Научная статья на тему 'Получение рекомбинантных по генам pssA и rosR ризобиальных штаммов, меченных флуоресцентным белком GFP'

Получение рекомбинантных по генам pssA и rosR ризобиальных штаммов, меченных флуоресцентным белком GFP Текст научной статьи по специальности «Биологические науки»

CC BY
209
45
i Надоели баннеры? Вы всегда можете отключить рекламу.
Ключевые слова
R. LEGUMINOSARUM / РИЗОБИИ / ЭКЗОПОЛИСАХАРИДЫ (ЭПС) / PSSA / ROSR / БИОПЛЕНКА / RHIZOBIA / EXOPOLYSACCHARIDES (EPS) / BIOFILMS

Аннотация научной статьи по биологическим наукам, автор научной работы — Лавина Анна Михайловна, Хакимова Лилия Ралисовна, Матниязов Рустам Тахирович, Вершинина Зиля Рифовна, Баймиев Алексей Ханифович

Установление специфичных симбиотических отношений между ризобиями и бобовыми растениями представляет собой сложный процесс, требующий обмена сигнальными молекулами-посредниками между обоими партнерами. Выделяемые корнями бобовых растений флавоноиды индуцируют у ризобий экспрессию генов клубенькообразования Nod-факторов. Синтез Nod-факторов необходим, но недостаточен для морфогенеза эффективных фиксирующих азот клубеньков. Так как не менее важным фактором при формировании клубеньков является синтез ризобактериями экзополисахаридов (ЭПС), которые играют решающую роль в симбиотических взаимодействиях клубеньковых бактерий с бобовыми растениями. Кроме того в свободноживущих клетках ризобий ЭПС отвечают за прикрепление к абиотическим и биотическим поверхностям и за формирование биопленок, обеспечивающих адаптацию бактерий к изменяющимся условиям окружающей среды. В настоящее время формирование биопленок ризобиями и взаимосвязь этого процесса с эффективным клубенькообразованием интенсивно изучается. Особого внимания заслуживают ген rosR, который кодирует транскрипционный регулятор, участвующий в биосинтезе ЭПС, а также ген pssA, ответственный за инициацию процесса биосинтеза ЭПС в ризобиях. Для исследования генов, ответственных за синтез ЭПС, в рамках их воздействия на формирование биопленок ризобиями, в частности в искусственных симбиотических системах, где большую роль играет колонизация корней растений, необходима визуализация взаимодействия азотфиксирующих бактерий с корнями растений. В виду этого целью данной работы являлось получение рекомбинантных по генам pssA и rosR ризобиальных штаммов, меченных флуоресцентным белком GFP. Для этого была получена генно-инженерная конструкция, содержащая ген флуоресцентного белка GFP, который служит для визуализации взаимодействия ризобий с корнями растений. Было проведено клонирование генов pssA и rosR в плазмиду pJB658GFP, трансформация данной конструкцией ризобий и микроскопическое исследование полученных рекомбинантных штаммов. Показано, что рекомбинантные ризобиальные штаммы с дополнительной копией гена pssA или rosR характеризуются большим ослизнением клеточных стенок, по сравнению с дикими штаммами, что указывает на их большую выработку экзополисахаридов и, как следствие, указывает на повышение конкурентоспособности штаммов.

i Надоели баннеры? Вы всегда можете отключить рекламу.

Похожие темы научных работ по биологическим наукам , автор научной работы — Лавина Анна Михайловна, Хакимова Лилия Ралисовна, Матниязов Рустам Тахирович, Вершинина Зиля Рифовна, Баймиев Алексей Ханифович

iНе можете найти то, что вам нужно? Попробуйте сервис подбора литературы.
i Надоели баннеры? Вы всегда можете отключить рекламу.

THE OBTAINING OF THE RECOMBINANT STRAINS OF RHIZOBIA CARRYING AN EXTRA COPY OF GENES PSSA AND ROSR LABELED WITH FLUORESCENT PROTEIN GFP

