CC BY
67
ISSN 2412-608Х. МАСЛИЧНЫЕ КУЛЬТУРЫ. Научно-технический бюллетень Всероссийского научно-исследовательского института масличных культур. Вып. 3 (163), 2015
УДК 631.523:633.854.78
ПАСПОРТИЗАЦИЯ НОВЫХ ЛИНИЙ И ГИБРИДОВ ПОДСОЛНЕЧНИКА
СЕЛЕКЦИИ ВНИИМК С ПОМОЩЬЮ БИОХИМИЧЕСКИХ И МОЛЕКУЛЯРНЫХ МАРКЕРОВ
С.З. Гучетль,
кандидат биологических наук
Т.А. Челюстникова,
старший научный сотрудник
Т.С. Антонова,
доктор биологических наук
ФГБНУ ВНИИМК
Россия, 350038, г. Краснодар, ул. им. Филатова, д. 17 E-mail: saida. [email protected]
Для цитирования: Гучетль С.З., Челюстникова Т.А., Антонова Т.С. Паспортизация новых линий и гибридов подсолнечника селекции ВНИИМК с помощью биохимических и молекулярных маркеров // Масличные культуры. Научно-технический бюллетень Всероссийского научно-исследовательского института масличных культур. - 2015. - Вып. 3 (163). - С. 31-37.
Ключевые слова: подсолнечник, паспортизация, SSR-маркеры, изоферментные локусы.
Паспортизация новых перспективных линий и гибридов подсолнечника по изоферментным маркерам и молекулярным микросателлитным локу-сам ДНК является важным инструментом для защиты прав селекционеров. Целью данной работы была паспортизация 12 линий и четырех гибридов подсолнечника селекции ВНИИМК. Для характеристики селекционного материала использовали методы анализа изоферментов и полиме-разной цепной реакции амплификации ДНК. С использованием пяти изоферментных и восьми SSR-локусов были составлены биохимические и молекулярно-генетические паспорта. По сравнению с группами линий ВНИИМК, изученными в предыдущие годы, уникальность набора новых линий, выявляемая методом анализа вариабельности изоферментных систем, стала меньше. Анализ биохимических характеристик 12 линий показал, что они группируются в восемь групп, отличающихся друг от друга. Гибридные комбинации обладали уникальными изоферментными спектрами. Уникальность линий и гибридов, полученная при помощи анализа изоферментных систем, составила 75 %. При анализе SSR-локусов выявлена индивидуальность аллельного состава каждой линии
и гибрида, за исключением линий ВК1 -ими А и ВК1 -ими Б, которые являются стерильным и фертильным аналогами. Уникальность линий и гибридов, полученная при помощи микросател-литных локусов, составила 93 %. Установлено, что полиморфными и информативными для данной группы образцов являются четыре изофер-ментные системы: эстераза, малатдегидрогеназа, 6-фосфо-глюконатдегидрогеназа, глюкозофосфа-тизомераза, и пять микросателлитных локусов: ORS509, ORS 595, ORS1144, ORS1796, ORS 1036. Среднее число аллелей на локус для них составило 2.
UDC 631.523:633.854.78
Certification of new sunflower lines and hybrids of VNIIMK breeding by means of biochemical and molecular markers. Guchetl S.Z., candidate of biology Tchelustnikova T.A., senior researcher Antonova T.S., doctor of biology
FGBNU VNIIMK
17, Filatova str., Krasnodar, 350038, Russia E-mail: [email protected]
Key words: sunflower, identification, SSR-markers, isozymes loci.
