CC BY
68Сопроводительное письмо должно включать следующий текст:
Настоящим письмом гарантируем, что опубликование научной статьи (название статьи, ФИО авторов) в журнале «Главный врач Юга России» не нарушает ничьих авторских прав. Автор (авторы) передает на неограниченный срок учредителю журнала неисключительные права на использование научной статьи путем размещения полнотекстовых версий в печатной и интернет-версиях журнала.
Автор (авторы) несет ответственность за неправомерное использование в научной статье объектов интеллектуальной собственности, объектов авторского права в полном объеме в соответствии с действующим законодательством РФ. Автор (авторы) подтверждает, что направляемая статья нигде ранее не была опубликована, не направлялась и не будет направляться для опубликования в другие научные издания. Автор (авторы) согласны с тем, что в случае выявления нарушений норм этики научных публикаций после издания статьи к ней может быть применена процедура ретракции.
Автор (авторы) согласен на обработку в соответствии со ст. 6 Федерального закона от 27.07.2006 №152-ФЗ «О персональных данных» своих персональных данных, а именно: фамилия, имя, отчество, ученая степень, ученое звание, должность, место (места) работы и/или обучения, контактная информация по месту работы и/или обучения, в целях опубликования представленной статьи в научном журнале.
Автор (авторы) гарантирует, что материалы направляемой статьи не содержат информацию, составляющую государственную, коммерческую или иную охраняемую законодательством РФ тайну, и несет самостоятельную ответственность за содержание подобной информации в статье. Автор (авторы) согласен с правилами подготовки рукописи к изданию, утвержденными редакцией журнала «Главный врач Юга России», опубликованными и размещенными на официальном сайте журнала.
5. Редакционно-издательские услуги оплачиваются.
6. Направление статьи в редакцию для публикации означает согласие автора с приведенными выше требованиями.
Статьи вы можете отправлять на e-mail: info@akvarel2002ru. Справки по телефону +7 991-366-00-67.
ПЕРСПЕКТИВЫ ПРИМЕНЕНИЯ ПРОБИОТИКОВ
НА ОСНОВЕ S. SALIVARIUS В СТОМАТОЛОГИИ.
ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
Э. М. Джафаров, У. Б. Эдишерашвили, М. Г. Мусаев, Д. В. Стоматов, А. А. Долгалев, Л. А. Бурлакова, Г. С. Шульга, Х. Р. Юсупов
Аннотация. Современные методы лечения заболеваний подвержено более половины взрослого населения. В связи
предусматривают индивидуальный подход в лечении каждо- с этим лечение этих заболеваний требует новых, эффектив-
го пациента. Помимо этого, большой проблемой представ- ных и более биологических подходов. Одним из таких подхо-
ляется развитие устойчивости бактерий к антибиотикам. дов является применение пробиотиков.
Эффективность лечения напрямую зависит от применяемых Ключевые слова: пробиотик, S. salivarius, антибактериаль-
методик. Воспалительным заболеваниям тканей полости рта ная терапия, микробиоценоз.
PROSPECTS FOR THE USE OF PROBIOTICS BASED ON S. SALIVARIUS IN DENTISTRY. LITERATURE REVIEW
E. M. Dzhafarov, U. B. Edisherashvili, M. G. Musaev, D. V. Stoma-tov, A. A. Dolgalev, L. A. Burlakova, G. S. Shulga, Kh. R. Yusupov
Annotation. Modern methods of treating diseases provide for an individual approach to the treatment of each patient. In addition, the development of bacterial resistance to antibiotics is a great problem. The effectiveness of treatment directly depends on the
methods used. More than half of the adult population is affected by inflammatory diseases of the tissues of the oral cavity. In this regard, the treatment of these diseases requires new, effective and more biological approaches. One of these approaches is the use of probiotics.
Keywords: probiotic, S. salivarius, antibacterial therapy, microbiocenosis.
