Паразитозы грызунов и мероприятия, направленные на их предупреждение Текст научной статьи по специальности «Ветеринарные науки»

Kondakova L.V., Mutashvily L.R., Popov L.B., Rasputin P.G., Klukina E.S. Kirov State Medical Academy. Vyatka State Agricultural Academy.

Summary. One recommended to apply the saprotrophic complex Nostoc commune in combination with sodium azide for disinfection of urban soils.

ПАРАЗИТОЗЫ ГРЫЗУНОВ И МЕРОПРИЯТИЯ, НАПРАВЛЕННЫЕ НА ИХ ПРЕДУПРЕЖДЕНИЕ

Жданова О.Б., Ашихмин С.П., Масленникова О.В., Пестрикова О.В., Козвонин В., Клюкина Е.С., Мутошвили Л.Р.

ГОУ ВПО Кировская государственная медакадемия Росздрава, ФГОУ ВПО Вятская государственная сельскохозяйственная академия

Важное санитарно-эпидемиологическое значение имеют паразитозы как диких, так и лабораторных и декоративных грызунов. При совместном содержании с другими животными возможна инвазия гельминтами, характерными для грызунов и других животных и человека (Конрад 1984, Закариев, 1967, Алтаев 1953), в связи с чем важным аспектом изучения являются антропозоонозы. Нами проводилось изучение гельминтозов у кроликов, нутрий, лабораторных, диких и декоративных грызунов (сем. Muridae, Zapodidae, Myocastoridae). Проводили как исследование фекалий, так и полное гельминтологическое вскрытие. При этом обнаружили различные виды гельминтов. Наиболее широко распространены у различных видов мышей и крыс нематоды и цестоды, а среди последних лидирует карликовый цепень.

Гименолепидоз - гельминтоз человека и некоторых мышевидных грызунов (мышей, крыс, хомяков), распространен повсеместно. Механизм передачи - фекально-оральный. Заражение происходит в основном через грязные игрушки, предметы обихода, продукты питания (при употреблении недостаточно пропеченного хлеба и других мучных изделий, зараженных хрущаком), переносчиками могут быть мухи. Возбудитель может проходить все стадии развития в одном организме человека, мыши или крысы, а также с участием промежуточного хозяина - насекомого (блоха, хрущак и др.). Во внешней среде яйца быстро погибают при высушивании, при высокой температуре, а при комнатной температуре на 3-4-е сутки, при обработке известью, карболовой кислотой в обычных концентрациях яйца погибают через 30 мин. Гименолеписов мы обнаружили при полном гельминтологическом вскрытии у белых мышей вивария и у полевки обыкновенной, пойманной в окрестностях г.Кирова. Паразитов и цистицеркоиды обнаруживали в нижней части тонкого кишечника, при высокой интенсивности инвазии они располагались на большом протяжении. У большинства подопытных и контрольных мышей в стенке тонкого

189

кишечника отмечали изменения, свойственные гименолепидозу, в виде дефектов слизистой, длительная фиксация головок цепня приводят к образованию множественных язвочек, достигающих подслизистого слоя. Развивается гиперемия лимфоидных узелков, изменяется их синтопия. Экстенсивность инвазии (ЭИ) была 60%, интенсивность (ИИ) 8,5 экз.

Ведущее значение в профилактике гименолепидоза принадлежит соблюдению норм личной и общественной гигиены, борьбе с дикими грызунами, мухами, тараканами и блохами. Разработаны методические указания по борьбе с гименолепидозом. Эффективные мероприятия по борьбе с данной инвазией были проведены среди населения г. Кирова по аналогии с таковыми в Ивано-Франковске /1,2/. Программа включала следующие направления: работу и контроль за соблюдением правил личной гигиены детьми, в частности проводили соревнования исследователей среди детей на тему "Гельминтозы", работу и контроль знаний специалистов ветеринарносанитарной, лечебной сети и педагогов.

Дипилидий обнаруживали также часто, у всех грызунов: у белых и трехцветных мышей ЭИ-20%, ИИ - 3,7 экз; у декоративных и белых крыс ЭИ-10%, ИИ-1,8; у нутрий при гельминтологических исследованиях обнаружены членики в 33,3% случаев.

