CC BY
36
К^Ш /ребёнка
КёУчна пед1атр1я / Clinical Pediatrics
УДК 616.61-002.2-036-053.2-06:616.98 DOI: 10.22141/2224-0551.13.7.2018.148913
Козыро И.А.1, РубаникЛ.В.2, Сукало А.В13, Чеботарева Т.К.4
1УО «Белорусский государственный медицинский университет», г. Минск, Республика Беларусь 2РНПЦ эпидемиологии и микробиологии, г. Минск, Республика Беларусь 3Национальная академия наук Беларуси, г. Минск, Республика Беларусь 4УЗ «2-я детская клиническая больница», г. Минск, Республика Беларусь
Оценка вклада герпесвирусной инфекции в развитие и прогрессирование хронических гломерулярных болезней у детей
For cite: Zdorov'e rebenka. 2018;13(7):621-628. doi: 10.22141/2224-0551.13.7.2018.148913
Резюме. Актуальность. Этиология хронических болезней клубочкового аппарата почки на сегодняшний день до конца не известна. Описано участие ряда факторов, в том числе вирусных инфекций. Цель исследования: определение антител к вирусу Эпштейна — Барр (ВЭБ) (IgG к нуклеарному и раннему антигену (АГ), IgG и IgM к вирусному капсидному АГ), цитомегаловирусу (ЦМВ) (IgG, IgM), вирусу простого герпеса (ВПГ) (IgM, IgG), специфических фрагментов ДНК герпес- и полиомавирусов (BKV, JCV) методом полимеразной цепной реакции в сыворотке крови и ткани почки для уточнения роли вирусной инфекции в развитии гломерулопатий (ГП) у детей. Материалы и методы. Обследовано 130 детей с первичными и вторичными гломерулопатиями, в том числе 42реципиента почечного трансплантата, на наличие антител и фрагментов ДНК герпес- и полиомавирусов, в качестве контроля — 36 условно здоровых детей, проведен ультраструктурный анализ нефробиоптатов пациентов с ГП. Результаты. IgM к ВПГ и IgM к ЦМВ чаще выявлялись в сыворотках пациентов с вторичными и первичными ГП по сравнению с контролем (17,1 и 12,8 % против 0, 20 и 17 % против 5,5 % соответственно), а также детьми с почечным трансплантатом (против 0 % к ВПГ, 5 % к ЦМВ и 7 % к ВЭБ соответственно). В 5 случаях из группы вторичных ГП одновременно выявлялись антитела (АТ) класса М к двум и более герпесвирусам. У 24,4 % детей с вторичными ГП в крови были обнаружены как АТ к ВЭБ (IgG к раннему АГ и IgM к вирусному капсидному АГ), ЦМВ и ВПГ (IgM), так и нуклеокапсиды ВПГ, ЦМВ и ВЭБ. Ультраструктурный анализ 10 нефробиоптатов показал наличие ДНК ВПГ 1-го, 2-го типа в одном и ДНК ЦМВ в 2 случаях. Приведены особенности течения ГП, ассоциированных с герпетической инфекцией. Выводы. Герпесвирусы оказывают влияние на развитие и течение патологического процесса при хронических ГП. Представленный алгоритм вирусологического обследования детей с ГП может использоваться в практике нефролога. Ключевые слова: хронические болезни почек; дети; герпесвирусы
Введение
Этиология хронических болезней клубочкового аппарата почки на сегодняшний день до конца не известна. Описано участие ряда факторов, в том числе вирусных инфекций [1—5]. Внимание к роли вирусов гепатита В и С в развитии гломерулонеф-рита знаменовало начало изучения вирусассоци-ированных нефропатий [2]. По данным литературы прослежена связь между инфекцией, вызванной
вирусами семейства герпесвирусов (вирус простого герпеса (ВПГ), Эпштейна — Барр (ВЭБ), цитоме-галовирус (ЦМВ)) и развитием как самого заболевания, так и провокацией обострений [4—7]. Среди приведенных — нефротический синдром, системные заболевания соединительной ткани (системная красная волчанка (СКВ)), ревматоидный артрит, системные васкулиты (IgA-васкулит Шенлейна — Геноха (ШГ), гранулематоз Вегенера и др.), а также
© «Здоров'я дитини» / «Здоровье ребенка» / «Child's Health» («¿dorov'e rebenka»), 2018 © Видавець Заславський О.Ю. / Издатель Заславский А.Ю. / Publisher Zaslavsky O.Yu., 2018
Для корреспонденции: Козыро Инна Александровна, кандидат медицинских наук, доцент 1-й кафедры детских болезней, УО «Белорусский государственный медицинский университет», пр. Дзержинского, 83, г. Минск, 220116, Республика Беларусь; e-mail: [email protected]; контактный тел.: +375296810717.
For correspondence: Ina Kazyra, PhD, Associate Professor at the Department 1 of Childhood Disease, Belarusian State Medical University, Dzerzhinski ауе., 3/3, Minsk, 220116, Republic of Belarus; e-mail: [email protected]; phone: +375296810717.
развитие криза отторжения, лимфопролифератив-ных заболеваний у пациентов с трансплантированной почкой [8—15]. Н. Shimohаtа и соавт. отражают вклад парвовируса В19 в развитие нефропатии [16].
Показано, что ВИЧ непосредственно участвует в патогенезе гломерулопатии, хотя механизм этого до конца не ясен. ВИЧ-нефропатия встречается у 2—10 % ВИЧ-инфицированных, в большинстве случаев проявляется протеинурий или нефротическим синдромом, морфологически фокально-сегментарным гломерулосклерозом [2—5].