The establishment of specific symbiotic relationships between rhizobia and leguminous plants is a complex process that requires the exchange of signaling intermediary molecules between both partners. The flavonoids, secreted by the roots of leguminous plants, induce rhizobium expression of nodule-forming genes Nod-factors. Synthesis of Nod factors is necessary, but not sufficient for the morphogenesis of effective nitrogen fixing nodules. Since no less important factor in the formation of nodules is the synthesis of rhizobacteria exopolysaccharides (EPS), which play a decisive role in the symbiotic interactions of nodule bacteria with leguminous plants. In addition, in free-living cells, rhizobia EPSs are responsible for attachment to abiotic and biotic surfaces and for the formation of biofilms that ensure the adaptation of bacteria to changing environmental conditions. Currently, the formation of biofilms by rhizobia and the relationship of this process with effective nodule formation is being intensively studied. Special attention should be paid to the rosR gene, which encodes the transcriptional regulator involved in EPS biosynthesis, as well as the pssA gene responsible for initiating the process of EPS biosynthesis in rhizobia. To study the genes responsible for the synthesis of EPS in the context of their impact on the formation of biofilms by rhizobia, in particular in artificial symbiotic systems, where colonization of plant roots plays an important role, it is necessary to visualize the interaction of nitrogen fixing bacteria with plant roots. In view of this, the aim of this work was to obtain recombinant rhizobial strains labeled with fluorescent protein GFP by the pssA and rosR genes. To do this, a genetically engineered construct containing the fluorescent protein gene GFP was used, which serves to visualize the interaction of rhizobia with plant roots. Cloning of pssA and rosR genes into plasmid pJB658GFP, transformation of rhizobium with this construct, microscopic examination of the obtained recombinant strains was carried out. It has been shown that recombinant rhizobial strains with an additional copy of the pssA or rosR gene are characterized by a large mismatch of the cell walls, compared to wild strains, which indicates their high production of exopolysaccharides and, as a consequence, indicates an increase in the competitiveness of the strains.

Текст научной работы на тему «Получение рекомбинантных по генам pssA и rosR ризобиальных штаммов, меченных флуоресцентным белком GFP»

УДК 579.262: 579.64:631.46

Лавина А.М., Хакимова Л.Р., Матниязов Р.Т., Вершинина З.Р., Баймиев Ал.Х.

Институт биохимии и генетики Уфимского научного центра Российской академии наук,

Республика Башкортостан, г Уфа, Россия E-mail: owlwoman@mail.ru

ПОЛУЧЕНИЕ РЕКОМБИНАНТНЫХ ПО ГЕНАМ pssA И rosR РИЗОБИАЛЬНЫХ ШТАММОВ, МЕЧЕННЫХ ФЛУОРЕСЦЕНТНЫМ БЕЛКОМ GFP

Установление специфичных симбиотических отношений между ризобиями и бобовыми растениями представляет собой сложный процесс, требующий обмена сигнальными молекулами-посредниками между обоими партнерами. Выделяемые корнями бобовых растений флавонои-ды индуцируют у ризобий экспрессию генов клубенькообразования - Nod-факторов. Синтез Nod-факторов необходим, но недостаточен для морфогенеза эффективных фиксирующих азот клубеньков. Так как не менее важным фактором при формировании клубеньков является синтез ризобактериями экзополисахаридов (ЭПС), которые играют решающую роль в симбиотических взаимодействиях клубеньковых бактерий с бобовыми растениями. Кроме того в свободножи-вущих клетках ризобий ЭПС отвечают за прикрепление к абиотическим и биотическим поверхностям и за формирование биопленок, обеспечивающих адаптацию бактерий к изменяющимся условиям окружающей среды. В настоящее время формирование биопленок ризобиями и взаимосвязь этого процесса с эффективным клубенькообразованием интенсивно изучается. Особого внимания заслуживают ген rosR, который кодирует транскрипционный регулятор, участвующий в биосинтезе ЭПС, а также ген pssA, ответственный за инициацию процесса биосинтеза ЭПС в ризобиях.

Для исследования генов, ответственных за синтез ЭПС, в рамках их воздействия на формирование биопленок ризобиями, в частности в искусственных симбиотических системах, где большую роль играет колонизация корней растений, необходима визуализация взаимодействия азотфиксирующих бактерий с корнями растений. В виду этого целью данной работы являлось получение рекомбинантных по генам pssA и rosR ризобиальных штаммов, меченных флуоресцентным белком GFP. Для этого была получена генно-инженерная конструкция, содержащая ген флуоресцентного белка GFP, который служит для визуализации взаимодействия ризобий с корнями растений. Было проведено клонирование генов pssA и rosR в плазмиду pJB658GFP, трансформация данной конструкцией ризобий и микроскопическое исследование полученных рекомбинантных штаммов.

