Российский медицинский журнал. 2017; 23 (1) 27 DOI http://dx.doi.org/10.18821/0869-2106-2017-23-1-27-30_
Клиническая медицина
© КОЛЛЕКТИВ Авторов, 2017 УДК 616.379-008.64-008.9-074-092.9
Микаелян Н.П., Нгуен З.Х., Комаров О.С., Микаелян К.А. ПАРАЛЛЕЛЬНОЕ СРАВНИТЕЛЬНОЕ ИССЛЕДОВАНИЕ МЕТАБОЛИЗМА ЖИРНЫХ КИСЛОТ В ЭРИТРОЦИТАХ И ДРУГИХ ТКАНЯХ ПРИ ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНОМ САХАРНОМ ДИАБЕТЕ
ГБОУ ВПО «Российский национальный исследовательский медицинский университет им. Н.И. Пирогова»
Минздрава России, 117997, г. Москва
♦ Параллельное исследование влияния стрептозотоцинового сахарного диабета (СД) на уровень липидов и состав жирных кислот (ЖК) в крови, в гомогенатах кожи, печени и мышечной ткани в условиях оксидативного стресса показало, что у крыс уже в ранние сроки развития диабета, наряду с гипертриглицеридемией и гиперхолестеринемией, отмечаются значительные изменения в составе ЖК крови и гомогенатов изучаемых тканей, которые сопровождаются перекисным окислением липидов и снижением активности ферментов-антиоксидантов, а также уменьшением степени утилизации глюкозы эритроцитами. При экспериментальном СД значительное повышение уровня насыщенных ЖК, особенно пальмитиновой ЖК, приводит к снижению уровня мононенасыщенных ЖК (за счет олейновой ЖК), что существенно отличается от соответствующего спектра у больных диабетом. Результаты исследования свидетельствуют также о том, что уже на ранних стадиях развития СД изменения в пуле ЖК эритроцитов и гомогенатов печени, кожи и сердечной мышцы аналогичны (с небольшими различиями), и во всех изучаемых тканях нарушение метаболизма ЖК имеет атеросклеротическую направленность.
Ключевые слова: сахарный диабет; перекисное окисление липидов; оксидативный стресс; мононенасыщенные жирные кислоты.
Для цитирования: Микаелян Н.П., Нгуен З.Х., Комаров О.С., Микаелян К.А. Параллельное сравнительное исследование метаболизма жирных кислот в эритроцитах и других тканях при экспериментальном сахарном диабете. Российский медицинский журнал. 2017; 23(1): 27—30. DOI http://dx.doi.org/10.18821/0869-2106-2017-23-1-27-30
Для корреспонденции: Микаелян Нина Погосовна, профессор кафедры биохимии и молекулярной биологии лечебного факультета ГОУ ВПО «РНИМУ им. Н.И. Пирогова», 117997, г. Москва, E-mail: [email protected]
Mikaelyan N.P, Nguen Z.Kh., Komarov O.S., Mikaelyan K.A. THE PARALLEL CoMPARATIVE STuDY oF METABoLISM oF FATTY ACIDS IN ERYTHRoCYTES
and other tissues under experimental diabetes mellitus The N.I. Pirogov Russian national research medical university Minzdrav of Russia, 117997, Moscow, Russian Federation
♦ The parallel study of impact of Streptozotocin diabetes mellitus on level of lipids and content of fatty acids in blood, in ho-mogenates of skin, liver and muscular tissue in conditions of oxidative stress demonstrated that in rats at early period of development of diabetes mellitus alongside with hypertriglyceridimia and hypercholesterolimia, significant alterations are observed in content of fatty acids of blood and homogenates of analyzed tissues. The alterations are accompanied with peroxidation of lipids and decreasing of activity of enzymes-antioxidants and also decreasing of degree of utilization of glucose by erythro-cytes. under experimental diabetes mellitus significant increasing of saturated fatty acids, especially palmitic fatty acid, results in decreasing of level of mono unsaturated fatty acids (at the expense of oleic fatty acids) that significantly differs of corresponding spectrum in patients with diabetes mellitus. The results of study also testify that already at early stages of development of diabetes mellitus alterations in pool of fatty acids of erythrocytes and homogenates of liver, skin and cardiac muscle similar (with slightly differences) and in all analyzed tissues disorders of fatty acids metabolism are characterized by atherosclerotic direction. Keywords: diabetes mellitus; peroxidation of lipids; oxidative stress; mono unsaturated fatty acids
For citation: Mikaelyan N.P., Nguen Z.Kh., Komarov O.S., Mikaelyan K.A. The parallel comparative study of metabolism of fatty acids in erythrocytes and other tissues under experimental diabetes mellitus. Rossiiskii meditsinskii zhurnal (Medical Journal of the Russian Federation, Russian,journal). 2017; 23(1): 27—30. (In Russ.) DOI http://dx.doi.org/10.18821/0869-2107-2016-23-1-27-30 For correspondence: Nina P. Mikaelyan, professor, of chair of biochemistry and molecular biology of medical facultet the N.I. Pirogov Russian national research medical university Minzdrav of Russia, 117997 Moscow, Russian Federation, E-mail: [email protected]
Conflict of interest. The authors declare no conflict of interest. Acknowledgments. The study had no sponsorship.