Рядом авторов показана связь гломерулярного поражения вирусами и торпидного течения гломе-рулопатии (ГП), развития резистентности к проводимой гормональной и цитостатической терапии, ухудшения прогноза [2—5].
Целью настоящего исследования явилось определение антител (АТ) к ВЭБ (IgG к нуклеарному и раннему антигену (АГ), IgG и ^М к вирусному капсидному АГ), ЦМВ (ДО, ^М), ВПГ (^М, ДО), специфических фрагментов ДНК герпес- и полио-мавирусов (ПВ) (ВКУ, JCV) методом полимеразной цепной реакции (ПЦР) в сыворотке крови и ткани почки для уточнения роли вирусной инфекции в развитии ГП у детей.
Материалы и методы
Нами проведено обследование 130 детей с ГП на наличие АТ и фрагментов ДНК герпес- и полиома-вирусов, а также электронно-микроскопический (ЭМ) анализ нефробиоптатов пациентов с первичными и вторичными ГП. В качестве контроля обследовано 36 условно здоровых детей без патологии клубочкового аппарата почки, находившихся на обследовании в отделении кардиологии с диагнозом «вегетативная дистония».
Первую исследуемую группу составил 41 пациент с вторичными ГП вследствие СКВ, люпус-нефрита (ЛН) (п = 20), IgA-васкулита Шенлейна — Геноха (п = 17), с АНЦА-ассоциированным нефритом, гра-нулематозом Вегенера (п = 4). Одиннадцать детей с СКВ, ЛН были обследованы повторно в динамике. Во вторую исследуемую группу вошли пациенты (п = 47) с первичными ГП — IgA-нефропатией (1§А^ п = 18), нефропатией минимальных изменений (п = 15), фокально-сегментарным гломерулосклерозом (п = 14). Третья исследуемая группа — реципиенты почечного трансплантата (Тх, п = 42). Возраст пациентов варьировал от 2 до 18 лет (13,2 ± 4,1 года).
Методом ПЦР ДНК-содержащих вирусов проведено исследование 42 сывороток крови и 21 образца мочи детей с Тх на наличие полиомавирусов ВКУ, JCV (в качестве группы сравнения для детей с ГП (п = 88)).
Обследование и забор биологического материала (нефробиоптатов, сыворотки крови, мочи) проводились на базе нефрологического отделения УЗ «2-я детская городская клиническая больница» г. Минска и 1-й кафедры детских болезней УО БГМУ. Серологические, молекулярно-биологические и
ЭМ-исследования проводились на базе лаборатории вирусных инфекций РНПЦ эпидемиологии и микробиологии. У всех пациентов диагноз ГП верифицирован с проведением световой и иммуноги-стохимической микроскопии.
Иммуноферментный анализ (ИФА). Для выявления специфических антител к вирусам семейства Herpesviridae использовали тест-системы «ВектоВПГ-ДО», «ВектоВПГ-^М», «ВектоЦМВ-ДО», «ВектоЦМВ-^М», «ВектоВЭБ-УСА-^М», «ВектоВЭБ-EA-IgG». Постановку реакций проводили в соответствии с инструкциями по применению, прилагаемыми производителем («Вектор-Бест», Россия). Учет результатов проводили на ИФА-анализаторе «АИФ-М/340» («Витязь», Республика Беларусь) при длине волны 450 нм.
Полимеразная цепная реакция. Выделение ДНК проводили с помощью комплекта реагентов «РИБО-преп» (ФГУН ЦНИИЭ Роспотребнадзора, Россия). Наличие ДНК герпесвирусов определяли с использованием ПЦР наборов «АмплиСенс П-ЕРЬ», «АмплиСенс CMV-EPh» и «АмплиСенс ЕВУ-ЕРЬ» (ФГУН ЦНИИЭ Роспотребнадзора, Россия).
Выделение ДНК полиомавирусов, в том числе ВКУ и JCV, проводилось в лаборатории инфекций с природным резервуаром. Проведение реакций и оценка результатов — согласно прилагаемым к наборам инструкциям.
Статистическая обработка результатов проводилась с использованием программы Statistica 10.0. Вычисляли среднеарифметические величины, их доверительные интервалы, оценку достоверности различий числовых результатов по критерию Стью-дента. Разницу считали статистически достоверной при р < 0,05.
Результаты
Серологическая диагностика (ИФА). В контрольной группе ^М к ВПГ не были выявлены ни в одном образце. В то же время у 2 из 36 (5,5 %) обследуемых обнаружены ^М к ЦМВ, у 3 из 36 (8,3 %) — ^М к ВЭБ. IgG к капсидному АГ ВЭБ не были выявлены ни у одного пациента контрольной группы. Клинически ни у одного пациента не отмечалось признаков герпесвирусной инфекции.
В 1-й исследуемой группе у 7 из 41 (17,1 %) и во 2-й исследуемой группе у 6 из 47 (12,8 %) детей выявлены ^М к ВПГ, у 8 (20 %) из 1-й и у 8 (17 %) из 2-й группы — ^М к ЦМВ. ^М к вирусу Эпштей-на — Барр в 1-й и 2-й группах выявлены у 6 (15 %) и 5 (10,1 %) обследуемых соответственно.
Среди детей с Тх почкой ^М к ВПГ не были обнаружены ни у одного пациента, к ЦМВ определялись у 2 (5 %), к ВЭБ — у 3 (7 %) детей.