Показано, что рекомбинантные ризобиальные штаммы с дополнительной копией гена pssA или rosR характеризуются большим ослизнением клеточных стенок, по сравнению с дикими штаммами, что указывает на их большую выработку экзополисахаридов и, как следствие, указывает на повышение конкурентоспособности штаммов.

Ключевые слова: R. leguminosarum, ризобии, экзополисахариды (ЭПС), pssA, rosR, биопленка.

Rhizobium leguminosarum - это грамотрица-тельные почвенные бактерии, способные фиксировать азот. Ризобии могут существовать и как свободно живущие микроорганизмы, и как азотфиксирующие симбионты внутри клубеньков растения-хозяина. Установление специфичных симбиотических отношений между ризо-биями и бобовыми растениями представляет собой сложный процесс, требующий обмена сигнальными молекулами-посредниками между обоими партнерами. Выделяемые корнями бобовых растений флавоноиды индуцируют у ризобий экспрессию генов клубенькообразо-вания (nod, nol и noe). В результате ризобии синтезируют специфические сигнальные молекулы - липохитоолигосахариды, называемые Nod факторами [1]. Nod факторы отвечают за

формирования клубеньков, то есть новой специализированной структуры, в которой происходит фиксация азота [2], [3].

Nod факторы играют важную роль в формировании клубеньков, однако, для формирования эффективных фиксирующих азот клубеньков необходимо участие генов, вовлеченных в формирование бактериальной клеточной поверхности, таких как гены, ответственные за синтез экзополисахаридов (exo/pss гены), липополисахаридов (lps гены), капсулярных полисахаридов или К-антигенов и Р-1,2(1,3)-глюканов (ndv гены) [4]. Мутации по этим генам нарушают инфекционный процесс в различной степени.

Ризобактерии синтезируют большое количество кислых внеклеточных полисахаридов

(ЭПС), так как они играют решающую роль в симбиотических взаимодействиях клубеньковых бактерий с бобовыми растениями [5]. Так синтез ЭПС ризобиями, которые образуют клубеньки недетерминированного типа (например, Trifolium, Pisum, Vicia и Medicago), необходим для скручивания корневых волосков, правильного формирования инфекционных нитей, дифференцировки бактероидов и эффективного клубенькообразования [6]. Экзополисахарид-дефицитные мутанты Rhizobium leguminosarum bv. trifolii индуцируют образование небольших, клубеньков на растениях клевера, которые неэффективны при фиксации азота [7].

Биосинтез ЭПС у ризобий, происходит в 3 этапа: синтез повторяющихся олигосахарид-ных звеньев, их модификация и полимеризация, а также транслокация на поверхность клетки. ЭПС синтезированный R. leguminosarum, представляет собой полимер, состоящий из октасахаридных повторяющихся единиц, содержащих D-глюкозу, D-глюкуроновую кислоту и D-галактозу в молярном соотношении 5:2:1. Этот октасахарид модифицируется двумя остатками ацеталя пировиноградной кислоты, О-ацетильными и гидроксибутаноиль-ными группами [6]. Сборка повторяющихся звеньев инициируются путем переноса глюкозо-1-фосфата с UDP-глюкозы на носитель C55-изопренилфосфата (IP), который расположен на внутренней мембране. Эта стадия синтеза ЭПС обеспечивается глюкозил-1Р-трансферазой, кодируемой консервативным геном pssA. Ген pssA не связан с другими генами синтеза ЭПС и представлен отдельной открытой рамкой считывания [8].

Регуляция биосинтеза ЭПС важна для выполнения биологических функций этого полимера в симбиозе. Однако все еще мало известно о регуляции экспрессии генов pss в ответ на сигналы окружающей среды. Один из таких регуляторных генов rosR, который кодирует транскрипционный регулятор, участвующий в биосинтезе ЭПС. Мутация в гене rosR в R. leguminosarum bv. trifolii приводит к 3-кратному уменьшению синтеза ЭПС и образованию клубеньков у клевера, неспособных фиксировать атмосферный азот, тогда

как множественные копии этого гена вызвали 2-кратное увеличение синтеза этого полимера [9]. RosR представляет собой белок массой 15,7 кДа. C-конец белка представлен мотивом цинкового пальца типа C2H2, который связывается с последовательностью в 22-п.н., называемой RosR box. Было показано, что RosR распознает и связывается с мотивом RosR box, расположенным до rosR и, в следствии, отрицательно регулирует транскрипцию гена. На экспрессию rosR влияют такие факторы окружающей среды, как источники углерода, фосфатов и флавоноиды. Те же внешние факторы влияют на уровень производства ЭПС в R. leguminosarum [10].

