CC BY
64
УДК 632.935.9
Оздоровление и размножение комплексно-устойчивых сортов винограда
М.С. БАТУКАЕВ, В.М. ДИДИЕВ, А.А. БАТУКАЕВ, М.Г. ШИШХАЕВА e-mail: [email protected]
В настоящее время сложнейшая экологическая обстановка, химическое и инфекционное давление на растения часто превышают возможности их адаптации. Для получения экологически чистой продукции и оздоровления окружающей среды необходимы альтернативные методы защиты растений, например, внедрение в производство оздоровленных от патогенных микроорганизмов и вирусов комплексно-устойчивых сортов.
В Чеченской Республике основным культивируемым сортом винограда является Ркацители. Он поражается, главным образом, милдью и оидиумом, из вирусных заболеваний - мозаикой резухи и скручиванием листьев.
Ущерб от этих заболеваний довольно высок. Скручивание листьев виноградной лозы, например, широко распространено во всех виноградниках мира, к нему восприимчиво множество сортов и подвоев. Во многих странах большое значение придается внедрению интенсивных методов производства высококачественного, оздоровленного от патогенных микроорганизмов и вирусов посадочного материала винограда и разработке новых высокоэффективных способов закладки виноградников.
Особый интерес представляют сорта технического и столового направления, отличающиеся повышенной устойчивостью к болезням (милдью, оидиум, серая гниль, ант-ракноз и др.), низким температурам. Их возделывание выгодно как экономически, так и экологически.
В 2005-2008 гг. нами проведены исследования по получению безвирусных клонов, разработке рациональных агроприемов при клональ-ном микроразмножении посадочного материала комплексно-устойчивых сортов винограда, использованию этих приемов в системе оздоровления и размножения посадочного материала. Использовали комплексно-устойчивые сорта винограда селекции Всероссийского НИИ виноградарства и виноделия имени Я.И. Потапенко, а также украинской и молдавской селекции: Августин, Молдова, Восторг, Мускат итальянский, Ранний Магарача, Подарок Магарача, Виорика.
Исходным материалом служили интенсивно растущие зеленые побеги винограда, которые разрезали на одноглазковые экспланты и далее в ламинарных боксах проводили вычленение меристем.
Получение свободных от вирусов растений основывается на том, что по направлению к верхушке содержание вирусов в больном растении снижается. Апикальная меристема обычно совершенно свободна от них. Собственно апикальная меристема, свободная от вирусов, представляет собой конус активно делящихся клеток высотой 0,2-0,4 мм. Однако собственно меристему бывает трудно вычленить без повреждения, поэтому часто отделяли вместе с ней один-два листовых при-мордия.
Степень приживаемости апикальных меристем на этапе введения в культуру in vitro у группы столовых сортов (Августин, Восторг, Мускат итальянский, Ранний Магарача) в среднем была на уровне 50 %, а у технических (Подарок Магарача, Виорика, Ркацители) - 40-45 %. Наблюдаемая в процессе культивирования гибель апикальных меристем, по-видимому, наступала за счет их повреждения при вычленении.
Прижившиеся апикальные меристемы через месяц после посадки развивались в кластер-побеги длиной 2-3 мм, которые пересажива-
ли на питательную среду с содержанием тех же компонентов в биологические пробирки размером 40x120 мм, где через 45-55 дней образовывались регенеранты длиной 6-10 см. Их черенковали и получали клоны.
Приживаемость кластер-побегов при пересадке была высокой и зависела от сорта - 75 % у Ркацители и 90 % у Молдовы и Муската итальянского. Процент инфицированных побегов был очень низкий, что объясняется стерилизацией апикальных меристем при введении в культуру in vitro и пересадкой растений в стерильных условиях (лами-нар-боксах).
Одним из важнейших и неотъемлемых компонентов питательной среды являются регуляторы роста. Их тщательный подбор и выявление оптимальных концентраций позволяют повысить эффективность метода клонального микроразмножения винограда in vitro. Проведенные опыты показали, что регенерация побегов из изолированных апексов происходила при концентрации 6-бензиламинопурина (6-БАП) более 0,1 и менее 5 мг/л. При добавлении 5 мг/л 6-БАП верхушки сразу начинали чернеть и гибли, а на среде с концентрацией 0,01-0,11 мг/л 6-БАП развивались очень медленно.
Наилучшие результаты были достигнуты на среде с концентрацией 6-БАП 1-2 мг/л. Ее и следует считать оптимальной. Меристематические верхушки при такой концентрации образовывали четко выраженный бурый пробковидный каллус у основания верхушек. Затем развивались листья, конус нарастания у верхушек вытягивался.
На этапе собственно размножения оптимальные концентрации снижаются.
Как правило, пребывание пробирки с эксплантом в культуральном помещении длится 45-50 дней. За это время растеньице вырастает до высоты 100-120 мм, имея 6-8 узлов и такое же количество листочков. Для пересадки в сосуд-пакет на пес-
чаный субстрат использовали только те из них, которые не прекратили рост и имели сравнительно большие листочки.