Трихоцефалез и стронгилоидоз, пассалуроз зарегистрировали у нутрий. Нужно отметить, что первые два вида являются типичными, постоянными видами нутрии, ибо они обнаружены как на родине нутрии, так и в районах акклиматизации. Причиной пассалуроза по всей видимости является то, что ранее в данных помещениях содержали кроликов. Несомненно, что распространенность гельминтозов у грызунов в большей степени связана с условиями кормления и содержания. Также необходимо отметить, что на ЭИ и ИИ влияют вид и способ введения воды, снабжение кормами, технология содержания, контакты с другими видами грызунов, способы и сроки дезинфекции, организация карантина и многие другие материальнотехнические детали.

Пизиформный цистицеркоз, стронгилоидоз, пассалуроз обнаруживали у кроликов. Следует отметить, что данные гельминтозы нередко осложняются и утяжеляют течение кокцидиозов у кроликов. Так, например, при исследовании печени кроликов из подворий, где зарегистрированы эймериозы, отмечали увеличение объема (в 2-3 раза) и количества эймериозных узелков (с 20+4 до 450+40) у кроликов, при пизиформном цистицеркозе.

Также были обнаружены: Hydatigera taeniaformis, Hymenolepis diminuta, T. spiralis (у 2 диких серых крыс), Strongiloides mastopotamy.

При исследовании грызунов, наибольшее количество видов гельминтов, мы обнаружили у лабораторных крыс, наименьшее у диких и декоративных.

Учитывая вышесказанное, необходимо больше внимания уделять гельминтозам грызунов, их распространению, лечению и профилактике. Организационно-хозяйственные мероприятия, направленные на предупреждение заболеваний грызунов гельминтозами, заключаются в

190

обеспечении соответствующих условий кормления и содержания. Составлена памятка для работников вивариев, магазинов биостанций владельцев животных, студентов и школьников, в которой указано как обеспечить чистоту вивариев, ограничить использование деревянных клеток.

Рекомендовали проводить своевременную обработку инвентаря дезрастворами (5%-ным растворами хлорной извести или лизола, достаточно эффективен 0,3%-ный раствор азида натрия); навоз обезвреживать биотермически с добавлением 0,3%-ного раствора азида натрия /4/, уничтожающего яйца гельминтов, но в отличие от других дезинфектантов не вызывающего почвенной катастрофы, и проводить своевременную дезинсекцию.

При вводе в виварий или подворье нового поголовья рекомендовали проводить 30-ти дневное карантинирование с 2-кратным

гельминтоовоскопическим исследованием по методам Фюллеборна и Калантарян. Соблюдать принцип - все-пусто; все-занято. Проводить полное гельминтологическое вскрытие всех павших животных. Перед вывозом животных из вивария для проведения исследований на кафедрах необходимо подвергать их паразитологическим обследованиям /3/.

Литература: 1.Кирияк А.П., Герасимчук Л.А., Погорилый Н.П.,

Недоступ Н.А. // Мед. паразитология и паразитарн. болезни. - 2003. - №4 - С. 41-44. 2.Погорельчук Т.Я.,. Олейник В.А., Орлова Н.С., Бешко Н.И., Локтева И.М. // Мед. паразитология и паразитарн. болезни. - 2003. - №3 - С. 37 - 46. 3. Максимова О.А. Результаты исследования качества воздуха в жилых и общественных зданиях за 2007 год. 4.Domracheva L.I., Dabakh E.V., Kondakova

L.V., Varaksina A.I. // Eurasion soil Science 2006. V.39. Р. 91-97.

Parasitoses of rodents and measures aimed to their prevention. Zhdanova O.B., Ashihmin S.P., Maslennikova O.V., Pestrikova O.V., Kozvonin V.A., Klukina E.S., Mutoshvily L.R. Kirov State Medical Academy. Vyatka State Agricultural Academy.

Summary. One represented data on epizootology and recommendations on prophylaxis of parasitoses of rabbits, laboratory, wild and decorative rodents.

191