В свободноживущих клетках ризобий ЭПС выполняют несколько другие функции, такие как сбор питательных веществ, защита от воздействия окружающей среды, прикрепление к абиотическим и биотическим поверхностям и формирование биопленок, обеспечивающих адаптацию бактерий к изменяющимся условиям окружающей среды [7].

Прикрепление почвенных бактерий к растительным клеткам является одним из самых ранних этапов взаимодействия симбионтов в сложном специфическом инфекционном процессе, необходимом для растительно-микробных взаимодействий. Первой фазой прикрепления является обратимое и неспецифическое связывание, в котором участвуют ризобиальные экзополиса-хариды. Такое прикрепление представляет собой начальный этап формирования ризобиями биопленок на корнях растений [11].

В настоящее время формирование биопленок ризобиями и взаимосвязь этого процесса с эффективным клубенькообразованием интенсивно изучается [12]. Для исследования генов, ответственных за синтез экзополисахаридов, в рамках их воздействия на формирование биопленок ризобиями, в частности в искусственных симбиотических системах, где большую роль играет колонизация корней растений, необходима визуализация взаимодействия азот-фиксирующих бактерий с корнями растений. В виду этого целью данной работы являлось получение рекомбинантных по генам pssA и rosR ризобиальных штаммов, меченных флуоресцентным белком GFP.

Материалы и методы

Объекты и материалы исследования В экспериментах по клонированию применяли плазмидные векторы pJN105TurboGFP, pAL-2T, pJB658, а также штамм Escherichia coli NEB 10. В опытах трансформации ризобиаль-ных штаммов использовали дикие штаммы R. leguminosarum VCr7 и штамм R. leguminosarum VSy3 из коллекции штаммов бактерий ИБГ УНЦ РАН.

Молекулярно-биологические манипуляции

Выделение высокомолекулярной бактериальной ДНК проводили по методу Грэхэма с некоторыми модификациями. Выделение плаз-мидной ДНК, анализ рекомбинантных клонов, клонирование амплифицированной ДНК в плазмидные векторы, расщепление ДНК ре-стрикционными эндонуклеазами и лигирование, подготовку компетентных клеток и их трансформацию плазмидной ДНК, электрофорез фрагментов ДНК и их элюцию из легкоплавкой агарозы проводили полабораторному руководству Сэмбрука и соавт. Полимеразную цепную реакцию (ПЦР) проводили с использованием стандартных наборов для амплификации ДНК «ДНК-технология» (Россия) в приборе Терцик МС2 («ДНК-технология», Россия). Определение нуклеотидных последовательностей ДНК выполняли на автоматическом секвенаторе ABI PRISM 310 ("Applied Biosystems", США), используя наборы для секвенирования "Big Dye Terminator v. 3.0". Анализ нуклеотидных последовательно стей проводили с помощью

пакета компьютерных программ Lasergene ("DNASTAR, Inc.", США).

Результаты и обсуждение

Для визуализации взаимодействия ризобий с корнями растений, нами была получена генно-инженерная конструкция с зеленым флуоресцентным белком GFP. Так целевой ген GFP был амплифицирован из вектора pJN105TurboGFP, который ранее был получен в нашей лаборатории [13]. Для того чтобы обеспечить конститутивную экспрессию зеленого флуоресцентного белка, данный ген был амплифицирован вместе с промотором фага Т5 при помощи специфичных праймеров, содержащих сайт рестрикции HindIII. Далее амплифицированную последовательность ДНК клонировали в промежуточный вектор pAL-2T. Затем из плазмиды pAL-2T с помощью рестриктазы HindIII была вырезана последовательность ДНК, содержащая конститутивный промотор фага Т5 и ген GFP. После этого последовательность ДНК была клонирована в вектор pJB658 по сайту рестрикции HindIII (рис. 1). Так был получен штамм E. coli + pJB658GFP, меченный флуоресцентным белком GFP (рис. 2).

Данный вектор использовался для создания плазмидных конструкций с генами pssA и rosR, которые ответственны за синтез экзопо-лисахаридов. Для этого гены pssA и rosR были амплифицированы, с помощью специфичных праймеров с сайтами рестрикции NdeI, фланкирующих структурную часть генов. Данные, полученные при секвенировании исследуемых последовательностей, подтвердили их идентич-

Рисунок 1 - Схема создания генно-инженерной конструкции pJB658GFP

Рисунок 2 - А - Изображение штамма E. coli + pJB658GFP на чашке Петри, Б - Изображение штамма E. coli + pJB658GFP, полученное с помощью флуоресцентного микроскопа.