Received 05.06.16 Accepted 21.06.16
По данным ВОЗ, на сегодняшний день в мире насчитывается 347 млн больных сахарным диабетом (СД). Все чаще СД встречается у детей в младшем школьном и препубертатном возрасте. Это оправдывает необходимость дальнейшего изучения механизмов развития данной патологии, поиска новых решений в диагностике, коррекции и лечении СД [1—3]. Широкое применение высококачественных препаратов инсулина и других саха-роснижающих препаратов, существенно продлевающих жизнь больных, не обеспечивает полной компенсации нарушенного обмена веществ и не предотвращает развитие многочисленных осложнений, среди которых основное место занимают поражения сердечно-сосудистой системы [4—6]. Многочисленные исследования в этой
области свидетельствуют о том, что повреждающее действие гипергликемии на сосудистую стенку опосредуется свободными радикалами. Имеющиеся в литературе данные, полученные при изучении процессов перекисного окисления липидов (ПОЛ) и состояния антиоксидантной системы (АОС) у больных СД, очень противоречивы и касаются лишь некоторых показателей системы ПОЛ — АОС [7]. Многие вопросы, связанные с особенностями нарушения липидного обмена, в том числе обмена жирных кислот (ЖК) в эритроцитах, печени, сердечной мышце и коже у больных СД, остаются нерешенными.
Цель настоящей работы — параллельное сравнительное исследование патогенетических механизмов нарушения метаболизма Жк в эритроцитах и других
Medical Journal of the Russian Federation, Russian Journal. 2017; 23 (1) _DOI http://dx.doi.org/10.18821/0869-2106-2017-23-1-27-30
Clinical medicine
ммоль/л
35i
30-
25"
20-
15-
10-
5- |-1-
0-
Контроль 3 7 14 21 28 35 Срок после инъекции стрептозотоцина, сут
Рис. 1. Динамика концентрации глюкозы после введения стрептозотоцина крысам.
тканях и развития окислительного стресса при СД в эксперименте.
Материал и методы
Эксперименты проведены на 80 крысах-самцах линии Вистар одной возрастной группы (10—14 мес) массой 210—250 г. СД вызывали путем однократного внутрибрюшинного введения 2,5% раствора стрептозотоцина (производство фирмы Sigma) в дозе 60 мг на 1 кг массы тела животного на фоне 24—48-часового голодания. Кровь у животных брали до эксперимента, через 3; 7; 14; 21; 28 и 35 дней после введения стрептозотоцина. контрольным животным вводили эквивалентное количество физиологического раствора.
Об активности процессов ПОЛ в плазме крови, в мембране эритроцитов и гомогенатах печени (ГП), сердечной мышцы и кожи судили по содержанию ТБК-активных продуктов и малонового диальдегида (МДА), для определения концентрации которых использовали метод K. Yagi [8]. Активность каталазы (Кт) в крови определяли по методу М. Королюк и соавт. [9].
