостатика. Суспензию стерильных частиц в 100 мкл фосфатного буфера вводили в каждую лунку 24-луночного планшета. При внесении микрочастиц в культуру клеток в виде

суспензии концентрация инкапсулированного 5-фторурацила составила: 0,6; 1,3; 6,5 мг/мл. В качестве положительного контроля использовали культуры клеток с добавлением свободного препарата в аналогичной концентрации. Культивирование проводили в СО2-инкубаторе (New Brunswick Scientific, США) в 5%-й атмосфере СО2 при 37 °С. Смену среды проводили каждые 24 ч в течение 3 сут. Жизнеспособность клеток HeLa оценивали с помощью МТТ-теста.

Статистическую обработку результатов проводили с использованием стандартного пакета программ Microsoft Excel.

Результаты и обсуждение

Получение и исследование свойств микрочастиц из П(3ГБ), содержащих 5-фторурацил

В работе впервые применен метод распылительного высушивания для получения микрочастиц из П(3ГБ), содержащих противоопухолевый препарат 5-фторурацил, с использованием специализированной установки для распылительного высушивания.

При депонировании в полимерную матрицу микрочастиц 5-фторурацила не обнаружено существенных изменений в поверхностной структуре частиц по сравнению с микрочастицами, не содержащими лекарственный препарат. Так, микрочастицы, нагруженные 5-фторурацилом, имели сферическую форму с шероховатой поверхностью (рис. 1). На микрофотографиях отмечено присутствие крупных дефектных частиц, однако их количество составило 1 % от общего количества микрочастиц. Неправильная форма крупных частиц может быть связана с образованием достаточно крупных полимерных капель, которые под действием высокого давления и температуры лопались, проходя через сушильную камеру. Известно, что микрочастицы, полученные с

щ

> i щ

"V щ

l&uttiTMkîMmMM to(Sum ' tMu^l

Рис. 1. РЭМ-снимки микрочастиц, полученных из П(3ГБ) (a), и микрочастиц из П3ГБ, содержащих 5-фторурацил (б). Маркер 5 мкм

Таблица 1. Характеристика микрочастиц из П(3ГБ), содержащих 5-фторурацил (среднее±стандартная ошибка, n=3)

Состав микрочастиц Средний диаметр, мкм Дзета-потенциал, мВ Эффективность инкапсулирования, % Выход, %

П(3ГБ) 2,7±0,4 -102±2,0 - 71±5,6

П(3ГБ)-(1 % 5-ФУ ) 2,6±0,1 -106±9,9 48±0,5 65±6,8

П(3ГБ)-(5 % 5-ФУ) 2,6±0,2 -83±0,8 56±0,6 67±7,6

П(3ГБ)-(10 % 5-ФУ ) 2,5±0,1 -86±1,6 57±0,5 78±7,7

помощью метода распылительного высушивания, полые внутри и могут содержать более мелкие микрочастицы в своей внутренней полости (МоИа]е1 е! а1., 2012; Шершнева и др., 2014).

Увеличение содержания 5-фторурацила в полимерной матрице микрочастиц (от 1 до 10 % от массы полимерной основы) не оказывало существенного влияния на диаметр микрочастиц. При этом величина электрокинетического потенциала с увеличением содержания 5-фторурацила незначительно возрастала (табл. 1). Средний диаметр микрочастиц с депонированным 5-фторурацилом был сопоставим с диаметром микрочастиц, не содержащих лекарственный препарат, и составил 2,5-2,6 мкм. Возможно, это связано с тем, что 5-фторурацил имеет низкое значение молекулярной массы (130 г/моль) и не

оказывает влияния на укладку полимерных цепей в процессе формирования частиц.