Certification of new promising sunflower lines and hybrids on isozyme markers and molecular microsatellite loci is an important method of breeders' rights protection. The purpose of this work was to certify 12 lines and four hybrids of sunflower of VNIIMK breeding. To characterize the breeding material there were used methods of isozyme analysis and polymerase chain reaction of DNA amplification. Using five isozyme and eight SSR-loci, biochemical and molecular-genetic passports were done. A set of the new lines revealed by analysis of variability of the isozyme systems became a less unique in comparison to sunflower lines of VNIIMK breeding studied in previous years. An analysis of biochemical characteristics of 12 lines showed that they can be united into eight groups differed from one another. The hybrid combinations possessed unique isozyme spectra. Singularity of the lines and hybrids showed by analysis of isozyme systems was 75%. At analyzing of SSR-loci an individuality of allele set for each line and hybrid was determined, except lines VK1-imi A and VK1-imi B being the sterile and fertile analogs. A singularity of the lines and hybrids obtained by means of microsatellite loci was 93%. The polymorphic and informative systems for this group of samples are determined to be four isozyme systems: esterase, malatdehydrogenase, 6-phosporus-gluconatdehydro-genase, glucosephosphatisomerase, and five microsatellite loci: ORS509, ORS 595, ORS1144, ORS1796, and ORS 1036. An average number of alleles for locus for them were 2.
Введение. Паспортизация и идентификация линий, гибридов и сортов сельскохозяйственных культур с помощью биохимических и молекулярных маркеров широко применяется в селекционной практике. Для этих целей в качестве генетических маркеров используются и морфологические признаки. Однако количество информативных маркеров такого типа ограничено. К тому же феноти-пические признаки могут иметь сложный характер наследования и часто зависят от условий внешней среды.
Биохимические и молекулярные маркеры не зависят от условий окружающей среды, являются многочисленными, в большинстве своем кодоминантно наследуются и их анализ осуществляется в лабораторных условиях в краткие сроки. С помощью биохимических и молекулярных маркеров в нашей стране и за рубежом производится генетическая паспортизация таких культур, как пшеница [1; 2], соя [3], яблоня [4], рис [5], виноград [6], подсолнечник [7; 8; 9]. Так, во Франции с использованием пяти SSR-маркеров (simple sequence repeat) паспортизировано 286 сортов картофеля с созданием базы данных, заключающей в себе аллельный состав каждого сорта [10]. Семьдесят восемь SSR-маркеров были отобраны и использованы для оценки генетической изменчивости среди набора 124 инбред-ных линий подсолнечника [11]. Согласно исследованиям Imerovski с соавторами, ДНК-локусы, ассоциированные с селекционно-ценными признаками, также являются эффективными для идентификации генотипов подсолнечника [8].
Паспортизация образцов, линий и гибридов подсолнечника селекции ВНИИМК при помощи изоферментных систем, RAPD и SSR-производных амплифициро-ванных фрагментов ДНК проводится с середины 90-х годов прошлого века [12; 13; 14; 15].
Целью данной работы была характеристика районированных и перспективных линий и гибридов подсолнечника селек-
ции ВНИИМК по биохимическим - изо-ферментным маркерам и молекулярным -микросателлитным локусам ДНК.
Материалы и методы. Материалом для исследования служили 12 линий и четыре гибрида коллекции подсолнечника ВНИИМК (табл. 1, 2). Для определения однородности генотипов отбирали по 3-5 индивидуальных растений каждого образца.
Изоферменты экстрагировали гомогенизацией части семядоли сухой семянки в 20 мкл 0,1 М трис-НС1 буфера с добавлением 0,1 %-ного поливинилпирролидона. Электрофорез выполняли в 12 %-ном крахмальном геле с добавлением 2 % сахарозы. Для электрофоретического разделения изоферментов использовали две буферные системы, составленные по методикам, предложенным СаМу et а1. [16]. После электрофореза гелевая пластина разрезалась тонкой нихромовой нитью на 5-6 срезов. Выявление зон энзиматиче-ской активности проводилось окрашиванием по стандартным прописям Vallejos [17]. Исследовали пять изоферментных систем, описанных ранее в работе Туркав с соавторами [15].