Материалом для исследования ЖК служили эритроциты (Эр), гомогенаты мышц сердца, печени и кожи. Экстракцию липидов из гомогенатов проводили по методу J. Folch и соавт. [10], после чего осуществляли гидролиз и метилирование ЖК методом Kenichi Ichihara и Yumeto Fukubayashi [11]. Применяли метод газожидкостной хроматографии с масс-спектрометрией TraceGCUltralTQ 900 (ThermoScientific, США, 2009). Прибор калибровали стандартными смесями метиловых эфиров ЖК фирмы Sigma (США). Обсчет и идентификацию пиков проводили с помощью программно-аппаратного комплекса «Analytica for Windows» с использованием IBM Pentium IV 1800. Программное обеспечение для обработки данных осуществлялось: Xcalibur (Thermo); спектральные библиотеки: Mainlib; Microsoft Excel 2010. Цифровой материал обрабатывали методом вариационной статистики с использованием /-критерия Стьюдента.
Результаты
Исследование уровня глюкозы в крови у крыс показало, что на 3-и сутки после введения стрептозотоцина концентрация глюкозы достоверно увеличилась в 3,2 раза, а в моче — в 5,7 раза по сравнению с контрольной группой животных. в течение последующих дней наблюдения количество глюкозы в крови крыс этой группы оставалось стабильно высоким (рис. 1).
мкмоль/л
3,0
2,5
2,0-
1,5- 1
1,о-
0,5-
0-
Контроль 3 7 14 21 28 35 Срок после инъекции стрептозотоцина, сут
Рис. 2. Концентрация МДА в эритроцитах крыс (М ± SD).
Параллельно с гипергликемией, гиперхолестерине-мией и гипертриглицеридемией в зависимости от длительности времени после введения стрептозотоцина [12] возрастала и концентрация МДА и других ТБК-активных продуктов во всех изучаемых нами тканях, достигая высоких значении на 28-е сутки после введения стрептозотоцина (рис. 2, 3).
Повышение активности ТБК-активных метаболитов было особенно значимым в гомогенатах печени и сердечной ткани на 28-е сутки после введения стрептозотоцина (р < 0,05). Как видно на рис. 3, концентрация ТБК-активных веществ во всех изучаемых тканях на 28-е сутки введения стрептозотоцина возрастает более чем в 2 раза (в печени до 0,254 ± 0,012 нмоль/мг при 0,123 ± 0,001 нмоль/мг в контроле и в коже до 0,141 ± 0,002 нмоль/мг по сравнению с контрольным уровнем 0,062 ± 0,003 нмоль/мг).
Наряду с увеличением интенсивности свободнора-дикального окисления (СРО) липидов и нарушением структуры и свойств эритроцитарной мембраны при стрептозотоциновом диабете наблюдаются изменения в системе антиоксидантной защиты. так, показано, что в крови у крыс выявлено повышение активности Кт (рис. 4). Возрастание активности Кт в эритроцитах можно назвать компенсаторной реакцией на увеличение интенсивности СРО при экспериментальном СД, в то время когда другие компоненты АОС оказываются значительно чувствительнее к усилению окислительных процессов в клетке, что проявляется снижением актив-
нмоль/мг ткани
3,0-,
□ В кожной ткани
□ В ткани печени Щ В ткани сердца
Контроль 3 7 14 21 28
Срок после инъекции стрептозотоцина, сут
Рис. 3. Концентрация ТБК-активных продуктов в ткани кожи, печени и сердечной мышцы (М ± SD).
Российский медицинский журнал. 2017; 23 (1) 29 DOI http://dx.doi.org/10.18821/0869-2106-2017-23-1-27-30_
Клиническая медицина
ности других исследованных нами ферментов-антиок-сидантов (СОД, ГПО) [12].