р JB658GFP+ -Г"'""« pssA / rosR PTs

Рисунок 3 - Схема создания конструкций с геном GFP и генами pssA или rosR

Рисунок 4 - A - R. leguminosarum VCr7; Б - R. leguminosarum VCr7 + pJB658GFP pssA; В - R. leguminosarum VSy3;

Г - R. leguminosarum VSy3 + pJB658GFP rosR.

Рисунок 5 - Изображения ризобактерий, меченых GFP, полученные с применением флуоресцентного микроскопа: А - R. leguminosarum VCr7 + pJB658GFP_pssA, Б - R. leguminosarum VSy3 + pJB658GFP_rosR.

ность с последовательностями, представленными в ОепБапк. Так гены pssA и rosR были клонированы в промежуточный вектор рЛЬ-2Т, а затем в вектор р1Б6580РР под индуцибельным промотором Рт (рис. 3).

Далее данными конструкциями были трансформированы ризобиальные штаммы. Так были получены штамм R. leguminosarum УСг7 р1Б6580РР+р88Л и штамм R. leguminosarum У8у3 р1Б6580РР+го8Я (рис. 4).

Флуоресцентное свечение трансформированных штаммов было проанализировано с помощью флуоресцентного микроскопа (рис. 5).

Согласно литературным данным ризоби-альная клеточная поверхность покрыта капсулой, состоящей главным образом из ЭПС. Ри-зобактерии синтезируют большое количество ЭПС, необходимых для установления симбио-тических отношений с бобовыми растениями, питания, защиты от вредных факторов окружающей среды, формирования биопленок [12]. Чем больше ризобии синтезируют ЭПС, тем выше их конкурентоспособность по сравнению с другими штаммами. Полученные в данной работе рекомбинантные штаммы ризобий характеризуются большей наработкой ЭПС по сравнению с дикими штаммами, что выража-

ется наибольшим ослизнением азотфиксирую-щих бактерий.

Заключение

Таким образом, были получены штамм Rhizobium leguminosarum VCr7 pJB658GFP + pssA и штамм R. leguminosarum VSy3 pJB658-GFP + rosR, которые характеризуются большей наработкой экзополисахаридов, что выражается наибольшим ослизнением азотфиксирую-щих бактерий.

Таким образом, была получена генно-инженерная конструкция с зеленым флуоресцентным белком GFP, который необходим для визуализации взаимодействия ризобий с корнями растений, а также исследуемыми генами, участвующими в биосинтезе экзополисахари-дов (pssA/rosR). С помощью данной конструкции были получены штаммы R. leguminosarum VCr7 + pJB658GFP_pssA и R. leguminosarum VSy3 + pJB658GFP_rosR. Показано, что реком-бинантные ризобиальные штаммы с дополнительной копией гена pssA/rosR характеризуются большим ослизнением клеточных стенок, по сравнению с дикими штаммами, что указывает на их большую выработку экзополисахаридов и, как следствие, указывает на повышение конкурентоспособности штаммов.

04.10.2017

Исследования выполнялись с привлечением приборного парка ЦКП «Биомика» Института биохимии и генетики Уфимского научного центра РАН в рамках госзадания по теме № АААА-А16-116020350028-4 при финансовой поддержке грантов Российского фонда фундаментальных исследований (гранты РФФИ № 16-04-00902А; №16-34-01076 мол_а; №17-44-020201р_а)

Список литературы:

1. Geurts, R. Nod factor signaling genes and their function in the early stages of Rhizobium infection / R. Geurts, E. Fedorova, T. Bisseling // Current opinion in plant biology. - 2005. - Vol. 8. - No. 4. - P. 346-352.

2. Spaink, H.P. Root nodulation and infection factors produced by rhizobial bacteria / H.P. Spaink //Annual Reviews in Microbiology. -2000. - Vol. 54. - No. 1. - P. 257-288.

3. Gage, D.J. Infection and invasion of roots by symbiotic, nitrogen-fixing rhizobia during nodulation of temperate legumes / D.J. Gage // Microbiology and Molecular Biology Reviews. - 2004. - Vol. 68. - No. 2. - P. 280-300.