Для проведения ПЦР (полимеразной цепной реакции амплификации) геномную ДНК выделяли из семядольных листьев 5-7-днев-ных этиолированных проростков подсолнечника с помощью модифицированного метода Saghai-Maroof et а1. [18] с использованием СТАВ буфера. Для проведения ПЦР использовали 25 мкл реакционной смеси следующего состава: 67 мМ трис-НС1, рН 8,8; 16,6 мМ сульфата аммония; 1,5-3 мМ М§СЬ; 0,01 % Tween 20; по 0,2 мМ дезок-сирибонуклеозидфосфатов; по 10 пМ праймеров; 10 нг матричной ДНК и 1 ед. рекомбинантной термостабильной ДНК полимеразы (Сибэнзим, Москва). Для амплификации применяли термоциклер 81000™ (ВюЯаё, США). Условия амплификации: начальная денатурация при 96 оС в течение 2 мин; затем 30 циклов при соблюдении температурно-временного режима: отжиг при 60 оС в течение 40 с,
элонгация - 1 мин при 70 оС, денатурация при 94 оС - 30 с, финальная элонгация -2 мин. Использовали восемь SSR-локусов, наследование которых было установлено исследованиями Челюстниковой [14], Гу-четль с соавторами [13] и Antonova с соавторами [19].
Электрофорез продуктов амплификации проводили в агарозном геле (2 % ага-роза, 1 х ТАЕ-буфер) с использованием камеры для горизонтального электрофореза (SE.2, ДНК-технология, Россия) в течение 1-1,5 часов при силе тока 58 mA и напряжении 90-100 V. Последующее окрашивание осуществляли бромистым этидием. Визуализация результатов электрофореза в ультрафиолетовом свете и их документирование обеспечивались при помощи системы цифровой документации видеоизображения BIO-PRINT (Vilber Lourmat, Франция).
Результаты и обсуждение. По результатам предыдущих работ для характеристики линий и гибридов по биохимическим маркерам были выбраны полиморфные изоферментные системы с примерно равной частотой встречаемости аллозимных вариантов [12; 15]. Это эстераза (EST), ма-латдегидрогеназа (MDH), 6-фосфо-глюконатдегидрогеназа (6PGD), глюкозо-фосфатизомераза (GPI), глутаматдегидро-геназа (GDH). На рисунке 1 представлены энзиматические электрофоретические спектры некоторых изученных образцов.
А.
3 4 5 6 7 8 9 10 И 12 13 14151617 1819 20 2122
12345 678 910111213141516171819 20 2122
В.
Рисунок 1 - Электрофоретические спектры изоферментных систем подсолнечника:
А - глюкозофосфатизомераза (GPI);
Б - малатдегидрогеназа (MDH);
В - эстераза (EST). Расположение на дорожках: 1-3 - ВК 302, 4-6 - ВК 101, 7-9 - RG, 10-12 - Р 96, 13-14 - ВК 551(К), 15-19 - Арсенал, 20-22 - Фактор
Изоферментные спектры контролируются локусами с 2-3 аллелями, которые обозначены как: SS - контролирующий аллозим с наиболее медленной электро-форетической подвижностью, FF - алло-зим с быстрой электрофоретической подвижностью, vFvF - аллозим с наибольшей электрофоретической подвижностью. Обычно гомозиготные генотипы представлены на фореграммах одной фракцией. Исключение составляют образцы подсолнечника с генотипом Mdh -SS, представленные тремя фракциями. Гетерозиготные генотипы, в зависимости от четвертичной структуры фермента, представлены 2-5 фракциями.
Образец считали однородным, если все проанализированные семянки имели идентичный генотип. В случае если образец был неоднородным, то за типичный генотип принимали преобладающий. По всем инбредным линиям и гибридам были составлены изоферментные паспорта (табл. 1, 2).
Количество аллелей для различных локусов варьировало от 1 до 2. Среднее число аллелей на локус составило 1,6 (с учетом мономорфных локусов) и 2 (без учета мономорфных локусов). Анализ биохимических характеристик 12 линий показал, что они группируются в восемь
12345678 910111213141516171819 20 2122
групп, отличающихся друг от друга (табл. 1).
Таблица 1
Изоферментные фенотипы 12 инбредных линий подсолнечника
ВНИИМК, г. Краснодар, 2015 г.
