CC BY
77
ФИЗИОЛОГИЯ И БИОХИМИЯ РАСТЕНИЙ
УДК 58.085
DOI 10.21685/2307-9150-2020-1-1
Е. В. Кучарова, Ж. М. Охлопкова, Е. Е. Антонова
ПОЛУЧЕНИЕ КАЛЛУСНЫХ КУЛЬТУР ПОЛЫНИ ОБЫКНОВЕННОЙ (ARTEMISIA VULGARIS L.)1
Аннотация.
Актуальность и цели. Одним из альтернативных источников получения биологически активных веществ является культура растительных клеток in vitro. Целью данной работы является введение в каллусную культуру Artemisia vulgaris L. центрально-якутской популяции как вида с высоким содержанием различных биологически активных веществ, применяемого в народной медицине и широко распространенного на территории исследования.
Материалы и методы. Фитомасса Artemisia vulgaris L. была собрана во время экспедиций на территории Амгинского района Республики Саха (Якутия) в июне-июле 2016-2018 гг. Для введения Artemisia vulgaris в каллусную культуру в качестве инициальных эксплантов использованы настоящие листья стерильных растений, полученных в контролируемых условиях из семян дикорастущего растения. Культивирование проводили на питательной среде Мура-сиге-Скуга с использованием двух разных вариантов регуляторов роста: 2,4-дихлорфеноксиуксусной кислоты и кинетина, 6-бензиламинопурина и а-нафтилуксусной кислоты. Морфологический анализ клеток полученных каллусов проводили на световом микроскопе. Полученные первичные каллусы были отобраны для дальнейшей пересадки на питательной среде Мурасиге-Скуга (МС) с разными концентрациями регуляторов роста. Динамику роста сырой массы каллусов изучали в течение одного цикла (21 сут).
Результаты. Биомасса первичного каллуса Artemisia vulgaris на питательной среде Мурасиге-Скуга с добавлением 2,4-дихлорфеноксиуксусной кислоты и кинетина была светло-желтой окраски и плотной консистенции, а при добавлении 6-бензиламинопурина и а-нафтилуксусной кислоты также была бледно-желтой окраски, но отличалась легко отделяемой рыхлой структурой. Морфологический анализ клеток полученных первичных каллусов показал преобладание клеток округло-яйцевидной формы с ярко выраженным ядром. На питательной среде с добавлением 2,4-дихлорфеноксиуксусной кислоты,
1 Работа выполнена в рамках научно-исследовательского проекта «Вторичные метаболиты полыней Якутии in vivo и in vitro: поиск, оптимизация и практическое приложение» учебно-научной лаборатории «Молекулярно-генетические и клеточные технологии» СВФУ (Соглашение № 6-НИП от 01.09.2017, 2-й этап работ).
© Кучарова Е. В., Охлопкова Ж. М., Антонова Е. Е., 2020. Данная статья доступна по условиям всемирной лицензии Creative Commons Attribution 4.0 International License (http://creativecommons.org/licenses/by/ 4.0/), которая дает разрешение на неограниченное использование, копирование на любые носители при условии указания авторства, источника и ссылки на лицензию Creative Commons, а также изменений, если таковые имеют место.
кинетина и а-нафтилуксусной кислоты максимальное увеличение сырой массы каллуса наблюдалось на 11-е сут после пересадки. На питательной среде с добавлением 2,4-дихлорфеноксиуксусной кислоты, а-нафтилуксусной кислоты и 6-бензиламинопурина максимальное увеличение сырой массы каллуса наблюдалось на 14-е сут.
Выводы. Получены первичные каллусы Artemisia vulgaris L. из листовых эксплантов, взятых из стерильных растений. Оптимизирована питательная среда с регуляторами роста для получения и дальнейшего введения каллусной культуры Artemisia vulgaris L. На питательной среде с добавлением 2,4-Д, НУК и БАП сырая биомасса каллуса Artemisia vulgaris L. в три раза превышает биомассу каллуса, получаемого на питательной среде с 2,4-Д, кинетином и НУК. Полученные каллусные культуры обладали мягкой легко отделяемой рыхлой структурой бледно-желтого цвета.
Ключевые слова: Artemisia vulgaris L., каллусная культура, питательная среда МС, каллусогенез, биомасса, кривая роста.