В 4 случаях (9,8 %) из 1-й группы (дети с СКВ, ЛН) были выявлены одновременно ^М к ЦМВ и ВЭБ. ^М к ЦМВ, ВПГ и ВЭБ одновременно определялись у одного пациента из 1-й исследуемой группы (мальчик с нефритом ШГ без активной патогенетической терапии в момент исследования).
IgG ЕА к ВЭБ были выявлены у 11 (26,8 %) пациентов из 1-й группы, во 2-й группе — у 8 детей (17 %), у 15 (35,7 %) пациентов с Тх почкой, в контроле — у 3 (8,3 %).
Серопозитивными по IgG к ВПГ в 1-й группе были 73,2 % обследуемых (30 из 41), во 2-й группе — 57,4 % (27 из 47), в 3-й группе — 50 % (21 из 42), в контрольной — 22,2 % (8 из 36). Серопозитивными по ДО к ЦМВ в 1-й группе — 53,7 % (22 из 41), во 2-й — 34,04 % (16 из 47), в 3-й — 67 % (28 из 42), в контроле — 44,4 % (16 из 36).
Выявляемость АТ классов ^М и IgG к герпесви-русам у здоровых, детей с ГП, реципиентов почечного Тх представлена в табл. 1.
У 2 девочек с СКВ, ЛН в сыворотке крови не было выявлено АТ ни класса М, ни G. У обеих отмечалась высокая активность волчанки, IV класс нефрита, протеинурия нефротического уровня, обе получали высокодозную патогенетическую терапию индукции нефрита (пульс-терапию циклофосфами-дом 500 мг/м2 1 раз в месяц и преднизолоном в дозе 2 мг/кг/сут). Исследование крови было проведено в динамике, после завершения 6 курсов циклофосфа-мида и перехода на азатиоприн. У обеих появилась положительная ПЦР к ВЭБ, АТ не определялись. В течение заболевания отмечалась тенденция к лейкопении, в связи с чем в процессе лечения приходилось отменять азатиоприн и увеличивать дозу пред-низолона.
У пациентки М. с СКВ, ЛН, получавшей терапию преднизолоном и азатиоприном, при первичном обследовании определялись ^М и G к ВПГ, ВЭБ ДО ЕА, положительная ПЦР к ВПГ. СКВ характеризовалась резистентностью к проводимой терапии. Сразу после взятия крови пациентка развернула клинику ветряной оспы, причем в анамнезе у девочки уже отмечена перенесенная ранее ветряная оспа, что потребовало отмены иммуносупрес-
сивной (ИС) терапии. Ассоциация иммуноопосре-дованной ГП с герпесвирусной инфекцией на фоне проводимой ИС привела к вторичному транзитор-ному иммунодефициту, что повлекло повторное развитие инфекционного процесса.
У девочки У. в сыворотке крови выявлены IgG к ВПГ, ДО ЕА ВЭБ, положительная ПЦР к ВЭБ крови и мочи, а также вирусные частицы в нефро-биоптате. При повторном исследовании крови все антитела и ПЦР были отрицательными, что можно связать с длительной ИС-терапией.
Нами установлено, что ^М к ВПГ и ^М к ЦМВ чаще выявлялись в сыворотках пациентов исследуемых групп с вторичными и первичными ГП по сравнению с контрольной (17,1 и 12,8 % против 0, 20 и 17 % против 5,5 % соответственно), а также детьми с Тх (против 0 % к ВПГ, 5 % к ЦМВ и 7 % к ВЭБ соответственно). По выявляемости АТ класса М к гер-песвирусам дети с Тх почкой могут быть сопоставимы со здоровыми. В 5 случаях из группы вторичных ГП одновременно выявлялись АТ класса М к двум и более герпесвирусам. Клинически у 4 пациентов с СКВ, ЛН отмечался медленный ответ на проводимое лечение.
Молекулярно-биологическое исследование (ПЦР). Кроме проведенного серологического исследования сыворотки крови пациенты всех групп были протестированы методом ПЦР на наличие ДНК ВПГ, ЦМВ, ВЭБ (табл. 2).
При ПЦР-исследовании сыворотки крови на наличие ДНК ВПГ 1 -го и 2-го типа у 1 пациента (^А^ из 2-й группы и 5 (ГВ-1, СКВ-4) из 1-й группы получены положительные результаты. У детей с Тх ДНК ВПГ выявлена не была. В контрольной группе 1 проба также оказалась положительной в отношении данного типа ДНК.
ДНК ЦМВ была обнаружена только в образце пациентки с IgAN из 2-й группы, у одного ребенка
Таблица 1. Выявляемость антител классов IgМ и IgG к герпесвирусам у здоровых, детей с гломерулопатиями, реципиентов почечного трансплантата
Вирус, класс антител Здоровые, % (абс.) Первичные ГП, % (абс.) Вторичные ГП, % (абс.) Тх почки, % (абс.)
