CC BY
232
Литература: 1. Руководство по экспериментальному (доклиническому) изучению новых фармакологических веществ//под общей редакцией Р.У. Хабриева, 2 изд., «Медицина», Москва. -2005. 2. Методические указания по гигиенической оценке новых пестицидов//Киев, 1988. 3. Правила
лабораторной практики в Российской Федерации// Приказ министерства здравоохранения Российской Федерации №708н от 23.08.2010г.
Subacute toxicity of aversect forte on rats at subcutaneous administration. Semenova M.V. All-Russian K.I. Skryabin Scientific Research Institute of Helminthology.
Summary. One evaluated the subacute toxicity of aversect forte on rats at subcutaneous administration at dose levels of 2000; 1000; 500 mg/kg of body weight for 7 days. It was not possible to determine the toxic dose; the dose level of 1000 mg/kg appeared to be the threshold dose as while the dose of 500 mg/kg was the no-observable effects dose.
ОВОЦИДНЫЕ СВОЙСТВА БИОГЕННОГО ПРЕПАРАТА «БИНГСТИ»
Серегин М.Ю., Сафиуллин Р.Т.
ВНИИ гельминтологии им. К.И. Скрябина
Введение. Имеющиеся в настоящее время физические, химические и биологические методы подавления жизнеспособности возбудителей гельминтозов в различных объектах внешней среды - почва, сточные воды и их осадки имеют не высокий процент эффективности. Кроме того, применение отмеченных методов связано с риском возникновения нежелательного вторичного загрязнения объекта обеззараживания. Часто эти методы связаны с использованием агрессивных веществ и высоких физических воздействий -радиация, ультрафиолетовое и электромагнитные излучения, представляющие серьезную опасность как для компонентов биоценоза объекта обеззараживания, так и для здоровья самого человека. Таких недостатков лишен метод обеззараживания, основанный на применении биогенного препарата, производимого из ювенильной формы паслена клубненосного (Solanum tuberosum) - препарата «Бингсти» Исходя из состава сока Solanum tuberosum, можно предположить, что вещества препарата оказывают повреждающее воздействие на оболочки яйца, в частности может происходить разрушение триацилглицеролов и фосфолипидов оболочки возбудителя гельминтозов. Все отмеченное подчеркивает актуальность данной проблемы, а изучение овоцидных свойств препарата Бингсти имеет важное прикладное значение.
Материалы и методы. Изначально изучая состав препарата Бингсти определяли содержание алкалоидов, аминокислот, минеральных веществ готовили водно-спиртовой экстракт и использовали методы тонкослойной
471
хроматографии, пламенной фотометрии, объемного титрования обеспечивающие высокую точность результатов анализа химического состава препарата.
Для установления овоцидных свойств препарата Бингсти в разведении 10-6 г/л было проведено культивирование яиц аскарид в термостате при t=370C. При этом использовали две влажные камеры. В первую камеру вносили физраствор и 200 экз. отмытых яиц Ascaris suum (контрольная группа), во вторую влажную камеру вносили раствор, содержащий разведение препарата Бингсти 10-6 г/л и добавили 200 экз. отмытых яиц аскарид. В процессе культивирования пробы периодически аэрировали и наблюдали за развитием зародыша. Жизнеспособность яиц аскарид оценивали через 10, 20 и 30 суток с момента закладки в термостат. Для окончательного заключения об овоцидном действии препарата Бингсти была поставлена биопроба на 20 беспородных мышах самцах, которых разделили на две аналогичные группы по 10 особей в каждой. Животные первой группы получали инвазионные яйца А. suum (контрольная), вторая группа мышей получала яйца аскарид, обработанные раствором, содержащим разведение препарата Бингсти 10-6 г/л. Учет количества мигрирующих личинок аскариды проводили через 8 суток после заражения. Мышей умерщвляли дислокацией шейных позвонков. Учет количества и исследование жизнеспособности мигрирующих личинок аскарид проводили методом Супряги.
Результаты исследований. Данные исследований по изучению состава препарата Бингсти показали, что главное достоинство препарата - ДВ -алкалоид L-соланин - 2,8 мг/л. Общая сумма содержания аминокислот в препарате 5,95 мг/л. Из числа незаменимых - аргинин 1,25 мг/л, лизин - 0,5 мг/л, гистидин - 0,2 мг/л, триптофан - 0,2 мг/л, а в числе заменимых аминокислот - тирозин - 0,3 мг/л, пролин - 3,45 мг/л. Из минеральных веществ, обнаруженных в составе препарата были следующие: натрий - 17 мг/л, калий - 12,6 мг/л, кальций - 1,04 мг/л и магний - 6,7 мг/л. Такое содержание ДВ обеспечивает полное обезвреживание объектов окружающей среды - сточные воды, их осадки, почва от яиц гельминтов в интервале времени 8-24 часа.