Дзета©-потенциал является важной характеристикой микрочастиц, определяющей электрокинетическое взаимодействие между частицами, приближение к нулевому значению которого позволяет частицам сближаться друг с другом и флоккулировать. Наиболее высокий ^-потенциал зарегистрирован у микрочастиц с содержанием 5-фторурацила 5 и 10 % от массы полимерного матрикса; он составил -83 и -86 мВ соответственно. Более низкие значения ^-потенциала были зафиксированы для микрочастиц с содержанием 5-фторурацила 1 % и составили -106 мВ. Таким образом, величина ^-потенциала у микрочастиц, полученных методом распылительного высушивания, в том числе нагруженных лекарственным препаратом, варьи-

ровала в достаточно узком диапазоне от -86 до -106 мВ. Это свидетельствует о том, что нагружение микрочастиц 5-фторурацилом не оказывает существенного влияния на форму полученных микрочастиц и подтверждает физическую стабильность образцов.

Эффективность инкапсулирования препаратов в матрицу микрочастиц (Эи) зависела от массовой доли препарата в исходном полимерном растворе (табл. 1). При увеличении содержания 5-фторурацила в микрочастицах зафиксировано увеличение эффективности инкапсулирования препарата. Аналогичные зависимости были показаны для полимерных микрочастиц из ПГА, полученных эмульсионным методом, содержащие противоопухолевые препараты доксорубомицин, 5-фтору-рацил (Мигиеуа й а1., 2013; КИа^ е а1., 2001). Так, при 1%-м содержании 5-фторурацила Эи составила 47,6±0,5 %, тогда как при увеличении до 10 % - повысилась до 57±0,5 %.

Выход микрочастиц, нагруженных 5-фторурацилом, был сопоставим с выходом, полученным для микрочастиц, не содержащих лекарственный препарат (~ 70 %).

Исследование динамики выхода 5-фторурацила из П(3ГБ) микрочастиц in vitro

Анализ литературных данных свидетельствует о том, что выход лекарственных препаратов из полимерных систем пролонгированного действия может быть реализован с помощью диффузии, при которой препараты перемещаются к краю полимерного изделия и затем переходят во внешнюю среду (Burgess, 2005). Известно, что П(3ГБ) в условиях in vitro при отсутствии биологических факторов (ферменты, клетки) не гидролизуется с разрывом углеродной цепи (Holland et al., 1990), поэтому выход препаратов из носителей П(3ГБ) реализуется по законам химических реакций и не зависит от состояния материала носителя.

Полученные экспериментальные кривые выхода 5-фторурацила из микрочастиц в среду представлены на рис. 2. Результаты показывают, что первая фаза выхода 5-фто-рурацила из полимерных микрочастиц характеризуется сравнительно быстрым высвобождением препарата в среду (на 4-е сутки),

Рис. 2. Динамика выхода 5-фторурацила из П(3ГБ) микрочастиц, в разной степени нагруженных цитостатиком (1, 5 и 10 % от массы полимерного матрикса)

что, по-видимому, объясняется присутствием большого количества лекарства на поверхности микрочастиц и слабым гидрофобным взаимодействием между препаратом и полимером. На следующей фазе высвобождения 5-фторурацила (на 5-6-е сутки) преобладают диффузионные механизмы, связанные с выделением препарата из внутренних структур матрицы, в том числе в результате медленного и незначительного изменения молекулярной массы полимера, поэтому концентрация препарата в модельной среде становится практически постоянной.

На кинетику выхода 5-фторурацила оказывала влияние степень нагруженности микрочастиц. Как показано на рис. 2, выход 5-фторурацила из П(3ГБ) микрочастиц был тем выше, чем больше была величина включения препарата в матрицу. При максимальной и минимальной нагруженности матрицы в первые сутки выход препарата составил 31±2,5 и 37±3 % (от включенного) соответственно. Однако начиная с 5-х суток кривые вышли на плато. Далее концентрация 5-фто-рурацила в фосфатном буфере практически не изменялась. К концу эксперимента в модельной среде было зарегистрировано следующее содержание цитостатика: 55±2,8, 63±3,0 и 75±3,5 % при исходном нагружении микрочастиц на 1, 5 и 10 % (от массы полимерного носителя) соответственно.