При определении состава ЖК на 7—10-е сутки после введения стрептозотоцина (табл. 1) установлено, что в сердечной мышце и коже возрастает суммарное содержание НЖК за счет пальмитиновой, стеариновой и арахиновой ЖК. Коэффициент НЖК/ННЖК особенно значительно возрастает через 28 дней после введения препарата. В течение всего периода наблюдения отмечается снижение уровня га-7 и га-9 ЖК. Снижение уровня га-7 (пальмитиновой и пальмитоле-иновой кислот) свидетельствует о возрастании уровня триглицеридов (ТГ). При этом между пальмитиновой кислотой и ТГ отмечается прямая корреляция (г = +0,87), между уровнем глюкозы в крови и пальмитиновой кислоты отмечается также прямая корреляция (г = +0,63). Увеличение концентрации га-9 ЖК связано с увеличением содержания олейновой кислоты. Аналогичная картина отмечается и в других изучаемых нами тканях: на 28-й день наблюдения после введения препарата достоверно повышается уровень всех нЖК, особенно
мкмоль/л
3,0-,
Контроль 3 7 14 21 28 35 Срок после инъекции стрептозотоцина, сут
Рис. 4. Значение активности каталазы в крови у крыс (М ± SD).
значительно возрастают концентрации миристиновой и пальмитиновой кислот. Снижение содержания полиненасыщенных жирных кислот (ПННЖК) га-3 и га-7 в мышечной ткани сопровождается отрицательной корреляцией
Таблица 1
Уровень ЖК в гомогенатах сердечной мышцы и кожи у крыс на 7—10-й день после введения стрептозотоцина
(в % от суммы ЖК; М ± SD)
ЖК
Гомогенаты сердца
контроль
Гомогенаты кожи
контроль
20:5 (ЭПК))
22:6 (ДГК)
18:2 (линолевая)
20:3 (дигомо-у-линоленовая)
20:4 (арахидоновая)
Е НЖК
Е ННЖК
НЖК/ННЖК
Ею3
Ею6
Ею7
Ею9
0,150 ± 0,068 2,716 ± 0,176 16,354 ± 0,237 0,162 ± 0,026 17,980 ± 0,320 42,172 ± 0,61 57,828 ± 0,61 0,730 ± 0,018 3,279 ± 0,362 34,496 ± 0,110 1,385 ± 0,305 18,507 ± 0,330
0,250 ± 0,016 2,874 ± 0,292 20,890 ± 1,057* 0,195 ± 0,009 11,734 ± 0,891* 46,145 ± 1,166 53,855 ± 1,166 0,858 ± 0,042 3,447 ± 0,123* 32,818 ± 2,916 1,213 ± 0,021 16,232 ± 1,045
0,170 ± 0,020 0,853 ± 0,111 34,742 ± 0,040 0,155 ± 0,001 0,462 ± 0,021 28,918 ± 0,996 71,082 ± 0,996 0,407 ± 0,020 1,600 ± 0,025 35,358 ± 0,051 4,191 ± 0,005 29,804 ± 0,293
0,219 ± 0,001 0,620 ± 0,010 34,926 ± 0,680 0,118 ± 0,001 0,206 ± 0,004 32,898 ± 2,030 67,102 ± 2,030 0,491 ± 0,045 1,427 ± 0,203 35,250 ± 0,667 3,099 ± 0,106* 27,238 ± 1,065
Примечание. * — различия достоверны по сравнению с контрольной группой (р < 0,05); НЖК — насыщенные ЖК; ННЖК — ненасыщенные ЖК; Е — сумма. Во всех группах было по 10 животных.
Таблица 2
Уровень ЖК в эритроцитах и гомогенатах печеночной ткани у крыс со стрептозотоциновым диабетом
(в % от суммы ЖК, М ± SD)
ЖК
Эритроциты
контроль
Гомогенаты печени
контроль
20:5 (ЭПК)
22:6 (ДГК)
18:2 (линолевая)
20:3 (дигомо-у-линоленовая)
20:4 (арахидоновая)
Е НЖК
Е ННЖК
НЖК/ННЖК
Ею3
Ею6
Ею7
Ею9
1,003 ± 0,020 4,436 ± 0,511 14,221 ± 0,140
0,30 ± 0,02 13,746 ± 0,479
43.115 ± 1,830
43.116 ± 1,910 1,010
5,67 ± 0,41 28,68 ± 1,35 1,69 ± 0,05 20,983 ± 1,330
1,32 ± 0,03* 4,75 ± 0,23* 13,81 ± 0,49* 0,75 ± 0,21* 11,09 ± 0,091* 49,98 ± 2,12 54,36 ± 0,93
0,91 6,28 ± 0,53* 25,94 ± 0,79* 1,23 ± 0,08* 12,19 ± 0,45
0,270 ± 0,047
4.84 ± 0,83 20,46 ± 0,25 0,38 ± 0,01 19,27 ± 1,08 36,67 ± 2,31 36,67 ± 0,93
1,0
5,49 ± 0,95 34,88 ± 0,91
1.85 ± 0,01 16,31 ± 0,93
0,532 ± 0,44* 5,950 ± 0,080* 21,26 ± 0,27* 0,43 ± 0,09 17,51 ± 0,96 39,94 ± 2,78
39.91 ± 0,87 1,0
6,91 ± 0,05*
38.92 ± 0,66 0,81 ± 0,06* 13,38 ± 0,06
опыт
опыт
опыт
опыт
Примечание. *
— различия достоверны по равнению с контрольной группой (р < 0,05); Е —
сумма.