ВПГ ^М 0 (0) 12,8 (6) 17,1 (7) 0 (0)
№ 22,2 (8) 57,4 (27) 73,2 (30) 50 (21)
ЦМВ ^М 5,5 (2) 17 (8) 20 (8) 5 (2)
№ 44,4 (16) 34,1 (16) 53,7 (22) 67 (28)
ВЭБ ^М к VCA 8,3 (3) 10,1 (5) 15 (6) 7 (3)
ДО к ЕА 8,3 (3) 17 (8) 26,8 (11) 35,7 (15)
Таблица 2. Наличие ДНК ВПГ, ЦМВ, ВЭБ в сыворотке крови исследуемых групп,
выявленной методом ПЦР, п (%)
ДНК вируса Здоровые (п = 36) Первичные ГП (п = 47) Вторичные ГП (п = 41) Тх почки (п = 42)
ВПГ 1 (2,8) 1 (2,1) 5 (12,2) 0
ЦМВ 1 (2,8) 1 (2,1) 0 7 (6,7)
ВЭБ 5 (14) 15 (32) 18 (44) 5 (12)
контрольной и не обнаружена ни в одной пробе детей 1-й группы. Среди Тх пациентов ДНК ЦМВ выявлена у 7 детей.
ДНК ВЭБ была найдена в 43 образцах сывороток исследуемых групп (в 18 из 1-й, в 15 из 2-й), у 5 детей с Тх почкой и в 5 образцах контрольной группы.
При сопоставлении проведенных серологических и молекулярно-биологических исследований были получены следующие данные. В исследуемых группах ДНК ВПГ 1 -го и 2-го типа была обнаружена в 4 образцах детей с СКВ и 1 с ГВ. ^ класса М к ВПГ в этих сыворотках не обнаружено, однако 4 образца были серопозитивными по IgG.
НК ВЭБ обнаружили в 33 пробах детей с ГП. ^ класса М к капсидному антигену ^А ВЭБ были обнаружены двух образцах, однако еще 4 сыворотки были положительными на наличие IgG к раннему антигену ЕА ВЭБ. Все пациенты были из 1-й исследуемой группы.
Следует отметить, что в контрольной группе у одного пациента в сыворотке крови была обнаружена ДНК ЦМВ, уровень антител М к этому возбудителю находился в серой зоне (сомнительный результат), он был серопозитивным по IgG. Пациент не имел почечной патологии и клинических признаков инфекционного процесса, наблюдался по поводу веге-тососудистой дистонии.
Таким образом, у 10 из 41 (24,4 %) ребенка с вторичными ГП в сыворотке крови были обнаружены как антитела к ВЭБ (IgG к раннему АГ и ^М к вирусному капсидному АГ), ЦМВ и ВПГ (^М), так и НК ВПГ, ЦМВ и ВЭБ, что может указывать на роль герпетической инфекции в патогенезе вторичных хронических ГП.
У 8 пациентов, у которых по данным серологического тестирования выявлялись противогерпетиче-ские АТ класса М или при молекулярно-биологиче-ском исследовании сыворотки крови детектировался специфический фрагмент ДНК ВПГ или ЦМВ, или ВЭБ дополнительно была исследована моча. Про-
веденный анализ показал, что у пациентки с СКВ, ЛН наряду с обнаружением ^М в сыворотке крови выявлялся фрагмент ДНК к ЦМВ в моче, что может предполагать локальное размножение герпесвиру-сов в органах мочеполовой системы.
Проведенный молекулярно-биологический анализ 10 нефробиоптатов показал наличие ДНК ВПГ 1-го и 2-типа в одном и ДНК ЦМВ в 2 случаях. Полученные результаты могут свидетельствовать об участии ткани почки в качестве резервирующего органа для диссеминации и возможного размножения герпесвирусов.
Электронно-микроскопическое исследование не-фробиоптата. С целью изучения роли герпесви-русов в развитии ГП методом ультраструктурного анализа исследованы нефробиоптаты пациентов с ГП, у которых методом ПЦР в крови или ткани почек была обнаружена ДНК вирусов семейства Herpesviridae. Наличие этиологического агента с выявлением вирусных частиц, находящихся на ранних и конечных стадиях морфогенеза, было подтверждено только в одном из исследованных биоптатов. Чаще отмечались косвенные признаки инфекции. В клубочках визуализировались как специфические, так и неспецифические дистрофические изменения подоцитов. Кариоплазма в центральной части ядра была светлой, хроматин располагался вдоль внутреннего слоя ядерной мембраны. В дистрофически измененных клетках отмечалось исчезновение ядрышек, пери- и межхроматиновых гранул и накопление беспорядочно расположенных глыбок хроматина. Другой тип изменений наблюдался в цитоплазме инфицированных клеток. Специфические дистрофические процессы проявлялись в виде резких расширений канальцев и цистерн эндоплаз-матического ретикулума с накоплением электронно-плотных включений внутри. Обнаруживались светлые «пустые» вирусные частицы размером 80— 90 нм и отдельные ДНК-содержащие нуклеокап-сиды. Большинство вирусных капсидов содержали
А
Ml 1
Б
Рисунок 1. Морфологические изменения подоцитов клубочков при герпетической инфекции (масштабный отрезок — 100 нм): А — образование специфическихгерпесвирусныхвключений в цитоплазме подоцита; Б — отдельные ДНК-содержащие нуклеокапсиды формируют
паракристаллическую укладку
электронно-плотную сердцевину, что свидетельствовало о репродуктивном типе инфекционного процесса с формированием зрелых вирусных частиц (рис. 1).
Анализируя результаты ультраструктурного анализа, можно сделать вывод, что герпесвирусы оказывают влияние на развитие и течение патологического процесса в почечной ткани и могут являться этиологическими факторами в патогенезе и про-грессировании ГП. Данные ультраструктурного состояния подоцитов важны для дифференциальной диагностики и последующего выбора тактики патогенетической терапии ГП.