Линия Изоферментный ( генотип
EST MDH GPI PGD GDH
ВК 1ими А FF SS FF SS SS
ВК 1ими Б FF SS FF SS SS
BK 22 ими FF SS FF SS SS
BK 301 FF SS FF FF SS
ВК 930 FF SS FF FF SS
ВА 760 vFvF FF SS FF SS
P 96 FF FF SS FF SS
ВК 302 FF FF FF FF SS
ВК 101 SS SS SS FF SS
RG SS FF FF FF SS
ВК 876 SS SS FF SS SS
ВК 195 SS SS FF SS SS
Таким образом, в некоторые группы попало несколько линий, имеющих сходный генотип по составу изоферментов. Уникальность анализируемой коллекции линий составила 67 %. Столь низкий процент уникальности вызван отчасти тем, что линии ВК 1 ими А и ВК 1 ими Б являются стерильным и фертильным аналогами соответственно, и должны совпадать по всем остальным признакам.
Линии ВК 876 и ВК 195 также обладают сходным спектром изоферментов. Тем не менее, необходимо признать, что по сравнению с группами других линий ВНИИМК, изученных нами в предыдущие годы также методом анализа вариабельности изоферментных систем, процент уникальности новых линий становится меньше. Так, уникальность анализированных по изоферментным локу-сам 18 селекционных инбредных линий подсолнечника коллекции ВНИИМК в 1996 г. составила 78 % [15]. Уникальность 32 линий подсолнечника из той же коллекции, анализированной в 2004 г., составила 75 % [12]. Кроме того, некоторые изоферментные локусы, ранее характеризовавшиеся наличием нескольких аллелей, при изучении новых линий показывают только одно аллельное состояние. В более ранних исследованиях Туркав с соавторами [15] и Гучетль с соавторами
[12] паспортизация селекционного материала выполнялась по полиморфным системам, в состав которых входили эстераза, малатдегидрогеназа, 6-фосфоглюко-натдегидрогеназа, глюкозо-фосфатизомераза, глутаматдегидрогеназа. У изученно-го в 2015 г. набора линий, полиморфизм по глутаматдегидрогеназе выявлен не был. Уменьшение полиморфизма селекционного материала могло произойти либо из-за происхождения ин-бредных линий из одного или небольшого числа источников, либо из-за различной адап-тивной ценности аллель-ных вариантов, приводящей к преобладанию в коллекции одного из аллелей.
Четыре исследованных гибрида имели отличающиеся изоферментные спектры (табл. 2). Совокупный процент уникальности анализированных линий и гибридов составил 75.
Таблица 2
Изоферментные фенотипы четырех гибридов подсолнечника
ВНИИМК, г. Краснодар, 2015 г.
Гибрид Изоферментный фенотип
EST MDH GPI PGD GDH
Имидж FF SS FF SS SS
Арсенал FvF FS FS FF SS
Фактор FS FS FS FF SS
Окси SS SS FF SS SS
Гибриды Фактор и Арсенал гетерозиготны по трем изоферментным локусам -Est, Mdh, Gpi. В силу того, что родительские линии гибридов Имидж (ВК 1 ими и ВК 22 ими) и Окси (ВК 876 и ВК 195) имели идентичные фенотипы, у этих гибридов нет изоферментных локусов в гетерозиготном состоянии. Следовательно, определение уровня гибридности по изоферментным локусам невозможно. Но возможно определение генетической чистоты гибрида, поскольку для этого используются и гомозиготные гены, т.к. при биологическом и механическом засорении гибрида может изменяться спектр любого изофермента.
Изоферментные маркеры в условиях отсутствия роботизированной техники для проведения ПЦР остаются востребованными в силу быстроты их определе-
ния для паспортизации и для определения генетической чистоты коммерческих партий линий и гибридов подсолнечника. Но достичь с помощью только изофермент-ных маркеров 100 %-ной отличимости линий и гибридов не представляется возможным. Необходимо использование ПЦР-производных молекулярно-генети-ческих маркеров и оптимизация их количества. В предыдущих работах было идентифицировано 17 инбредных линий коллекции ВНИИМК при помощи 10 SSR-локусов. Использование данных ло-кусов позволило отличить генотипы друг от друга в 100 % случаев [19]. Использование трёх SSR и трёх SCAR-локусов для генотипирования коллекции 32 отечественных селекционных образцов подсолнечника позволило идентифицировать образцы лишь в 59 % случаев [13].