4. Rhizobial exopolysaccharides: genetic control and symbiotic functions / A. Skorupska [et al] // Microbial cell factories. - 2006. - Vol. 5. - No. 1. - P. 7.

5. Cheng, H.P. Succinoglycan is required for initiation and elongation of infection threads during nodulation of alfalfa byRhizobium meliloti / H.P. Cheng, G.C. Walker // Journal of bacteriology. - 1998. - Vol. 180. - No. 19. - P. 5183-5191.

6. Downie, J.A. The roles of extracellular proteins, polysaccharides and signals in the interactions of rhizobia with legume roots / J.A. Downie // FEMS microbiology reviews. - 2010. - Vol. 34. - No. 2. - P. 150-170.

7. Janczarek, M. Environmental signals and regulatory pathways that influence exopolysaccharide production in rhizobia / M. Janczarek // International journal of molecular sciences. - 2011. - Vol. 12. - No. 11. - P. 7898-7933.

8. Mutation in the pssB-pssA intergenic region of Rhizobium leguminosarum bv. trifolii affects the surface polysaccharides synthesis and nitrogen fixation ability / M. Janczarek [et al] // Journal of plant physiology. - 2001. - Vol. 158. - No. 12. - P. 1565-1574.

9. Janczarek, M. The Rhizobium leguminosarum bv. trifolii RosR: transcriptional regulator involved in exopolysaccharide production / M. Janczarek, A. Skorupska // Molecular plant-microbe interactions. - 2007. - Vol. 20. - No. 7. - P. 867-881.

10. Janczarek, M. Modulation of rosR expression and exopolysaccharide production in Rhizobium leguminosarum bv. trifolii by phosphate and clover root exudates // M. Janczarek, A. Skorupska // International journal of molecular sciences. - 2011. - Vol. 12. -No. 6. - P. 4132-4155.

11. Rinaudi, L.V. An integrated view of biofilm formation in rhizobia / L.V. Rinaudi, W. Giordano // FEMS microbiology letters. -2010. - Vol. 304. - No. 1. - P. 1-11.

12. Цыганова, А. В. Роль поверхностных компонентов ризобий в симбиотических взаимодействиях с бобовыми растениями / А.В. Цыганова, В.Е. Цыганов // Успехи современной биологии. - 2012. - Т. 132. - №. 2. - С. 211-222.

13. Получение флуоресцентно меченых штаммов клубеньковых бактерий дикорастущих бобовых для их детекции in vivo и in vitro / Ан.Х. Баймиев, Р.С. Ямиданов, Р.Т. Матниязов [и др.] // Молекулярная биология. - 2011. - Т. 45. - № 6. - С. 984-991.

Сведения об авторах:

Лавина Анна Михайловна, аспирант лаборатории молекулярной биологии и нанобиотехнологии Института биохимии и генетики УНЦ РАН 450054, г. Уфа, пр-т Октября, 71; тел.: (347) 235-60-88; факс: (347) 235-61-00, e-mail: owlwoman@mail.ru

Хакимова Лилия Ралисовна, м.н.с. лаборатории молекулярной биологии и нанобиотехнологии

Института биохимии и генетики УНЦ РАН 450054, г. Уфа, пр-т Октября, 71; тел.: (347) 235-60-88; факс: (347) 235-61-00, e-mail: lili-nigmatullina@bk.ru

Матниязов Рустам Тахирович, н.с. лаборатории молекулярной биологии и нанобиотехнологии

Института биохимии и генетики УНЦ РАН; кандидат биологических наук 450054, г. Уфа, пр-т Октября, 71; тел.: (347) 235-60-88; факс: (347) 235-61-00, e-mail: rmat@mail.ru

Вершинина Зиля Рифовна, н.с. лаборатории молекулярной биологии и нанобиотехнологии Института биохимии и генетики УНЦ РАН; кандидат биологических наук 450054, г Уфа, пр. Октября, 71; тел.: (347) 235-60-88; факс: (347) 235-61-00, e-mail: zilyaver@mail.ru

Баймиев Алексей Ханифович, заведующий лаборатории молекулярной биологии и нанобиотехнологии Института биохимии и генетики УНЦ РАН; доктор биологических наук 450054, г. Уфа, пр-т Октября, 71; тел.: (347) 235-60-88; факс: (347) 235-61-00, e-mail: baymiev@mail.ru

i Надоели баннеры? Вы всегда можете отключить рекламу.