На основании проведенной работы разработан алгоритм вирусологического обследования детей с гломерулопатиями. Обследование осуществляется в отношении вирусов простого герпеса 1-го и 2-го типов, цитомегаловируса и вируса Эпштейна — Барр по схеме, состоящей из 3 этапов и представленной на рис. 2.
Первый этап — серологическое обследование в отношении наличия специфических противогерпе-тических АТ классов М и G в сыворотке крови пациентов. Положительный результат в отношении ^М говорит о текущей/недавно перенесенной инфекции и требует повторного серологического обследования через 4—5 недель. Положительный результат при повторном обследовании свидетельствует об активной герпесвирусной инфекции в организме и является показанием для 2-го этапа обследования.
Второй этап исследования включает молеку-лярно-биологическое исследование образцов сыворотки крови и мочи с целью обнаружения ДНК герпесвирусов. Положительный результат при исследовании крови свидетельствует о виремии, в моче — о вирурии и является показанием для комплексного исследования нефробиоптата.
Третий этап исследования заключается в комплексном исследовании нефробиоптата с помощью гистологического, иммуногистохимического, электронно-микроскопического и молекулярно-
Рисунок 2. Алгоритм вирусологического обследования пациента с гломерулопатией
генетического методов с целью постановки дифференциального диагноза и обнаружения ДНК и/или частиц вируса in situ в подоцитах. По результатам третьего этапа осуществляется коррекция проводимой терапии с назначением этиотропных противо-герпетических препаратов.
При установлении у пациента с гломерулопа-тией герпесвирусной инфекции, локализованной в подоцитах, необходимо привлечение врача-инфекциониста для определения тактики этиопатоге-нетической терапии, направленной на коррекцию герпесиндуцированных поражений почек.
Молекулярная индикация и дифференциация по-лиомавирусов BKV, JCV. Методом ПЦР ДНК-содержащих вирусов в режиме реального времени проведено исследование 42 сывороток крови и 21 образца мочи детей, реципиентов почечного трансплантата, на наличие полиомавирусов (в качестве группы сравнения для групп детей с первичными и вторичными ГП (n = 88)). Все дети с первичными и вторичными ГП оказались негативными по наличию частиц ПВ, в то время как после трансплантации почки у 1 пациента в сыворотке крови, у 1 в моче выявлена ДНК двух вирусов BK и JCV, у 1 в моче — ДНК ВК вируса, у 4 пациентов обнаружена ДНК JCV вируса.
Учитывая тот факт, что научные исследования по проблеме полиомавирусной инфекции (ПВИ) у детей в нашей стране до настоящего времени не проводились, целесообразным представляется дальнейшее исследование роли ПВИ в развитии не-фрологической патологии у иммунокомпетентных пациентов.
Обсуждение
Исследованиями зарубежных и отечественных авторов показано, что вирусные АГ принимают участие в образовании иммунных комплексов, которые обнаруживают у пациентов с ГП. В почечных депозитах находят АГ вируса гепатита В и С, паротита, ВЭБ, ЦМВ, ВПГ, кори, аденовируса, парвовируса В19, ВИЧ и др. [2, 17—19]. Этиопатогенетическую роль вирусов доказывают с помощью иммуносеро-логических, иммуногисто- и цитохимических, мо-лекулярно-биологических методов исследования с использованием различных биологических материалов, в том числе почечного биоптата [4, 20, 21].
Ассоциация гломерулярного поражения вирусами приводит к торпидному течению ГП, развитию резистентности к проводимой гормональной и ци-тостатической терапии, ухудшению прогноза [2—4]. В.В. Длин в своих работах доказал роль вирусов группы герпеса в этиопатогенезе ГН у детей, а также обосновал применение у таких детей противовирусной и иммунокорригирующей терапии [2, 3].
Особое место в развитии патологии почек принадлежит ВЭБ, относящемуся к группе Herpesviridae 5-го вида. Описываются наблюдения острой почечной недостаточности в связи с развитием тубулоин-терстициального нефрита [22]. Заболевание прояв-
ляется как у детей, перенесших мононуклеоз, так и у тех, у кого первичное поражение вирусной инфекцией протекало асимптомно. Имеются сведения и о возможном поражении клубочковой системы почек ВЭБ с развитием нефротического синдрома [19]. Исследуя биоптаты почечной ткани при фокально-сегментарном гломерулосклерозе, мембранозной нефропатии и IgA-нефропатии, Н. Imata et а1. [5] обнаружили присутствие ВЭБ в мезангии, что, по их мнению, свидетельствует о его способности поражать гломерулярные структуры. Однако остается неясным, является ли указанная инфекция этиологическим фактором или сопутствует иммунному процессу в связи с иммуносупрессивной терапией.
Ряд авторов указывает на связь клинических и серологических параметров у пациентов с СКВ и профилем антител к ВЭБ [23—26].
В литературе обсуждают вопросы неспецифического повреждения почек в ходе противовирусного иммунного ответа, гиперактивной поликлональной гипергаммаглобулинемии при некоторых вирусных инфекциях, наличие аутоиммунного компонента в патогенезе, чрезмерной макрофагальной активации при гемофагоцитарном синдроме. Главной особенностью иммунного статуса при герпетической инфекции является формирование вторичного иммунодефицита. В иммунокомпетентном организме герпетическая инфекция приобретает бессимптомное латентное течение, однако у пациентов в состоянии иммуносупрессии при длительной ИС-терапии происходит реактивация герпетической инфекции [27—29].