В результате анализа одиннадцати линий и четырех гибридов подсолнечника по восьми SSR-локусам были получены специфические и хорошо воспроизводимые фрагменты ДНК. Для каждого образца определены индивидуальные SSR-спектры, различающиеся числом ампли-конов и их размерами на электрофоре-граммах (рис. 2).
_ ш
Арсенал ВК 301 ВК1А ВК1Б Имидж ВК 122 M
Для обозначения аллельных вариантов использовали количество пар нуклеотид-ных оснований (пн) фрагмента ДНК. Гетерозиготные спектры, т.е. спектры, в которых присутствовали фракции двух разных аллелей, в таблицах обозначены двумя числами, разделенными косой чертой (/). При анализе электрофоретических спектров линий выявлена индивидуальность аллельного состава каждой из них, за исключением линий ВК 1 А ими и ВК 1 Б ими, которые, как было отмечено выше, являются стерильным и фертиль-ным аналогами (табл. 3). Процент уникальности анализированной группы линий составил 91.
Четыре исследованных гибрида имели отличающиеся по аллельному составу микросателлитных локусов генотипы (табл. 4).
Таблица 4
Аллельные состояния микросателлитных локусов четырех гибридов подсолнечника
Рисунок 2 - Электрофоретические спектры продуктов амплификации ДНК у линий и гибридов подсолнечника по локусу ORS 1796.
М - маркер молекулярного веса 100 пн
Количество аллелей для различных локусов варьировало от 1 до 2. Среднее число аллелей на локус составило 1,6 (с учетом мономорфных локусов) и 2 (без учета мономорфных локусов). Эти показатели совпадают с полученными ранее для других линий и гибридов подсолнечника [14; 19]. Три локуса не показали полиморфизма: IUB-6, ORS 553, RTS29. Остальные пять локусов показали по два аллельных состояния (табл. 3, 4).
Генотип SSR-локус
ORS 509 ORS 595 IUB-6 ORS 1144 ORS 1796 ORS 553 RTS 29 ORS 1036
Фактор 195**/ 220 100* 350 136/ 177 157 135 320 245
Окси 195 127 350 136/ 177 157 135 320 245
Арсенал 220 127 350 136/ 177 232 135 320 245
Имидж 195/ 220 127 350 136/ 177 157/2 32 135 320/ 330 245/25 5
* - количество пар нуклеотидных оснований (пн) аллеля гомозиготного SSR-локуса
** - количество пар нуклеотидных оснований (пн) аллелей SSR гетерозиготного локуса_
Таблица 3
Аллельные состояния микросателлитных локусов 11 линий подсолнечника
SSR -локус
Генотип ORS ORS IUB-6 ORS ORS ORS RTS 29 ORS
509 595 1144 1796 553 1036
ВК 302 195* 100 350 177 157 135 320 245
ВК 101 220 127 350 136 157 135 320 245
ВК 876 195 127 350 136 157 135 320 245
ВК 195 195 127 350 177 157 135 320 245
Р 96 220 127 350 177 157 135 320 245
ВК 930 220 127 350 177 232 135 320 255
RG 8 220 127 350 136 232 135 320 255
ВК 301 220 127 350 177 232 135 320 245
ВК 1 А ими 220 127 350 136 157 135 320 245
ВК 1 Б ими 220 127 350 136 157 135 320 245
ВК 22 195 127 350 177 232 135 330 255
* - количество пар нуклеотидных оснований (пн) аллеля
SSR-локуса
Для гибрида Фактор характерно гетерозиготное состояние локусов ORS 509 и ORS 1144. Хотя родительские формы гибрида Фактор (линии ВК 101 и ВК 302) обладали отличающимися аллельными вариантами по локусу ORS 595, но в силу доминирования аллеля 100 пн у линии ВК 302 гибрид имеет по данному локусу лишь одно аллельное состояние - 100 пн. Гибриды Окси и Арсенал гетерозиготны по локусу ORS 1144. Гибрид Имидж обладал наибольшим количеством локусов в гетерозиготном состоянии: ORS 509, ORS 1144, ORS 1796, RTS 29 и ORS 1036. Для гибридов Имидж и Окси, у которых не было изоферментных локусов в гетерозиготном состоянии, выявлены SSR-локусы, по которым возможно определение уровня гибридности. Совокупный процент уникальности анализированных линий и гибридов составил 93.