E. V. Kucharova, Zh. M. Okhlopkova, E. E. Antonova
OBTAINING CALLUS CULTURES OF COMMON MUGWORT (ARTEMISIA VULGARIS L.)
Abstract.
Background. One of the alternative sources of obtaining biologically active substances is a culture of plant cells in vitro. The objective of this work is to introduce Artemisia vulgaris in the callus culture. The plant grows in Central Yakutia, known as a species with a high content of various biologically active substances used in traditional medicine and widely spread on a territory researched.
Materials and methods. The phytomass of Artemisia vulgaris L. was collected during the expeditions on the territory of Amga's region of the Republic of Sakha (Yakutia) in June-July 2016-2018. For introduction of Artemisia vulgaris L. into a callus culture, the actual leaves of sterile plants were used as explants. The plants were obtained via cultivating the seeds of a wild plant in controlled conditions. The cultivation was performed on a Murashige-Skoog nutrient medium with the use of two different growth regulators: 2,4-dichlorophenoxyacetic acid and kinetin, 6-benzylaminopurine and а-naphthylacetic acid. Morphological analysis of cells of the obtained calli was performed using a light microscope. The obtained primary calli were selected for further transplantation on a Murashige-Skoog nutrient medium with different concentrations of growth regulators. The growth dynamics of the callus wet mass was studied during one cycle (21 days).
Results. The biomass of primary callus Artemisia vulgaris L. in the Murashige-Skoog nutrient medium with supplementation of 2,4-dichlorophenoxyacetic acid and kinetin was light yellow in color and had a dense consistency, and with the addition of 6-benzylaminopurine and а-naphthylacetic acid, it was also pale yellow in color, but with easily separable loose structure. Morphological analysis of cells of primary callus obtained showed the predominance of round-ovoid cells with a distinct nucleus. In a nutrient medium supplemented with 2,4-dichlorophenoxyacetic acid, kine-tin, and а-naphthylacetic acid, the peak increase in callus wet mass was observed on day 11 after transplantation. On a nutrient medium supplemented with 2,4-dichlorophenoxyacetic acid, а-naphthylacetic acid, and 6-benzylaminopurine the peak increase in the callus wet mass was observed on the 14th day.
Conclusions. The primary callus of Artemisia vulgaris L. were obtained from leaf explants taken from sterile plants. A nutrient medium with growth regulators
was optimized to obtain callus and for a further introduction of Artemisia vulgaris in the callus culture. On a nutrient medium supplemented with 2,4-dichlorophe-noxyacetic acid, a-naphthylacetic acid, and 6-benzylaminopurine callus biomass of Artemisia vulgaris L. is three times heavier than the biomass of callus obtained on a nutrient medium with 2,4-D, kinetin, and NAA. The obtained callus cultures had a soft, easily separable, loose structure, pale yellow in color.
Keywords: Artemisia vulgaris L., callus culture, MS nutrient medium, calloge-nesis, biomass, growth curve.
Введение
Artemisia - крупный род травянистых и полукустарниковых растений семейства Сложноцветные (Asteraceae) [1]. Во флоре Центральной Якутии насчитывается 22 вида рода Artemisia [2]. В основном это растения степных сообществ, широко распространенные в долине Средней Лены и представляющие собой своеобразие растительного покрова Центральной Якутии [3]. Некоторые виды полыней имеют лекарственную и пищевую ценность.
Одним из широко распространенных в природе видов и применяемых в народной медицине является Artemisia vulgaris L. Полынь обыкновенная, чернобыльник, по-якутски «уерэ ото». Строение корневища крепкое, немного ветвистое. Стебли прямостоячие, красно-бурые, наверху разветвленные, до
1-1,5 м высотой. Листья сверху голые или слегка пушистые, темно-зеленые, снизу сероватые, паутинисто-войлочные, перисто-рассеченные на удлиненные зубчатые доли. Цветки очень мелкие, собраны в яйцевидные корзинки
2-4 мм шириной, составляющие широкое, несколько поникающее, метельчатое соцветие; обертка каждой корзинки покрыта густым войлочком; цветки красноватые, реже - желтые. Цветет в июле-августе. Местом произрастания являются пустыри, огороды, сорные места, окрестности жилья, реже - луга и берега рек. На территории Якутии полынь обыкновенная распространена повсеместно, в основном на Алдане, Центральной Якутии, Верхне-Ленске, Яно-Индигирске, на Колыме [4].