Первая фаза высвобождения 5-фтору-рацила характеризуется диффузионным механизмом выхода препарата с поверхности полимерной матрицы. Вторая фаза связана с выходом препарата из внутренних структур матрицы и началом гидролитических процессов в микропористой среде и характеризуется реакцией нулевого порядка. Двустадийный характер выхода 5-фторурацила из П(3ГБ) микрочастиц можно описать диффузионно -кинетическими уравнениями, предложенны-

ми ранее в работах (Livshits et al., 2009; Goreva et al., 2012).

^ = D

dt *

( д2c ^

dx2

+ K,

(4)

где Б, - эффективный коэффициент диффузии см2/с; К - кинетическая константа гидролитической деструкции полимера, с-1; с - концентрация антибиотика,%; дсJдt и 52с,/5х2 -первая и вторая производная по координате диффузии

Чтобы исключить влияние линейного вклада, обусловленного незначительным понижением молекулярной массы полимера, из суммарной концентрации вышедшего цито-статика введена переменная

G = c. - K х t,

(5)

здесь Gt - количество антибиотика (%), вышедшего по диффузионному механизму за время 1 Тогда диффузионно-кинетическое уравнение приобретает традиционный вид:

des_ dt

= D,

dx2

(6)

При отсутствии концентрационной разницы на границе раздела твердая частица-жидкая фаза последнее уравнение характеризует механизм десорбции препарата из микрочастицы.

В случае малого времени десорбции антибиотика на начальном уровне т/тю < 0,5 выход препарата можно описать уравнением Фика:

=J DL,

m„ \nh2'

m,

(7)

где m ~ суммарный выход препарата в мо-

мент времени t (mt) и при бесконечном вре-

мени (т«); Dt - коэффициент диффузии; И - толщина матрицы.

Учитывая, что частицы имеют сферическую форму, толщина матрицы (И) может быть заменена на диаметр частицы (ф, тогда

"L = J DL

(8)

у 2'

где d - диаметр матрицы (микрочастицы).

Коэффициент диффузии на начальном этапе кривой выхода лекарственного препарата составит:

4 =

%d2 х (tgр)2 16

(9)

здесь tgP - тангенс угла наклона прямолинейного участка кинетической кривой в координатах (т^т«,) -

Линейные участки кинетических кривых, отображенные в полулогарифмических координатах, позволяют рассчитать тангенс угла наклона tga, а затем и собственно коэффициент диффузии:

D„ =

d2 (fga)2

(10)

где tga - тангенс угла наклона кинетической кривой в полулогарифмических координатах 1п(1 - т/т«,).

Графическое решение уравнений (9) и (10) в координатах (т/т«,) - ©05 и в полулогарифмических координатах 1п(1 - т/т«,) позволило количественно определить значение коэффициента диффузии препарата в полимерной фазе (рис. 3).

В табл. 2 представлены полученные коэффициенты диффузии 5-фторурацила в микрочастицах из П(3ГБ). Из приведенных данных видна четкая зависимость коэффициентов диффузии от содержания препарата в полимерном матриксе. Так, коэффициент диффузии на первом этапе для микрочастиц

с максимальным содержанием цитостатика в 3,5 раза больше по сравнению с микрочастицами с минимальным содержанием лекарственного препарата (табл. 2, уравнение (9)). На втором этапе (соответствует выходу кривой на плато) коэффициент диффузии падает на порядок независимо от степени нагруженности микрочастиц 5-фторураци-лом.

Полученные результаты свидетельствуют о классическом диффузионном механизме, определяющем кинетику выхода 5-фторура-цила из полимерных микрочастиц на основе П(3ГБ).

Исследование антипролиферативного действия микрочастиц, содержащих 5-фторурацил

Результаты исследования антипролифе-ративного действия микрочастиц из П(3ГБ), нагруженных 5-фторурацилом, на культуру опухолевых клеток ИвЬа по сравнению со свободной формой препарата представлены на рис. 4.