Таким образом, с использованием пяти изоферментных и восьми SSR-локусов были составлены биохимические и моле-кулярно-генетические паспорта и установлена уникальность каждой инбредной линии (за исключением линий-аналогов) и гибридной комбинации. Процент уникальности линий, выявленный при помощи анализа изоферментных систем, составил 67, а при помощи микросател-литных локусов - 91. Совокупный процент уникальности линий и гибридов, выявленный при помощи анализа изо-ферментных систем, составил 75, при помощи микросателлитных локусов - 93. Установлено, что полиморфными и информативными для данной группы образцов являются четыре изоферментные системы: эстераза, малатдегидрогеназа, 6-фосфоглюконатдегидрогеназа, глюкозо-фосфатизомераза и пять микросателлит-ных локусов: ORS509, ORS 595, ORS1144, ORS1796, ORS 1036.
Список литературы
1. Вдовиченко Л.Д., Глазко В.И. Генетическая паспортизация сортов пшеницы с использованием ISSR-PCR маркеров // Сельскохозяйственная биология. - 2007. - № 3 . - С. 33-37.
2. Бобошина И.В., Боронникова С.В. Идентификация перспективных для Урала сортов пшеницы мягкой с использованием межмикросател-
литного анализа полиморфизма ДНК // Фундаментальные исследования. - 2013. - № 6. - С. 92-97.
3. Рамазаноеа С.А. Идентификация генотипов сои разного происхождения с использованием полиморфизма девяти микросателлитных локусов ДНК // Сб. статей 2-й междунар. конф. по сое: Современные проблемы селекции и технологии возделывания сои, Краснодар, 9-10 сентября. -2008. - С. 129-136.
4. Супрун И.И., Токмаков С.В., Малюченко О.П., Ушакова Я.В., Бабаков А.В. Генотипирование сортов яблони российской селекции с использованием мик-росателлитных маркеров // Известия ТСХА. - 2011.
- Вып. 6. - С. 162-166.
5. Гончарова Ю.К., Иванов А.Н., Князева К.В., Глазко В.И. Эстеразные спектры и адаптивная пластичность сортов риса // Доклады российской академии сельскохозяйственных наук. - 2007. -№ 1. - С. 3-4.
6. Cabezas J.A., Ibáñez J., Lijavetzky D., Vélez D., Bravo G., Rodríguez V. [et al.]. A 48 SNP set for grapevine cultivar identification // Plant Biology. -2011. - № 11. - Р. 153.
7. Саналатий А.В., Солоденко А.Е., Сиволап Ю.М. Идентификация генотипов подсолнечника украинской селекции при помощи SSRP-анализа // Цитология и генетика. - 2006. - Т. 40. - № 4. - С. 31-37.
8. Imerovski I., Dimitrijevic A., Miladinovic D., Dedic D., Jocic S., Miklic V. Molecular profiles of sunflower lines resistant to broomrape (Orobanche cumana Wallr.) // International Symposium on Broomrape (Orobanche spp.) in Sunflower. Chisinau, Republic of Moldova. August 25-27. - 2011. - P. 25.
9. Усатов А.В., Маркин Н.В., Горбаченко Ф.И., Федорова М.А., Тихобаева В.Е., Горбаченко О.Ф., Азарин К.В. SSR-анализ геномной ДНК ЦМС-линий подсолнечника // Масличные культуры. Науч.-тех. бюл. ВНИИМК. - 2011. - № 1 (146147). - С. 15-20.
10. Moisan-Thiery M., Marhadour S., Kerlan M. C., Dessenne N., Perramant M., Gokelaere T., Hingrat Y. Le. Potato cultivar identification using simple sequence repeats markers (SSR) // Potato Research. - 2005. - Vol. 48. - Is 3-4. - P.191-200.
11. Zhang L. S, Le Clerc V., Li S., Zhang D. Establishment of an effective set of simple sequence repeat markers for sunflower variety identification and diversity assessment // Canadian Journal of Botany. - 2005. - 83 (1). - Р. 66-72.