СТОМАТОЛОГИЯ V^äM^IH
АКТУАЛЬНОСТЬ
Бактерии — это преобладающие микроорганизмы в резидентной ми-кробиоте полости рта.Разнообразие видов бактерий в полости рта зависит не только от наличия питательных веществ, но также от способности микроорганизмов выживать в виде биопленки в зависимости от ее местоположения (поверхность зубов, языка и слизистых оболочек). Резидентная микробиота полости рта конкурирует и исключает экзогенные патогены, а также способствует нормальному развитию тканей и иммунной системы [1, 29]. Однако гомеостатический баланс между хозяином и микробными сообществами может быть нарушен многими воздействиями, которые могут привести к развитию заболеваний полости рта [20], таких как кариес, гингивит, пародонтит [24], фаринготонзиллит и др. [10]. Причиной этих заболеваний в основном являются болезнетворные бактерии, обнаруживающиеся в полости рта. Потенциальные патогенные бактерии полости рта способны образовывать биопленку, и такие бактерии включают Streptococcus mutans [37], Schaalia odontolytica [18], Staphylococcus hominis [33, 36] и Enterobacter cloacae [39]. Интерес к применению новых стратегий лечения заболеваний, таких как про-биотики, значительно растет из-за повышения устойчивости к антибиотикам [32]. Микроорганизмы, обнаруженные в пробиотических препаратах, приносят пользу здоровью хозяина путем поддержания или улучшения микробиоты [38]. Потенциально патогенные микроорганизмы попадают в организм через рот или нос, поэтому оральные пробио-тики являются отличным способом первой линии защиты рта и горла. Пероральные пробиотики могут изменять микробиоту полости рта, тем самым участвуя в профилактике или лечении заболеваний полости рта. Они предотвращают образование зубного налета, способствуют здоровью слизистой и зубов и нейтрализуют неприятный запах изо рта [2, 21].
Считается, что бактериальная биопленка влияет на отсутствие эффективности лечения противоми-кробными препаратами, предотвращая проникновение антибиотиков в очаг инфекции [17]. Род стреп-
тококков играет решающую роль в формировании биопленок [22, 27]; будучи одними из первых микроорганизмов, участвующих в колонизации свободных сайтов, также могут влиять на состав бактериального сообщества биопленки ротовой полости [15]. Кроме того, бактериальное сообщество полости рта может влиять на статус здоровья хозяина путем общения с человеческими клетками с помощью небольших сигнальных молекул [19].
МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ
Проведен анализ научной литературы (статьи, серии случаев, систематические обзоры, метаанализы) за период с 2000 по 2020 гг., посвященной применению пробиотиков на основе S. salivarius при лечении воспалительных заболеваний полости рта. Подбор научной литературы проводился по базе данных медицинских публикаций PubMed и ResearchGate, Cochrane Oral Health.
РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЯ
Пробиотический штамм S. salivari-us в настоящее время используется в клинической практике для профилактики различных заболеваний орореспираторной системы человека и считается пионером комменсалов здоровой микробиоты полости рта [26]. Штамм К12 изначально был выбран для борьбы с Streptococcus pyogenes — наиболее важным из бактериальных причин инфекций рото- и носоглотки [26]. S. salivarius K12 продуцирует бактериоцины са-ливарицин А2 и В, относящиеся к группе лантибиотиков [3, 4]. Лан-тибиотики проявляют два механизма действия и в основном обладают широким спектром действия против грамположительных бактерий. Они подавляют синтез пептидогликана и участвуют в образовании пор в ци-топлазматической мембране [31].
Саливарицин взаимодействует с клеткой стенки грамположи-тельных бактерий, оказывая бактерицидный эффект. Ранее было показано, что пероральные про-биотические продукты S. salivarius успешно колонизируют ротовую полость, слюну и глотку человека для производства лантибиотиков сали-варицинов [16, 28, 30]. Есть предварительные отчеты об использовании
S. salivarius K12 в предотвращении бактериальной инфекции верхних дыхательных путей. Вдобавок к этому, оказалось, что S. salivarius обладает иммуномодулирующей активностью защиты хозяина. Для этих функций он в настоящее время используется в качестве терапии против нескольких патогенов, при фарингите, среднем отите, тонзиллите, галитозе и, вероятно, уменьшает трахеит, вирусный фарингит, ринит, грипп, ларингит, острый средний отит и энтерит у детей. Есть также некоторые in vitro и in vivo доказательства его способности противодействовать кандидозу полости рта. S. salivarius обладает врожденной способностью связываться со спинкой языка, и некоторые его штаммы выделяют в слюну обильное количество бактериоцинов, которые могут обеспечить целевой способ удаления патогенных бактерий [7, 25, 35]. Бактериоцин in vivo часто называют основным средством, с помощью которого преимущественно реализуется антимикробный эффект после употребления пробиотиков [9, 12]. Прохождение пробиотиков через полость рта и кишечник повышает выработку бактериоцинов за счет увеличения количества микроорганизмов, входящих в состав микро-биоты хозяина [11]. Чтобы достичь устойчивого высвобождения бак-териоцина, вероятно, необходимо обеспечить устойчивость пробио-тических бактерий [34]. Продукция бактериоцина пробиотическими бактериями имеет решающее значение для ингибирования биопленки, что подтверждается рядом авторов, которые описали регуляторный эффект бактериоцинов в полимикробных биопленках [6, 14].