Результаты наших исследований показали, что через 30 суток с начала постановки на культивирование в контрольной группе из 200 яиц до стадии подвижной личинки дошли 187±5,90 (р<0,05), что составляет 93,5%, остальные 13 яиц, которые не дошли до инвазионной стадии теряли свою жизнеспособность на стадиях восьми бластомеров, морулы и бластулы. В опытной группе при культивировании в термостате под действием препарата Бингсти из 200 яиц до стадии личинки развились только 2 экз., что составляет 1% (р<0,05). Все 198 погибших яиц, которые теряли жизнеспособность, были на стадиях морулы и бластулы. Полученные результаты свидетельствуют, что опыт по культивированию яиц A.suum в термостате показал высокую овоцидную активность препарата Бингсти, поскольку была получена 99%-ная ИЭ (р<0,05). Отсюда следует, что при культивировании яиц аскарид в
472
термостате установлена 99%-ная овоцидная активность препарата Бингсти. При морфологическом исследовании яиц A.suum в контрольной группе установлено, что личинка имеет ненарушенные покровы, мелкую зернистость, оболочки яйца не прокрашены, что дает основание сделать вывод о жизнеспособности нематод. При исследовании яиц аскарид из опытной группы установлено нарушение целостности оболочек, вакуолизация содержимого и отмеченное позволяет сделать вывод о том, что яйца аскарид в опытной группе нежизнеспособные. Полученные в опыте по культивированию яиц аскарид результаты были достаточно убедительные по части высокой овоцидной активности препарата Бингсти в испытанной нами концентрации. Тем не менее, для окончательного ответа на вопрос об эффективности препарата, использованного для обработки яиц нематод, была поставлена биопроба на 20 беспородных лабораторных мышах массой 20-25 г, которых разделили на две аналогичные группы по 10 в каждой. Мыши первой группы служили контролем и им задавали внутрь по 50 экз. яиц аскарид на животное после 30 суточного культивирования, визуального осмотра и оценки. Вторая группа мышей была опытной и им задавали по 50 экз. яиц свиной аскариды после 30 суточного культивирования в термостате с добавлением препарата Бингсти в разведении 10-6 г/л. За время опыта мыши обеих групп находились в аналогичных условиях в виварии, содержали их в изолированных клетках, кормление осуществляли по принятым нормам, падежа за время опыта не отмечали. Оценивали результаты через 8 суток после дачи культуры яиц, путем убоя всех мышей, вскрытия печени и легких, учитывая количество мигрирующих личинок аскарид.
Результаты проведенных вскрытий показали, что у мышей контрольной группы всего было обнаружено в печени 29 экз. мигрирующих личинок аскарид, а в легких 21 экз. Тогда как в опытной группе мышей мигрирующих личинок находили только в печени в количестве одного экз., а в легких их не обнаружили.
Заключение. Изучение овоцидных свойств препарата Бингсти изготовленного из проростков картофеля, проведенное на стандартных общепринятых моделях как культивирование яиц A.suum и биопроба на лабораторных мышах, показали высокую овоцидную активность препарата. По результатам культивирования яиц A.suum в термостате интенсэффективность препарата равнялась 99%, а по биопробе эффективность составила 98,2% (р<0,05), при сравнении со средним числом от процентных изменений в опытной группе.
Литература: 1. Грибова О.А. Научное обоснование технологии
производства и применения растительных препаратов для дегельминтизации загрязненных объектов окружающей среды. Автореф. дисс. канд. тех. наук. -Новочеркасск, 2003. 2. МУК 4.2.796-99. Методы санитарно-
паразитологических исследований. - М., 2000. - С. 49-52. 3. Романенко Н.А. // Гигиена и санитария. - М., 2003. - №3. - С. 16-18. 4. Симонов А.П. Средства и методы дезинвазии объектов внешней среды при гельминтозах. - М., 1978. -
473
42с. 5. Методические рекомендации по обеззараживанию сточных вод, их осадков, почвы, донных отложений поверхностных водоемов от возбудителей гельминтозов в условиях Ростовской области. - М., 2010.
Ovocide properties of biogenic agent Bingsti. Seregin M.Yu., Safiullin R.T. All-Russian K.I. Skryabin Scientific Research Institute of Helminthology.
Summary. According to the results of Ascaris suum eggs cultivation in thermostat the intensefficacy of Bingsti in dilution of 10-6 g/l was 99% as while at performance of biological test on laboratory mice - 98,2% (p < 0,05).
ОТОДЕКТОЗ ЦИРКОВЫХ ЖИВОТНЫХ
Сивкова Т.Н., Непримерова Т.А. *
ФГОУ ВПО «Пермская ГСХА», *Филиал Росгосцирка г. Москва Пермский государственный цирк
Введение. В настоящее время поголовье животных, зарегистрированных в Росгосцирке, с каждым годом сокращается, происходит снижение количества цирковых номеров с их участием. В сложившейся ситуации возрастает ответственность ветеринарных врачей за сохранение рабочих качеств имеющихся цирковых животных. Особое внимание следует уделять проблеме инфекционных и инвазионных болезней, их своевременной диагностике и профилактике. Паразитарные болезни проявляются зачастую без выраженных клинических признаков, протекают латентно, однако при этом неблагоприятно влияют на состояние здоровья, работоспособность и продуктивность. Инвазированные животные становятся вялыми, плохо реагируют на команды дрессировщика, иногда наоборот - агрессивными. Такие проявления приводят к срыву выступлений. Ухудшается внешний вид больных особей.
В последние годы появился ряд работ, посвященных изучению распространения инвазионных болезней цирковых и зоопарковых животных (Пасечник В.Е. и др., 2008). Однако проведенные исследования не охватывают целого ряда проблем. Данные о распространении арахноэнтомозов цирковых животных в доступной литературе вообще отсутствуют. В связи с этим целью нашей работы явилось изучение распространения отодектоза цирковых животных, принадлежащих Росгосцирку, а также находящихся на территории Российской Федерации.
Материалы и методы. Для прижизненной диагностики отодектоза проводили клинический осмотр животных, а также микоскопическое исследование скотч-отпечатков с внутренней поверхности ушной раковины под малым увеличением микроскопа. Кроме этого было проведено вскрытие павших животных с осмотром и микроскопией соскобов содержимого слухового прохода.
474