Полиомавирусная инфекция человека относится к малоизвестным и недостаточно изученным вирусным заболеваниям. Данные литературы о встречаемости ПВИ среди детей с патологией почек весьма ограниченны. Известно, что тропизм ПВ направлен преимущественно на эпителий мочевой системы (МС), именно патология МС является наиболее частым клиническим проявлением ПВИ. Особенно тяжелые проблемы ВК вирусы вызывают у пациентов на фоне лекарственного подавления иммунитета, когда происходит реактивация вирусной инфекции с виремией и вирурией и развитием иногда фатальных осложнений. Особую актуальность представляет своевременная лабораторная диагностика ПВИ, направленная на оперативное выявление возбудителя и определение индивидуальной количественной оценки вирусной нагрузки с целью выработки адекватных подходов к лечению [12-14].
Несмотря на значительные успехи, достигнутые на сегодняшний день как в ранней диагностике, так и в лечении и прогнозе при СКВ с поражением почек, основной причиной смерти в детском возрасте остается развитие цитопенического синдрома и присоединение инфекции, возникающие вследствие либо недостаточности иммунной системы, которая вызвана самим заболеванием, либо агрессивной иммуносупрессивной терапии.
Выводы
Анализируя полученные результаты молекуляр-но-биологического исследования сывороток крови, мочи и ультраструктурного анализа нефробиоптата, можно сделать вывод, что герпесвирусы оказывают влияние на развитие и течение патологического процесса в почечной ткани и могут являться этиологическими факторами в развитии и прогрессиро-вании ГП.
В случаях, когда причиной развития болезни или ее рецидива является вирусная инфекция, решение об отмене цитостатика должно приниматься немедленно из-за опасности быстрой генерализации инфекции и возможного неблагоприятного исхода. Необходима четкая верификация возбудителя с последующим назначением специфической антивирусной терапии.
Показано, что обнаруженные в биологическом материале специфические фрагменты НК герпес-вирусов указывают на роль в поражении гемот-каневого барьера, повреждении эндотелиоцитов, перицитов, подоцитов в зонах клубочкового аппарата. В результате ультраструктурного анализа пункционных биоптатов почки детей с гломеруло-патиями, у которых методом ПЦР в крови или ткани почек была обнаружена ДНК вирусов семейства Herpesviridae, в цитоплазме подоцитов верифицировано наличие капсидов вируса герпеса. Полученные данные свидетельствуют, что герпесвирусы оказывают влияние на развитие и течение патологического процесса в почечной ткани и могут являться триггерами в патогенезе и прогрессирова-нии гломерулопатий.
Разработанный алгоритм вирусологического обследования детей с гломерулопатиями с целью верификации герпесвирусной инфекции (ВПГ, ЦМВ, ВЭБ) будет полезен для практического врача-нефролога как на этапах диагностики, так и мониторинга пациента с ГП. Данные вирусологических исследований (серологических, молекуляр-но- биологических, электронно - микроскопических) важны для дифференциальной диагностики и последующего выбора тактики патогенетической терапии гломерулопатий. Наличие у пациента активной/реактивированной герпетической инфекции является показанием для уменьшения объема иммуносупрессивной терапии — отмены цитостатического препарата, коррекции дозы преднизолона.
Конфликт интересов. Авторы заявляют об отсутствии какого-либо конфликта интересов при подготовке данной статьи.
Информация о вкладе авторов в подготовку статьи:
Козыро И.А. — сбор, обработка и анализ полученных материалов; Рубаник Л.В. — выполнение лабораторной части исследования; Сукало А.В. — концепция и дизайн исследования; Чеботарева Т.К. — сбор материала.
References
1. Lojman E, Cygin AN, Sarkisjan AA, eds. Detskaia nefrologiia: prak-ticheskoe rukovodstvo [Pediatric Nephrology: practical guideline]. Moskow: Litera; 2010. 400p. (inRussian).
2. Ignatova MS, ed. Detskaia nefrologiia: rukovodstvo dlia vrachei [Pediatric Nephrology: guideline for doctors]. 3 th ed. MoskowMIA; 2011. 696 p. (in Russian).
3. Papajan AV, Savenkova ND. Klinicheskaia nefrologiia detskogo vozrasta [Clinical nephrology in Childhood]. Sankt-Peterburg: Levsha; 2008. 600 p. (in Russian).
4. Necheporenko NV, Kalinina NM, Savenkova ND. Glomerulone-phritis, associated with viral infection in children and adolescents. Nefrologia. 2010;14(2):35-45.
5. Avner ED, Harmon W, Niaudet P. Pediatric Nephrology. 5th ed. United States, Philadelphia: Lippincott Williams&Wilkins; 2004.1564 p.
6. Rees L, Brogan PA, Brockenhauer D, Webb NJA. Paediatric nephrology. London: Oxford University Press; 2007. 618p.
7. Wenderfer SE. Viral-associated glomerulopathies in children. PediatrNephrol. 2015Nov;30(11):1929-38. doi: 10.1007/s00467-015-3057-y.
8. Vachvanichsanong P, McNeil E. Pediatric lupus nephritis: more options, more chances? Lupus. 2013 May;22(6):545-53. doi: 10.1177/0961203313485490.
9. Kawasaki Y Ono A, Ohara S, et al. Henoch-Schönlein purpura nephritis in childhood: pathogenesis, prognostic factors and treatment. Fukushima J MedSci. 2013;59(1):15-26.