Штаммы S. salivarius подавляют образование биопленок S. mutans и S. pyogenes [8]. S. mutans считается основным этиологическим агентом кариеса зубов из-за факторов вирулентности, таких как выработка глюкана, кислотоустойчивость, естественная компетентность и образование компактной биопленки, что дает ему определенное преимущество перед другими бактериями полости рта [23].
Hyink et all [16] идентифицировал в S. salivarius K12 термостойкий ингибитор, активный в отношении Enterococcus faecalis ATCC 19433 и Actinomyces naeslundii NCTC 10301,
и термолабильный ингибитор, активный против S. hominis 2203. Frickmann et all [13] узнал, что бесклеточный супернатант S. salivarius K12, в дополнение к уменьшению и предотвращению образования биопленок Staphylococcus epidermidis (ATCC 35984), также влияет на дисперсию уже образованных биопленок. Бесклеточный супернатант штаммов S. salivarius 24SMB и Streptococcus oralis 89a, выделенных из коммерческого препарата, снижал образование биопленок in vitro и был способен уничтожить предварительно сформированную биопленку типичных патогенных респираторных бактерий, таких как S. pyogenes, S. pneumoniae, Moraxella catarrhalis,
Staphylococcus aureus, S. epidermidis и Propionibacterium acnes [5].
В рандомизированном исследовании Suvi Sarlinetal биоразнообразие назомикробиомы глотки и слюны у детей не изменилось у группы, получающей S. Salivarius K12, по сравнению с группой, не получающей препарат. Таким образом, пробиотики не изменили общий состав микробиома и не искоренили нормальный микро-биом носоглотки и слюны у детей. В данном исследовании у детей, получавших пероральный S. salivarius K12, относительное количество S. salivarius в слюнном микробиоме было выше после вмешательства, чем до вмешательства.
ВЫВОДЫ
Таким образом, пробиотические препараты на основе S. salivarius, используемые в комплексном лечении пациентов c заболеваниями полости рта, имеют достаточно много перспектив. S. salivarius как пробиотиче-ский штамм имеет ряд преимуществ: один из самых многочисленных представителей микробиоценоза полости рта, синтезирует антимикробные саливарицины, а также способствует разрушению биопленок и препятствует образованию новых. Это дает препарату неоспоримое преимущество в комплексном лечении различных патологий, в том числе для разрушения биопленок, образующихся на дентальных имплантатах
СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ
1. Allaker R. P., Ian Douglas C. W. Non-conventional therapeutics for oral infections. Virulence. 2015. №6. P. 196-207.
2. Allaker R. P., Stephen A. S. Use of Probiotics and Oral Health // Curr. Oral. Health. Rep. 2017. №4. P. 309-318.
3. Barbour A., Tagg J., Abou-Zied O. K. et al. New insights into the mode of action of the lantibiotic salivaricin B. // Sci Rep. 2016. №6:31749.
4. Barbour A., Wescombe P., Smith L. Evolution of Lantibiotic Salivaricins: New Weapons to Fight Infectious Diseases. Trends Microbiol. 2020. №28. P. 578-593.
5. Probiotics Streptococcus salivarius 24SMB and Streptococcus oralis 89a interfere with biofilm formation of pathogens of the upper respiratory tract / A. Bidossi, R. De Grandi, M. Toscano, M. Bottagisio, E. De Vecchi, M. Gelardi, L. Drago // BMC Infect. Dis. 2018. №18. P. 653.
6. Bucci V., Nadell C. D., Xavier J. B. The evolution of bacteriocin production in bacterial biofilms // Am. Nat. 2011. №178. E162-E173.
7. Safety assessment of the oral cavity probiotic Streptococcus salivarius K12 / J. P. Burton, P. A. Wescombe, C. J. Moore, C. N. Chilcott, J. R. Tagg // Appl. Environ. Microbiol. 2006. №72. P. 3050-3053.
8. Resistance Genes and Genetic Elements Associated with Antibiotic Resistance in Clinical and Commensal Isolates of Streptococcus salivarius / F. Chaffanel, F. Charron-Bourgoin, V. Libante, N. Leblond-Bourget, S. Payot // Appl. Environ. Microbiol. 2015. №81. P.4155-4163.