30 Medical Journal of the Russian Federation, Russian Journal. 2017; 23 (1) _DOI http://dx.doi.org/10.18821/0869-2106-2017-23-1-27-30
Clinical medicine
между уровнем холестерина и семейством ПННЖК га-3 (г = -0,56), а также между уровнем ТГ и ПННЖК га-3 (г = -0,61).
в пуле НЖК максимальное повышение уровня отдельных фракций в эритроцитах (табл. 2) отмечается в опытной группе крыс на 7-е сутки после введения стрептозотоцина: миристиновой (С14:0) кислоты — на 56%, пальмитиновой (С16:0) — на 45,8%, стеариновой (С18:0) — на 24,8% по отношению к контрольной группе. Содержание мононасыщеннх жирных кислот (МНЖК) пальмитоолейновой и миристоолейновой было низким. Образование МНЖК из насыщенных катализируется 9-десатуразой. При ее гиперэкспрессии происходит возрастание уровня пальмитиновой кислоты относительно стеариновой. Свидетельством повышенной активности синтазы ЖК в эритроцитах в опытной группе может являться тот факт, что у крыс этой группы уровень пальмитиновой кислоты снижен на 15,7% (p < 0,05) в сравнении с контролем, а суммарное содержание стеариновой и арахиновой — на 38,3% ф < 0,05). В отличие от других НЖК уровень миристи-новой кислоты в эритроцитах животных опытной группы не снижается, а наоборот, имеет тенденцию к росту (р = 0,2), по-видимому, в связи с тем, что миристиновая ЖК в основном включается в клеточные ТГ [6], что может привести к гипертриглицеридемии. Уровень олей-новой ЖК в Эр и ГП снижается в 1,72 ± 0,09 и 1,2 ± 0,03 раза соответственно ^ < 0,05). Между тем как в Эр, так и в ГП крыс достоверно повышается уровень насыщенной пальмитиновой ЖК и снижается уровень МНЖК (за счет олейновой кислоты). Несмотря на то что концентрация ЭПК и ДГК достоверно повышается, при этом значительно снижается суммарное содержание га-3 ЖК за счет альфа-линолевой кислоты. Сумма га-6 жирных кислот достоверно снижается не только в Эр, но и в ГП. Суммарное содержание ЖК в семействе га-9 в Эр на 7-е сутки после введения стрептозотоцина также достоверно снижается.
Таким образом, при СД в эксперименте уже в ранние сроки развития патологии наряду с гипертриглицериде-мией и гиперхолестеринемией отмечаются значительные изменения в жирнокислотном составе крови и в го-могенатах изучаемых тканей, что сопровождается ПОЛ и снижением активности ферментов-антиоксидантов, а также снижением степени утилизации глюкозы Эр. При экспериментальном СД повышение уровня насыщенной пальмитиновой ЖК приводит к снижению уровня МННЖК (за счет олейновой ЖК), что существенно отличается от соответствующего спектра у больных СД. Полученные результаты исследования убедительно свидетельствуют о том, что уже на ранних стадиях развития СД изменения в пуле ЖК эритроцитов и гомогенатов печени, кожи и сердечной мышцы аналогичные (с небольшими различиями) и что во всех изучаемых тканях нарушение метаболизма ЖК имеет атеросклеротическую направленность.