10. KDIGO. Clinical Practice Guideline for Glomerulonephritis. Kidney International Supplements. 2012;2(2): 139-274.
11. Zarauza Santoveña A, García Meseguer C, Martínez Mejía S, et al. BK virus infection in pediatric renal transplantation. Transplant Proc. 2015 Jan-Feb;47(1):62-6. doi: 10.1016/j.transproceed.2014.11.020.
12. Comerlato J, Campos FS, Oliveira MT, et al. Molecular detection and characterization of BK and JC polyomaviruses in urine samples of renal transplant patients in Southern Brazil. J Med Virol. 2015 Mar;87(3):522-8. doi: 10.1002/jmv.24086.
13. Ducharme-Smith A, Katz BZ, Bobrowski AE, Backer CL, Rychlik K, Pahl E. Prevalence of BKpolyomavirus infection and association with renal dysfunction in pediatric heart transplant recipients. J Heart Lung Transplant. 2015 Feb;34(2):222-6. doi: 10.1016j.healun.2014.09.043.
14. Aksenova M, Tsetlina V, Gutovskaya E, Mitrofanova A, Balashov D, Maschan A. BK virus nephropathy in a pediatric patient after hematopoietic stem cell transplantation. Pediatr Transplant. 2015 Feb;19(1):E29-32. doi: 10.1111/ petr.12411.
15. Davin JC, Coppo R. Henoch-Schönlein purpura nephritis in chil-dren.NatRevNephrol. 2014Oct;10(10):563-73. doi: 10.1038/nrneph.2014.126.
16. Shimohata H1, Higuchi T, Ogawa Y et al. Human parvovirus B19-induced acute glomerulonephritis: a case report. Ren Fail. 2013;35(1):159-62. doi: 10.3109/0886022X.2012.736068.
17. PiroozmandA, HaddadKashani H, Zamani B. Correlation between Epstein-Barr Virus Infection and Disease Activity of Systemic Lupus Erythematosus: a Cross-Sectional Study. AsianPac J CancerPrev. 2017 Feb 1;18(2):523-527. doi: 10.22034/APJCP.2017.18.2.523.
18. Wozniak A, Pluta-Hadas K, Zurawski J, et al. Electron-microscopic and immunohistochemical study in Henoch-Schoenlein nephritis. Ultrastruct Pathol. 2013Feb;37(1):83-92. doi: 10.3109/01913123.2012.670035.
19. Dossier C, Jamin A, Deschênes G. Idiopathic nephrotic syndrome: the EBV hypothesis. Pediatr Res. 2017 Jan;81(1-2):233-239. doi: 10.1038/ pr.2016.200.
20. Gross AJ, Hochberg D, Rand WM, Thorley-Lawson DA. EBV and systemic lupus erythematosus: a new perspective. J Immunol. 2005 Jun 1;174(11):6599-607.
21. Ascherio A, Munger KL. EBV and Autoimmunity. Curr Top Microbiol Immunol. 2015;390(Pt 1):365-85. doi: 10.1007/978-3-319-22822-8J5.
22. Okada H, Ikeda N, Kobayashi T, et al. An atypical pattern of Ep-stein-Barr virus infection in a case with idiopathic tubulointerstitial nephritis. Nephron. 2002 0ct;92(2):440-4. doi: 10.1159/000063322.
23. PiroozmandA, Kashani H, Zamani B. Correlation between Epstein-Barr Virus Infection and Disease Activity of Systemic Lupus Erythematosus: a Cross-Sectional Study. Asian Pac J Cancer Prev. 2017 Feb 1;18(2):523-527. doi: 10.22034/APJCP.2017.18.2.523.
24. Amaral B, Murphy G, Ioannou Y Isenberg DA. A comparison of the outcome of adolescent and adult-onset systemic lupus erythematosus. Rheumatology (Oxford). 2014 Jun;53(6):1130-5. doi: 10.1093/rheumatology/ket488.
25. Chen CJ, Lin KH, Lin SC, et al. High prevalence of immunoglobulin and antibody against Epstein-Barr virus capsid antigen in adult patients with lupus with disease flare: case control studies. J Rheumatol. 2005Jan;32(1):44-7.
26. Mohamed AE, Hasen AM, Mohammed GF Elmaraghy NN. RealTime PCR of cytomegalovirus and Epstein-Barr virus in adult Egyptian patients with systemic lupus erythematosus. Int J Rheum Dis. 2015 May;18(4):452-8. doi: 10.1111/1756-185X.12261.
27. Berkun Y Zandman-Goddard G, Barzilai O, et al. Infectious antibodies in systemic lupus erythematosus patients. Lupus. 2009Nov;18(13):1129-35. doi: 10.1177/0961203309345729.
28. Williams MV, Cox B, Ariza ME. Herpesviruses dUTPases: A New Family of Pathogen-Associated Molecular Pattern (PAMP) Proteins with Implications for Human Disease. Pathogens. 2016 Dec 28;6(1). pii: E2. doi: 10.3390/ pathogens6010002.
29. Rigante D, Esposito S. Infections and Systemic Lupus Erythematosus: Binding or Sparring Partners? Int JMol Sci. 2015 Jul 29;16(8):17331-43. doi: 10.3390/ijms160817331.