Антипролиферативное действие депонированного 5-фторурацила отмечено уже на первые сутки, и при этом оно было сопоставимо с действием свободного препарата. Однако начиная со вторых суток независимо от концентрации лекарственного препарата цито-статический эффект депонированного 5-фто-рурацила был более выражен по сравнению со свободным препаратом. Частицы, нагруженные в самой меньшей степени (0,6 мг/мл), по сравнению со свободной формой цитоста-тика эффективно подавляли рост опухолевых клеток, количество которых к третьим суткам эксперимента составило 0,26 х 105/мл. Максимальное подавление роста клеток ИвЬа на 3-и сутки было при использовании микрочастиц, нагруженных 5-фторурацилом в концентрации 6,5 мг/мл; в этом варианте концен-

2

Рис. 3. Начальные (а) и конечные участки (б) кинетической кривой, иллюстрирующей выход 5-фторурацила из П(3ГБ) микрочастиц. Содержание 5-фторурацила: 1 - 1 %; 2 - 5 %; 3 - 10 %

Таблица 2. Коэффициенты диффузии 5-фторурацила в микрочастицах из П(3ГБ), определяющие начальную и конечную фазы диффузионного процесса

Состав микрочастиц Коэффициент диффузии

Б*10"10см2/с (Уравнение 9) Б*10"10см2/с (Уравнение 10)

П(3ГБ)-(1 % 5-ФУ ) 1,0 0,027

П(3ГБ)-(5 % 5-ФУ ) 1,2 0,025

П(3ГБ)-(10 % 5-ФУ ) 3,6 0,038

Рис. 4. Количество жизнеспособных клеток в культуре НеЬа (по результатам МТТ-теста) при добавлении в среду разных концентраций свободного и инкапсулированного 5-фторурацила: 1 - 0,6 мг/л П(3ГБ)-(1 % 5-ФУ); 2 - 1,3 мг/л П(3ГБ)-(5 % 5-ФУ); 3 - 6,5 мг/л П(3ГБ)-(10 % 5-ФУ); 4 - 0,6 мг/л 5-ФУ; 5 - 1,3 мг/л 5-ФУ; 6 - 6,5 мг/л 5-ФУ; 7 - контроль

трация клеток составила 0,08 х 105/мл, в то время как в контрольной группе она достигла 2,9 х 105/мл.

Более выраженное действие депонированного препарата может быть связано с тем, что концентрация депонированного цитостатика в

среде постепенно увеличивается и к 3-м суткам выход достигает 50-70 % от исходного содержания. Между тем 5-фторурацил в традиционной лекарственной форме подавляет рост опухолевых клеток в меньшей степени. Скорее всего, это связано с тем, что 5-фторурацил в традиционной лекарственной форме утилизируется клетками или распадается в среде, в результате чего его концентрация со временем снижается и это приводит к снижению анти-пролиферативной активности препарата. Таким образом, этими результатами продемонстрирована эффективность цитостатического действия препарата, депонированного в микрочастицы из П(3ГБ), по отношению к культуре опухолевых клеток линии ИвЬa.

Заключение

В работе получены микрочастицы из П(3ГБ), содержащие противоопухолевый препарат 5-фторурацил. Показано, что применение метода распылительной сушки позволяет

упростить технологию получения микрочастиц, содержащих лекарственные препараты. Изучена кинетика выхода 5-фторурацила из микрочастиц, показана эффективность их действия по отношению к опухолевым клеткам карциномы шейки матки. Результаты свидетельствуют о том, что пролонгированное высвобождение 5-фторурацила из микрочастиц на основе П(3ГБ) происходит за счет диффузии лекарственного препарата из полимерного матрикса и приводит к подавлению пролиферации клеток карциномы шейки матки. Подавление пролиферации клеток тем эффективнее, чем больше содержание цито-статика в матриксе микрочастиц.

В целом показано, что применение метода распылительного высушивания позволяет получить полимерные микрочастицы, которые могут служить основой для создания новых лекарственных форм препаратов пролонгированного действия для лечения различных заболеваний, в том числе онкологических.