12. Гучетль С.З. Челюстникова Т.А., Рамаза-нова С. А., Антонова Т.С. Молекулярно-генетическая характеристика инбредных линий подсолнечника по изоферментным маркерам и ДНК профилям // Науч.-тех. бюл. ВНИИМК. -2004. - Вып. 2 (131). - С. 42-46.
13. Гучетль С.З., Челюстникова Т.А., Арасла-нова Н.М., Антонова Т.С. SSR и SCAR генотипи-рование коллекции отечественных селекционных образцов подсолнечника, устойчивых и восприимчивых к расе Е Orobanche cumana Wallr. // Масличные культуры. Науч.-тех. бюл. ВНИИМК.
- 2012. - Вып. № 1 (150). - С. 20-26.
14. Челюстникова Т.А. Полиморфизм микро-сателлитных локусов в генотипах культурного и дикорастущего подсолнечника // Масличные культуры. Науч.-тех. бюл. ВНИИМК - 2008. -Вып. 2 (139). - С. 19-23.
15. Туркав С.З., Лоскутов А.В., Губенко Т.П. Оценка генетической чистоты линий и гибридов подсолнечника с помощью изоферментных маркеров // Науч.-тех. бюл. ВНИИМК. - 1996. - Вып. 117. - С. 33-37.
16. Cardy B.S., Stuber C.W., Goodman M.M. Techniques for starch gel electrophoresis of enzymes for maize (Zea mays L.) // Institute of Statist. Mineograph. Series, 1317, North Carolina State Univers. - 1981. - 154 с.
17. Vallejos C.E. Enzyme activity staining // Isozymes in plant genetics and breeding: Part A. -Amsterdam: Elsevier. - 1983. - P. 469-516.
18. Saghai-Maroof M.A., Soliman K.M., Jorgensen R.A., Allard R.W. Ribosomal DNA spacer-length polymorphisms in barley: mendelian inheritance, chromosomal location, and population dynamics // Proc. NAS USA. - 1984. - Vol. 81. - P. 8014-8018.
19. Antonova T.S., Guchetl S.Z., Tchelustnikova T.A., Ramazanova S.A. Development of marker system for identification and certification of sunflower lines and hybrids on the basis of SSR-analysis // Helia. - 2006. - Vol. 29. - № 45. - P. 63-72.
References
1. Vdovichenko L.D., Glazko V.I. Genetitcheskaya pasportizaciya sortov pshenitsy s ispolzovaniem ISSR-PCR markerov // Sel'skochozyaistvennaya biologiya. -2007. - № 3. - S. 33-37.
2. Boboshina I.V., Boronnikova S.V. Identifikatsiya perspektivnyih dlya Urala sortov pshenitsy myagkoy s ispol'zovaniem mejmikrosatellitnogo analiza polimorfizma DNK // Fundamental'nye issledovaniya. -2013. - № 6. - S. 92-97.
3. Ramazanova S.A. Identifikatsiya genotupov soi raznogo proishogdeniya s ispol' zovaniem polimorfizma devjati mikrosatellitnyih lokusov DNK // Sovremennie problemi selekcii i tehnologii vozdelivanija soi. Sb. stateji 2-y megdunarodnoy konferencii po soye, Krasnodar, 9-10 sentjabrja 2008 g. - S. 129-136.
4. Suprun I.I., Tokmakov S.V., Malyuchenko O.P., Ushakova Ya.V., Babakov A.V. Genotipirovanie sortov yabloni rossiyskoy selektsii s ispol'zovaniem mikrosatellitnyh markerov // Izvestiya TSHA. - 2011. -Vyp. 6. - S. 162-166.
5. Goncharova Yu.K., Ivanov A.N., Knyazeva K.V., Glazko V.I. Esteraznye spektry i adaptivnaya plastichnost' sortov risa // Doklady rossiyskoy akademii sel'skohozyaystvennyh nauk. - 2007. - № 1. - S. 3-4.
6. Cabezas J.A., Ibanez J., Lijavetzky D., Velez D., Bravo G., Rodriguez V. [et al.]. A 48 SNP set for grapevine cultivar identification // Plant Biology. -2011. - No 11. - Р. 153.