9. Bacteriocin production as a mechanism for the antiinfective activity of Lactobacillus salivarius UCC118. / S. C. Corr, Y. Li, C. U. Riedel, P. W. O'Toole, C. Hill et al. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2007. №104. P. 7617-7621.
10. Positive clinical outcomes derived from using Streptococcus salivarius K12 to prevent streptococcal pharyngotonsillitis in children: A pilot investigation / F. Di Pierro, M. Colombo, A. Zanvit, A. S. Rottoli // Drug. Healthc. Patient Saf. 2016. №8. P. 77-81.
11. The effect of ingestion of milk supplemented with salivaricin A-producing Streptococcus salivarius on the bacteriocin-like inhibitory activity of streptococcal populations on the tongue / K. P. Dierksen, C. J. Moore, M. Inglis, P. A. Wescombe, J. R. Tagg // FEMS Microbiol. Ecol. 2007. №59. P. 584-591.
12. Fate and efficacy of lacticin 3147-producing Lactococcus lactis in the mammalian gastrointestinal tract / A. Dobson, F. Crispie, M. C. Rea, O. O'Sullivan, P. G. Casey et al. // FEMS Microbiol Ecol. 2011. №76. P. 602-614.
13. Influence of Probiotic Culture Supernatants on In Vitro Biofilm Formation of Staphylococci / H. Frickmann, C. Klenk, P. Warnke, S. Redanz, A. Podbielski // Eur. J. Microbiol. Immunol. 2018. №8. P. 119-127.
14. Enterococcus faecalis bacteriocin EntV inhibits hyphal morphogenesis, biofilm formation, and virulence of Candida albicans / C. E. Graham, M. R. Cruz, D. A. Garsin, M. C. Lorenz // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2017. №114. P. 4507-4512.
15. Microbial diversity in the early in vivo formed dental biofilm / D. Heller, E. J. Helmerhorst, A. C. Gower, W. L. Siqueira, B. J. Paster, F. G. Oppenheim // Appl. Environ. Microbiol. 2016. №82. P. 1881-1888.
16. Salivaricin A2 and the novel lantibiotic salivaricin B are encoded at adjacent loci on a 190-kilobase transmissible megaplasmid in the oral probiotic strain Streptococcus salivarius K12 / O. Hyink, P. A. Wescombe, M. Upton, N. Ragland, J. P. Burton, J. R. Tagg // Appl. Environ. Microbiol. 2007. №73. P. 1107-1113.
17. Kanwar I., Sah A. K., Suresh P. K. Biofilm-mediated antibiotic-resistant oral bacterial infections: Mechanism and combat strategies // Curr. Pharm. Des. 2017. №23. P. 2084-2095.
18. Könönen E., Wade W. G. Actinomyces and related organisms in human infections // Clin. Microbiol. Rev. 2015. №28. P. 419-442.
19. Kreth J., Merritt J., Qi F. Bacterial and host interactions of oral streptococci // DNA Cell Biol. 2009. №28. P. 397-403.
20. Lamont R. J., Koo H., Hajishengallis G. The oral microbiota: Dynamic communities and host interactions // Nat. Rev. Microbiol. 2018. №16. P. 745-759.
21. Mahasneh S. A., Mahasneh A. M. Probiotics: A Promising Role in Dental Health // Dent. J. 2017. №5. P. 26.
22. Mitrakul K., Asvanund Y., Vongsavan K. Prevalence of five biofilm-related oral streptococci species from plaque // J. Clin. Pediatr. Dent. 2011. №36. P. 161-166.
23. Transmission, diversity and virulence factors of Streptococcus mutans genotypes / M. H. Napimoga, J. F. Höfling, M. I. Klein, R. U. Kamiya, R. B. Gonjalves // J. Oral. Sci. 2005. №47. P. 59-64.
24. Nyvad B., Takahashi N. Integrated hypothesis of dental caries and periodontal diseases // J. Oral Microbiol. 2020. №12: 1710953.
25. Strategies to improve the bacteriocin protection provided by lactic acid bacteria / E. F. O'Shea, P. D. Cotter, R. P. Ross, C. Hill // Curr. Opin. Biotechnol. 2013. №24 (2). P. 130-134.
26. Streptococcus salivarius K12 limits group B streptococcus vaginal colonization / K. A. Patras, P. A. Wescombe, B. Rösler, J. D. Hale, J. R. Tagg, K. S. Doran // Infect. Immun. 2015. №83. P. 3438-3444.