Работа выполнена за счет средств государственного задания на проведение фундаментальных исследований РАН (проект № гос. регистрации 01201351505).

Список литературы

Волова Т.Г., Гительзон И.И., Калачева Г.С., Кузнецов В.Н., Шабанов В.Ф. Патент РФ № 2207375 «Способ получения полимера р-оксимасляной кислоты». Заявка №201105608. Приоритет от 27.02.2001. Зарегистрировано в государственном реестре изобретений РФ 27.06.2003 [Volola T.G., Gitelson I.I., Kalacheva G.S., Kyznetsov V.N., Shababov V.F. Patent of Russian Federation. «The method of preparation of P-hydroxybutyric acid». Reference № 2207375, dated 27.02.2001. Application №201105608 (in Russian)]

Шершнева А.М., Шишацкая Е.И. (2014) Конструирование микрочастиц на основе резор-бируемых полимеров «Биопластотан» с применением метода распылительной сушки. Журнал Сибирского федерального университета. Биология, 7 (2): 195-208 [Shershneva A.M., Shishatskaya E.I. Construction of microparticles based on resorbable polymers bioplastotan using spray drying method. Journal of Siberian Federal University. Biology [Zhurnal Sibirskogo federalnogo universiteta. Biologiya], 7 (2): 195-208 (in Russian)]

Ambruosi A., Gelperina S., Khalansky A. (2006) Influence of surfactants, polymer and doxorubicin loading on the anti-tumor effect of poly(butyl cyanoacrylate) nanoparticles in a rat glioma model. Journal of Microencapsulation, 23: 582-592

Anchordoquy T.J., Koe G.S. (2000) Physical stability of nonviral plasmid-based therapeutics. J. Pharm. Sci, 89: 289-296

Bazzo G., Lemous-Senna M., Pires A. (2009) Poly(3-hydroxybutyrate)/Chitosan/ketoprofen or Piroxicam composite microparticles: preparation and controlled drug release evaluation. Carbohydrate Polymers, 77: 839-844

Blanco M.D., Blanco R.L., Sastre C., Teljon N., Olmo R., Teljor M. (2005) 5-Fluorouracil-loaded microspheres prepared by spray-drying poly(D,L-lactide) and poly(lactide-co-glycolide) polymers: Characterization and drug release. Journal of Microencapsulation, 22 (6): 671-682

Burgess D.J. (2005) Injectable dispersed systems: formulation, processing, and performance. Nanoparticulate drug delivery system. Swarbrick J. (ed.) New York, Informa Healthcare, p. 39-65

Daugherty A.L., Mrsny R.J. (2006) Formulation and delivery issues for monoclonal antibody therapeutics. Adv. Drug Deliv. Rev., 58: 686-706

Embelton J.K., Tighe B.J. (1992) Polymers for biodegradable medical devices. IX: Microincapsulation studies: effects of polymers composition and process parameters on polyhydroxybutyrate-hydroxyvalerate microcapsule morphology. Biomaterials, 9: 73-87

Freitas S., Merkle H., Gander B. (2005) Microencapsulation by solvent extraction/evaporation: reviewing the state of the art of microsphere preparation process technology. Journal of Controlled Release, 102: 313-332

Goreva A.V., Shishatskaya E.I., Volova T.G., Sinskey A.J. (2012) Characterization of polymeric microparticles based on resorbable polyesters of oxyalkanoic acids as a platform for deposition and delivery of drugs. Polym. Sci. Ser. A, 54 (2): 94-105

Holland S., Yasin M., Tighe B. (1990) Polymers for biodegradable medical devices. VII. Hydroxybutyrate-hydroxyvalerate copolymers: degradation of copolymers and their blends with polysachrides under in vitro physiological conditions. Biomaterials, 11: 206-215