7. Sanalaty A.V., Solodenko A.E., Sivolap Yu.M. Identifikatsiya genotipov podsolnechnika ukrainskoy
selektsii pri pomoschi SSRP-analiza // Tsitologiya i genetika. - 2006. - T. 40. - № 4. - S. 31-37.
8. Imerovski I., Dimitrijevic A., Miladinovic D, Dedic D., Jocic S., Miklic V. Molecular profiles of sunflower lines resistant to broomrape (Orobanche cumana Wallr.) // Intern. Symp. on Broomrape (Orobanche spp.) in Sunfl., Chisinau, Republic of Moldova, Aug. 25-27, 2011. - P. 25.
9. Usatov A.V., Markin N.V., Gorbachenko F.I., Fedorova M.A., Tihobaeva V.E., Gorbachenko O.F., Azarin K.V. SSR-analiz genomnoy DNK TSMS-liniy podsolnechnika // Maslichnye kul'tury. NTB VNIIMK. - 2011. - № 1 (146-147). - S. 15-20.
10. Moisan-Thiery M., Marhadour S., Kerlan M.C., Dessenne N., Perramant M., Gokelaere T., Hingrat Y.Le. Potato cultivar identification using simple sequence repeats markers (SSR) // Potato Research. - 2005. - Vol. 48. - Is. 3-4. - P. 191-200.
11. Zhang L.S., Le Clerc V., Li S., Zhang D. Establishment of an effective set of simple sequence repeat markers for sunflower variety identification and diversity assessment // Canadian Journal of Botany. - 2005. - V. 83 (1). - P. 66-72.
12. Guchetl' S.Z. Tchelyustnikova T.A., Ramazanova S.A., Antonova T.S. Molekulyarno-geneticheskaya kharakteristika inbrednyh liniy podsolnechnika po izofermentnyim markeram i DNK profilyam // Nauch.-tekh. byul. VNIIMK. - 2004. -Vyp. 2 (131). - S. 42-46.
13. Guchetl' S.Z., Tchelyustnikova T.A., Araslanova N.M., Antonova T.S. SSR i SCAR genotipirovanie kollektsii otechestvennykh selektsionnykh obraztsov podsolnechnika, ustoychivykh i vospriimchivykh k rase E Orobanche cumana Wallr. // Maslichnye kul'tury. NTB VNIIMK. - 2012. - Vyp. 1 (150). - S. 20-26.
14. Tchelyustnikova T.A. Polimorfizm mikrosa-tellitnykh lokusov v genotipakh kul'turnogo i dikoras-tuschego podsolnechnika // Maslichnye kul'tury. Nauch.-tekh. byul. VNIIMK. - 2008. - Vyp. 2 (139). - S. 19-23.
15. Turkav S.Z., Loskutov A.V., Gubenko T.P. Otsenka geneticheskoy chistoty liniy i gibridov podsolnechnika s pomosch'yu izofermentnykh markerov // Nauch.-tekh. byul. VNIIMK. - 1996. -Vyp. 117. - S. 33-37.
16. Cardy B.S., Stuber C.W., Goodman M.M. Techniques for starch gel electrophoresis of enzymes for maize (Zea mays L.) // Institute of Statist. Mineograph. - Series 1317. - North Carolina State Univers. - 1981. - 154 p.
17. Vallejos C.E. Enzyme activity staining // Isozymes in plant genetics and breeding: Part A. -Amsterdam: Elsevier. - 1983. - P. 469-516.
18. Saghai-Maroof M.A., Soliman K.M., Jorgensen R.A., Allard R.W. Ribosomal DNA spacer-length polymorphisms in barley: mendelian inheritance, chromosomal location, and population dynamics // Proc. NAS USA. - 1984. - Vol. 81. - P. 8014-8018.
19. Antonova T.S., Guchetl S.Z., Tchelustnikova T.A., Ramazanova S.A. Development of marker system for identification and certification of sunflower lines and hybrids on the basis of SSR-analysis // Helia. - 2006. - Vol. 29. - № 45. - P. 63-72.