По результатам фитохимического анализа было установлено наличие в надземной части полыни обыкновенной: аскорбиновой кислоты, полисахаридов, белков, дубильных веществ, флавоноидов, кумаринов, тритерпеновых сапонинов и фенольных соединений [5, 6]. Полынь обыкновенная в якутских популяциях, согласно результатам исследования, содержала в траве флаво-ноиды (5,64 ± 0,02 %), дубильные вещества (13,7 ± 0,5 %), аскорбиновую кислоту (2,6 ± 0,02 мг/г) и водорастворимые полисахариды (4,59 ± 0,3 %), что также подтверждает многовековой опыт использования данного растения якутскими травниками как ценного пищевого и лекарственного растения [7].
В связи с высоким содержанием различных биологически активных веществ в траве полыни обыкновенной перед нами стояла задача получить каллусную культуру клеток данного вида растения на основе растительных материалов, собранных на территории Центральной Якутии, для дальнейшего изучения особенностей накопления биологически активных веществ в кал-лусной биомассе Artemisia vulgaris L. Растение с соцветиями и семенами было собрано нами в течение экспедиционных работ на территории Амгинского района Республики Саха (Якутия) в июне-июле 2016-2018 гг.
Целью данной работы является введение в каллусную культуру Artemisia vulgaris L. центрально-якутской популяции.
Для достижения данной цели мы выполняли следующие задачи:
1) получение стерильных растений из семян дикорастущего растения;
2) оптимизация питательной среды для получения каллусной культуры Artemisia vulgaris L.;
3) получение первичного каллуса и морфологический анализ клеток;
4) анализ динамики роста биомассы каллуса Artemisia vulgaris L.
Материалы и методика
Объектом исследования является растение Artemisia vulgaris L., фито-масса которого была собрана в течение экспедиционных работ на территории Амгинского района Республики Саха (Якутия) в июне-июле 2016-2018 гг. Растительный материал подвергался естественной сушке, и из него были вылущены семена с сохранением семенного материала в коллекции лаборатории «Молекулярно-генетические и клеточные технологии» СВФУ.
Семена растения стерилизовали раствором перекиси водорода в течение 5 мин, 70 % этиловым спиртом в течение 1 мин с последующей многократной промывкой автоклавированной дистиллированной водой. Семена помещали на поверхность безгормональной питательной среды и культивировали в контролируемых условиях климатической камеры. Прорастание семян наблюдалось на второй день после посадки.
В качестве эксплантов для введения Artemisia vulgaris в культуру in vitro взяты первые настоящие листья стерильных растений. Экспланты также подвергали стерилизации, в условиях ламинарного бокса проводили последовательную обработку 3 % раствором перекиси водорода, 70 % этиловым спиртом, после чего растительный материал 3-4 раза промывали стерильной дистиллированной водой. Экспланты помещали на питательную среду Мура-сиге-Скуга (МС), дополненную регуляторами роста (2,4-Д, НУК, кинетин и БАП) в различных комбинациях и концентрациях (табл. 1). Стерилизацию сред, материалов и работу в асептических условиях проводили по стандартным требованиям, общепринятым в работах по культуре клеток растений [8].
Таблица 1
Состав регуляторов роста в питательной среде МС для введения листовых эксплантов в культуру клеток
Номер эксплантов Содержание регуляторов роста, в мг/л Частота каллусообразования, в %
2,4-Д Кинетин НУК БАП
1 1 1 - - >80 %
2 - - 1 1 >80 %
Экспланты культивировали в условиях термостатируемого помещения (25-27 °С) при относительной влажности воздуха 50-60 %. Частоту каллусо-образования определяли по количеству эксплантов, давших каллус, от общего числа эксплантов. В конце пассажа проводили визуальную оценку интен-
сивности образования каллуса и его описание. Далее полученные каллусы пересаживали на питательные среды с другими концентрациями регуляторов роста и рассчитывали кривую роста по биомассе полученного материала в сыром весе. Морфологический анализ клеток полученных каллусов выполняли на световых микроскопах PrimoStar (Carl Zeiss) и Bresser Bino Researcher (PCE).