27. Oral streptococci biofilm formation on different implant surface topographies / P. P. C. Pita, J. A. Rodrigues, C. Ota-Tsuzuki, T. F. Miato, E. G. Zenobio, G. Giro, L. C. Figueiredo, C. Gonjalves, S. A. Gehrke, A. Cassoni et al. // Biomed. Res. Int. 2015. V. 2015, P. 1-6.
28. Power D. A., Burton J. P., Chilcott C. N. et al. Preliminary investigations of the colonisation of upper respiratory tract tissues of infants using a paediatric formulation of the oral probiotic Streptococcus salivarius K12 // Eur. J. Clin. Microbiol. Infect Dis. 2008. №27. P. 1261-1263.
29. Samaranayake L., Bandara N., Pesee S. Oral Biofilms: What Are They? // Oral Biofilms and Modern Dental Materials / A. C. Ionescu, S. Hahnel, Eds. 1st ed. Cham, Switzerland: Springer, 2021. P. 1-7.
30. Santagati M., Scillato M., Muscaridola N. et al. Colonization, safety, and tolerability study of the Streptococcus salivarius 24SMBc nasal spray for its application in upper respiratory tract infections // Eur. J. Clin. Microbiol. Infect. Dis. 2015. №34. P. 2075-2080.
31. Simons A., Alhanout K., Duval R. E. Bacteriocins, Antimicrobial Peptides from Bacterial Origin: Overview of Their Biology and Their Impact against Multidrug-Resistant Bacteria // Microorganisms. 2020. №8. P. 639.
СТОМАТОЛОГИЯ Ч^ЗМ^Д
32. Assessing worldwide research activity on probiotics in pediatrics using Scopus database: 1994-2014 / W. M. Sweileh, N. Y. Shraim, S. W. Al-Jabi, A. F. Sawalha, B. Rahhal, R. A. Khayyat, S. H. Zyoud // World Allergy Organ. J. 2016. №9. P.1-12.
33. Szczuka E., Telega K., Kaznowski A. Biofilm formation by Staphylococcus hominis strains isolated from human clinical specimens // Folia Microbiol. 2015. №60 (1). P. 1-5.
34. Tagg J. R., Dajani A. S., Wannamaker L. W. Bacteriocins of gram-positive bacteria // Bacteriol. Rev. 1976. №40. P. 722-756.
35. Streptococcal bacteriocins and the case for Streptococcus salivarius as model oral probiotics / P. A. Wescombe, N. C. Heng, J. P. Burton, C. N. Chilcott, J. R. Tagg // Future Microbiol. 2009. №4. P. 819-835.
36. Novel Antimicrobial Cellulose Fleece Inhibits Growth of Human-Derived Biofilm-Forming Staphylococci During the SIRIUS19 Simulated Space Mission / D. Wischer, D. Schneider, A. Poehlein, F. Herrmann, H. Oruc, J. Meinhardt, O. Wagner, R. Ahmed, S. Kharin, N. Novikova et al. //Front. Microbiol. 2020. №11. P. 1626.
37. Inhibition of Streptococcus mutans Biofilm Formation and Virulence by Lactobacillus plantarum K41 Isolated from Traditional Sichuan Pickles / G. Zhang, M. Lu, R. Liu, Y. Tian, V. H. Vu, Y. Li, B. Liu, A. Kushmaro, Y. Li, Q. Sun // Front. Microbiol. 2020. №11. P. 774.
38. Zommiti M., Feuilloley M. G. J., Connil N. Update of Probiotics in Human World: A Nonstop Source of Benefactions till the End of Time // Microorganisms. 2020. №8. P. 1907.
39. Inhibition of Wild Enterobacter cloacae Biofilm Formation by Nanostructured Graphene- and Hexagonal Boron Nitride-Coated Surfaces / E. Zurob, G. Dennett, D. Gentil, F. Montero-Silva, U. Gerber, P. Naulin, A. Gomez, R. Fuentes, S. Lascano, T. H. Rodrigues da Cunha et al. // Nanomaterials. 2019. №9. P. 49.
Конфликт интересов: авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов. Для переписки: [email protected], ORCID: https://orcid.org/0000-0002-6352-6750. For correspondence: [email protected], ORCID: https://orcid.org/0000-0002-6352-6750.