Через 8-10 дней после посадки сосуд-пакеты периодически раскрывали для адаптации к условиям in vivo. Наличие песчаного субстрата, сохраняющего высокую влагоемкость, позволяло проводить полив добавлением воды или питательного раствора в поддоны. Время пребывания растений в сосуд-пакетах, то есть период адаптации, составлял 5060 дней. Далее растения поступали в тепличный накопитель. Здесь проводился цикл работ, характерный для тепличного ухода за растениями.
Создание маточников из оздоровленного посадочного материала, полученного клональным микрораз-множенеим, с целью ускоренного размножения новых ценных и перспективных сортов винограда мы начали широко внедрять в условиях Чеченской Республики и Республики Дагестан. В перспективе это позволит сократить в четыре раза обработку виноградников пестицидами, без дополнительных капиталовложений повысить продуктивность виноградных насаждений на 3070 %, их долговечность, устойчивость к морозам и засухе и получать экологически чистую продукцию.
На государственные испытания новых сортов уходит обычно 10-15 лет, период обеспечения посадочным материалом производственных насаждений длится 8-10 лет. Использование тканевой культуры сократит срок передачи остродефицитных сортов и клонов винограда в хозяйства в 10 раз (с 20-25 лет до 2-3 лет) и позволит создать маточники высоких производственных категорий, что будет способствовать кардинальной перестройке виноградного питомниководства на принципиально новой основе.
Чеченский государственный университет,
Филиал ФГУ «Россельхозцентр» по Чеченской Республике, Чеченский научно-исследовательский институт сельского хозяйства
УДК 632.937
Паразиты -регуляторы численности златогузок в Таджикистане
А.М. ДАВЛАТОВ, младший научный сотрудник отдела систематики беспозвоночных животных Института зоологии и паразитологии имени Е.Н. Павловского АН Республики Таджикистан e-mail: [email protected]
В плодовых и лесных насаждениях горных районов Таджикистана распространены многочисленные вредители из отряда чешуекрылых - боярышница, непарный шелкопряд, горный кольчатый шелкопряд, яблонная плодожорка и др. Среди них в последние годы серьезный ущерб насаждениям наносит обыкновенная златогузка (Euproctis chrysorrhoea L.), которая при благоприятных условиях может в короткий срок оголить все древесно-кустарниковые растения. Одним из факторов, регулирующих численность вредителя, являются паразиты, которые заражают гусениц златогузки в зимних гнездах.
В январе 2007 г в плодовых и лесных насаждениях юго-западного Таджикистана (Ховалингский район) нами были обнаружены разрушенные зимние гнезда златогузки, в которых живых гусениц не было, а только их пустые шкурки. При обследовании 100 гнезд златогузок в 6-7 обнаруживали по 2-4 взрослых особи Mono-dontomerus aerus Wek - паразита из отряда перепончатокрылых (сем. Chalcididae, подсем. Callimomi-nae). После раскрытия внешней части гнезда, состоящего из листа, на который откладывает яйца вредитель, были обнаружены личинки паразитов в неподвижном состоянии. После раскрытия второй части гнезда, состоящего из белого кокона, найдены белые и черные личинки паразита в 52 обследованных гнездах.
Для выяснения эффективности паразита собрали 1000 гусениц
обыкновенной златогузки E. crysor-rhoea и 100 туркестанской - E. karga-lica Moore, зимние гнезда которой были обнаружены в незначительном количестве. В садки поместили по 100 гусениц обыкновенной златогузки и по 10 - туркестанской и содержали при температуре 18-20 °С с оптимальной влажностью 75-80 %. Наблюдения проводили с 15 января по 27 февраля 2007 г Личинки паразита начали выходить из тела хозяина уже на 3-й день наблюдения - 17 января. Личинки паразита сначала беловатые, ближе к вылету имаго приобретают черный цвет и становятся неподвижными.
В середине февраля 2007 г в каждом садке появились многочисленные личинки и несколько имаго паразита. Оставшиеся в садках гусеницы златогузок день за днем становились все более активными и до конца исследований из них не вывелось ни одного паразита. После завершения исследований и осмотра садков был определен процент зараженности златогузок паразитами. У обыкновенной златогузки зараженность составила 15-55 %, у туркестанской - 10-40 %. Низкие показатели зараженности туркестанской златогузки, по нашему мнению, заключаются в малой численности гусениц этого вредителя в садках.
Опыт повторили в конце декабря 2007 г. В плодовых садах и лесных насаждениях центрального (Гиссар-ский, Файзабадский) и юго-западного (Бальджуанский и Ховалингский) районов Таджикистана были собраны гусеницы вредителей и по той же методике была определена их зараженность. В 2008 г. этот показатель остался прежним. Самый высокий процент зараженности златогузки паразитами достигал 64, самый низкий - 19, у туркестанской златогузки - 10-30. В каждой гусенице развивалась только одна особь паразита.
Таким образом, можно заключить, что в садах и на лесных участках, где не проводится химическая обработка инсектицидами, перепончатокрылые паразиты являются важным природным фактором, регулирующим развитие вредных насекомых.