Частота каллусообразования в питательных средах с двумя разными сочетаниями регуляторов роста получилась выше 80 %. Морфологически полученные каллусные культуры в обеих средах были светло-желтоватого оттенка. Биомасса первичного каллуса, полученная на питательной среде с добавлением 2,4-Д и кинетина, была плотная (рис. 1), первичный каллус на среде с добавлением БАП и НУК отличался легко отделяемой рыхлой структурой (рис. 2).
Выполненная работа подтвердила ранее полученные данные о том, что оптимальным для индукции каллусогенеза для Artemisia vulgaris L. является сочетание регуляторов роста БАП и НУК [9], однако в нашей работе результат получен при меньшей в 3 раза концентрации НУК. Следует также отметить, что сочетание 2,4-Д с другими регуляторами роста, как НУК и цистеин, также индуцирует образование каллуса [10], что также наблюдается при данной работе с формированием достаточно плотной массы каллусов.
Морфологическое исследование клеток полученных каллусов Artemisia vulgaris L. под световым микроскопом показало преобладание клеток округло-яйцевидной формы с ярко выраженным ядром (рис. 3, 4).
Полученные каллусные культуры были отобраны для дальнейшей пересадки на питательную среду МС с разными концентрациями регуляторов роста (2,4-Д, НУК, кинетин, БАП) (табл. 2). В течение одного цикла (21 сут) нами была исследована динамика роста сырой массы каллусов в четырех по-вторностях.
Результаты и обсуждение
Рис. 1. Первичные каллусы Artemisia vulgaris L. на питательной среде с добавлением 2,4-Д и кинетина (на 90-е сут)
Рис. 2. Первичные каллусы Artemisia vulgaris L. на питательной среде с добавлением БАП и НУК (на 90-е сут)
Рис. 3. Клетки первичного каллуса Artemisia vulgaris L., полученного на питательной среде с добавлением 2,4-Д и кинетина (ув. х 400)
4
i %1
Шш/ . т -
Рис. 4. Клетки первичного каллуса Artemisia vulgaris L., полученного на питательной среде с добавлением БАП и НУК (ув. х 400)
Таблица 2
Состав регуляторов роста для получения каллусных культур Artemisia vulgaris L. и учет динамики роста биомассы
Номер каллуса Содержание регуляторов роста, в мг/л Максимальный вес биомассы каллусной культуры в течение цикла, г Разница между первичным и максимальным весом биомассы каллусной культуры, г
2,4-Д Кинетин НУК БАП
1 1 1 1 - 1,0087 0,1678
2 1 - 1 1 1,3092 0,6281
В результате полученных данных построили кривую роста в обоих вариантах использованных питательных сред (рис. 5). На питательной среде с добавлением 2,4-Д, НУК и кинетина максимальное увеличение сырой массы весом в 1,0087 г наблюдалось на 11-е сут после пересадки, разница между первичным показателем и максимальным весом биомассы равнялась 0,1678 г. С 14-х сут культивирования наблюдалось уменьшение биомассы каллуса. На втором варианте питательной среды с добавлением 2,4-Д, БАП и НУК максимальное увеличение сырой массы каллуса в 1,3092 г было достигнуто на 14-е сут после пересадки, и разница между первичным показателем и максимальным весом биомассы равнялась 0,6281 г. С 18-х сут наблюдалось уменьшение биомассы формирующегося каллуса.
В ранних исследованиях также было отмечено увеличение сырой массы каллуса Artemisia vulgaris L. при добавлении в питательную среду БАП в концентрации 1 мг/л, однако при этом прирост биомассы за цикл составил всего 0,278 г [11].
В целом полученные нами каллусные культуры Artemisia vulgaris L. отличались формированием большего веса биомассы и обладали мягкой легко отделяемой рыхлой структурой бледно-желтого цвета (рис. 6, 7).
1,4
О 4-.-.-.-.-.-.-.—
1 4 6 8 11 14 18 21
Продолжительность культивирования, сут
Рис. 5. Кривая роста каллуса Artemisia vulgaris L. на питательной среде МС с добавлением 2,4-Д, НУК и кинетина (сплошная линия) и 2,4-Д, БАП и НУК (прерывистая линия)
Рис. 6. Каллусная культура Artemisia vulgaris L. на питательной среде с добавлением 2,4-Д, НУК и кинетина
Рис. 7. Каллусная культура Artemisia vulgaris L. на питательной среде с добавлением 2,4-Д, БАП и НУК
Заключение
Получены первичные каллусы Artemisia vulgaris L. из листовых экс-плантов, взятых из стерильных растений, культивированных на основе семян дикорастущего растения. Оптимизирован гормональный состав питательной среды для получения и дальнейшего введения каллусной культуры Artemisia vulgaris L. Полученные первичные каллусы на питательной среде с добавлением 2,4-дихлорфеноксиуксусной кислоты и кинетина были плотными с желтоватым оттенком. На питательной среде с добавлением 6-бензиламинопу-рина и а-нафтилуксусной кислоты первичные каллусы получились рыхлыми с желтоватым оттенком. В полученных первичных каллусах преобладали клетки округло-яйцевидной формы с ярко выраженным ядром.