Финансирование. Исследование не имело спонсорской поддержки.
Конфликт интересов. Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.
ЛИТЕРАТУРА (п.п. 1, 5 — 8, 10—11 см. References)
2. Кроненберг Г.М., Мелмед Ш., Полонски К.С., Ларсен П.Р. Эндокринология по Вильямсу. Сахарный диабет и нарушения углеводного обмена. Перевод с английского. М.: ГЭОТАР-Медиа; 2010.
3. Кураева Т. Л. Метформин в лечении сахарного диабета 2 типа у детей и подростков. Эффективная фармакотерапия. 2011; (26): 28—33.
4. Петунина Н.А., Трухина Л.В., Синицына Е.И., Шестакова М.В. Глюкагон и альфа-клетки — новая терапевтическая мишень в лечении сахарного диабета. Сахарный диабет. 2013; (3): 35—40.
9. Королюк М.А., Иванова Л.И., Майорова И.Г. Метод определения активности каталазы. Лабораторное дело. 1988; (1): 16—9.
12. Микаелян Н.П., Нгуен З.Х., Терентьев А.А. Метаболические нарушения в мембранах эритроцитов и гомогенатах печеночной ткани при сахарном диабете в эксперименте. Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 2015; (2): 154—8.
REFERENCES
1. Inzucchi S.E., Bergenstal R.M., Buse J.B., Diamant M., Ferrannini E., Nauck M. et al. Management of hyperglycemia in type 2 diabetes: a patient-centered approach: position statement of the American Diabetes Association (ADA) and the European Association for the Study of Diabetes (EASD). Diabetes Care. 2012; 35(6): 1364—79.
2. Kronenberg H.M., Melmed Sh., Polonsky K.S., Larsen P.R. Williams Textbook of Endocrinology. 11th ed. Philadelphia: Saunders Elsevier; 2008.
3. Kuraeva T.L. Metformin in the treatment of type 2 diabetes in children and adolescents. effektivnaya farmakoterapiya. 2011; (26): 28—33. (in Russian)
4. Petunina N.A., Trukhina L.V., Sinitsyna E.I., Shestakova M.V. Glucagon and alpha cells -a new therapeutic target in the treatment of diabetes. Sakharnyy diabet. 2013; (3): 35—40. (in Russian)
5. Harris W.S., Miller M., Tighe A.P., Davidson M.H., Schaefer E.J. Omega-3 fatty acids and coronary heart disease risk: clinical and mechanistic perspectives. Atherosclerosis. 2008; 197: 12—24.
6. Ziegler D., Sohr C.G., Nourooz-Zadeh J. Oxidative stress and antioxidant defense in relation to the severity of diabetic polyneuropathy and cardiovascular autonomic neuropathy. Diabetes Care. 2004; 27(9): 2178—83.
7. Rodríguez-Carrizalez A.D., Castellanos-González J.A., Martínez-Romero E.C., Miller-Arrevillaga G., Villa-Hernández D., Hernán-dez-Godínez P.P. et al. Oxidants, antioxidants and mitochondrial function in non-proliferative diabetic retinopathy. J. Diabetes. 2014; 6(2): 167—75.
8. Yagi K. A simple fluorometric assay for lipoperoxide in blood plasma. Biochem. Med. 1976; 15(2): 212—6.
9. Korolyuk M.A., Ivanova L.I., Mayorova I.G. The method for determining the activity of catalase. Laboratornoe delo. 1988; (1): 16—9. (in Russian)
10. Folch J., Lees M., Sloane Stanley G.H. A simple method for the isolation and purification of total lipides from animal tissues. J. Biol. Chem. 1957; 226(1): 497—509.
11. Ichihara K., Fukubayashi Y. Preparation of fatty acid methyl esters for gas-liquid chromatography. J. lipid. Res. 2010; 51(3): 635—40.
12. Mikaelyan N.P., Nguen Z.Kh., Terent'ev A.A. Metabolic disturbances in the membranes of erythrocytes and tissue homogenates of liver in diabetes experimentally. Byulleten' eksperimental'noy biologii i meditsiny. 2015; (2): 154—8. (in Russian)
Поступила 05.06.16 Принята к печати 21.06.16