Jensen D.M., Cun D., Maltesen M.J., Frokjaer S., Nielsen H.M., Foged C. (2010) Spray drying of siRNA-containing PLGA nanoparticles intended for inhalation. J. Control. Release, 142: 138-145

Khang G., Kim S., Cho J., Yoon S., Lee H. (2001) Preparation and characterization of poly(3-hydroxybutirate-co-3-hydroxyvalerate) microspheres for the sustained release of 5-fluorouracil. BiomedMater Eng., 11: 89-103

Kolakovic R., Laaksonen T., Peltonenet L., Laukkanen A., Hirvonen J. (2012) Spray-dried nanofibrillar cellulose microparticles for sustained drug release. Int. J. Pharm., 430: 47-55

Lassalle V., Ferreira M. (2007) PLA nano- and microparticles for drug delivery: an overview of the methods of preparation. Macromol. Bioscience 7: 767-783

Lebrun P., Krier F., Mantanuset J., Grohganz H., Yang M., Rozet E., Boulanger B., Evrard B., Rantanen J., Hubert P. (2012) Design space approach in the optimization of the spray-drying process. Europ. J. Pharm. Biopharm., 80: 226-234

Livshits V. A., Bonartsev A. P., Iordanskii A. L., Ivanov E. A., Makhina T. A., Myshkina V. L., Bonartseva G. A. (2009) Microspheres based on poly(3-hydroxy)butyrate for prolonged drug release. Polymer Science Series B, 51 (7): 256-263

Mohajel N., Roholamini Najafabadi A., Azadmanesh K., Vatanara A., Moazeni E., Rahimi A., Gilani K. (2012) Optimization of a spray drying process to prepare dry powder microparticles containing plasmid nanocomplex. Int. J. Pharm., 423: 577-585

Murueva A.V., Shishatskaya E.I., Kuzmina A.M., Volova T.G., Sinskey A.J. (2013) Microparticles prepared from biodegradable polyhydroxyalkanoates as matrix for encapsulation of cytostatic drug. J. Mater. Sci.: Mater. Med, 24: 1905-1915

Ohashi K., Takahiro K., Ozeki T., Okada H. (2009) One-step preparation of rifampicin/poly(lactic-co-glycolic acid) nanoparticle-containing mannitol microspheres using a four-fluid nozzle spray drier for inhalation therapy of tuberculosis. Journal of Controlled Release, 135: 19-24

Palazzo F., Giovagnoli S., Schoubben A., Blasi P., Rossi C., Ricci M. (2013) Development of a spray-drying method for the formulation of respirable microparticles containing ofloxacin-palladium complex. International Journal of Pharmaceutics, 440: 273-282

Ramezani V., Vatanara A., Najafabadi A.R., Gilani K., Nabi-Meybodi M. (2013) Screening and evaluation of variables in the formation of antibody particles by spray drying. Powder Technology, 233: 341-346

Shishatskaya E.I., Goreva A.V., Kalacheva G.S., Volova T.G. (2011) Biocompatability and resorption of intravenously administered polymer microparticles in tissue of internalorgans of laboratory animals. Journal of Biomater Sci Polym Ed., 22: 2185-2203

Shishatskaya E.I., Goreva A.V., Kuzmina A.M. (2013) Study of the efficiency of doxorubicin deposited in microparticles from resorbable bioplastotaneTM on laboratory animals with ehrlich's solid carcinoma. Bulletin of experimental biology and medicine, 154 (6): 773-777

Stulzer H., Tagliari M., Parize A., Silva M., Laranjeira M. (2009) Evaluation of cross-linked chitosan microparticles containing acyclovir obtained by spray-drying. Materials Science and Engineering C, 29: 387-392

Vehring R. (2008) Pharmaceutical particle engineering via spray drying. Pharmaceutical Research, 25 (5): 999-1022

Wang Y., Kho K., Cheow W.S., Hadinoto K. (2012) A comparison between spray drying and spray freeze drying for dry powder inhaler formulation of drug-loaded lipid-polymer hybrid nanoparticles. Int. J. Pharm, 424: 98- 106