Изучена динамика роста биомассы каллусной культуры Artemisia vulgaris L. Установлено, что при культивировании на питательной среде с добавлением 2,4-Д, а-нафтилуксусной кислоты и 6-бензиламинопурина наблюда-
ется 14-суточный цикл развития каллуса Artemisia vulgaris L. и при этом его биомасса в 3 раза превышает биомассу каллуса, получаемого на питательной среде с 2,4-дихлорфеноксиуксусной кислотой, кинетином и а-нафтилуксус-ной кислотой при цикле развития в течение 11 сут.
Библиографический список
1. Красноборов, И. М. Artemisia L. - Полынь / И. М. Красноборов // Флора Сибири : в 14 т. / под ред. Л. И. Малышева, Г. А. Пешковой. - Новосибирск : Наука, 1997. - Т. 13. - 472 с.
2. Захарова, В. И. Разнообразие растительного мира Якутии / В. И. Захарова. -Новосибирск : Изд-во СО РАН, 2005. - 328 с.
3. Данилова, Н. С. Краткий обзор полыней центральной Якутии / Н. С. Данилова, С. З. Борисова, Н. С. Иванова // Вестник Северо-Восточного федерального университета имени М. К. Аммосова. - 2011. - Т. 8, № 1. - С. 11-17.
4. Иванова, Н. С. Декоративные растения Якутии : атлас-определитель / Н. С. Иванова, Н. С. Данилова, С. З. Борисова. - Москва : Фитон+, 2012. - 248 с.
5. Фитохимическая характеристика полыни обыкновенной Artemisia vulgaris L., произрастающей на территории Бурятии / С. В. Жигжитжапова, Т. Э. Соктоева, Л. Д. Раднаева, В. В. Тараскин, Б.-Ц. Б. Намзалов // Вестник Бурятского государственного университета. - 2012. - № S3. - С. 74-77.
6. Govindaraj, S. Mass propagation and essential oil analysis of Artemisia vulgaris / S. Govindaraj, B. D. Kumari, P. L. Cioni, G. Flamini // Journal of bioscience and bioengineering. - 2008. - Vol. 105 (3). - P. 176-183.
7. Федоров, А. А. Химический состав уерэ ото (Artemisia vulgaris L.) как пищевого и лекарственного растения Якутии / А. А. Федоров, М. И. Ефремова, Н. К. Чи-рикова // Фундаментальные исследования. - 2014. - № 11-9. - С. 1981-1983.
8. Бутенко, Р. Г. Биология клеток высших растений in vitro и биотехнологии на их основе : учеб. пособие / Р. Г. Бутенко. - Москва : ФБК-ПРЕСС, 1989. - 160 с.
9. Borzabad, R. In vitro Plant Regeneration from Leaf Explants of Artemisia vulgaris L. - A Medicinal Herb / R. Borzabad, M. Sudarshana, M. Niranjan // Modern Applied Science. - 2010. - Vol. 4 (9). - DOI 10.5539/mas.v4n9p130.
10. Kumar, S. Effect of Amino Acids and Growth Regulators on Indirect Organogenesis in Artemisia vulgaris L. / S. Kumar, B. Kumari // Asian Journal of Biotechnology. -2010. - Vol. 2 (1). - P. 37-45. - DOI 10.3923/ajbkr.2010.37.45.
11. Hedayati, N. Survey of Callogenesis by Two Artemisia Species (Artemisia Vulgaris and Artemisia Deracunculus) / N. Hedayati, R. Hosseini, B. Hedayati // Iranian Journal of Pharmaceutical Research. - 2013. - Vol. 12. - P. 684.