АВТОРСКАЯ СПРАВКА
ФГБОУ ВО «Ставропольский государственный медицинский университет» Министерства здравоохранения РФ (СтГМУ), г. Ставрополь Джафаров Эльнур Матлаб оглы — заочный аспирант кафедры стоматологии общей практики и детской стоматологии СтГМУ; e-mail: [email protected], ORCID ID: https://orcid.org/0000-0001-9995-3749.
Эдишерашвили Ушанги Бесикович — заочный аспирант кафедры стоматологии общей практики и детской стоматологии СтГМУ; e-mail: [email protected], ORCID ID: https://orcid.org/0000-0002-1711-1415.
Мусаев Марат Гаджимурадович — заочный аспирант кафедры стоматологии общей практики и детской стоматологии СтГМУ; e-mail: [email protected], ORCID ID: https://orcid.org/0000-0002-0765-0108. Шульга Галина Сергеевна — студентка 4 курса стоматологического факультета СтГМУ, e-mail: [email protected], ORCID: https://orcid.org/0000-0003-2328-6948. Стоматов Дмитрий Владимирович — кандидат медицинских наук, доцент кафедры челюстно-лицевой хирургии
ФГБОУ ВО «Пензенский государственный университет»; e-mail: [email protected], ORCID ID: https://orcid.org/0000-0002-3271-971X. Долгалев Александр Александрович — доктор медицинских наук, доцент, начальник центра инноваций и трансфера технологий, профессор кафедры стоматологии общей практики и детской стоматологии СтГМУ, профессор кафедры клинической стоматологии с курсом ХС и ЧЛХ Пятигорского медико-фармацевтического института — филиала Волгоградского государственного медицинского университета, г. Ставрополь; e-mail: [email protected], ORCID: https://orcid.org/0000-0002-6352-6750. Бурлакова Любовь Александровна — аспирант кафедры челюстно-лицевой хирургии и хирургической стоматологии, ФГАОУ ВО «Российский университет дружбы народов»; e-mail: [email protected]. Юсупов Халид Русланович — преподаватель кафедры клинической стоматологии с курсом хирургической стоматологии и ЧЛХ Пятигорского медико-фармацевтического института — филиала Волгоградского государственного медицинского университета, г. Пятигорск; e-mail: [email protected], ORCID: 0000-0003-2915-7389.
AUTHOR'S REFERENCE
Stavropol State Medical University of the Ministry of Health of the Russian Federation, Stavropol, Russia
Dzhafarov Elnur Matlabogli — postgraduate student of the Department of General Practice Dentistry and Pediatric Dentistry, Stavropol State Medical University; e-mail: [email protected], ORCID ID: https://orcid.org/0000-0001-9995-3749.
Edisherashvili Ushangi Besikovich — postgraduate student of the Department of General Practice Dentistry and Pediatric Dentistry, Stavropol State Medical University; e-mail: [email protected], ORCID ID: https://orcid.org/0000-0002-1711-1415. Shul'ga Galina Sergeevna — the 4-th grade student of the Faculty of Dentistry of the Stavropol State Medical University; e-mail: [email protected], ORCID: https://orcid.org/0000-0003-2328-6948.
Musaev Marat Gadzhimuradovich — postgraduate student of the Department of General Practice Dentistry and Pediatric Dentistry, Stavropol State Medical University; e-mail: [email protected], ORCID ID: https://orcid.org/0000-0002-0765-010. Stomatov Dmitry Vladimirovich — candidate of Medical Sciences, Associate Professor of the Department of Maxillofacial Surgery of the Penza
State University; e-mail: [email protected], ORCID ID: https://orcid.org/0000-0002-3271-971X. Dolgalev Alexander Alexandrovich — PhD, MD, Head of the Center for Innovation and Technology Transfer, Professor of the Department of General Practice Dentistry and Pediatric Dentistry of the Stavropol State Medical University, Professor of the Department of Clinical Dentistry with a course of OS and MFS of the Pyatigorsk Medical and Pharmaceutical Institute — branch of the Volgograd State Medical University, Stavropol; e-mail: [email protected], ORCID: https://orcid.org/0000-0002-6352-6750. Burlakova Lyubov Aleksandrovna (A.A.) — PhD student, the department of oral and maxillofacial surgery, The Peoples Friendship University of
Russia (RUDN University); e-mail: [email protected]. Yusupov Khalid Ruslanovich — Lecturer at the Department of Clinical Dentistry with a course of OS and MFS of the Pyatigorsk Medical and Pharmaceutical Institute — branch of the Volgograd State Medical University, Pyatigorsk; e-mail: [email protected], ORCID: 0000-0003-2915-7389.