Получено 23.09.2018 ■
Козиро 1.0.РубаникЛ.В.2, Сукало О.В.13, Чеботарьова Т.К.4
1ЗО «Блоруськийдержавний медичний у^верситет», м. Míhcnc Респyблiка Блорусь
2РНПЦ епдемюлогн та мкробюлогИ м. Мнськ, Респуб^ка Блорусь
3Нацональна академiя наук Блорус, м. Мiнськ, Респyблiка Блорусь
4ЗОЗ «2-га дитяча кл^чна лкарня», м. Мiнськ, Респyблiка Блорусь
Ощнка вкладу repnecBipycHoï ^e^ií в розвиток i прогрeсувaння хроычних гломeрулярних хвороб у д^й
Резюме. Актуальшсть. Етюлопя хрошчних хвороб клубоч-кового апарату нирки на сьогодш до кшця невщома. Описано участь ряду фактс^в, в тому чи^ вiрусних шфекцш. Мета дослдження: визначення антитш до вiрусу Епштей-на — Барр (ВЕБ) (З^в до нуклеарного i раннього антигену (АГ), i до вiрусного капсидного АГ), цитомегало-
вiрусу (ЦMВ) (IgG, IgM), вiрусу простого герпесу (ВПГ) (IgM, IgG), специфiчних фрагмента ДНК герпес- i поль омавiрусiв (BKV, JCV) методом полiмеразноï цепноï реак-ци в сироватщ кровi та тканиш нирки для уточнення ролi вiрусноï шфекцП в розвитку гломерулопатш (ГП) у дгтей. Мaтерiaли та методи. Обстежено 130 дней з первинними i
вторинними гломерулопатiями, в тому числ1 42 рецитенти ниркового трансплантата, на наявшсть антитiл 1 фрагмен-тав ДНК герпес- 1 полюмав1рус1в, як контроль — 36 умов-но здорових дней, проведено ультраструктурний анатз нефробюптатов пащентав з ГП. Результати. ^М до ВПГ 1 IgM до ЦМВ частше виявлялися в сироватках пащенпв 1з вторинними 1 первинними ГП пор1вняно з контролем (17,1 1 12,8 % проти 0, 20 1 17 % проти 5,5 % вщповщно), а також диъми з нирковим трансплантатом (проти 0 % до ВПГ, 5 % до ЦМВ 1 7 % до ВЕБ вщповщно). У 5 випадках з групи вторинних ГП одночасно виявлялися АТ класу М до двох 1 бшьше герпесв1рус1в. У 24,4 % дней 1з вторинними
ГП в кров1 були виявлеш як АТ до ВЕБ (^в до раннього АГ 1 ^М до в1русного капсидного АГ), ЦМВ 1 ВПГ (^М), так 1 нуклеокапсиди ВПГ, ЦМВ 1 ВЕБ. Ультраструктурний анатз 10 нефробюптатав показав наявшсть ДНК ВПГ 1-го, 2-го типу в одному 1 ДНК ЦМВ у 2 випадках. Наведено особливосп перебпу ГП, асоцшованих з герпетичною ш-фекщею. Висновки. Герпесв1руси впливають на розвиток 1 переб1г патолопчного процесу при хрошчних ГП. Наведений алгоритм в1русолопчного обстеження дней з ГП може використовуватися в практиц нефролога. Ключовi слова: хротчт хвороби нирок; дти; герпесвь руси
I.A. Kazyra1, L.V. Rubanik2, A.V. Sukala13, T.K. Chebotareva4
1Belarusian State Medical University, Minsk, Belarus
2RSPC of Epidemiology and Microbiology, Minsk, Belarus
3National Academy of Sciences of Belarus, Minsk, Belarus
42nd Children's Clinical Hospital, Minsk, Belarus
Evaluation of the contribution of herpes virus infection to the development and progression of chronic
glomerular diseases in children
Abstract. Background. Etiology of chronic glomerular diseases is not completely known to the present day. A number of factors, including viral infections, are described. Aim of the study: determination of antibodies to Epstein-Barr virus (EBV) (immunoglobulin (Ig) G to the nuclear and early antigen (AG), IgG and IgM to viral capsid AG), cytomegalovirus (CMV) (IgG, IgM), herpes simplex virus (HSV) (IgM, IgG), specific DNA fragments of herpes and polyomaviruses (BK and JC) in the blood serum and kidney tissue to clarify the role of viral infection in the development of glomerulopathies (GP) in children. Materials and methods. One hundred thirty children with primary and secondary GP were examined for the presence of antibodies and DNA fragments of herpes and polyomaviruses, including 42 recipients of the kidney transplant (Tx); 36 apparently healthy individuals were included in the control group. Ultrastructural analysis of kidney tissue for herpes viruses was performed. Results. IgM to HSV and IgM to CMV were de-
tected in the sera of patients with secondary and primary GP more often than in controls (17.1 and 12.8 % vs. 0, 20 and 17 % vs. 5.5 %, respectively), and also children with Tx (vs. 0 % for HSV, 5 % for CMV, and 7 % for EBV, respectively). In 5 cases of secondary GP, IgM to 2 or more herpes viruses simultaneously were detected. In the blood serum of 24.4 % of children with secondary GP, both antibodies to EBV (IgG to early AG and IgM to viral capsid AG) and nucleic acids of HSV, CMV and EBV were detected. The ultrastructural analysis of 10 biopsy specimens showed the presence of type 1 and 2 HSV DNA in one case and CMV DNA in 2 cases. The features of the course of GP associated with herpetic infection are presented. Conclusions. Herpes viruses influence the development and course of the pathological process in chronic GP. The presented algorithm of virological examination of children with GP can be used in the practice of a nephrologist. Keywords: chronic kidney diseases; children; herpes viruses