References
1. Krasnoborov I. M. Flora Sibiri: v 14 t. [Siberian flora: in 14 volumes]. Novosibirsk: Nauka, 1997, vol. 13, 472 p. [In Russian]
2. Zakharova V. I. Raznoobrazie rastitel'nogo mira Yakutii [The diversity of the plant world of Yakutia]. Novosibirsk: Izd-vo SO RAN, 2005, 328 p. [In Russian]
3. Danilova N. S., Borisova S. Z., Ivanova N. S. Vestnik Severo-Vostochnogofederal'nogo universiteta imeni M. K. Ammosova [Bulletin of Noeth-Eastern Federal University in Yakutsk]. 2011, vol. 8, no. 1, pp. 11-17. [In Russian]
4. Ivanova N. S., Danilova N. S., Borisova S. Z. Dekorativnye rasteniya Yakutii: atlas-opredelitel' [Ornamental plants of Yakutia: atlas-determinant]. Moscow: Fiton+, 2012, 248 p. [In Russian]
5. Zhigzhitzhapova S. V., Soktoeva T. E., Radnaeva L. D., Taraskin V. V., Namza-lov B.-Ts. B. VestnikBuryatskogo gosudarstvennogo universiteta [Bulletin of Banzarov Buryat State University]. 2012, no. S3, pp. 74-77. [In Russian]
6. Govindaraj S., Kumari B. D., Cioni P. L., Flamini G. Journal of bioscience and bioengineering. 2008, vol. 105 (3), pp. 176-183.
7. Fedorov A. A., Efremova M. I., Chirikova N. K. Fundamental'nye issledovaniya [Fundamental research]. 2014, no. 11-9, pp. 1981-1983. [In Russian]
8. Butenko R. G. Biologiya kletok vysshikh rasteniy in vitro i biotekhnologii na ikh os-nove: ucheb. posobie [Biology of cells of higher plants in vitro and biotechnology based on them: teaching aid]. Moscow: FBK-PRESS, 1989, 160 p. [In Russian]
9. Borzabad R., Sudarshana M., Niranjan M. Modern Applied Science. 2010, vol. 4 (9). DOI 10.5539/mas.v4n9p130.
10. Kumar S., Kumari B. Asian Journal of Biotechnology. 2010, vol. 2 (1), pp. 37-45. DOI 10.3923/ajbkr.2010.37.45.
11. Hedayati N., Hosseini R., Hedayati B. Iranian Journal of Pharmaceutical Research. 2013, vol. 12, p. 684.
Кучарова Елена Валериевна ведущий инженер, учебно-научная лаборатория молекулярно-генетических и клеточных технологий, Институт естественных наук, Северо-Восточный федеральный университет имени М. К. Аммосова (Россия, г. Якутск, ул. Кулаковского, 48)
E-mail: oleneek@mail.ru
Охлопкова Жанна Михайловна кандидат биологических наук, доцент, биологическое отделение, Институт естественных наук, Северо-Восточный федеральный университет имени М. К. Аммосова (Россия, г. Якутск, ул. Кулаковского, 48)
E-mail: zhm.okhlopkova@s-vfu.ru
Антонова Елена Евгеньевна студентка, Северо-Восточный федеральный университет имени М. К. Аммосова (Россия, г. Якутск, ул. Кулаковского, 48)
E-mail: jelena26.jl@gmail.com
Kucharova Elena Valerievna Leading engineer, Educational-Scientific Laboratory of Molecular Genetic and Cellular Technologies, Institute of Natural Sciences, North-Eastern Federal University in Yakutsk (48, Kulakovskogo street, Yakutsk, Russia)
Okhlopkova Zhanna Mikhaylovna Candidate of biological sciences, associate professor, biological department, Institute of Natural Sciences, North-Eastern Federal University in Yakutsk (48, Kulakovskogo street, Yakutsk, Russia)
Antonova Elena Evgen'evna Student, North-Eastern Federal University in Yakutsk (48, Kulakovskogo street, Yakutsk, Russia)
Образец цитирования:
Кучарова, Е. В. Получение каллусных культур полыни обыкновенной (Artemisia vulgaris L.) / Е. В. Кучарова, Ж. М. Охлопкова, Е. Е. Антонова // Известия высших учебных заведений. Поволжский регион. Естественные науки. - 2020. - № 1 (29). - С. 3-11. - DOI 10.21685/2307-9150-2020-1-1.
